RU2481645C2 - Способ моделирования очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза - Google Patents
Способ моделирования очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза Download PDFInfo
- Publication number
- RU2481645C2 RU2481645C2 RU2011104467/14A RU2011104467A RU2481645C2 RU 2481645 C2 RU2481645 C2 RU 2481645C2 RU 2011104467/14 A RU2011104467/14 A RU 2011104467/14A RU 2011104467 A RU2011104467 A RU 2011104467A RU 2481645 C2 RU2481645 C2 RU 2481645C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- splenosis
- splenectomy
- spleen
- foci
- abdominal cavity
- Prior art date
Links
- 208000004389 Splenosis Diseases 0.000 title claims abstract description 50
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 21
- 238000010911 splenectomy Methods 0.000 title claims abstract description 15
- 210000000952 spleen Anatomy 0.000 claims abstract description 19
- 210000000683 abdominal cavity Anatomy 0.000 claims abstract description 13
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 claims abstract description 7
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims abstract description 7
- 241000700157 Rattus norvegicus Species 0.000 claims abstract description 4
- 230000006378 damage Effects 0.000 claims description 6
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 abstract description 12
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 3
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 abstract description 3
- 230000005714 functional activity Effects 0.000 abstract description 2
- 230000008569 process Effects 0.000 abstract description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 abstract 1
- 238000004088 simulation Methods 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 8
- 239000002775 capsule Substances 0.000 description 7
- 210000000569 greater omentum Anatomy 0.000 description 7
- 230000003393 splenic effect Effects 0.000 description 7
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 7
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 6
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 5
- 210000004180 plasmocyte Anatomy 0.000 description 5
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 4
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 4
- 238000011161 development Methods 0.000 description 4
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 4
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 description 4
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 description 4
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 4
- 208000032843 Hemorrhage Diseases 0.000 description 3
- 230000003187 abdominal effect Effects 0.000 description 3
- 230000019552 anatomical structure morphogenesis Effects 0.000 description 3
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 3
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 3
- 210000001672 ovary Anatomy 0.000 description 3
- 230000002980 postoperative effect Effects 0.000 description 3
- 230000002269 spontaneous effect Effects 0.000 description 3
- 210000002784 stomach Anatomy 0.000 description 3
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 2
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N Haematoxylin Chemical compound C12=CC(O)=C(O)C=C2CC2(O)C1C1=CC=C(O)C(O)=C1OC2 WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 108010017480 Hemosiderin Proteins 0.000 description 2
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 2
- 238000011888 autopsy Methods 0.000 description 2
- 230000000740 bleeding effect Effects 0.000 description 2
- 230000036770 blood supply Effects 0.000 description 2
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 2
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 2
- 210000003958 hematopoietic stem cell Anatomy 0.000 description 2
- 230000011132 hemopoiesis Effects 0.000 description 2
- 238000010562 histological examination Methods 0.000 description 2
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 2
- 210000004698 lymphocyte Anatomy 0.000 description 2
- 230000035800 maturation Effects 0.000 description 2
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 2
- 210000003887 myelocyte Anatomy 0.000 description 2
- 238000011477 surgical intervention Methods 0.000 description 2
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 2
- 230000000472 traumatic effect Effects 0.000 description 2
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 2
- 235000007173 Abies balsamea Nutrition 0.000 description 1
- 239000004857 Balsam Substances 0.000 description 1
- 241000218645 Cedrus Species 0.000 description 1
- 208000012671 Gastrointestinal haemorrhages Diseases 0.000 description 1
- 244000018716 Impatiens biflora Species 0.000 description 1
- 208000007536 Thrombosis Diseases 0.000 description 1
- 229930194936 Tylosin Natural products 0.000 description 1
- 239000004182 Tylosin Substances 0.000 description 1
- 230000003213 activating effect Effects 0.000 description 1
- 230000001154 acute effect Effects 0.000 description 1
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 1
- 230000000844 anti-bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 230000002421 anti-septic effect Effects 0.000 description 1
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 description 1
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 238000012937 correction Methods 0.000 description 1
- 230000009089 cytolysis Effects 0.000 description 1
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N eosin Chemical compound [Na+].OC(=O)C1=CC=CC=C1C1=C2C=C(Br)C(=O)C(Br)=C2OC2=C(Br)C(O)=C(Br)C=C21 YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 208000030304 gastrointestinal bleeding Diseases 0.000 description 1
- 230000003394 haemopoietic effect Effects 0.000 description 1
- 230000023597 hemostasis Effects 0.000 description 1
- 230000007124 immune defense Effects 0.000 description 1
- 208000026278 immune system disease Diseases 0.000 description 1
- 208000003243 intestinal obstruction Diseases 0.000 description 1
- 238000007912 intraperitoneal administration Methods 0.000 description 1
- 210000003593 megakaryocyte Anatomy 0.000 description 1
- 230000017074 necrotic cell death Effects 0.000 description 1
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 1
- 210000002747 omentum Anatomy 0.000 description 1
- 230000007170 pathology Effects 0.000 description 1
- 230000007310 pathophysiology Effects 0.000 description 1
- 238000011552 rat model Methods 0.000 description 1
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 1
- WBPYTXDJUQJLPQ-VMXQISHHSA-N tylosin Chemical compound O([C@@H]1[C@@H](C)O[C@H]([C@@H]([C@H]1N(C)C)O)O[C@@H]1[C@@H](C)[C@H](O)CC(=O)O[C@@H]([C@H](/C=C(\C)/C=C/C(=O)[C@H](C)C[C@@H]1CC=O)CO[C@H]1[C@@H]([C@H](OC)[C@H](O)[C@@H](C)O1)OC)CC)[C@H]1C[C@@](C)(O)[C@@H](O)[C@H](C)O1 WBPYTXDJUQJLPQ-VMXQISHHSA-N 0.000 description 1
- 229960004059 tylosin Drugs 0.000 description 1
- 235000019375 tylosin Nutrition 0.000 description 1
Images
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Изобретение относится к экспериментальной медицине, преимущественно к хирургии, патофизиологии, патанатомии, и может быть использовано при изучении морфогенеза постспленэктомического спленоза, а также при разработке новых методов аутотрансплантации селезеночной ткани, лечения гипоспленизма. Для этого крысам линии Wistar выполняют открытую спленэктомию, удаленную селезенку подвергают деструкции вне брюшной полости и выделившуюся кровь вводят обратно через разрез в свободную брюшную полость. Способ обеспечивает моделирование очагов спленоза, максимально приближеннных по этиологии и морфогенезу к спленозу человека, что дает возможность изучать механизмы развития «неоселезеночной» ткани, ее функциональную активность, степень компенсации иммунной защиты организма при данном процессе. Применение данного способа в экспериментальных условиях несложно и технически удобно. 2 пр., 7 ил.
Description
Изобретение относится к экспериментальной медицине, преимущественно к хирургии, патофизиологии, патанатомии, и может быть использовано при изучении морфогенеза постспленэктомического спленоза, а также при разработке новых методов аутотрансплантации селезеночной ткани, лечения гипоспленизма.
Известно, что травмы селезенки сопровождающиеся повреждением ее капсулы и кровотечением, а также оперативные вмешательства связанные с гемостазом этих повреждений и удалением органа без аутотрансплантации ткани в 67-80% случаев приводят к спонтанному развитию очагов постспленэктомического спленоза в брюшной полости. Имеются данные, что в некоторых случаях очаги спленоза могут приводить к развитию острой кишечной непроходимости и внутрибрюшному кровотечению (см. Sikov W.M., Schiffman F.J., Weaver M. et al. Splenosis presenting as occult gastrointestinal bleeding. Am. J. Hematology. 2000. V.65. N1. P.56-61, а также Katz D.S., Moshiri M., Smith G. et all. Spontaneous hemorrhage of abdominal splenosis / // J. Comput. Assist. Tomogr. 1998. V.22. N5. P.725-727), однако большинство авторов считают, что спленоз в некоторой степени приводит к коррекции иммунных нарушений после спленэктомии (см. В.М.Тимербулатов, P.P.Фаязов, А.Г.Хасанов, и др. Спленоз в хирургической практике. Анналы хирургической гепатологии, 2007, том 12, №1, стр.90-95, а также К.А.Апарцин, P.P.Гумеров, Ю.М.Галеев, и др. Диссеминированный спленоз после спленэктомии. - Хирургия. Журнал им. Н.И.Пирогова, 2009, №10, стр.53-55). Последнее послужило основанием для создания экспериментальной модели для детального изучения степени функционирования регенерированной селезеночной ткани.
В литературе предлагается много методов аутотрансплантации селезеночной ткани (см. Морфологическая оценка аутотрансплантации фрагментов селезенки. Скуба Н.Д., Дурдыев М.Д. (Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1984, №8, с.237), а также Григорьев Е.Г., Апарцин К.А., Матинян Н.С. Органосохраняющая хирургия селезенки. Наука. Новосибирск. 2001 г.). Однако спонтанный постспленэктомический спленоз имеет в своей основе другой морфогенез, так как он не предусматривает пересадки истинной селезеночной такни. Кроме того, известны такие недостатки методов аутотрансплантации, как некроз участка внедряемой ткани или ее лизис.
Наиболее близким к предложенному техническому решению является известный способ моделирования спленоза, описанный в статье J.J. Espert; E. Targarona; E. Bombuy; et all. Evaluation of risk of splenosis during laparoscopic splenectomy in rat model (World Journal of Surgery 2001; Jul. 25(7):882-5.).
Сущность известного способа заключается в том, что создавался ряд моделей спленоза на крысах путем открытых и лапароскопических (с использованием сложной, дорогой аппаратуры) операций. Однако при этом авторы статьи добивались развития диссеминированного постспленэктомического спленоза путем удаления селезенки после разрыва ее внутри брюшной полости, что является достаточно травматичным для экспериментального животного и может уменьшать шансы на его выживание в послеоперационном периоде.
Задачей, на решение которой направлено предложенное техническое решение, является разработка простого, не дорогостоящего и малотравматичного способа моделирования очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза в брюшной полости для изучения степени функционирования регенерированной селезеночной ткани.
Техническим результатом, достигаемым при решении настоящей задачи, является получение очагов диссеминированного спленоза.
Указанный технический результат достигается тем, что в способе моделирования очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза, согласно изобретению, крысам линии «Wistar» выполняют открытую спленэктомию, удаленную селезенку подвергают деструкции вне брюшной полости и выделившуюся кровь вводят обратно через разрез в свободную брюшную полость.
Изобретение иллюстрируется чертежами, на которых показано: на фиг.1 - фотография очага спленоза на поверхности желудка; на фиг.2 - фотография микропрепарата очага спленоза с большого сальника, где 2.1 - скопление эритроцитов, 2.2 - гемосидерофаги, 2.3 - скопление лимфоцитов, плазмоцитов, единичные сегментоядерные лейкоциты, 2.4 - тонкая фиброзная капсула; на фиг.3 - фотография очага спленоза на большом сальнике; на фиг.4 - фотография очага спленоза на поверхности левого яичника; на фиг.5 - фотография микропрепарата очага спленоза с большого сальника, где 5.1 - две дольки спленоза, разделенные тонкой прослойкой фиброзной ткани, 5.2 - четкая капсула; на фиг.6 - фотография среза микропрепарата на большом увеличении, где 6.1 - мегакариоцитарные клетки в очаге спленоза; на фиг.7 - фотография среза микропрепарата на большом увеличении, где видны кроветворные клетки на разных этапах созревания в очаге спленоза, а именно 7.1 - группа плазмотических клеток, 7.2 - клетки типа миелоцитов, 7.3 - палочкоядерные лейкоциты, 7.4 - группы эритроцитов.
Сущность предлагаемого метода воспроизведения очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза заключается в том, что крысам линии «Wistar» выполняют открытую спленэктомию и обсеменение органов брюшной полости кровью из удаленной селезенки. При этом создаются условия, схожие с излитием крови селезенки в брюшную полость при ее повреждении и условия для активации механизмов роста «неоселезеночной» ткани, наиболее приближенные к имеющим место при патологии у человека.
Способ моделирования очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза осуществляется следующим образом.
После дачи фторотанового наркоза животных фиксируют в специальном операционном столе на спине и подготавливают операционное поле. Затем осуществляется разрез в подреберье слева длиной около 1 см, выполняют открытую спленэктомию, селезенку подвергают деструкции (измельчают скальпелем). Выделившуюся из нее кровь вводят в свободную брюшную полость. Рана послойно ушивается. В послеоперационном периоде проводится антибактериальная терапия с целью профилактики септических осложнений. Животных выводят из эксперимента гильотинным методом в срок не менее 30 дней после операции, затем проводят аутопсию. Очаги предполагаемого спленоза фиксируют в 10% растворе нейтрального формалина. Затем депарафинированные срезы толщиной 3-5 мкм окрашивают гематоксилином и эозином, заливают кедровым бальзамом и покрывают покровными стеклами.
В результате проведенных нами исследований установлено, что по прошествии 30 дней после оперативного вмешательства в 77% случаев у животных развивается несколько (от 2 до 12) очагов спленоза. На 25 день после операции макроскопических очагов спленоза не обнаружено. Животные выводились нами из опыта на 25, 30, 47 63 79, 85, 99, 128 дни после операции. С помощью созданной модели впервые установлены гистологические особенности очагов спленоза. При оценке гистологических срезов очагов спленоза животных выявлены: отграниченные очаги «неоселезеночной» ткани, диффузный тип их кровоснабжения, наличие фолликулов белой пульпы (с 63 дня после вмешательства), специфичный клеточный состав, гранулы гемосидерина, ретикулярно-сосудистый каркас данных образований, отсутствие синусоидных капилляров. Сопоставляя гистологическую картину в разные дни после операции, можно выделить этапность изменений в ткани от инфильтрированного сгустка крови, отграниченного тонкой фиброзной капсулой, с наличием ретикулярных компонентов вплоть до участка истинного спленоза с признаками кроветворения.
Способ моделирования очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза иллюстрируется следующими примерами.
Пример 1. Крысу (самку) массой 280 г подвергали воздействию фторотана. После наступления хирургической стадии наркоза животное фиксировали в операционном столе на спине, область левого подреберья освобождали от волосяного покрова, обрабатывалась растворами антисептиков. Выполняли разрез длиной около 1 см, в рану выводили селезенку - выполняли спленэктомию. Селезенку измельчали скальпелем и кровью из нее проводили орошение органов брюшной полости. Рану послойно ушивали. В послеоперационном периоде проводили антибактериальную терапию тилозином по 0,4 мл 5% раствора в/м в течение пяти дней. Через 30 дней животное забили гильотинным методом. В брюшной полости на большом сальнике и передней поверхности желудка найдены очаги предполагаемого спленоза - взяты для гистологического исследования. Результаты иллюстрируются фотографией очага спленоза на поверхности желудка (фиг.1) и фотографией микропрепарата очага спленоза с большого сальника (фиг.2), где 2.1 - скопление эритроцитов, 2.2 - гемосидерофаги, 2.3 - скопление лимфоцитов, плазмоцитов, единичные сегментоядерные лейкоциты, 2.4 - тонкая фиброзная капсула. При морфологическом исследовании поперечных срезов очагов «неоселезеночной» ткани выявлены специфичный клеточный состав (с большим количеством плазмоцитов) (2.1, 2.3), диффузный тип кровоснабжения, наличие ретикулярного остова, большое количество гранул гемосидерина (2.2), четкая отграниченность очага тонкой фиброзной пластинкой (2.4), однако типичная структура селезенки не сохранялась. Это доказывает, что вновь образовавшийся очаг неоселезеночной ткани не является участком сохранившейся селезенки.
Пример 2. Крыса (самка) массой 260 г подвергалась оперативному вмешательству по описанной методике. По прошествии 63 дней после операции животное выведено из опыта. В брюшной полости при аутопсии на большом сальнике было найдено два очага предполагаемого спленоза, один на поверхности яичника. Результаты иллюстрируются фотографией очага спленоза на большом сальнике (фиг.3), и фотографией очага спленоза на поверхности левого яичника (фиг.4). Гистологическое исследование срезов показало, что очаги спленоза окружены фиброзной капсулой с отходящими от нее трабекулами, клеточный состав полиморфен - типичен для селезенки крысы (имеются также клетки всех типов кроветворных ростков на разных уровнях зрелости). Результаты иллюстрируются фотографией микропрепарата очага спленоза с большого сальника (фиг.5), где 5.1 - две дольки спленоза, разделенные тонкой прослойкой фиброзной ткани, 5.2 - четкая капсула; фотографией среза микропрепарата на большом увеличении (фиг.6), где 6.1 - мегакариоцитарные клетки в очаге спленоза, и фотографией среза микропрепарата на большом увеличении (фиг.7), где видны кроветворные клетки на разных этапах созревания в очаге спленоза, а именно 7.1 - группа плазмотических клеток, 7.2 - клетки типа миелоцитов, 7.3 - палочкоядерные лейкоциты, 7.4 - группы эритроцитов. Наличие очагов кроветворения указывает на более высокую степень дифференцировки селезеночной ткани.
Использование предлагаемого способа моделирования очагов постспленэктомического спленоза обеспечивает максимальное приближение по этиологии и морфогенезу к спленозу человека, дает возможность изучить механизмы развития «неоселезеночной» ткани, ее функциональную активность, степень компенсации иммунной защиты организма при данном процессе. Применение данного способа в экспериментальных условиях несложно и технически удобно.
Claims (1)
- Способ моделирования очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза, отличающийся тем, что крысам линии Wistar выполняют открытую спленэктомию, удаленную селезенку подвергают деструкции вне брюшной полости и выделившуюся кровь вводят обратно через разрез в свободную брюшную полость.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2011104467/14A RU2481645C2 (ru) | 2011-02-08 | 2011-02-08 | Способ моделирования очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2011104467/14A RU2481645C2 (ru) | 2011-02-08 | 2011-02-08 | Способ моделирования очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2011104467A RU2011104467A (ru) | 2012-08-20 |
| RU2481645C2 true RU2481645C2 (ru) | 2013-05-10 |
Family
ID=46936104
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2011104467/14A RU2481645C2 (ru) | 2011-02-08 | 2011-02-08 | Способ моделирования очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2481645C2 (ru) |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20020160005A1 (en) * | 1996-11-15 | 2002-10-31 | Trustees Of Tufts College | Human neutralizing antibodies against hemolytic urmec syndrome |
| RU2202282C2 (ru) * | 2001-01-11 | 2003-04-20 | Научный центр реконструктивной и восстановительной хирургии Восточно-Сибирского научного центра СО РАМН | Способ оценки кровообращения в оперированной селезенке |
| RU2328214C1 (ru) * | 2007-02-05 | 2008-07-10 | ГОУ ВПО Смоленская государственная медицинская академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию | Способ ранней диагностики приживления аутотрансплантата селезенки, пересаженного в большой сальник |
-
2011
- 2011-02-08 RU RU2011104467/14A patent/RU2481645C2/ru active
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20020160005A1 (en) * | 1996-11-15 | 2002-10-31 | Trustees Of Tufts College | Human neutralizing antibodies against hemolytic urmec syndrome |
| RU2202282C2 (ru) * | 2001-01-11 | 2003-04-20 | Научный центр реконструктивной и восстановительной хирургии Восточно-Сибирского научного центра СО РАМН | Способ оценки кровообращения в оперированной селезенке |
| RU2328214C1 (ru) * | 2007-02-05 | 2008-07-10 | ГОУ ВПО Смоленская государственная медицинская академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию | Способ ранней диагностики приживления аутотрансплантата селезенки, пересаженного в большой сальник |
Non-Patent Citations (4)
| Title |
|---|
| ESPERT J.J. et al. Evaluation of risk of splenosis during laparoscopic splenectomy in rat model. World J. Surg. 2001 Jul; 25(7):882-5. * |
| SIKOV W.M. et al. Splenosis presenting as occult gastrointestinal bleeding. Am. J. Hematol. 2000 Sep; 65(1):56-61. * |
| АПАРЦИН К.А. и др. Диссеминированный спленоз после спленэктомии. Хирургия. Журнал имени Н.И.Пирогова. 2009, No.10, с.53-55. * |
| АПАРЦИН К.А. и др. Диссеминированный спленоз после спленэктомии. Хирургия. Журнал имени Н.И.Пирогова. 2009, №10, с.53-55. SIKOV W.M. et al. Splenosis presenting as occult gastrointestinal bleeding. Am. J. Hematol. 2000 Sep; 65(1):56-61. * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2011104467A (ru) | 2012-08-20 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Op den Dries et al. | Injury to peribiliary glands and vascular plexus before liver transplantation predicts formation of non-anastomotic biliary strictures | |
| JP7361591B2 (ja) | ヒト肝臓スキャフォールド | |
| US9623149B2 (en) | Method for producing an acellular dermal matrix, and acellular dermal matrix produced by same | |
| Ikonomidis et al. | A murine model of thoracic aortic aneurysms | |
| CN111394299A (zh) | 一种肝脏类器官的体外构建方法及应用 | |
| US20120189707A1 (en) | Production Method For Cryopreserved Acellular Dermal Matrix, And Cryopreserved Acellular Dermal Matrix Produced Thereby | |
| Pakyari et al. | A new method for skin grafting in murine model | |
| BR112017001550B1 (pt) | método de produção de um enxerto de tecido e enxerto de pele dermoepidérmico | |
| Yang et al. | A novel bioscaffold with naturally-occurring extracellular matrix promotes hepatocyte survival and vessel patency in mouse models of heterologous transplantation | |
| Struecker et al. | Implantation of a tissue-engineered neo-bile duct in domestic pigs | |
| RU2481645C2 (ru) | Способ моделирования очагов диссеминированного постспленэктомического спленоза | |
| Singh et al. | Omentum facilitates liver regeneration | |
| CN102480935B (zh) | 用于移植的同种异体皮肤的处理方法及由其制备的冷冻保存同种异体皮肤 | |
| CN110541027A (zh) | lncRNA HIF1A-AS1抗深静脉血栓的应用 | |
| JP5610268B2 (ja) | 高張電解質溶液による生体組織の脱細胞化処理方法 | |
| CN113244400B (zh) | 一种C5aRA在制备治疗和/或预防腹腔粘连的产品中的应用 | |
| Salehipour et al. | Is amniotic membrane a suitable biomaterial for reconstruction of long ureteral defects? | |
| RU2407459C1 (ru) | Способ получения соединительно-тканного каркаса магистрального сосуда млекопитающих животных и человека | |
| Hoganson et al. | Flow preservation of umbilical vein for autologous shunt and cardiovascular reconstruction | |
| CN106719599A (zh) | 一种降低深低温冻存组织器官冰晶损伤的方法 | |
| JPS60501540A (ja) | 細胞外マトリクスの体移植片並びに該移植片の製造及び使用のための手段及び方法 | |
| US5985539A (en) | Method of reconstructing animal organs | |
| RU2328984C1 (ru) | Способ донорского забора тиреотрахеального трансплантата | |
| Lees et al. | Transfer of deep circumflex iliac flaps to the tarsus by microvascular anastomosis in the horse | |
| Moreira et al. | Transplant of the Abdominal Rectus Fascia in rats, first report of a novel experimental technique |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| FZ9A | Application not withdrawn (correction of the notice of withdrawal) |
Effective date: 20121115 |