RU2475493C1 - Активирующий люминесценцию белка гидридный комплекс - Google Patents
Активирующий люминесценцию белка гидридный комплекс Download PDFInfo
- Publication number
- RU2475493C1 RU2475493C1 RU2011147489/10A RU2011147489A RU2475493C1 RU 2475493 C1 RU2475493 C1 RU 2475493C1 RU 2011147489/10 A RU2011147489/10 A RU 2011147489/10A RU 2011147489 A RU2011147489 A RU 2011147489A RU 2475493 C1 RU2475493 C1 RU 2475493C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- protein
- luminescence
- phosphorus
- donor
- acceptor
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области биосенсорики и может быть использовано для изучения белков методом люминесценции. Обработкой ультразвуком белка, содержащего ароматические аминокислоты, в физиологическом растворе в присутствии фосфора Y0,95Hr0,05VO4 или Y0,95Еr0,05YО3Сl, получают активирующий люминесценцию белка гибридный комплекс. Комплекс содержит донорно-акцепторные пары. Применение изобретения позволяет повысить люминесценцию исследуемого белка, а также снизить трудоемкость процедуры маркирования белка, расширить класс белков, исследуемых методом люминесценции, и снизить технологический уровень процесса получения донорно-акцеиторных в активирующем люминесценцию белка гибридном комплексе. 2 пр.
Description
Изобретение относится к биосенсорике и может быть использовано для изучения белков методом люминесценции, для маркирования белков, в качестве клеточного маркера при люминесцентной визуализации клеток и различных их компартментов (митохондрий, клеточных белков и ядер), а также для изучения процессов миграции энергии при моделировании природного фотосинтеза.
Белки в водных растворах обладают собственной люминесценцией, которую используют при структурных и физико-химических исследованиях белков. Главными люминесцирующими группами в белках являются ароматические аминокислотные остатки триптофана, тирозина и фенилаланина. Эти три аминокислоты имеют сильно перекрывающиеся полосы поглощения и люминесценции. В результате люминесцентного резонансного переноса энергии (ЛРПЭ) внутри молекулы белка практически вся световая энергия возбуждения переносится на ароматические аминокислоты, которые и являются основными репортерными группами в белке [Э.Бурштейн, Г. Зимина, Ю. Владимиров. Применение люминесцентного метода для определения состояния ароматических аминокислот (тирозина и триптофана) в белках и ферментных системах. // Ж. прикладной спектроскопии, 1966. 4(2), с.142-146; Э.Бурштейн. Собственная люминесценция белка. // ВИНИТИ, сер. Итоги науки и техники, 1977, т.7 ("Биофизика"), с.10-25]. Интенсивность этой люминесценции чувствительна к окружению белка, что позволяет изучать структурные и физико-химические изменения в биомолекуле. [Ю.Владимиров. О люминесценции ароматических аминокислот в молекуле белка. // ДАН СССР, 1961, 136(4), с.960-963; Ю.Владимиров, Л.Чиньго. Спектры люминесценции белков и ароматических аминокислот при различных рН. // Биофизика, 1962, 7(3), с.270-280]. Метод ЛРПЭ широко используют в различных схемах иммуно- и биоанализа с использованием ряда маркеров, в частности, имеющих в своем составе различные редкоземельные ионы (РЗИ). В таких схемах иммуноанализа каналы переноса энергии от донора к акцептору формируются исследователями, а люминесценцию фиксируют в видимом или ближнем ИК-диапазонах [Г.Чудинова, И.Наговицын. Иммуносенсорные системы с флуоресцентной регистрацией на основе ленгмюровских пленок. // Квантовая электроника, 2003, т.33, с.765-770].
Наиболее близким к заявляемому изобретению является гибридный комплекс, состоящий из донорно-акцепторной пары, образованной альбумином, маркированным иттербиевым мезотетрафенилпорфирином (акцептор) в водном растворе, и иммуноглобулином, маркированным бутилтрифторацетонатом (донор) в наноразмерной ленгмюровской пленке, повышающий люминесценцию иттербия при контакте пленки с раствором в ближнем ИК-диапазоне (линия 975 нм), по сравнению с люминесценцией в отсутствие донора [И.Наговицын, Г.Чудинова. Иммуносенсор на основе пленок Ленгмюра-Блоджетт с ИК-флуоресцентной регистрацией. // ДАН, 2002, т.382, с.267-269]. Основными недостатками известного комплекса являются: 1) раздельность и трудоемкость процедур маркирования белков (альбумина и иммуноглобулина); 2) высокая технологичность процесса приготовления ленгмюровских пленок, предполагающая: а) наличие «чистой» комнаты с ламинарными потоками обеспыленного воздуха и снабженной антивибрационными устройствами; б) использование сверхчистых воды и химических реактивов; в) высокую квалификацию персонала; 3) ограниченность класса белков, используемых для получения донорно-акцепторных пар, только белками, комплиментарными друг к другу; 4) сравнительно низкая эффективность люминесценции, недостаточная для выполнения надежного иммунного анализа.
Технический результат изобретения направлен на повышение люминесценции исследуемого белка, а также - на снижение трудоемкости процедуры маркирования белка, расширение класса исследуемых методом люминесценции белков и снижение технологического уровня процесса получения донорно-акцепторных пар в активирующем люминесценцию белка гибридном комплексе.
Технический результат достигается тем, что активирующий люминесценцию белка гибридный комплекс содержит донорно-акцепторные пары, сформированные на молекулах белка при обработке ультразвуком смеси, содержащей белок, включающий остатки ароматических аминокислот и фосфор в массовом соотношении 10:1 в физиологическом растворе.
Все перечисленные выше задачи изобретения достигаются тем, что в качестве донора используется неорганический люминофор - фосфор, обладающий высокой химической стабильностью и сильной люминесценцией порошка в видимом спектральном диапазоне [J.DeLuca. An introduction to luminescence in inorganic solids. // J. Chem. Education, 1980, v.57, p.541-545]. Исследуемый белок солюбилизирует фосфор, формируя искомые донорно-акцепторные пары (фосфор-белок). Это исключает необходимость использования ленгмюровской пленки из процесса получения пар. Кроме того, как установлено нами, фосфор солюбилизируется любыми белками вследствие их амфотерности [А. Ленинджер. Основы биохимии. // - М.: Мир, 1985, т.1, с.210-251], не денатурируя белок, что позволяет сохраняться образованному гибридному комплексу «белок-фосфор» в физиологическом растворе хлорида натрия (0,9%), не выпадая в осадок. Экспериментально нами также установлено, что связанный белками фосфор более эффективно (по сравнению с бутилтрифторацетонатом) преобразует энергию возбуждающего света в энергию люминесцентного излучения. Отметим также, что применение фосфора в качестве донора позволяет снизить трудоемкость и стоимость процесса формирования донорно-акцепторных пар за счет уменьшения числа его стадий по сравнению с прототипом: в случае применения фосфоров такой процесс происходит в одну стадию - путем сонифицирования раствора смеси белка и фосфора, а в прототипе - в четыре стадии: маркирование одного белка донором, маркирование специфического белка акцептором в растворе, формирование пленки из белка-донора и формирование донорно-акцепторных пар на границе «пленка-раствор».
Пример 1. Получение гибридного материала белок - Y0,95Er0,05VO4 (КС-1)
Навеску Y0,95Er0,05VO4 массой 1,0 мг заливали 5 мл раствора сывороточного альбумина человека, с концентрацией 0,1 мг/мл (10-5 М) в физиологическом растворе 0,9% NaCl таким образом, чтобы концентрация фосфора при условии его полного растворения составила бы в среднем 0,6 мг/мл. Полученную смесь в течение 40 минут обработали ультразвуком на сонификаторе Branson-1510 при комнатной температуре, а затем полученную взвесь отфильтровали (фильтр «синяя лента»). Концентрацию белка в гибридном материале определяли по полосе поглощения белка в УФ-области (280 нм), которая оказалась равной 0,069 мг/мл, следовательно, осадок, который образуется после сонифицирования, содержит белок и фосфор. УФ-спектры поглощения полученного гибридного материала и белка измеряли на спектрофотометре Shimadzu UV-1800. Полученные спектры поглощения полностью идентичны и достигают максимума на длине волны 280 нм, но спектры люминесценции гибридного комплекса и белка с ароматическими кислотами, измеренные на спектрофлуориметре Shimadzu-RF 5300pc, имеют максимумы на длине волны 340 нм, которые различаются (в пользу гибридного комплекса) по величине в десять раз. Выполненные нами эксперименты позволили установить, что: 1) усиление интенсивности люминесценции в полученном гибридном комплексе происходит за счет кооперативной антистоксовой люминесценции, возникающей в результате резонансной миграции энергии от двух или более центров (фосфор) к одному аккумулирующему центру (белок). Фосфор обладает люминесценцией в видимом диапазоне (540-700 нм), а собственная люминесценция белка в ультрафиолетовой области - 300-340 нм; 2) соотношение донор: акцептор = 10:1 является оптимальным соотношением, которое было установлено нами экспериментально для других систем [Г. Чудинова. Оптические свойства ленгмюровских пленок органических красителей и белков, глава 4. Перенос энергии в системе пленки Ленгмюра - раствор. // Докторская диссертация, 2005, с.343], поскольку различие весовых соотношений акцептора (белок) и донора (фосфор) сказывается на интенсивности полосы люминесценции акцептора в донорно-акцепторной паре и при соотношении донор: акцептор = 10:1 - эта интенсивность максимальна; 3) осадок, который образуется после обработки ультразвуком, состоит из белка и фосфора, взятых изначально в избытке, при этом концентрация белка снижается и составляет величину 0,069 мг, при фиксированной конечной концентрации фосфора - 0,6 мг, считая на 1 мл раствора подробно см. [Г.Чудинова. Оптические свойства ленгмюровских пленок органических красителей и белков, глава 4. Перенос энергии в системе пленки Ленгмюра - раствор. // Докторская диссертация, 2005, с.343].
Пример 2. Получение гибридного материала белок - Y0,95Er0,05VO3Cl (KC-2). Навеску Y0,95Er0,05VO3Cl массой 0,08 мг заливали 5 мл раствора сывороточного альбумина человека с концентрацией 0,8 мг в физиологическом растворе 0,9% NaCl таким образом, чтобы концентрация фосфора при условии его полного растворения составила бы в среднем 0,6 мг/мл. Полученную смесь в течение 40 минут обработали ультразвуком на сонификаторе Branson-1510 при комнатной температуре, а затем полученную взвесь отфильтровали (фильтр «синяя лента»). Концентрацию белка в гибридном материале определяли по полосе поглощения белка в УФ-области (280 нм), которая оказалась равной 0,058 мг/мл, следовательно, осадок, который образуется после сонифицирования, содержит белок и фосфор. УФ-спектры поглощения полученного гибридного материала и белка измеряли на спектрофотометре Shimadzu UV-1800. Полученные спектры поглощения полностью идентичны и достигают максимума на длине волны 280 нм, но спектры люминесценции данного гибридного материала и белка, измеренные на спектрофлуориметре Shimadzu-RF 5300 pc, имеют максимумы на длине волны 340 нм, которые различаются (в пользу гибридного материала) по величине в семь раз. Такая разница в эффектах увеличения интенсивности люминесценции между примерами 1 и 2 происходит за счет присутствия атома хлора в структуре фосфора из примера 2. Это согласуется с известным фактом, состоящим в том, что ион хлора является достаточно сильным тушителем люминесценции [Дж.Лакович. Основы флуоресцентной спектроскопии. // - М.: Мир, 1986, с.262-301]. Выполненные нами эксперименты позволили также установить, что: 1) усиление интенсивности люминесценции в полученном гибридный комплексе основано на процессе кооперативной антистоксовой люминесценции, возникающей в результате резонансной миграции энергии от двух или более центров (фосфор) к одному аккумулирующему центру (белок). Фосфор обладает люминесценцией в видимом диапазоне (540-700 нм), а собственная люминесценция белка в ультрафиолетовой области - 300-340 нм; 2) соотношение донор: акцептор = 10:1 является оптимальным соотношением, которое было установлено нами экспериментально для других систем, поскольку различие весовых соотношений акцептора (белок) и донора (фосфор) сказывается на интенсивности полосы люминесценции акцептора в донорно-акцепторной паре и при соотношении донор: акцептор = 10:1 - эта интенсивность максимальна; 3) осадок, который образуется после обработки ультразвуком, состоит из белка и фосфора, взятых изначально в избытке, при этом концентрация белка снижается и составляет величину 0,058 мг, при фиксированной конечной концентрации фосфора - 0,6 мг, считая на 1 мл раствора подробно см.
Приведенные примеры подтверждают решение поставленных в основу изобретения задач - разработку нового активирующего люминесценцию белка наноразмерного гибридного комплекса, позволяющего: 1) получать донорно-акцепторные пары с использованием одного белка; 2) устранить необходимость использования ленгмюровской пленки из процесса получения донорно-акцепторных пар; 3) расширить класс используемых белков, а также - существенно повысить люминесценцию маркированного белка.
Для понимания структуры получаемого гибридного материала нами были проведены эксперименты по определению размера полученных частиц методом динамического рассеяния с использованием спектрометра динамического рассеяния Photocor Complex (США) после удаления осадка. Анализ спектров проводили на основании модели, адаптированной для сферических частиц [Kaszuba M., McKnight D. Connah M.T. et al. // J. Nanopart. Res. 2008, v.10, p.823-829], и он показал наличие в растворе альбумина фракции со средним диаметром 6 нм, в растворе гибридного материала КС-1 - 10 нм, КС-2 - 7 нм. [Чудинова Г.К., Наговицын И.А., Никитин А.К., Курилкин В.В., Конов В.И. Усиление собственной люминесценции белка в нано-размерном комплексе // Доклады Академии наук, 2012, том 444, №5, с.1-2]. Окисление хлором соединения Y0,95Er0,05VO4 для получения хлорванадата уменьшает исходные размеры дисперсной фазы.
Кроме того, предлагаемый гибридный комплекс может быть использован:
1) в качестве клеточного маркера, т.к. необходимость применения белка в этом случае объясняется его способностью доставлять наночастицы (в частности, фосфора) на поверхность клетки и внутрь нее через клеточные мембраны;
2) в качестве биологически активного соединения, поскольку ванадаты, присутствующие в фосфоре, способны мимикрировать (копировать) свойства исходных биологических систем, а также катализировать (ингибировать) отдельные реакции в организме;
3) для визуализации клеток и клеточных компартментов в флуоресцентной микроскопии.
4) как модельная система для изучения миграции энергии в природных, в том числе фотосинтетических мембранах, в которых гибрый материал является фотохимическим аналогом наноразмерного кластера природных пигментов.
Claims (1)
- Активирующий люминесценцию белка гибридный комплекс, содержащий донорно-акцепторные пары, сформированные на молекулах белка при обработке ультразвуком смеси, состоящей из белка, включающего остатки ароматических кислот, и фосфора Y0,95Er0,05VO4 или Y0,95Er0,05VO3Cl в массовом соотношении 10:1, в физиологическом растворе.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011147489/10A RU2475493C1 (ru) | 2011-11-23 | 2011-11-23 | Активирующий люминесценцию белка гидридный комплекс |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011147489/10A RU2475493C1 (ru) | 2011-11-23 | 2011-11-23 | Активирующий люминесценцию белка гидридный комплекс |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2475493C1 true RU2475493C1 (ru) | 2013-02-20 |
Family
ID=49120966
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2011147489/10A RU2475493C1 (ru) | 2011-11-23 | 2011-11-23 | Активирующий люминесценцию белка гидридный комплекс |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2475493C1 (ru) |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20050136486A1 (en) * | 2003-07-12 | 2005-06-23 | Haushalter Robert C. | Methods for optically encoding an object with upconverting materials and compositions used therein |
US20110021970A1 (en) * | 2007-11-06 | 2011-01-27 | Duke University | Non-invasive energy upconversion methods and systems for in-situ photobiomodulation |
-
2011
- 2011-11-23 RU RU2011147489/10A patent/RU2475493C1/ru not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20050136486A1 (en) * | 2003-07-12 | 2005-06-23 | Haushalter Robert C. | Methods for optically encoding an object with upconverting materials and compositions used therein |
US20110021970A1 (en) * | 2007-11-06 | 2011-01-27 | Duke University | Non-invasive energy upconversion methods and systems for in-situ photobiomodulation |
Non-Patent Citations (7)
Title |
---|
HEATHER L. HANDL et al. Lanthanide-based luminescent assaysfor ligand-receptor interactions, Life Sciences 77 (2005) 361-371. * |
JOEL Т. WELCH et al. Lanthanide-binding helix-turn-helix peptides:Solution structure of a designed metallonuclease, PNAS, April 1, 2003, v.100, No.7:3725-3730. * |
JOEL Т. WELCH et al. Lanthanide-binding helix-turn-helix peptides:Solution structure of a designed metallonuclease, PNAS, April 1, 2003, v.100, №7:3725-3730. HEATHER L. HANDL et al. Lanthanide-based luminescent assaysfor ligand-receptor interactions, Life Sciences 77 (2005) 361-371. SU XC et al. Site-specific labelling of proteins with a rigid lanthanide-binding tag, Chembiochem. 2006 Oct; 7(10):1599-604. * |
Multiplexing DELFIA@assays usinglanthanide-labeled probes, PerkinElmer Life Sciences, [он-лайн] [найдено по адресу http://www.perkinelmer.com/CMSResources/Images/44-73053APP DELFIAMultiplexingAssays.pdf]. SOUKKA T et al.: "Photochemical characterization of up-converting inorganic lanthanide phosphors as potential labels", J Fluoresc. 2005 Jul; 15(4):513-28. НАГОВИЦЫН И. и др. Иммуносенсор на соновае пленок Ленгмюра-Блоджетт с ИК-флуоресцентной регистрацией, ДАН, 2002, т.382, с.267-269 (цитирован в заявке). * |
SOUKKA T et al.: "Photochemical characterization of up-converting inorganic lanthanide phosphors as potential labels", J Fluoresc. 2005 Jul; 15(4):513-28. * |
SU XC et al. Site-specific labelling of proteins with a rigid lanthanide-binding tag, Chembiochem. 2006 Oct; 7(10):1599-604. Multiplexing DELFIA@assays usinglanthanide-labeled probes, PerkinElmer Life Sciences, [он-лайн] [найдено по адресу http://www.perkinelmer.com/CMSResources/Images/44-73053APP DELFIAMultiplexingAssays.pdf]. * |
НАГОВИЦЫН И. и др. Иммуносенсор на соновае пленок Ленгмюра-Блоджетт с ИК-флуоресцентной регистрацией, ДАН, 2002, т.382, с.267-269 (цитирован в заявке). * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Yu et al. | The construction of a FRET assembly by using gold nanoclusters and carbon dots and their application as a ratiometric probe for cysteine detection | |
CN106587005B (zh) | 一种分步碳化高量子效率碳量子点及其制备方法 | |
Larson et al. | Silica nanoparticle architecture determines radiative properties of encapsulated fluorophores | |
Liu et al. | Amino-functionalized green fluorescent carbon dots as surface energy transfer biosensors for hyaluronidase | |
Mattoussi et al. | Self-assembly of CdSe− ZnS quantum dot bioconjugates using an engineered recombinant protein | |
Hess et al. | Biological and chemical applications of fluorescence correlation spectroscopy: a review | |
Zhou et al. | Imaging two targets in live cells based on rational design of lanthanide organic structure appended carbon dots | |
Zhang et al. | Tuning the emission properties of Ru (phen) 32+ doped silica nanoparticles by changing the addition time of the dye during the stöber process | |
Verma et al. | Synthesis and characterization of ZnS quantum dots and application for development of arginine biosensor | |
CN103980894A (zh) | 一种对癌细胞具有靶向识别功能的荧光碳量子点、制备方法及其应用 | |
CN107417849B (zh) | 一种近红外光开关荧光聚合物纳米粒子制备及其应用 | |
Della Rosa et al. | Luminescent silica-based nanostructures from in vivo iridium-doped diatoms microalgae | |
Nie et al. | Novel preparation and electrochemiluminescence application of luminol functional-Au nanoclusters for ALP determination | |
WO2008146966A1 (en) | Kits and methods for biological detection using quantum dots | |
Strakhovskaya et al. | Electrostatic binding of substituted metal phthalocyanines to enterobacterial cells: its role in photodynamic inactivation | |
Trivedi et al. | Different proposed applications of bacteriorhodopsin | |
Kumar et al. | Biomimetic fabrication of biotinylated peptide nanostructures upon diatom scaffold; a plausible model for sustainable energy | |
Oda et al. | Function of membrane protein in silica nanopores: incorporation of photosynthetic light-harvesting protein LH2 into FSM | |
Grzhegorzhevskii et al. | Prerequisites and prospects for the development of novel systems based on the Keplerate type polyoxomolybdates for the controlled release of drugs and fluorescent molecules | |
Duong et al. | Singlet oxygen production by fluorescence resonance energy transfer (FRET) from green and orange CdSe/ZnS QDs to protoporphyrin IX (PpIX) | |
Li et al. | Photothermal sensor based on water-soluble CsPbBr3@ sulfobutylether-β-cyclodextrins nanocomposite using a thermometer as readout | |
Bai et al. | Exploration of synthesizing fluorescent silicon nanoparticles and label-free detection of sulfadiazine sodium | |
Tan et al. | Fluorescence quenching of bovine serum albumin in reversed micelles by CdS nanoparticles | |
RU2475493C1 (ru) | Активирующий люминесценцию белка гидридный комплекс | |
Meng et al. | Strategy to synthesize dual-emission carbon dots and their application for pH variation and hydrogen sulfide sensing and bioimaging |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20161124 |