RU2463343C1 - Ecoli BL21 (DE3)pLysS CELL STRAIN, pTT9/ASFVp30 CLONE CONTAINING RECOMBINANT PLASMID WITH INTEGRATION OF PART OF CP204L GENE OF AFRICAN SWINE FEVER VIRUS, ENCODING CONFORMATIONAL EPITOPE OF PROTEIN p30, FOR PRODUCING DIAGNOSTIC PREPARATIONS - Google Patents
Ecoli BL21 (DE3)pLysS CELL STRAIN, pTT9/ASFVp30 CLONE CONTAINING RECOMBINANT PLASMID WITH INTEGRATION OF PART OF CP204L GENE OF AFRICAN SWINE FEVER VIRUS, ENCODING CONFORMATIONAL EPITOPE OF PROTEIN p30, FOR PRODUCING DIAGNOSTIC PREPARATIONS Download PDFInfo
- Publication number
- RU2463343C1 RU2463343C1 RU2011141517/10A RU2011141517A RU2463343C1 RU 2463343 C1 RU2463343 C1 RU 2463343C1 RU 2011141517/10 A RU2011141517/10 A RU 2011141517/10A RU 2011141517 A RU2011141517 A RU 2011141517A RU 2463343 C1 RU2463343 C1 RU 2463343C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- protein
- recombinant
- ptt9
- asfvp30
- clone
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии и может быть использовано при изготовлении средств диагностики вируса африканской чумы свиней (АЧС).The invention relates to the field of veterinary virology and biotechnology and can be used in the manufacture of diagnostic tools for the virus of African swine fever (ASF).
Африканская чума свиней (АЧС) - вирусная болезнь, характеризующаяся высокой летальностью и контагиозностью, сверхострым, подострым, острым и хроническим течением. В 2000 г. возбудитель отнесен к семейству Asfarviridae [1].African swine fever (ASF) is a viral disease characterized by high mortality and contagiousness, over-acute, subacute, acute and chronic course. In 2000, the pathogen was assigned to the Asfarviridae family [1].
Африканская чума свиней (АЧС) известна почти на протяжении 100-летия как природно-очаговая вирусная инфекция диких африканских и домашних свиней местных и европейских пород. Передается от больных животных и вирусоносителей контактным и алиментарным путем. Кроме того, вирус АЧС может передаваться и трансплацентарно, вызывая аборты у супоросных свиноматок [2].African swine fever (ASF) has been known for almost 100 years as a natural focal viral infection of wild African and domestic pigs of local and European breeds. It is transmitted from sick animals and virus carriers by contact and alimentary route. In addition, ASF virus can also be transmitted transplacentally, causing abortions in pregnant sows [2].
Экономический ущерб, наносимый АЧС, складывается из прямых потерь по радикальной ликвидации болезни, ограничений в международной торговле и измеряется десятками миллионов долларов [3].The economic damage caused by ASF consists of direct losses due to the radical elimination of the disease, restrictions on international trade and is measured in tens of millions of dollars [3].
Вакцины до настоящего времени против вируса АЧС не разработаны, поэтому ранняя и высокоэффективная диагностика болезни является ключевым моментом для ограничения ее распространения и иррадикации.To date, vaccines against ASF have not been developed, so early and highly effective diagnosis of the disease is a key point to limit its spread and irradiation.
Известен штамм клеток E.coli M15 (Qiagen), в котором уровень накопления рекомбинантного белка р30 вируса АЧС при индукции IPTG составлял 1 мкг с 1 мл бактериальной культуры, время экспрессии - 2,5 ч при температуре 24±0,5°С [4]. Однако невысокий уровень накопления в указанной клеточной системе не позволял получать рекомбинантный антиген в производственных количествах с небольших объемов бактериальной культуры.A known E. coli M15 cell strain (Qiagen), in which the accumulation level of recombinant ASF virus p30 protein during IPTG induction was 1 μg with 1 ml of bacterial culture, the expression time was 2.5 hours at a temperature of 24 ± 0.5 ° C [4 ]. However, the low level of accumulation in the indicated cell system did not allow to obtain recombinant antigen in production quantities from small volumes of bacterial culture.
Известен штамм клеток E.coli BL21(DE3)pLysS, который используется для высокоэффективной экспрессии генов под контролем Т7 промотора и позволяет достигать высокого уровня экспрессии целевого гена при индукции с IPTG [5, 6]. Клетки этого штамма обладают свойством в присутствии индуктора (IPTG) преимущественно экспрессировать рекомбинантные белки и в минимальном количестве собственные белки.The known E. coli BL21 (DE3) pLysS cell strain is used for highly efficient gene expression under the control of the T7 promoter and allows one to achieve a high level of expression of the target gene upon induction with IPTG [5, 6]. The cells of this strain have the property in the presence of an inducer (IPTG) to predominantly express recombinant proteins and in a minimal amount of their own proteins.
Предлагаемый штамм - штамм клеток E.coli BL21(DE3)pLysS, клон pTT9/ASFVp30 (клон 11), содержащий рекомбинантную плазмиду со встройкой участка гена CP204L вируса африканской чумы свиней (АЧС), кодирующего конформационный эпитоп белка р30.The proposed strain is a strain of E. coli cells BL21 (DE3) pLysS, clone pTT9 / ASFVp30 (clone 11) containing a recombinant plasmid with the insertion of a portion of the gene for African swine fever virus CP204L (ASF) encoding the conformational epitope of protein p30.
Целью настоящего изобретения является получение нового штамма клеток E.coli BL21(DE3)pLysS, клона pTT9/ASFVp30, содержащего рекомбинантную плазмиду со встройкой участка гена CP204L вируса африканской чумы свиней (АЧС), кодирующего конформационный эпитоп белка р30, - гиперпродуцента эпитопа рекомбинантного белка р30 размером в 101-ну аминокислоту с молекулярной массой 14.000 Da, который эффективно очищается методом хроматографии на целлюлозе и пригоден для использования в диагностических тест-системах для выявления антител к вирусу АЧС в сыворотках крови свиней и получения гипериммунных сывороток для выявления антигена вируса АЧС методом иммунофлуоресценции.The aim of the present invention is to obtain a new strain of E. coli cells BL21 (DE3) pLysS, clone pTT9 / ASFVp30, containing a recombinant plasmid with the insertion of a portion of the gene for African swine fever virus (ASF), coding for the conformational epitope of the p30 protein, a hyperproducer of the recombinant the size of 101-amino acid with a molecular weight of 14,000 Da, which is effectively purified by chromatography on cellulose and suitable for use in diagnostic test systems for detecting antibodies to ASF virus in pork serum and receiving hyperimmune sera to detect antigen ASFV by immunofluorescence.
Технический результат от использования предлагаемого изобретения заключается в расширении арсенала источников рекомбинантных антигенов вируса АЧС, обладающих высокой биологической антигенной и иммуногенной активностью, сохраняющего свои основные иммунобиологические свойства после хроматографической очистки и пригодных для получения гипериммунных моноспецифических сывороток на лабораторных животных с целью изучения патогенеза и репродукции вируса АЧС in vitro и in vivo. Изобретение предполагает применение полученных к рекомбинантному р30, продуцируемому клетками E.coli штамма BL21(DE3)pLysS, клона pTT9/ASFVp30 (клона 11), иммуноглобулинов G (IgG) в диагностичеких целях (в реакции непрямой иммунофлюоресценции для выявления антигена вируса АЧС в мазках-отпечатках проб патологического материала, диагностический иммуноблоттинг).The technical result from the use of the present invention is to expand the arsenal of sources of recombinant ASFV antigens with high biological antigenic and immunogenic activity, retaining its basic immunobiological properties after chromatographic purification and suitable for producing hyperimmune monospecific serums in laboratory animals in order to study the pathogenesis and reproduction of ASFV virus in vitro and in vivo. The invention involves the use of recombinant p30 produced by E. coli cells of strain BL21 (DE3) pLysS, clone pTT9 / ASFVp30 (clone 11), immunoglobulins G (IgG) for diagnostic purposes (in the indirect immunofluorescence reaction to detect ASF virus antigen in smears fingerprints of samples of pathological material, diagnostic immunoblotting).
Данный технический результат достигнут получением клона pTT9/ASFVp30 (клона 11) в клетках E.coli штамма BL21(DE3)pLysS, который является гиперпродуцентом рекомбинантного белка. Полученные рекомбинантные трансформанты скринировали на наличие встройки методом ПЦР и изучали культурально-биологические свойства клонов при накоплении в жидкой питательной среде SOB (pH 7,5-8,0) или LB, содержащей 100 мкг/мл ампициллина, 50 мкг/мл канамицина, при оптимальной температуре 37,0±0,5°С. Однородность клонов изучали путем пересева на твердую питательную среду.This technical result was achieved by obtaining clone pTT9 / ASFVp30 (clone 11) in E. coli cells of strain BL21 (DE3) pLysS, which is a hyperproducer of the recombinant protein. The obtained recombinant transformants were screened for insertion by PCR and the cultural and biological properties of the clones were studied when SOB (pH 7.5-8.0) or LB containing 100 μg / ml ampicillin, 50 μg / ml kanamycin was accumulated in a liquid optimal temperature 37.0 ± 0.5 ° C. The homogeneity of the clones was studied by reseeding on a solid nutrient medium.
Установлено, что рекомбинантный клон устойчив к хлорамфениколу. Клетки клона способны стабильно продуцировать рекомбинантный р30 вируса АЧС в присутствии 1 мМ IPTG. Динамика накопления целевого антигена в различных температурных режимах культивирования представлена в таблице 1. В непрямом ТФ ИФА и в SDS-PAAG-электрофорезе по Laemmli U.K. показана стабильность экспрессии и полипептидный состав экспрессируемых белков.It was established that the recombinant clone is resistant to chloramphenicol. Clone cells are able to stably produce recombinant ASF virus p30 in the presence of 1 mM IPTG. The dynamics of the accumulation of the target antigen in different temperature cultivation conditions are presented in table 1. In indirect TF ELISA and SDS-PAAG electrophoresis according to Laemmli U.K. The stability of expression and the polypeptide composition of the expressed proteins are shown.
Полученный рекомбинантный клон депонирован в «Коллекции патогененых микроорганизмов, вирусов и бактерий, вызывающих особоопасные, в том числе зооантропонозы", Всероссийского научно-исследовательского института ветеринарной вирусологии и микробиологии (ВНИИВВиМ) 09.09. 2011 года под регистрационным шифром 2966.The resulting recombinant clone was deposited in the "Collection of pathogenic microorganisms, viruses and bacteria that cause especially dangerous, including zooanthroponoses", All-Russian Research Institute of Veterinary Virology and Microbiology (VNIIVViM) on 09.09.2011 under the registration code 2966.
Штамм E.coli BL21(DE3)pLysS клон pTT9/ASFVp30 (клон 11) отличается от прототипов, более высоким уровнем экспрессии рекомбинантного антигена, в 2-4 раза превышающим уровень накопления целевого антигена первичным продуцентом в клетках E.coli штамма M15, что было достигнуто использованием компетентных клеток E.coli штамма BL21(DE3)pLysS. По сравнению с продуцентом рекомбинантного белка р30 в бакуловирусной системе, предлагаемый штамм отличается от прототипа дешевизной культивирования в сотни раз.The strain E. coli BL21 (DE3) pLysS clone pTT9 / ASFVp30 (clone 11) differs from the prototypes by a higher level of expression of the recombinant antigen, 2-4 times higher than the accumulation of the target antigen by the primary producer in E. coli cells of strain M15, which was achieved using competent E. coli cells of strain BL21 (DE3) pLysS. Compared with the producer of recombinant protein p30 in the baculovirus system, the proposed strain differs from the prototype cheap cultivation hundreds of times.
Экспериментально подтверждена возможность использования штамма E.coli BL21(DE3)pLysS клона pTT9/ASFVp30 (клон 11) для изготовления средств диагностики вируса АЧС.The possibility of using E. coli strain BL21 (DE3) pLysS of clone pTT9 / ASFVp30 (clone 11) for the manufacture of diagnostic tools for ASFV virus was confirmed experimentally.
Штамм E.coli BL21(DE3)pLysS клон pTT9/ASFVp30 (клон 11) характеризуется следующими признаками и свойствами: клон однородный, стабилен при пассировании и культивировании в жидких и твердых питательных средах, устойчив к хлорамфениколу, культивируется в присутствии ампициллина и канамицина, способен стабильно экспрессировать рекомбинантный р30 вируса АЧС. Продуцируемый белок обладает высокой биологической антигенной и иммуногенной активностью, сохраняет свои основные иммунобиологические свойства после хроматографической очистки. Выход очищенного рекомбинантного антигена с 1 л бактериальной культуры составляет 2-4 мг.The strain E. coli BL21 (DE3) pLysS clone pTT9 / ASFVp30 (clone 11) is characterized by the following features and properties: the clone is homogeneous, stable upon passage and cultivation in liquid and solid nutrient media, resistant to chloramphenicol, cultivated in the presence of ampicillin and kanamycin, capable of stably express recombinant p30 ASF virus. The produced protein has a high biological antigenic and immunogenic activity, retains its basic immunobiological properties after chromatographic purification. The yield of purified recombinant antigen with 1 l of bacterial culture is 2-4 mg.
Основные маркерные характеристики штамма E.coli BL21(DE3)pLysS клон pTT9/ASFVp30 (клон 11) приведены в таблице.The main marker characteristics of the E. coli strain BL21 (DE3) pLysS clone pTT9 / ASFVp30 (clone 11) are shown in the table.
Маркерные характеристики штамма E.coli BL21(DE3)pLysS клон pTT9/ASFVp30Marker characteristics of E. coli strain BL21 (DE3) pLysS clone pTT9 / ASFVp30
Сущность предлагаемого изобретения поясняется примерами его исполнения и использования.The essence of the invention is illustrated by examples of its implementation and use.
ПРИМЕР 1. Культивирование и очистка продуцируемого штаммом рекомбинантного белка.EXAMPLE 1. Cultivation and purification of a recombinant protein produced by a strain.
Для наращивания штамма E.coli BL21(DE3)pLysS клон pTT9/ASFVp30 (клон 11) и экспрессии бактериальной культурой рекомбинантного белка р30 осуществляли культивирование в среде SOB, pH 7,5-8,0 с добавлением 100 мкг/мл ампициллина, 50 мкг/мл канамицина, 20 мМ MgCl2 и 1,0 мМ IPTG при оптимальной температуре 28,0±0,5°С в течение 4 часов. Предварительно перед индукцией экспрессии целевого антигена проводили процедуру подращивания пересеянной на свежеприготовленную среду ночной культуры при оптимальной температуре 37,0±0,5°С в течение 3-4 часов до достижения оптической плотности бактериальной массы, измеряемой при длине волны 600 нм, значения 0,6-0,8 ед.To build the E. coli strain BL21 (DE3) pLysS clone pTT9 / ASFVp30 (clone 11) and expression of the recombinant p30 protein by bacterial culture, cultivation was performed in SOB medium, pH 7.5-8.0 with the addition of 100 μg / ml ampicillin, 50 μg / ml kanamycin, 20 mM MgCl 2 and 1.0 mM IPTG at an optimum temperature of 28.0 ± 0.5 ° C for 4 hours. Previously, before induction of the expression of the target antigen, a procedure was performed for growing a night culture that was seeded on freshly prepared medium at an optimum temperature of 37.0 ± 0.5 ° C for 3-4 hours until the optical density of the bacterial mass, measured at a wavelength of 600 nm, reached a value of 0, 6-0.8 units
Далее готовили лизаты клеток. Для этого бактериальную массу осаждали центрифугированием при 3000 об/мин в течение 40 мин при температуре 4°С. Разрушение клеток проводили в ультразвуковом дезинтеграторе с постоянным охлаждением смеси. Процедура озвучивания состояла из 3-х циклов по 2 мин при частоте 18 кГц/сек с перерывом между циклами в 15 минут. Процесс озвучивания контролировали микроскопически, окрашивая аликвоты лизата фуксином Пфейфера. Лизат клеток, содержащий рекомбинантный р30, ресуспендировали в ТЕ-буфере (рН 7,2-7,4) из расчета на 100 мг бактериальной массы 1 мл буфера [15].Next, cell lysates were prepared. For this, the bacterial mass was besieged by centrifugation at 3000 rpm for 40 min at a temperature of 4 ° C. Cell destruction was carried out in an ultrasonic disintegrator with constant cooling of the mixture. The scoring procedure consisted of 3 cycles of 2 minutes at a frequency of 18 kHz / s with a break between cycles of 15 minutes. The scoring process was microscopically monitored by staining aliquots of the lysate with fuchsin Pfeifer. The cell lysate containing recombinant p30 was resuspended in TE buffer (pH 7.2-7.4) per 100 mg of bacterial mass 1 ml of buffer [15].
Поскольку протеолитическая деградация секретируемого рекомбинантного белка является существенной проблемой, в буферы добавляли ингибитор протеаз - Pefablock SC до рабочей концентрации 0,25 мг/мл. Обе суспензии осветляли центрифугированием при 15000 об/мин в течение 20 мин и фильтровали через мембранные фильтры с размером пор 0,45 мкм[15].Since proteolytic degradation of secreted recombinant protein is a significant problem, a protease inhibitor, Pefablock SC, was added to the buffers to a working concentration of 0.25 mg / ml. Both suspensions were clarified by centrifugation at 15,000 rpm for 20 min and filtered through membrane filters with a pore size of 0.45 μm [15].
Содержание общего белка в лизате определяли по методу Лоури [8].The total protein content in the lysate was determined by the Lowry method [8].
Эффективность очистки рекомбинантного белка р30 оценивали в 12% и 10% SDS-ПААГ электрофорезе по Laemmli U.K. [7, 13].The purification efficiency of recombinant p30 protein was evaluated in 12% and 10% SDS-PAGE electrophoresis according to Laemmli U.K. [7, 13].
Для изоляции из подготовленного лизата рекомбинантного белка р30 использовали адсорбцию в статических условиях - быстрый метод, позволяющий выделять вещества, находящиеся в небольшом количестве в неочищенных смесях [15].To isolate recombinant p30 protein from the prepared lysate, adsorption under static conditions was used — a fast method that allows the isolation of substances that are in small quantities in crude mixtures [15].
Отмытую целлюлозу добавляли к суспензии обработанного ультразвуком(6 раз по 1 мин при 18 мг) и осветленного лизата из расчета 50-60 мкг белка на 1 мг сорбента. Сорбент инкубировали при 4°С в течение ночи при постоянном перемешивании. Затем сорбент промывали 10-кратным объемом 1% раствора тритона Х-100. Процедуру отмывки повторяли трижды, интенсивно перемешивая сорбент. Элюцию рекомбинантного белка р30 проводили 100% формамидом. Собранные фракции диализовали в течение ночи при 4°С против 0,01М трис-HCl (рН 8,5-9,0), содержащего 0,15M NaCl [15].Washed cellulose was added to a suspension treated with ultrasound (6 times for 1 min at 18 mg) and clarified lysate at the rate of 50-60 μg of protein per 1 mg of sorbent. The sorbent was incubated at 4 ° C. overnight with constant stirring. Then the sorbent was washed with a 10-fold volume of a 1% solution of X-100 triton. The washing procedure was repeated three times, intensively mixing the sorbent. Recombinant p30 protein was eluted with 100% formamide. The collected fractions were dialyzed overnight at 4 ° C against 0.01 M Tris-HCl (pH 8.5-9.0) containing 0.15 M NaCl [15].
Т.к. в плазмиде рТТ9р30-9 имеется ген CBD, кодирующий в структуре рекомбинантного белка целлюлозо-связывающий домен, с помощью которого рекомбинантный белок р30 способен связываться с целлюлозными матрицами, то очистку белка проводили на микрокристаллической целлюлозе марки Avicel® (Merck), которую предварительно активировали в растворе 0,5М NaOH в течение 30 минут с последующей отмывкой до рН 8,0-8,5. Такая предварительная подготовка целлюлозы и проведение адсорбции «в объеме» (адсорбции в статических условиях) позволили увеличить ее сорбционную емкость до 60 мкг белка на 1 мг сорбента.Because the plasmid rTT9p30-9 contains the CBD gene, which encodes a cellulose-binding domain in the structure of the recombinant protein, with the help of which the recombinant p30 protein is able to bind to cellulose matrices, the protein was purified using Avicel® microcrystalline cellulose (Merck), which was previously activated in solution 0.5 M NaOH for 30 minutes, followed by washing to pH 8.0-8.5. Such preliminary preparation of cellulose and carrying out adsorption “in bulk” (adsorption under static conditions) made it possible to increase its sorption capacity to 60 μg of protein per 1 mg of sorbent.
В результате проведенных опытов было получено 8 аналитических серий очищенного рекомбинантного р30. Выход составил приблизительно от 2 до 4 мг белка на серию, получаемого с 1 л бактериальной культуры, концентрация белка в образце достигала значений 0,4-0,5 мг/мл. Одной аналитической серии достаточно для сенсибилизации около 100 штук 96-луночных панелей для выявления антител к вирусу АЧС в непрямом ТФ ИФА.As a result of the experiments, 8 analytical series of purified recombinant p30 were obtained. The yield was approximately 2 to 4 mg of protein per batch obtained from 1 L of the bacterial culture; the protein concentration in the sample reached 0.4-0.5 mg / ml. One analytical series is enough to sensitize about 100 pieces of 96-well panels to detect antibodies to ASF virus in indirect TF ELISA.
Степень чистоты белка подтверждалась электрофорезом в ПААГ. Анализ электрофореграмм очищенного рекомбинантного белка показал, что он был представлен четкой единичной полосой в области 14 кДа.The degree of protein purity was confirmed by electrophoresis in SDS page. Analysis of electrophoregrams of purified recombinant protein showed that it was represented by a clear single band in the region of 14 kDa.
ПРИМЕР 2. Антигенность рекомбинантного белка, продуцируемого штаммом, и безопасность его применения.EXAMPLE 2. Antigenicity of the recombinant protein produced by the strain, and the safety of its use.
Для получения моноспецифической гипериммунной сыворотки крови к рекомбинантному р30 вируса АЧС проводили процедуру «праймирования» - животным в возрасте не более 6 мес., массой 2,5-3,0 кг вводили в область бедра внутримышечно или подкожно в непосредственной близости от регионарных лимфатических узлов водный раствор плазмидной ДНК из расчета 100 мкг/кг живого веса, а через 10 сут. животным инъецировали в ту же область препарат очищенного рекомбинантного белка р30 вируса АЧС из расчета 100 мкг/кг живого веса 3-кратно с интервалом в 10-14 сут. Через 14 сут после последней иммунизации обескровливали животных согласно «Методическим рекомендациям по обескровливанию лабораторных животных».To obtain a monospecific hyperimmune blood serum to the recombinant p30 of the ASF virus, a “priming” procedure was performed - animals aged no more than 6 months, weighing 2.5-3.0 kg were injected intramuscularly or subcutaneously in the thigh area in the immediate vicinity of regional lymph nodes a solution of plasmid DNA at the rate of 100 μg / kg live weight, and after 10 days. the animals were injected with the preparation of purified recombinant ASF virus p30 protein at the rate of 100 μg / kg live weight 3 times with an interval of 10-14 days in the same area. 14 days after the last immunization, animals were bled according to the “Guidelines for Bleeding Laboratory Animals”.
Специфичность и активность полученных сывороток оценивали в непрямом варианте ТФ ИФА и реакцией непрямой иммунофлюоресценции с ФИТЦ-конъюгатом протеина А.The specificity and activity of the obtained sera was evaluated in the indirect variant of TF ELISA and the reaction of indirect immunofluorescence with FITC conjugate of protein A.
Полученная гипериммунная моноспецифическая сыворотка крови кролика к рекомбинантному р30 в непрямом варианте ТФ ИФА специфично реагировала со специфическим вирусным антигеном АЧС и с хроматографически очищенным рекомбинантным белком р30 вируса АЧС и не взаимодействовала с отрицательными антигенами - с лизатом интактной культуры клеток CV-1 и лизатом клеток E.coli штамма BL21(DE3)pLysS. Оптическая плотность лунок, сенсибилизированных специфическими антигенами, в которых инкубировали гипериммунную моноспецифическую сыворотку крови кролика, превышала таковую в 2,1 и более раза в лунках, в которых инкубировали отрицательную сыворотку крови кролика.The obtained hyperimmune monospecific rabbit blood serum to recombinant p30 in the indirect variant of TF ELISA specifically reacted with a specific ASF viral antigen and chromatographically purified recombinant ASF virus p30 protein and did not interact with negative antigens - with an intact cell culture lysate of CV-1 cells and a lysate of cell culture CV-1 and lysate coli strain BL21 (DE3) pLysS. The optical density of the wells sensitized with specific antigens in which hyperimmune monospecific rabbit blood serum was incubated exceeded that in 2.1 or more times in the wells in which rabbit negative serum was incubated.
Титр полученной сыворотки с рекомбинантным хроматографически очищенным р30 1:1600-1:3200, а со специфическим вирусным антигеном АЧС 1:400-1:800.The titer of the obtained serum with recombinant chromatographically purified p30 1: 1600-1: 3200, and with a specific ASF virus antigen 1: 400-1: 800.
ПРИМЕР 3. Выявление антигенов вируса АЧС в культуре инфицированных клеток и мазках отпечатках с помощью гипериммунной моноспецифической сыворотки к рекомбинантному р30.EXAMPLE 3. Detection of ASF virus antigens in the culture of infected cells and smears of fingerprints using hyperimmune monospecific serum to recombinant p30.
Выявление антигенов вируса АЧС в культуре инфицированных клеток и мазках отпечатках проводили с использованием специфической сыворотки крови свиньи к вирусу АЧС и полученной гипериммунной моноспецифической сыворотки к рекомбинантному р30 вируса АЧС в реакции иммунофлюоресценции (РНИФ) непрямым вариантом.ASF virus antigens were detected in the culture of infected cells and smears of fingerprints using specific pig serum to ASF virus and the obtained hyperimmune monospecific serum to recombinant ASF virus p30 in the immunofluorescence reaction (RNIF) is an indirect option.
С целью определения активности испытуемой сыворотки крови кролика и ее специфичности проводили ее титрование в РНИФ.In order to determine the activity of the test rabbit blood serum and its specificity, it was titrated in RNIF.
Полученная гипериммунная моноспецифическая сыворотка крови кролика к рекомбинантному р30 специфично реагировала только со специфическими антигенами вируса АЧС инфицированных культуральных тест-препаратов и мазков отпечатков инфицированных органов и не взаимодействовала с интактными клетками культуральных тест-препаратов перевиваемой культуры клеток CV-1. Титр полученной сыворотки в РНИФ 1:128-1:256.The resulting hyperimmune monospecific rabbit blood serum to recombinant p30 specifically reacted only with specific antigens of the ASF virus of infected culture test preparations and smears of fingerprints of infected organs and did not interact with intact cells of culture test preparations of transplantable CV-1 cell culture. The titer of the obtained serum in RNIF 1: 128-1: 256.
Источники информацииInformation sources
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011141517/10A RU2463343C1 (en) | 2011-10-13 | 2011-10-13 | Ecoli BL21 (DE3)pLysS CELL STRAIN, pTT9/ASFVp30 CLONE CONTAINING RECOMBINANT PLASMID WITH INTEGRATION OF PART OF CP204L GENE OF AFRICAN SWINE FEVER VIRUS, ENCODING CONFORMATIONAL EPITOPE OF PROTEIN p30, FOR PRODUCING DIAGNOSTIC PREPARATIONS |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011141517/10A RU2463343C1 (en) | 2011-10-13 | 2011-10-13 | Ecoli BL21 (DE3)pLysS CELL STRAIN, pTT9/ASFVp30 CLONE CONTAINING RECOMBINANT PLASMID WITH INTEGRATION OF PART OF CP204L GENE OF AFRICAN SWINE FEVER VIRUS, ENCODING CONFORMATIONAL EPITOPE OF PROTEIN p30, FOR PRODUCING DIAGNOSTIC PREPARATIONS |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2463343C1 true RU2463343C1 (en) | 2012-10-10 |
Family
ID=47079532
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2011141517/10A RU2463343C1 (en) | 2011-10-13 | 2011-10-13 | Ecoli BL21 (DE3)pLysS CELL STRAIN, pTT9/ASFVp30 CLONE CONTAINING RECOMBINANT PLASMID WITH INTEGRATION OF PART OF CP204L GENE OF AFRICAN SWINE FEVER VIRUS, ENCODING CONFORMATIONAL EPITOPE OF PROTEIN p30, FOR PRODUCING DIAGNOSTIC PREPARATIONS |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2463343C1 (en) |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2534343C1 (en) * | 2013-09-02 | 2014-11-27 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Россельхозакадемии | Method of production of monoclonal antibodies to protein p30 of african swine fever virus using recombinant constructions |
RU2603056C2 (en) * | 2015-01-26 | 2016-11-20 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Российской академии сельскохозяйственных наук, RU | Expression plasmid vector pet32b(+)/asfv/p30e2 for production of recombinant protein, consisting of african swine fever virus protein p30, thioredoxin and polyhistidine sections |
RU2647573C1 (en) * | 2017-03-14 | 2018-03-16 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии" (ФГБНУ ФИЦВиМ) | BACTERIAL STRAIN OF ESCHERICHIA COLI KRX pET32b/ASFV/p30-PRODUCER OF CHIMERICAL RECOMBINANT PROTEIN p30 OF AFRICAN SWINE FEVER VIRUS |
CN110698543A (en) * | 2019-10-18 | 2020-01-17 | 武汉科前生物股份有限公司 | Double-antigen indirect ELISA kit for African swine fever virus antibody detection |
CN110981944A (en) * | 2019-11-11 | 2020-04-10 | 中国农业科学院哈尔滨兽医研究所(中国动物卫生与流行病学中心哈尔滨分中心) | African swine fever virus T cell antigen polypeptide and ELISPOT detection method for screening antigen epitope thereof |
CN115073613A (en) * | 2022-06-28 | 2022-09-20 | 扬州大学 | Fusion protein GLuc-p30 and preparation method and application thereof |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2121002C1 (en) * | 1996-08-23 | 1998-10-27 | Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии | Method of differentiation and identification of isolates and viral strains of african plague in pigs |
-
2011
- 2011-10-13 RU RU2011141517/10A patent/RU2463343C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2121002C1 (en) * | 1996-08-23 | 1998-10-27 | Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии | Method of differentiation and identification of isolates and viral strains of african plague in pigs |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
DAVANLOO P. et al., "Cloning and expression of the gene for bacteriophage T7 RNA polymerase", Proc Natl Acad Sci USA. 1984 Apr; 81(7):2035-9. * |
SHUBINA N.G. et al., "Delayed type hypersensitivity and pathogenesis of viral hemorrhagic fever (African swine plague)", Biull Eksp Biol Med. 1994 Aug; 118(8):168-70. * |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2534343C1 (en) * | 2013-09-02 | 2014-11-27 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Россельхозакадемии | Method of production of monoclonal antibodies to protein p30 of african swine fever virus using recombinant constructions |
RU2603056C2 (en) * | 2015-01-26 | 2016-11-20 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Российской академии сельскохозяйственных наук, RU | Expression plasmid vector pet32b(+)/asfv/p30e2 for production of recombinant protein, consisting of african swine fever virus protein p30, thioredoxin and polyhistidine sections |
RU2647573C1 (en) * | 2017-03-14 | 2018-03-16 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии" (ФГБНУ ФИЦВиМ) | BACTERIAL STRAIN OF ESCHERICHIA COLI KRX pET32b/ASFV/p30-PRODUCER OF CHIMERICAL RECOMBINANT PROTEIN p30 OF AFRICAN SWINE FEVER VIRUS |
CN110698543A (en) * | 2019-10-18 | 2020-01-17 | 武汉科前生物股份有限公司 | Double-antigen indirect ELISA kit for African swine fever virus antibody detection |
CN110981944A (en) * | 2019-11-11 | 2020-04-10 | 中国农业科学院哈尔滨兽医研究所(中国动物卫生与流行病学中心哈尔滨分中心) | African swine fever virus T cell antigen polypeptide and ELISPOT detection method for screening antigen epitope thereof |
CN110981944B (en) * | 2019-11-11 | 2022-05-06 | 中国农业科学院哈尔滨兽医研究所(中国动物卫生与流行病学中心哈尔滨分中心) | African swine fever virus T cell antigen polypeptide and ELISPOT detection method for screening antigen epitope thereof |
CN115073613A (en) * | 2022-06-28 | 2022-09-20 | 扬州大学 | Fusion protein GLuc-p30 and preparation method and application thereof |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2463343C1 (en) | Ecoli BL21 (DE3)pLysS CELL STRAIN, pTT9/ASFVp30 CLONE CONTAINING RECOMBINANT PLASMID WITH INTEGRATION OF PART OF CP204L GENE OF AFRICAN SWINE FEVER VIRUS, ENCODING CONFORMATIONAL EPITOPE OF PROTEIN p30, FOR PRODUCING DIAGNOSTIC PREPARATIONS | |
CN110093360B (en) | Fusion protein of rabies virus G protein for expressing Fc fragment and preparation method thereof | |
GB2604692A (en) | Method for preparing recombinant subunit vaccine against novel coronavirus | |
WO2019023920A1 (en) | Foot-and-mouth disease virus-like particle vaccine and preparation method therefor | |
CN101948849A (en) | Preparation and use of truncated Cap protein of porcine circovirus type 2 | |
JP2021072781A (en) | Marker system, especially marker system for baculovirus-expressed subunit antigens | |
WO2020238458A1 (en) | Cell strain for expressing e2 protein and application thereof, and e2 protein and application thereof | |
CN112724208A (en) | SADS-CoV recombinant S protein extracellular segment and preparation method and application thereof | |
CN110004178A (en) | A kind of preparation method of the preparation of bovine viral diarrhea virus sample particle | |
CN105821010B (en) | Recombinant NDV for expressing chicken IBDV antibody and application thereof in preparation of bivalent vaccine | |
Watanabe et al. | Production of highly immunogenic virus-like particles of bovine papillomavirus type 6 in silkworm pupae | |
CN109207502B (en) | Porcine mycoplasma pneumonia and porcine circovirus type 2 recombinant protein and preparation of bivalent vaccine | |
Lee et al. | Production of classical swine fever virus envelope glycoprotein E2 as recombinant polyhedra in baculovirus-infected silkworm larvae | |
AU2020103776A4 (en) | Koi herpesvirus (khv) orf-149-based carbon nanotube supported nucleic acid vaccine and application thereof | |
CN111978411B (en) | Porcine reproductive and respiratory syndrome subunit vaccine and preparation method and application thereof | |
CN116804186B (en) | Anti-chicken infectious anemia virus monoclonal antibody hybridoma cell strain, monoclonal antibody, reagent or kit and application thereof | |
CN112457414A (en) | Cat herpesvirus type I gB-gD recombinant protein and preparation method and application thereof | |
RU2647573C1 (en) | BACTERIAL STRAIN OF ESCHERICHIA COLI KRX pET32b/ASFV/p30-PRODUCER OF CHIMERICAL RECOMBINANT PROTEIN p30 OF AFRICAN SWINE FEVER VIRUS | |
Encinas et al. | Antibody recognition of the glycoprotein g of viral haemorrhagic septicemia virus (VHSV) purified in large amounts from insect larvae | |
CN113061167B (en) | Rabbit hemorrhagic disease virus recombinant antigen and application thereof | |
KR102071751B1 (en) | Methods for the release of virus-like particles | |
RU2467014C2 (en) | Polyepitope protein, nucleotide sequence coding polyepitope protein, plasmid with sequence coding polyepitope protein, and preparation of polyepitope protein for induction of immune response on murrain virus | |
RU2681815C1 (en) | Inactivated sorptive foot-and-mouth disease type a vaccine | |
RU2813324C1 (en) | METHOD OF OBTAINING RECOMBINANT ANTIGEN MBP_RBD_6HIS OF SARS-CoV-2 VIRUS WITH C-TERMINAL AFFINITY TAG 6XHIS-TAG, INTENDED FOR USE AS COMPONENT OF REAGENT KIT FOR COVID-19 SERODIAGNOSTICS | |
RU2294760C2 (en) | Sorbed inactivated vaccine against foot-and-mouth disease of type a |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20161014 |