RU2454464C2 - Molecular genetic method of tumour sensitivity test in patients with lung cancer to gefitinib therapy - Google Patents
Molecular genetic method of tumour sensitivity test in patients with lung cancer to gefitinib therapy Download PDFInfo
- Publication number
- RU2454464C2 RU2454464C2 RU2010128465/15A RU2010128465A RU2454464C2 RU 2454464 C2 RU2454464 C2 RU 2454464C2 RU 2010128465/15 A RU2010128465/15 A RU 2010128465/15A RU 2010128465 A RU2010128465 A RU 2010128465A RU 2454464 C2 RU2454464 C2 RU 2454464C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- pcr
- patients
- exon
- egfr
- lung cancer
- Prior art date
Links
Images
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины, в частности к молекулярной онкологии, молекулярной диагностике.The invention relates to medicine, in particular to molecular oncology, molecular diagnostics.
Предложенный тест направлен на отбор пациентов с высокой чувствительностью опухоли к терапии Ирессой путем детекции наиболее частых мутации EGFR. Обоснованный отбор больных на лечение позволит сократить безрезультатное использование исключительно дорогостоящего препарата (стоимость 1 месяца лечения гефитинибом составляет примерно 100000 рублей).The proposed test is aimed at selecting patients with a high sensitivity of the tumor to Iressa therapy by detecting the most frequent EGFR mutations. A reasonable selection of patients for treatment will reduce the ineffective use of an extremely expensive drug (the cost of 1 month of treatment with gefitinib is approximately 100,000 rubles).
На сегодняшний день описан ряд способов детекции интрагенных мутаций EGFR. Наиболее часто для поиска генетических нарушений EGFR используется прямое секвенирование 18-21 экзонов гена, позволяющее выявить весь спектр известных мутаций [Tokumo et al. The relationship between epidermal growth factor receptor mutations and clinicopathologic features in non-small cell lung cancers, Clin. Cancer Res. 2005 Feb 1; 11(3): 1167-73]. Данный метод имеет несколько существенных недостатков, препятствующих его широкому использованию в клинической практике. Во-первых, это относительно низкая чувствительность, обусловленная частой контаминацией опухолевых образцов нормальной тканью, не содержащей мутаций. Для обнаружения мутации при помощи секвенирования необходимо, чтобы образец содержал не менее 30% мутантной ДНК [Bosari et al. Detection of p53 mutations by single-strand conformation polymorphisms (SSCP) gel electrophoresis. A comparative study of radioactive and nonradioactive silver-stained SSCP analysis. Diagn Mol Pathol. 1995 Dec; 4(4): 249-55]. Во-вторых, данная методика достаточно дорогостоящая и трудоемкая.To date, a number of methods for detecting intragenic mutations of EGFR have been described. Most often, direct sequencing of 18-21 exons of a gene is used to search for EGFR genetic disorders, which allows to reveal the whole spectrum of known mutations [Tokumo et al. The relationship between epidermal growth factor receptor mutations and clinicopathologic features in non-small cell lung cancers, Clin. Cancer Res. 2005 Feb 1; 11 (3): 1167-73]. This method has several significant drawbacks that prevent its widespread use in clinical practice. Firstly, this is a relatively low sensitivity due to the frequent contamination of tumor samples with normal tissue that does not contain mutations. To detect a mutation by sequencing, the sample must contain at least 30% mutant DNA [Bosari et al. Detection of p53 mutations by single-strand conformation polymorphisms (SSCP) gel electrophoresis. A comparative study of radioactive and nonradioactive silver-stained SSCP analysis. Diagn Mol Pathol. 1995 Dec; 4 (4): 249-55]. Secondly, this technique is quite expensive and time-consuming.
Другой подход к выявлению генетических дефектов EGFR заключается в использовании разнообразных модификаций полимеразной цепной реакции (ПЦР): ПЦР с применением олигонуклеотидов с модифицированными основаниями (PNA-LNA PCR clamp) [Nagai et al. Genetic heterogeneity of the epidermal growth factor receptor in non-small cell lung cancer cell lines revealed by a rapid and sensitive detection system, the peptide nucleic acid-locked nucleic acid PCR clamp. Cancer Res. 2005 Aug 15; 65(16): 7276-82], TaqMan-зондов [Suzuki et al. Expression and mutation statuses of epidermal growth factor receptor in thymic epithelial tumors. Jpn J Clin Oncol. 2006 Jun; 36(6): 351-6], Scorpion-праймеров [Kimura et al. Detection of epidermal growth factor receptor mutations in serum as a predictor of the response to gefitinib in patients with non-small-cell lung cancer. Clin Cancer Res. 2006 Jul 1; 12(13): 3915-21], ПЦР с обогащением мутантного варианта ДНК (mutant-enriched PCR) [Asano et al. Detection of EGFR gene mutation in lung cancer by mutant-enriched polymerase chain reaction assay. Clin Cancer Res. 2006 Jan 1; 12(1): 43-8] и др. Эта группа методов нацелена на поиск отдельных, наиболее часто встречающихся повреждений EGFR. Указанные методики обладают более высокой чувствительностью, но требуют использования комбинаций дорогих флюоресцентно-меченых олигонуклеотидов или дополнительных процедур анализа (рестрикционный анализ при mutant-enriched PCR).Another approach to detecting EGFR genetic defects is to use a variety of modifications of the polymerase chain reaction (PCR): PCR using modified base oligonucleotides (PNA-LNA PCR clamp) [Nagai et al. Genetic heterogeneity of the epidermal growth factor receptor in non-small cell lung cancer cell lines revealed by a rapid and sensitive detection system, the peptide nucleic acid-locked nucleic acid PCR clamp. Cancer Res. 2005 Aug 15; 65 (16): 7276-82], TaqMan probes [Suzuki et al. Expression and mutation statuses of epidermal growth factor receptor in thymic epithelial tumors. Jpn J Clin Oncol. 2006 Jun; 36 (6): 351-6], Scorpion primers [Kimura et al. Detection of epidermal growth factor receptor mutations in serum as a predictor of the response to gefitinib in patients with non-small-cell lung cancer. Clin Cancer Res. 2006 Jul 1; 12 (13): 3915-21], PCR with enrichment of a mutant variant of DNA (mutant-enriched PCR) [Asano et al. Detection of EGFR gene mutation in lung cancer by mutant-enriched polymerase chain reaction assay. Clin Cancer Res. 2006 Jan 1; 12 (1): 43-8] et al. This group of methods is aimed at finding individual, most common EGFR lesions. These methods have higher sensitivity, but require the use of combinations of expensive fluorescently-labeled oligonucleotides or additional analysis procedures (restriction analysis with mutant-enriched PCR).
Еще один вариант детекции мутаций EGFR - плавление ДНК с высоким разрешением (high resolution melting) [Heideman et al. A panel of high resolution melting (HRM) technology-based assays with direct sequencing possibility for effective mutation screening of EGFR and K-ras genes. Cell Oncol. 2009; 31(5): 329-33] - характеризуется высокой чувствительностью, но не может быть рекомендовано для рутинного использования ввиду высокой стоимости и небольшого распространения в нашей стране аппаратуры для проведения анализа.Another option for detecting EGFR mutations is high resolution melting [Heideman et al. A panel of high resolution melting (HRM) technology-based assays with direct sequencing possibility for effective mutation screening of EGFR and K-ras genes. Cell Oncol. 2009; 31 (5): 329-33] - is characterized by high sensitivity, but cannot be recommended for routine use due to the high cost and small distribution in our country of equipment for analysis.
Также, среди методов, основанных на ПЦР, необходимо отметить метод, описанный Pan et al., 2005 [Pan et al. Rapid polymerase chain reaction-based detection of epidermal growth factor receptor gene mutations in lung adenocarcinomas. J Mol Diagn. 2005 Aug; 7(3): 396-403]. Метод Pan позволяет обнаружить весь спектр делеций в 19 экзоне, но для детекции замены L858R предлагается дополнительно использовать этап рестрикционного анализа.Also, among methods based on PCR, it is necessary to note the method described by Pan et al., 2005 [Pan et al. Rapid polymerase chain reaction-based detection of epidermal growth factor receptor gene mutations in lung adenocarcinomas. J Mol Diagn. 2005 Aug; 7 (3): 396-403]. The Pan method allows detecting the entire spectrum of deletions in exon 19, but it is proposed to additionally use the restriction analysis step to detect L858R substitution.
В качестве прототипа среди известных аналогов изобретения предлагается наиболее близкий способ выявления в образце опухоли наиболее частой делеций в 19 экзоне EGFR (delE746-A750) и миссенс-мутации L858R в 21 экзоне, описанный в работе OHNISHI H. et al. A simple and sensitive method for detecting major mutations within the tyrosine kinase domain of the epidermal growth factor receptor gene in non-small-cell lung carcinoma. Diagn Mol Pathol. 2006 Jun; 15(2): 101-8. Заявленный способ отличается от известного тем, что для определения делеций в 19 экзоне используют ПЦР с последующим определением длины амплифицированного фрагмента с помощью электрофореза в полиакриламидном геле, а для детекции замены L858R в 21 экзоне гена используют аллель-специфичную ПЦР. При выявлении у больного любой из двух типов мутаций в гене EGFR назначают терапию гефитинибом.As a prototype, among the known analogues of the invention, the closest method for detecting the most frequent deletions in exon 19 of EGFR (delE746-A750) and missense mutation L858R in exon 21 described in OHNISHI H. et al. A simple and sensitive method for detecting major mutations within the tyrosine kinase domain of the epidermal growth factor receptor gene in non-small-cell lung carcinoma. Diagn Mol Pathol. 2006 Jun; 15 (2): 101-8. The claimed method differs from the known one in that PCR is used to determine deletions in exon 19, followed by determination of the length of the amplified fragment by polyacrylamide gel electrophoresis, and allele-specific PCR is used to detect replacement of L858R in exon 21 of the gene. If a patient identifies either of the two types of mutations in the EGFR gene, hephitinib therapy is prescribed.
Техническим результатом заявленного изобретения является повышение информативности и надежности детекции мутаций в гене EGFR у больных раком легкого, что позволяет определить чувствительность опухоли к терапии гефитинибом.The technical result of the claimed invention is to increase the information content and reliability of the detection of mutations in the EGFR gene in patients with lung cancer, which allows us to determine the sensitivity of the tumor to gefitinib therapy.
Изобретение направлено на отбор пациентов с раком легкого на терапию гефитинибом. Указанная цель достигается путем тестирования двух типов нарушений: всех возможных делеций в 19 экзоне и замены L858R в 21 экзоне EGFR. Эти мутации составляют 80-90% всех встречающихся при раке легкого повреждений EGFR. Детекция делеций в 19 экзоне осуществляется при помощи ПЦР с последующим разделением продуктов амплификации в полиакриламидном геле, а обнаружение варианта L858R-методом аллель-специфической ПЦР. Благодаря небольшому размеру используемых ПЦР-фрагментов предлагаемый тест может быть эффективно использован для определения статуса EGFR в архивных патоморфологических образцах опухолевой ткани.The invention is directed to the selection of patients with lung cancer for gefitinib therapy. This goal is achieved by testing two types of disorders: all possible deletions in exon 19 and replacement of L858R in exon 21 of EGFR. These mutations account for 80-90% of all EGFR lesions found in lung cancer. Deletion in exon 19 is detected by PCR followed by separation of the amplification products in a polyacrylamide gel, and the variant is detected by the L858R method by allele-specific PCR. Due to the small size of the PCR fragments used, the proposed test can be effectively used to determine the status of EGFR in archival pathomorphological samples of tumor tissue.
Изобретательский уровень предлагаемого диагностического теста подтверждается, во-первых, спектром детектируемых повреждений EGFR, и, во-вторых, использованием сочетания двух недорогих и простых ПЦР-методик для выявления мутаций.The inventive step of the proposed diagnostic test is confirmed, firstly, by the spectrum of detected EGFR lesions, and, secondly, by using a combination of two inexpensive and simple PCR methods to detect mutations.
Описание изобретенияDescription of the invention
Тестирование рекомендовано всем пациентам с аденокарциномой легкого, а также может быть использовано у больных с другими гистологическими вариантами опухолей легкого.Testing is recommended for all patients with lung adenocarcinoma, and can also be used in patients with other histological variants of lung tumors.
Детекция делеций в 19 экзоне EGFR осуществляется путем ПЦР-амплификации всей последовательности экзона при помощи прямого 5'-CTGTCATAGGGACTCTGGAT-3' и обратного 5'-CAGCAAAGCAGAAACTCACAT-3' праймеров с последующим электрофоретическим разделением продуктов ПЦР. Реакционная смесь состоит из 1 мкл раствора ДНК (10-100 нг ДНК) и 9 мкл смеси для ПЦР. Смесь для ПЦР содержит 1-кратный ПЦР-буфер, 2.5 мМ MgCb, 200 мкМ дЦТФ, 200 мкМ дТТФ, 200 мкМ дГТФ, 200 мкМ дАТФ, 1 мкМ каждого праймера (конечная концентрация - 0.1 ОЕ/л или 0.5 пмоль/мкл) и 0,5 ед. "hot-start" ДНК-полимеразы. ПЦР-реакция начинается с 10-минутной активации ДНК-полимеразы при 95°С; для накопления ПЦР-продукта проводится 45 циклов амплификации (денатурация: 15 сек при 95°C; отжиг: 30 сек при 57°С; синтез: 30 сек при 72°С). Каждый сет амплификации должен включать контрольный образец с делецией, а также негативный контроль. Полученный продукт разделяют методом электрофореза в 10% полиакриламидном геле (ПААГ) в вертикальной камере. Аллелю дикого типа соответствует фрагмент 127 п.о., а в случае делении наблюдается дополнительный фрагмент меньшего размера (размер дополнительного фрагмента определяется типом делеции). На рисунке 1 приведены примеры детекции делеции EGFR.Deletion in exon 19 of EGFR is detected by PCR amplification of the entire exon sequence using direct 5'-CTGTCATAGGGACTCTGGAT-3 'and reverse 5'-CAGCAAAGCAGAAACTCACAT-3' primers, followed by electrophoretic separation of PCR products. The reaction mixture consists of 1 μl of a DNA solution (10-100 ng of DNA) and 9 μl of a mixture for PCR. The PCR mixture contains 1-fold PCR buffer, 2.5 mM MgCb, 200 μM dTTP, 200 μM dTTP, 200 μM dGTP, 200 μM dATP, 1 μM of each primer (final concentration 0.1 OU / L or 0.5 pmol / μl) and 0.5 units "hot-start" DNA polymerase. The PCR reaction begins with a 10-minute activation of DNA polymerase at 95 ° C; To accumulate the PCR product, 45 amplification cycles are carried out (denaturation: 15 sec at 95 ° C; annealing: 30 sec at 57 ° C; synthesis: 30 sec at 72 ° C). Each amplification set should include a deletion control sample as well as a negative control. The resulting product was separated by electrophoresis in 10% polyacrylamide gel (PAAG) in a vertical chamber. A wild-type allele corresponds to a 127 bp fragment, and in the case of division, an additional fragment of a smaller size is observed (the size of the additional fragment is determined by the type of deletion). Figure 1 shows examples of the detection of an EGFR deletion.
Тестирование миссенс-мутации EGFR L858R в 21 экзоне проводится методом аллель-специфической ПЦР в режиме реального времени с использованием следующих праймеров: 5'-CACCCAGCAGTTTGGCCA-3' (праймер, специфичный для последовательности дикого типа), 5'-CACCCAGCAGTTTGGCCC-3' (праймер, специфичный для последовательности с мутацией), и 5'-GCATGAACTACTTGGAGGAC-3' (общий праймер) (размер ПЦР-продукта - 120 п.о.). ПЦР в режиме реального времени ("real-time PCR") проводится на оборудовании iCycler iQ Real-Time PCR Detection System (Bio-Rad Laboratories, Hercules) и состоит из 50 циклов амплификации (денатурация: 15 сек при 95°С; отжиг: 30 сек при 63°С; синтез: 30 сек при 72°С). Смесь для ПЦР (суммарный объем 20 мкл) содержит 1 мкл раствора ДНК (10-100 нг ДНК), 1,0 ед. ДНК-полимеразы, 1-кратный ПЦР-буфер (pH 8.3), 2.5 мМ MgCl2, 200 мкМ каждого из нуклеотидтрифосфатов, 0,3 мкМ каждого праймера, SYBR green I в концентрации 0,2х (исходный раствор 10 000х; Molecular Probes). Каждый сет амплификации должен включать контрольный образец (гетерозигота по исследуемой мутации), а также негативный контроль.Testing the missense mutation EGFR L858R in exon 21 is carried out by allele-specific real-time PCR using the following primers: 5'-CACCCAGCAGTTTGGCCA-3 '(primer specific for the wild-type sequence), 5'-CACCCAGCAGTTTTGGCCC-3' (primer specific for the sequence with the mutation), and 5'-GCATGAACTACTTGGAGGAC-3 '(total primer) (the size of the PCR product is 120 bp). Real-time PCR ("real-time PCR") is performed on iCycler iQ Real-Time PCR Detection System equipment (Bio-Rad Laboratories, Hercules) and consists of 50 amplification cycles (denaturation: 15 sec at 95 ° C; annealing: 30 sec at 63 ° C; synthesis: 30 sec at 72 ° C). The PCR mixture (
Для контроля специфичности фрагментов используется анализ кривых плавления. На рисунке 2 приведены примеры детекции мутации EGFR L858R.To control the specificity of the fragments, analysis of melting curves is used. Figure 2 shows examples of the detection of the EGFR L858R mutation.
Детекция замены L858R основана на динамике амплификации фрагментов с олигонуклеотидами, специфичными к нормальному и мутантному аллелям, что находит отражение в определенном значении Ct (Cycle threshold, точка пересечения пороговой линии) кривых амплификации, соответствующих нормальному (wt) и мутантному (mt) аллелям. Генотип исследуемого образца устанавливается по формуле: ΔCt=Ct(mt)-Ct(wt). В случае, если образец гомозиготен по нормальному аллелю, ΔCt составляет 6 циклов и более, в случае гетерозиготы по мутации ΔCt≤l. Промежуточные значения ΔCt свидетельствуют о неоптимальных условиях ПЦР.Detection of the L858R substitution is based on the dynamics of amplification of fragments with oligonucleotides specific for the normal and mutant alleles, which is reflected in a certain value of the Ct (Cycle threshold, point of intersection of the threshold line) amplification curves corresponding to the normal (wt) and mutant (mt) alleles. The genotype of the test sample is established by the formula: ΔCt = Ct (mt) -Ct (wt). If the sample is homozygous for the normal allele, ΔCt is 6 cycles or more, in the case of heterozygotes for the mutation ΔCt≤l. Intermediate ΔCt values indicate non-optimal PCR conditions.
Преимуществами предлагаемого теста являются простота в исполнении, доступность, а также высокая информативность и надежность. При помощи двух несложных методик (обычная ПЦР в сочетании с электрофорезом и аллель-специфическая ПЦР) удается детектировать до 90% встречающихся мутаций EGFR. Использование коротких ПЦР-фрагментов позволяет применять данный тест для поиска мутаций в архивных патоморфологических образцах опухолей легкого.The advantages of the test are simplicity in performance, accessibility, as well as high information content and reliability. Using two simple techniques (conventional PCR combined with electrophoresis and allele-specific PCR), up to 90% of the EGFR mutations encountered can be detected. The use of short PCR fragments allows the use of this test to search for mutations in archival pathomorphological samples of lung tumors.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2010128465/15A RU2454464C2 (en) | 2010-07-12 | 2010-07-12 | Molecular genetic method of tumour sensitivity test in patients with lung cancer to gefitinib therapy |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2010128465/15A RU2454464C2 (en) | 2010-07-12 | 2010-07-12 | Molecular genetic method of tumour sensitivity test in patients with lung cancer to gefitinib therapy |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2010128465A RU2010128465A (en) | 2012-04-10 |
RU2454464C2 true RU2454464C2 (en) | 2012-06-27 |
Family
ID=46031235
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2010128465/15A RU2454464C2 (en) | 2010-07-12 | 2010-07-12 | Molecular genetic method of tumour sensitivity test in patients with lung cancer to gefitinib therapy |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2454464C2 (en) |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1661107A (en) * | 2004-12-30 | 2005-08-31 | 王进 | Fast method for detecting gene point mutation of receptor of epidermal growth factor lung cancer in non-cellule type |
-
2010
- 2010-07-12 RU RU2010128465/15A patent/RU2454464C2/en active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1661107A (en) * | 2004-12-30 | 2005-08-31 | 王进 | Fast method for detecting gene point mutation of receptor of epidermal growth factor lung cancer in non-cellule type |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
BANKOVIC J. et al. Identification of genes associated with non small-cell lung cancer promotion and progression. Lung Cancer. 2010 Feb; 67(2), p.151-159. Epub. 2009, May, 26. Найдено из БД, PubMed PMID: 19473719. ГЛУЗМАН Д.Ф. и др. Молекулярные технологии в диагностике злокачественных новообразований. Журнал "DOCTOR", №4, 2003 г. Найдено из БД Google, www.cancer.ic.ck.ua/index_5_9.htm. * |
OHNISHI H. et al. A simple and sensitive method for detecting major mutations within the tyrosine kinase domain of the epidermal growth factor receptor gene in non-small-cell lung carcinoma. Diagn. Mol. Pathol. 2006, Jun; 15(2), p.101-108. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2010128465A (en) | 2012-04-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Han et al. | Detection of EGFR mutation status in lung adenocarcinoma specimens with different proportions of tumor cells using two methods of differential sensitivity | |
Yung et al. | Single-molecule detection of epidermal growth factor receptor mutations in plasma by microfluidics digital PCR in non–small cell lung cancer patients | |
US8637245B2 (en) | Method for the detection of EGFR mutations in blood samples | |
Kramer et al. | A fast, sensitive and accurate high resolution melting (HRM) technology-based assay to screen for common K-ras mutations | |
JP2009511008A (en) | Method for predicting or monitoring a patient's response to an ErbB receptor drug | |
Carbonell et al. | Comparison of allelic discrimination by dHPLC, HRM, and TaqMan in the detection of BRAF mutation V600E | |
JP2014082984A (en) | Method for detecting novel ntrk2 activating mutation | |
JP2013226108A (en) | Method for detecting new ntrk2 activating mutation | |
Carotenuto et al. | Detection of KRAS mutations in colorectal cancer with Fast COLD-PCR | |
CN110541033A (en) | composition for detecting EGFR gene mutation and detection method | |
US20110300535A1 (en) | Method of identifying individuals at risk of thiopurine drug resistance and intolerance | |
US10023904B2 (en) | Method for detection of KRAS mutations | |
CN107058538B (en) | Primer composition, kit composed of primer composition and application of kit | |
EP3954784A1 (en) | Composition for diagnosis or prognosis prediction of glioma, and method for providing information related thereto | |
US20120108445A1 (en) | Vegf and vegfr1 gene expression useful for cancer prognosis | |
US11261482B2 (en) | Composition for detecting epidermal cell growth factor receptor gene mutation, and kit comprising same | |
RU2454464C2 (en) | Molecular genetic method of tumour sensitivity test in patients with lung cancer to gefitinib therapy | |
Zavodna et al. | Genetic analysis of KRAS mutation status in metastatic colorectal cancer patients | |
WO2017106365A1 (en) | Methods for measuring mutation load | |
Shoukier et al. | Characterization of five novel large deletions causing hereditary haemorrhagic telangiectasia | |
CN110863044A (en) | Primer combination for detecting VCL gene mutation and application thereof | |
You et al. | Amplification refractory mutation system polymerase chain reaction versus optimized polymerase chain reaction restriction-fragment length polymorphism for apolipoprotein E genotyping of majorly depressed patients | |
Akkhasutthikun et al. | Tissue and Plasma-Based Highly Sensitive Blocker Displacement Amplicon Nanopore Sequencing for EGFR Mutations in Lung Cancer | |
Fujiwara et al. | Analysis of the MYD88 L265P mutation in IgM monoclonal gammopathy by semi-nested polymerase chain reaction-based restriction fragment length polymorphism method | |
JP4825956B2 (en) | Determination of the risk of airway mucosal inflammatory disease |