RU2436299C1 - Medium for cryopreservation of goat sperm - Google Patents

Medium for cryopreservation of goat sperm Download PDF

Info

Publication number
RU2436299C1
RU2436299C1 RU2010118373/13A RU2010118373A RU2436299C1 RU 2436299 C1 RU2436299 C1 RU 2436299C1 RU 2010118373/13 A RU2010118373/13 A RU 2010118373/13A RU 2010118373 A RU2010118373 A RU 2010118373A RU 2436299 C1 RU2436299 C1 RU 2436299C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
sperm
tris
medium
cryopreservation
aminomethane
Prior art date
Application number
RU2010118373/13A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Полина Владимировна Аксенова (RU)
Полина Владимировна Аксенова
Али-Магомет Муссаевич Айбазов (RU)
Али-Магомет Муссаевич Айбазов
Original Assignee
Государственное научное учреждение Ставропольский научно-исследовательский институт животноводства и кормопроизводства Российской академии сельскохозяйственных наук
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное научное учреждение Ставропольский научно-исследовательский институт животноводства и кормопроизводства Российской академии сельскохозяйственных наук filed Critical Государственное научное учреждение Ставропольский научно-исследовательский институт животноводства и кормопроизводства Российской академии сельскохозяйственных наук
Priority to RU2010118373/13A priority Critical patent/RU2436299C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2436299C1 publication Critical patent/RU2436299C1/en

Links

Landscapes

  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Abstract

FIELD: agriculture.
SUBSTANCE: invention relates to animal husbandry. The medium for cryopreservation of goat sperm contains crystalline glucose, tris-(hydroxymethyl)-aminomethane, citric acid 1-hydrate, egg yolk, glycerin, distilled water, amber acid and sodium alginate, with the following ratio of components, wt %: crystalline glucose 0.6000-0.667; tris-(hydroxymethyl)-aminomethane 3.635-4.039; citric acid 1-hydrate 1.887-2.084; amber acid 0.197-0.232; sodium alginate 0.020-0.040; glycerin 5.000-5.500; egg yolk 2.500-3.000; distilled water - the rest.
EFFECT: invention improves stability of sperms to cryopreservation and stabilises their biological full-value in freezing-thawing processes.
7 tbl 16 ex

Description

Область техники, к которой относится изобретениеFIELD OF THE INVENTION

Изобретение относится к сельскому хозяйству, в частности к искусственному осеменению коз, и может быть использовано в биотехнике репродукции других близкородственных видов сельскохозяйственных и диких животных.The invention relates to agriculture, in particular to artificial insemination of goats, and can be used in biotechnology for the reproduction of other closely related species of agricultural and wild animals.

Уровень техникиState of the art

Известна среда для разбавления и замораживания спермы быков, включающая на 100 мл: 0,8-1,2 г фруктозы, 1,4-1,6 г цитрата натрия, 2,3-2,6 г TRIS'a, 7,5-9,5 г липопротеинов низкой плотности, 5-8 мл глицерина, 0,085-0,12 млн ИЕ пенициллина и дистиллированную воду (см. Qingwang Li; Jianhong Нu; Hongwei Zhao; Zhongliang Jiang, № патента CN101220345 (А) от 2008.07.16). Недостатком данной среды является неточность рецепта, в частности неясно: «TRIS» обозначает трис-(оксиметил)-аминометан либо трис-(гидроксиметил)-аминометан, также понятие «липопротеины низкой плотности» объединяет целый класс, к тому же неясен механизм их выделения из организма, готового же препарата для реализации не существует. Таким образом, затруднительно воспользоваться данным рецептом. Кроме того, среда предназначена для быков, значит, ее нельзя экстраполировать на козлов.Known medium for dilution and freezing of semen of bulls, including per 100 ml: 0.8-1.2 g of fructose, 1.4-1.6 g of sodium citrate, 2.3-2.6 g of TRIS'a, 7.5 -9.5 g of low density lipoproteins, 5-8 ml of glycerol, 0.085-0.12 million IE of penicillin and distilled water (see Qingwang Li; Jianhong Nu; Hongwei Zhao; Zhongliang Jiang, Patent No. CN101220345 (A) 2008.07. 16). The disadvantage of this medium is the inaccuracy of the recipe, in particular it is unclear: “TRIS” means tris- (oxymethyl) -aminomethane or tris- (hydroxymethyl) -aminomethane, the concept of “low density lipoproteins” unites a whole class, and the mechanism of their isolation from an organism, a ready-made drug for sale does not exist. Thus, it is difficult to use this recipe. In addition, the environment is intended for bulls, which means that it cannot be extrapolated to goats.

Известны: синтетическая среда для разбавления и замораживания спермы баранов, содержащая лактозу, декстрин, трис-(оксиметил)-аминометан, двунатриевую двухводную соль этилендиаминтетрауксусной кислоты, глицерин, желток куриного яйца и дистиллированную воду, при этом она дополнительно содержит ксилит и бромид-N,N-диметил-N-децил-4-окси-3,5-ди-трет-бутил-бензиламина при следующем соотношении ингредиентов, мас.%:Known: a synthetic medium for diluting and freezing ram sperm containing lactose, dextrin, tris- (hydroxymethyl) aminomethane, disodium dichloride salt of ethylenediaminetetraacetic acid, glycerin, chicken egg yolk and distilled water, while it additionally contains xylitol, bromide N-dimethyl-N-decyl-4-hydroxy-3,5-di-tert-butyl-benzylamine in the following ratio of ingredients, wt.%:

лактоза - 5,0-8,0,lactose - 5.0-8.0,

декстрин - 3,5-7,0,dextrin - 3.5-7.0,

трис-(оксиметил)-аминометан - 0,065-0,13,Tris- (hydroxymethyl) -aminomethane - 0.065-0.13,

двунатриевая двухводная соль этилендиаминтетрауксусной кислоты - 0,08-0,16,disodium bisodium salt of ethylenediaminetetraacetic acid - 0.08-0.16,

глицерин - 3,5-6,0,glycerin - 3.5-6.0,

желток куриного яйца - 12,0-15,0,egg yolk - 12.0-15.0,

ксилит - 0,1-0,3,xylitol - 0.1-0.3,

бромид-N,N-диметил-N-децил-4-окси-3,5-ди-трет-бутил-бензиламина - 0,002-0,008,bromide-N, N-dimethyl-N-decyl-4-hydroxy-3,5-di-tert-butyl-benzylamine - 0.002-0.008,

вода дистиллированная - остальное (см. пат. RU №2083183, МПК А61Д 19/02, опубл. 10.07.1997) и синтетическая среда для разбавления и криоконсервации спермы баранов, включающая лактозу, ксилит, трис(оксиметил)-аминометан, трилон-Б, глицерин, желток куриного яйца, дистиллированную воду, при этом она дополнительно содержит костный клей при следующем соотношении ингредиентов, мас.%: лактоза - 6,0, костный клей - 1,8, ксилит - 0,18, трис-(оксиметил)-аминометан - 0,07, трилон-Б - 0,1, глицерин - 4,3, желток куриного яйца - 14,2, вода дистиллированная до 100 (см. пат. RU №2198622, МПК А61Д 19/02, опубл. 20.02.2003).distilled water - the rest (see Pat. RU No. 2083183, IPC A61D 19/02, publ. 07/10/1997) and a synthetic medium for dilution and cryopreservation of ram sperm, including lactose, xylitol, tris (hydroxymethyl) -aminomethane, trilon-B , glycerin, chicken egg yolk, distilled water, while it additionally contains bone glue in the following ratio of ingredients, wt.%: lactose - 6.0, bone glue - 1.8, xylitol - 0.18, tris- (oxymethyl) aminomethane - 0.07, trilon-B - 0.1, glycerin - 4.3, chicken yolk - 14.2, distilled water to 100 (see US Pat. RU No. 2198622, IPC A61D 19/02, о UBL. 20.02.2003).

Недостатком данных сред является их специфичность для спермы баранов. Среды для замораживания спермы баранов можно применять для криоконсервации спермы козлов, однако только в половой сезон, при этом после оттаивания отмечается довольно низкая активность спермиев (3,7-4,2 балла). При круглогодичном же использовании козлов, в неполовой сезон, когда качество нативной спермы хуже, после криоконсервации и оттаивания отмечается подвижность спермиев ниже 4 баллов, либо некроспермия.The disadvantage of these media is their specificity for sperm of sheep. Sheep sperm freezing media can be used for cryopreservation of goat sperm, but only during the sexual season, and after thawing, sperm activity is rather low (3.7-4.2 points). With year-round use of goats, in the non-sexual season, when the quality of native sperm is worse, after cryopreservation and thawing, sperm motility is lower than 4 points, or necrospermia.

При имеющемся разнообразии разбавителей для спермы быков и баранов имеется мало сред для разбавления спермы козлов. Из готовых применяется синтетическая безжелточная среда OVIX-CELL (Франция) и молочный разбавитель (Франция), включающий на 100 мл: 0,194 г глюкозы, 10,0 г молока, 7,0 г глицерина, 0,03 г пенициллина, 0,05 стрептомицина.Given the variety of diluents for sperm of bulls and rams, there are few media for diluting goat sperm. From the finished products, OVIX-CELL synthetic non-yellowing medium (France) and milk diluent (France) are used, including per 100 ml: 0.194 g glucose, 10.0 g milk, 7.0 g glycerol, 0.03 g penicillin, 0.05 streptomycin .

Однако эти разбавители технологически сложны для применения, так как их использование связано многократным многоступенчатым разбавлением, предварительным отмыванием и центрифугированием спермиев. Применение данной технологии увеличивает себестоимость дозы спермы в 20-25 раз, кроме того, ее можно использовать только стационарно.However, these diluents are technologically difficult to use, since their use is associated with multiple multi-stage dilution, preliminary washing and centrifugation of sperm. The use of this technology increases the cost of a dose of sperm 20-25 times, in addition, it can only be used stationary.

Для консервации спермы козлов без отмывания спермиев имеется синтетическая среда, содержащая на 100 мл: 10,0 г сахарозы, 2,0 г комплексоната Na2Ca ЭДТА, 0,03-0,06 г полигена, 7,0 г глицерина, 20 мл желтка куриного яйца и дистиллированную воду (Россия, Инструкция по технологии работы организаций по искусственному осеменению и трансплантации эмбрионов сельскохозяйственных животных, 2000).For conservation of goat sperm without washing sperm there is a synthetic medium containing per 100 ml: 10.0 g of sucrose, 2.0 g of complexonate Na 2 Ca EDTA, 0.03-0.06 g of polygen, 7.0 g of glycerol, 20 ml chicken yolk and distilled water (Russia, Manual on the technology of organizations for artificial insemination and transplantation of embryos of farm animals, 2000).

Однако при замораживании спермы козла в данной среде ее активность после оттаивания варьирует и составляет 1,5-4,0 балла при низкой оплодотворяемости, поэтому на практике данная среда не используется.However, when freezing goat sperm in a given environment, its activity after thawing varies and amounts to 1.5-4.0 points with low fertility, therefore, this medium is not used in practice.

Наиболее близким по технической сущности и достигаемому положительному эффекту и принятый авторами за прототип является желточно-трис-глюкозный разбавитель для козлов (Австралия), состоящий из глюкозы (0,625-1,000 мас.%), трис-(гидроксиметил)-аминометана (3,786-6,057 мас.%), лимонной кислоты (2,172-3,475 мас.%), желтка куриного (2,5-4,0 мас.%), глицерина - 5-8 мас.% и дистиллированной воды до 100 мл (G. Evans, W.M.C. Maxwell Salamon's Artificial Insemination of Sheep and Goats. - Sydney: Butterworths, 1987).The closest in technical essence and the achieved positive effect and accepted by the authors for the prototype is yolk-tris-glucose diluent for goats (Australia), consisting of glucose (0.625-1,000 wt.%), Tris- (hydroxymethyl) -aminomethane (3,786-6,057 wt.%), citric acid (2.172-3.475 wt.%), chicken yolk (2.5-4.0 wt.%), glycerin - 5-8 wt.% and distilled water up to 100 ml (G. Evans, WMC (Maxwell Salamon's Artificial Insemination of Sheep and Goats. - Sydney: Butterworths, 1987).

Недостатком данного разбавителя является невысокое качество спермы после замораживания-оттаивания: активность спермиев - 4-4,5 балла при оплодотворяющей способности - 44-48%.The disadvantage of this diluent is the low quality of sperm after freezing and thawing: sperm activity - 4-4.5 points with a fertilizing ability of 44-48%.

Раскрытие изобретенияDisclosure of invention

Задачей предлагаемого изобретения является разработка среды для криоконсервации спермы козлов, обладающей способностью повышать устойчивость спермиев к криоконсервации и последующему оттаиванию.The objective of the invention is to develop a medium for cryopreservation of goat sperm, with the ability to increase the resistance of sperm to cryopreservation and subsequent thawing.

Технический результат, который может быть получен с помощью предлагаемого изобретения, сводится к улучшению устойчивости спермиев к криоконсервации и стабилизации их биологической полноценности в процессах замораживания-оттаивания.The technical result that can be obtained using the present invention is to improve the resistance of sperm to cryopreservation and stabilization of their biological usefulness in the processes of freezing and thawing.

Технический результат достигается с помощью среды для криоконсервации спермы козлов, включающей трис-(гидроксиметил)-аминометан, лимонную кислоту 1-водную, глюкозу кристаллическую, глицерин, желток куриный, воду дистиллированную, при этом она дополнительно содержит янтарную кислоту и альгинат натрия при следующем соотношении компонентов в мас.%:The technical result is achieved using a medium for cryopreservation of goat sperm, including tris- (hydroxymethyl) aminomethane, citric acid 1-water, crystalline glucose, glycerin, chicken yolk, distilled water, while it additionally contains succinic acid and sodium alginate in the following ratio components in wt.%:

Глюкоза кристаллическаяCrystalline glucose 0,600-0,6670.600-0.667 Трис-(гидроксиметил)-аминометанTris (hydroxymethyl) aminomethane 3,635-4,0393,635-4,039 Лимонная кислотаLemon acid 1,887-2,0841,887-2,084 Янтарная кислотаsuccinic acid 0,197-0,2320.197-0.232 Альгинат натрияSodium Alginate 0,020-0,0400,020-0,040 ГлицеринGlycerol 5,000-5,5005,000-5,500 Желток куриныйChicken Yolk 2,500-3,0002,500-3,000 Вода дистиллированнаяDistilled water остальноеrest

Сущность получения среды для разбавления спермы козлов заключается в следующем. Берут желточно-трис-глюкозный разбавитель для козлов (G.Evans, W.M.C.Maxwell Salamon's Artificial Insemination of Sheep and Goats. - Sydney: Butterworths, 1987), состоящий из глюкозы, трис-(гидроксиметил)-аминометана, лимонной кислоты, желтка куриного и глицерина, и дополнительно вводят янтарную кислоту и натрия альгинат при следующем соотношении компонентов в мас.%:The essence of obtaining a medium for diluting goat sperm is as follows. Take yolk-tris-glucose diluent for goats (G. Evans, WMC Maxwell Salamon's Artificial Insemination of Sheep and Goats. - Sydney: Butterworths, 1987), consisting of glucose, tris (hydroxymethyl) aminomethane, citric acid, chicken yolk and glycerol, and succinic acid and sodium alginate are additionally introduced in the following ratio of components in wt.%:

Глюкоза кристаллическаяCrystalline glucose 0,600-0,6670.600-0.667 Трис-(гидроксиметил)-аминометанTris (hydroxymethyl) aminomethane 3,635-4,0393,635-4,039 Лимонная кислота 1-воднаяCitric Acid 1-Aqueous 1,887-2,0841,887-2,084 Янтарная кислотаsuccinic acid 0,197-0,2320.197-0.232 Альгинат натрияSodium Alginate 0,020-0,0400,020-0,040 ГлицеринGlycerol 5,000-5,5005,000-5,500 Желток куриныйChicken Yolk 2,500-3,0002,500-3,000 Вода дистиллированнаяDistilled water остальноеrest

Янтарная кислота (бутандиовая кислота, этан-1,2-дикарбоновая кислота) содержится во всех органах и тканях организма, в том числе в семенной жидкости. Является продуктом пятой реакции и субстратом шестой реакции цикла трикарбоновых кислот. (Т.Т.Березов, Б.Ф.Коровкин. - Биологическая химия М.: Медицина, 1990. - 528 с.) Ее цитопротекторное воздействие обусловлено следующими свойствами:Succinic acid (butanedioic acid, ethane-1,2-dicarboxylic acid) is found in all organs and tissues of the body, including seminal fluid. It is the product of the fifth reaction and the substrate of the sixth reaction of the tricarboxylic acid cycle. (T.T. Berezov, B.F. Korovkin. - Biological chemistry M .: Medicine, 1990. - 528 p.) Its cytoprotective effect is due to the following properties:

- способностью повышать емкость буферных систем;- the ability to increase the capacity of buffer systems;

- антигипоксическим действием, обусловленным ее влиянием на транспорт медиаторных аминокислот,- antihypoxic effect due to its effect on the transport of mediator amino acids,

- антиоксидантным действием.- antioxidant effect.

Нарушение энергетического метаболизма в спермиях в результате замораживаниия-оттаивания приводит к изменению трансмембранных ионных потоков и накоплению внутриклеточного кальция. Одновременно развивается атака активными формами кислорода, связанная с утечкой электронов, накапливающихся на промежуточных звеньях дыхательной цепи, белков, нуклеиновых кислот и липидов, протекающая по механизму свободно-радикального окисления. Свободные радикалы (высокоактивные формы кислорода, пероксид водорода, альдегиды), образующиеся при неполном восстановлении кислорода, изменяющие функциональные свойства ряда ферментов, углеводов, белков, в том числе дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) и рибонуклеиновой кислоты (РНК), в результате клетка утрачивает свои функции, и стимулируются, помимо прямого повреждающего действия кристаллизации и рекристаллизации, вторичные деструктивные процессы. Янтарная кислота оказывает модулирующее влияние на мембраносвязанные ферменты, ионные каналы, рецепторные комплексы, в том числе бензодиазепиновые, ГАМК и ацетилхолиновые. Восстановление дыхательной функции спермиев в присутствии янтарной кислоты идет двумя путями: восстановлением НАД-зависимого участка цикла Кребса (Ленинджер А. Основы биохимии. - М.: Мир - 1991-384 с.) или стимуляцией альтернативного пути, которым является сукцинатоксидазное окисление или окисление янтарной кислоты, замещающее прерванные вследствие процессов кристаллизации и рекристаллизации участки цикла окислительного фосфорилирования (Виноградов А.Д. Измерение активности сукцинатдегидрогеназы/ Реакции живых систем и состояние энергетического обмена. - Пущино, 1979. - с.98-125; Кондрашова М.Н. Взаимодействие процессов переаминирования и окисления карбоновых кислот при разных функциональных состояниях тканей // Биохимия. - 1991. - т.56. - вып.3. - С.388-405).Violation of energy metabolism in sperm as a result of freezing-thawing leads to a change in transmembrane ion fluxes and the accumulation of intracellular calcium. At the same time, an attack develops with active oxygen species, associated with the leakage of electrons accumulating on the intermediate links of the respiratory chain, proteins, nucleic acids and lipids, proceeding by the mechanism of free radical oxidation. Free radicals (highly reactive forms of oxygen, hydrogen peroxide, aldehydes) formed during the incomplete reduction of oxygen, which change the functional properties of a number of enzymes, carbohydrates, proteins, including deoxyribonucleic acid (DNA) and ribonucleic acid (RNA), as a result, the cell loses its functions and, in addition to the direct damaging effect of crystallization and recrystallization, secondary destructive processes are stimulated. Succinic acid has a modulating effect on membrane-bound enzymes, ion channels, receptor complexes, including benzodiazepine, GABA and acetylcholine. The restoration of the respiratory function of sperm in the presence of succinic acid proceeds in two ways: by restoring the NAD-dependent portion of the Krebs cycle (Leninger A. Fundamentals of biochemistry. - M .: Mir - 1991-384 p.) Or by stimulating an alternative pathway, which is succinate oxidation oxidation or succinic oxidation acid that replaces the oxidative phosphorylation cycle sections that were interrupted due to crystallization and recrystallization processes (Vinogradov A.D. Measurement of the activity of succinate dehydrogenase / Reactions of living systems and the state of energy exchange metabolism. - Pushchino, 1979. - p. 98-125; Kondrashova MN Interaction of the processes of transamination and oxidation of carboxylic acids under different functional conditions of tissues // Biochemistry. - 1991. - v. 56. - issue 3. - S.388-405).

Натрия альгинат является натриевой солью природной альгиновой кислоты, выделяемой из коричневых морских водорослей. Образует высоковязкие растворы, стабилизирует эмульсии. Хорошо растворяется в воде в присутствии глицерина и сахаров, рН 1% раствора = 6,5-7,0 (Афанасьев Н.И., Парфенова Л.Н. Вязкость водных растворов полиэлектролитов. // Изв. вузов. Лесной журнал. - 1991. №5. С.150-153).Sodium alginate is the sodium salt of natural alginic acid released from brown algae. Forms highly viscous solutions, stabilizes emulsions. It is highly soluble in water in the presence of glycerol and sugars, pH of a 1% solution = 6.5-7.0 (Afanasyev N.I., Parfenova L.N. Viscosity of aqueous solutions of polyelectrolytes. // Izv. Universities. Forest Journal. - 1991 No. 5. S.150-153).

Благодаря своим уникальным физико-химическим свойствам, хорошим связующим способностям альгинат натрия широко используется в профилактической и клинической медицине и биотехнологии (Л.К.Добродеева, В.П.Белозеров, Н.И.Кондаков, Н.В.Цимбаленко, Л.П.Шилина, К.Г.Добродеев. Пищевые добавки водорослевого происхождения для профилактики и лечения иммунодефицитных состояний. Архангельск, 1996. 12 с; Ю.С.Оводов. Избранные главы биоорганической химии. // Сыктывкар, Сыктывкарский ун-т. 1998, 222 с; Ю.С.Хотимченко, В.В.Ковалев, О.В.Савченко, О.А.Зиганшина. Физико-химические свойства, физиологическая активность и применение альгинатов - полисахаридов бурых водорослей // Биология моря. 2001, Т.22. №3. С.151-162).Due to its unique physicochemical properties and good binding abilities, sodium alginate is widely used in preventive and clinical medicine and biotechnology (L.K. Dobrodeeva, V.P. Belozerov, N.I. Kondakov, N.V. Tsimbalenko, L.P. . Shilina, KG Dobrodeev. Food additives of algal origin for the prevention and treatment of immunodeficiency states. Arkhangelsk, 1996. 12 p .; Yu.S. Ovodov. Selected chapters of bioorganic chemistry. // Syktyvkar, Syktyvkar un-t. 1998, 222 s; Yu.S. Khotimchenko, V.V. Kovalev, O.V. Savchenko, O.A. Ziganshina. nomic properties, physiological activity and the use of alginates - polysaccharides of brown algae // Marine Biology 2001 №3 S.151-162 T.22)....

Альгинат натрия в составе среды выполняет две функции.Sodium alginate in the composition of the medium has two functions.

Первая связана с его способностью увеличивать вязкость раствора. Это необходимо потому, что, как правило, сперма, разведенная средой, имеет вязкость меньше, чем нативная и при искусственном осеменении часть ее вытекает наружу, что снижает эффективность оплодотворения.The first is due to its ability to increase the viscosity of the solution. This is necessary because, as a rule, sperm diluted with medium has a viscosity lower than native, and during artificial insemination part of it flows out, which reduces the effectiveness of fertilization.

Вторая функция - реконструктивная.The second function is reconstructive.

Альгинат натрия в слабоконцентрированных растворах существует в виде агрегатов разных размеров. Установлено тримодальное распределение по размерам частиц в диапазоне концентраций 10-6-10-5 г/дл, что указывает на присутствие трех групп частиц с размерами гидродинамических радиусов (ГДР), укладывающихся в интервалы: R1=2-4 нм (отдельные молекулы альгината натрия); R2=20-60 нм и R3=130-370 нм (ассоциаты макромолекул). Выше концентрации 10-5 г/дл наблюдается двумодальное распределение, и в растворе присутствуют частицы групп R2 и R3. Количество частиц второй группы резко увеличивается до концентрации раствора альгината натрия равной 5·10-4 г/дл. Количество частиц третьей группы увеличивается постепенно и при концентрации раствора альгината натрия равной 2·10-3 г/дл наступает равновесие в системе, где присутствуют частицы только второй и третьей группы, процентное содержание в растворе которых составляет 70-90% и 30-10% соответственно (И.А.Оберюхтина, К.Г.Боголицын, Н.Р.Попова, Л.Н.Парфенова. Применение метода лазерной корреляционной спектроскопии в исследовании гидродинамических свойств разбавленных растворов альгината натрия. Всероссийская конференция «Химия и технология растительных веществ», устный доклад, Казань, 24-27 июня 2002 г).Sodium alginate in weakly concentrated solutions exists in the form of aggregates of different sizes. A trimodal distribution of particle sizes in the concentration range of 10 -6 -10 -5 g / dl was established, which indicates the presence of three groups of particles with sizes of hydrodynamic radii (GDR) falling within the intervals: R 1 = 2-4 nm (individual alginate molecules sodium); R 2 = 20-60 nm and R 3 = 130-370 nm (associates of macromolecules). Above a concentration of 10 −5 g / dl, a two-modal distribution is observed, and particles of groups R 2 and R 3 are present in the solution. The number of particles of the second group increases sharply to a concentration of sodium alginate solution equal to 5 · 10 -4 g / DL. The number of particles of the third group increases gradually and at a concentration of sodium alginate solution equal to 2 · 10 -3 g / dl, equilibrium occurs in a system where only particles of the second and third groups are present, the percentage in the solution of which is 70-90% and 30-10% respectively (I.A. Oberyukhtina, K.G. Bogolitsyn, N.R. Popova, L.N. Parfenova. Application of laser correlation spectroscopy in the study of the hydrodynamic properties of dilute solutions of sodium alginate. All-Russian conference "Chemistry and Plant Technology substances ”, oral report, Kazan, June 24-27, 2002).

Одной из основных причин снижения оплодотворяющей способности в процессе криоконсервации и дефростации является повреждение наружной протоплазматической оболочки головки спермиев, разрушение акросомы, а также значительные потери аминокислот липопротеидов и повреждение ферментных систем (Н.А.Желтобрюх, 1973, Д.Т.Данов и соавт., 1984; P.Watson, 1975; H.Wiggin, J.Almguist, 1975; M.Mollova, 1980).One of the main reasons for the decrease in fertilizing ability during cryopreservation and defrostation is damage to the outer protoplasmic membrane of the sperm head, destruction of the acrosome, as well as significant loss of amino acids of lipoproteins and damage to enzyme systems (N.A. Zheltobryukh, 1973, D.T. Danov et al. , 1984; P. Watson, 1975; H. Wiggin, J. Almguist, 1975; M. Mollova, 1980).

Идея заключается в том, что макромолекулы альгината натрия, обладая полиэлектролитным эффектом будут «заклеивать» повреждения в мембране спермия, предупреждая «вытекание» ферментов, в частности, гиалуронидазы и составляющих веществ, и, кроме того, предотвращать образование конгломератов, что наблюдается у спермиев с поврежденной оболочкой в результате нарушения действия сил электростатического отталкивания.The idea is that sodium alginate macromolecules, having a polyelectrolyte effect, will “seal” damage to the sperm membrane, preventing the “leakage” of enzymes, in particular hyaluronidase and constituent substances, and, in addition, to prevent the formation of conglomerates, which is observed in sperm with damaged shell as a result of disruption of electrostatic repulsion forces.

Осуществление изобретенияThe implementation of the invention

Примеры конкретного выполнения получения среды для криоконсервации спермы козлов.Examples of specific performance of obtaining medium for cryopreservation of goat sperm.

Примеры 1-16 сведены в таблицы 1-6.Examples 1-16 are summarized in tables 1-6.

Подбор оптимальных концентраций осуществляли с учетом изменения рН и осмотического давления разбавителя.The selection of optimal concentrations was carried out taking into account changes in pH and osmotic pressure of the diluent.

Среды готовили при следующем соотношении компонентов (табл.1, 2):The media were prepared in the following ratio of components (table 1, 2):

Таблица 1Table 1 Рецепты экспериментальных средRecipes of experimental environments КомпонентыComponents Желточно-трис-глюкозный разбавительYolk-Tris Glucose Diluent Пример 1Example 1 Пример 2Example 2 Пример 3Example 3 Пример 4Example 4 Пример 5Example 5 Пример 6Example 6 Пример 7Example 7 Пример 8Example 8 Фруктоза кристаллическаяCrystalline fructose -- -- -- -- -- -- -- -- Глюкоза кристаллическаяCrystalline glucose 0,6670.667 0,6670.667 0,6670.667 0,6670.667 0,6670.667 0,6000,600 0,6000,600 0,7340.734 0,7340.734 Трис-(гидроксиметил)-аминометанTris (hydroxymethyl) aminomethane 4,0394,039 4,0394,039 4,0394,039 4,0394,039 4,0394,039 3,6353,635 3,6353,635 4,4424,442 4,4424,442 Лимонная кислота 1-воднаяCitric acid 1-aqueous 2,3162,316 2,2002,200 2,0842,084 1,8531,853 1,1581,158 1,9221,922 1,8871,887 2,2802,280 2,2352,235 Янтарная кислотаsuccinic acid -- 0,1160.116 0,2320.232 0,4630.463 1,1581,158 0,1620.162 0,1970.197 0,2670.267 0,3020.302 ГлицеринGlycerol 5,3005,300 5,5005,500 5,5005,500 5,5005,500 5,5005,500 5,0005,000 5,0005,000 6,0006,000 6,0006,000 Желток куриныйChicken Yolk 2,6002,600 2,5002,500 2,5002,500 2,5002,500 2,5002,500 3,0003,000 3,0003,000 2,5002,500 2,5002,500 Вода дистиллированнаяDistilled water остальноеrest

Таблица 2table 2 Рецепты экспериментальных сред (продолжение)Recipes of experimental environments (continued) КомпонентыComponents Пример 9Example 9 Пример 10Example 10 Пример 11Example 11 Пример 12Example 12 Пример 13Example 13 Пример 14Example 14 Пример 15Example 15 Пример 16Example 16 Глюкоза кристаллическаяCrystalline glucose 0,6000,600 0,6000,600 0,6000,600 0,6000,600 0,6670.667 0,6670.667 0,6670.667 0,6670.667 Трис-(гидроксиметил)-аминометанTris (hydroxymethyl) aminomethane 3,6353,635 3,6353,635 3,6353,635 3,6353,635 4,0394,039 4,0394,039 4,0394,039 4,0394,039 Лимонная кислота 1-воднаяCitric acid 1-aqueous 1,8871,887 1,8871,887 1,8871,887 1,8871,887 2,0842,084 2,0842,084 2,0842,084 2,0842,084 Янтарная кислотаsuccinic acid 0,1970.197 0,1970.197 0,1970.197 0,1970.197 0,2320.232 0,2320.232 0,2320.232 0,2320.232 Альгинат натрияSodium Alginate 0,0100.010 0,0200,020 0,0400,040 0,0800,080 0,0100.010 0,0200,020 0,0400,040 0,0800,080 ГлицеринGlycerol 5,0005,000 5,0005,000 5,0005,000 5,0005,000 5,5005,500 5,5005,500 5,5005,500 5,5005,500 Желток куриныйChicken Yolk 3,0003,000 3,0003,000 3,0003,000 2,0002,000 2,5002,500 2,5002,500 2,5002,500 2,5002,500 Вода дистиллированнаяDistilled water остальноеrest

Для определения эффективности и оптимального соотношения ингредиентов экспериментальной среды была проведена серия опытов.To determine the effectiveness and the optimal ratio of the ingredients of the experimental medium, a series of experiments was carried out.

Сперму (все сравнительные опыты проведены на смешанных эякулятах) разбавляют испытуемыми синтетическими средами в соотношении 1:3. В качестве контрольной среды берут прототип - желточно-трис-фруктозный разбавитель. Разбавленную сперму разливают в стеклянные флаконы и помещают в холодильную камеру при температуре 0…+3°C на 3 часа для эквилибрации, затем замораживают в жидком азоте (при -196°C) по общепринятой методике (Инструкция по технологии работы организаций по искусственному осеменению и трансплантации эмбрионов сельскохозяйственных животных, 2000). Оттаивают сперму в специальном оттаивателе, в соответствии с той же инструкцией. Для определения выживаемости спермиев производят оценку по подвижности в баллах. Сперму оценивают на подвижность по десятибалльной шкале после дополнительного разбавления в отношении 1:2 изотоническим раствором лимоннокислого натрия (3,1%), для чего каплю исследуемой спермы рассматривают под микроскопом при температуре +38°C.Sperm (all comparative experiments were carried out on mixed ejaculates) are diluted with test synthetic media in a ratio of 1: 3. As a control medium take a prototype - vitelline-tris-fructose diluent. Diluted sperm is poured into glass vials and placed in a refrigerator at 0 ... + 3 ° C for 3 hours for equilibration, then frozen in liquid nitrogen (at -196 ° C) according to the generally accepted method (Instructions for the technology of work of organizations for artificial insemination and transplantation of embryos of farm animals, 2000). Thaw semen in a special thawer, in accordance with the same instruction. To determine the survival of sperm, an assessment is made of mobility in points. Sperm is evaluated for motility on a ten-point scale after additional dilution in a 1: 2 ratio with isotonic sodium citrate solution (3.1%), for which a drop of the studied sperm is examined under a microscope at a temperature of + 38 ° C.

По результатам первой серии экспериментов (табл.3), наилучшей оказалась среда с янтарной кислотой (пример 2) (табл.1).According to the results of the first series of experiments (Table 3), the best was the medium with succinic acid (Example 2) (Table 1).

Таблица 3Table 3 Подвижность спермиев при разбавлении экспериментальной средой с янтарной кислотой (эксперимент 1)Sperm motility upon dilution with an experimental medium with succinic acid (experiment 1) Подвижность спермы, баллыSperm motility, points Желточно-трис-глюкозный разбавительYolk-Tris Glucose Diluent Экспериментальная среда (n=5)The experimental environment (n = 5) пример 1example 1 пример 2example 2 пример 3example 3 пример 4example 4 До разбавленияBefore dilution 8,84±0,228.84 ± 0.22 8,84±0,228.84 ± 0.22 8,84±0,228.84 ± 0.22 8,84±0,228.84 ± 0.22 8,84±0,228.84 ± 0.22 Сразу после разбавленияImmediately after dilution 8,54±0,218.54 ± 0.21 8,61±0,238.61 ± 0.23 9,12±0,189.12 ± 0.18 9,04±0,229.04 ± 0.22 7,43±0,237.43 ± 0.23 Через 3 ч эквилибрацииAfter 3 hours of balancing 7,64±0,187.64 ± 0.18 7,95±0,277.95 ± 0.27 8,51±0,25 8.51 ± 0.25 6,75±0,276.75 ± 0.27 3,51±0,24 3.51 ± 0.24 Сразу после замораживания-оттаиванияImmediately after freezing-thawing 4,16±0,224.16 ± 0.22 4,27±0,274.27 ± 0.27 5,05±0,25 5.05 ± 0.25 3,16±0,263.16 ± 0.26 едunits Через 2 ч после оттаивания2 hours after thawing 3,85±0,253.85 ± 0.25 3,90±0,293.90 ± 0.29 4,13±0,184.13 ± 0.18 едunits нn

Примечание: выделены показатели с Р<0,05 относительно желточно-трис-глюкозного разбавителяNote: indicators with P <0.05 relative to vitelline-glucose diluent are highlighted

В таблице 4 представлены результаты эксперимента 2 по определению оптимального содержания янтарной кислоты и соотношения компонентов.Table 4 presents the results of experiment 2 to determine the optimal succinic acid content and component ratio.

Таблица 4Table 4 Подвижность спермиев при разбавлении экспериментальной средой с янтарной кислотой (эксперимент 2)Sperm motility upon dilution with an experimental medium with succinic acid (experiment 2) Подвижность спермы, баллыSperm motility, points Экспериментальная среда (n=5)The experimental environment (n = 5) Пример 5Example 5 Пример 6Example 6 Пример 2Example 2 Пример 7Example 7 Пример 8Example 8 До разбавленияBefore dilution 8,75±0,258.75 ± 0.25 8,75±0,25 8.75 ± 0.25 8,75±0,25 8.75 ± 0.25 8,75±0,258.75 ± 0.25 8,75±0,258.75 ± 0.25 Сразу после разбавленияImmediately after dilution 8,38±0,258.38 ± 0.25 8,96±0,26 8.96 ± 0.26 9,09±0,21 9.09 ± 0.21 9,13±0,239.13 ± 0.23 8,86±0,128.86 ± 0.12 Через 3 ч эквилибрацииAfter 3 hours of balancing 7,78±0,177.78 ± 0.17 8,30±0,22 8.30 ± 0.22 8,45±0,23 8.45 ± 0.23 8,02±0,188.02 ± 0.18 7,03±0,277.03 ± 0.27 Сразу после замораживания-оттаиванияImmediately after freezing-thawing 4,32±0,194.32 ± 0.19 4,98±0,25 4.98 ± 0.25 5,10±0,19 5.10 ± 0.19 4,68±0,184.68 ± 0.18 3,74±0,363.74 ± 0.36 Через 2 ч после оттаивания2 hours after thawing 4,00±0,254.00 ± 0.25 4,10±0,22 4.10 ± 0.22 4,16±0,21 4.16 ± 0.21 3,77±0,163.77 ± 0.16 1,85±0,311.85 ± 0.31

При разбавлении спермы этими средами (примеры 2 и 6), подвижность спермиев незначительно увеличивается, затем, через 3 ч эквилибрации, снижается на 3,4-5,1%, тогда как в желточно-трис-глюкозном разбавителе - на 13,6%. Сразу после замораживания-оттаивания активными остаются 56,9-58,3% спермиев, тогда как в желточно-трис-глюкозном разбавителе - 47,1%. Через 2 часа после оттаивания при сохранении спермы при 38°C активными остаются 46,7-47,5% спермиев, в желточно-трис-глюкозном разбавителе же - 43,6%.When sperm is diluted with these media (examples 2 and 6), sperm motility slightly increases, then, after 3 hours of equilibration, it decreases by 3.4-5.1%, while in the yolk-tris-glucose diluent - by 13.6% . Immediately after freezing-thawing, 56.9-58.3% of sperm remain active, while in vitelline-tris-glucose diluent - 47.1%. 2 hours after thawing while maintaining semen at 38 ° C, 46.7-47.5% of sperm remain active, while in vitelline-tris-glucose diluent, 43.6% remain.

Примеры 5, 7 и 8 оказались менее эффективны.Examples 5, 7 and 8 were less effective.

Figure 00000001
Figure 00000001

После добавления в среду альгината натрия наилучшими (по подвижности спермиев) оказались примеры 10, 11, 14 и 15 (табл.5). При этом подвижность спермиев сразу после замораживания-оттаивания выше на 34,4-39,1%, чем в желточно-трис-глюкозном разбавителе, и на 12,5-17,2-%, чем в примерах 2 и 6. Подвижность спермиев через 2 ч после оттаивания была выше на 42,3-47,1%, чем в желточно-трис-глюкозном разбавителе, и на 30,6-36,3%), чем в примерах 2 и 6.After sodium alginate was added to the medium, the best (by sperm motility) were Examples 10, 11, 14, and 15 (Table 5). The mobility of sperm immediately after freezing and thawing is higher by 34.4-39.1% than in the vitelline-tris-glucose diluent, and 12.5-17.2-% than in examples 2 and 6. Sperm motility 2 hours after thawing, it was higher by 42.3-47.1% than in the yolk-tris-glucose diluent, and by 30.6-36.3%) than in examples 2 and 6.

По результатам экспериментов сперма, сохраняемая в испытуемых (примеры 10, 11, 14, 15) и в желточно-трис-глюкозном разбавителе, была подвергнута акроскопической оценке по методике И.И.Соколовской с соавт. (1981).According to the results of the experiments, the sperm stored in the subjects (examples 10, 11, 14, 15) and in the yolk-tris-glucose diluent was subjected to acroscopic evaluation according to the method of I.I.Sokolovskaya et al. (1981).

Для иммобилизации спермиев перед исследованием используют 1% водный раствор фтористого натрия. Каплю подготовленной к использованию спермы наносят на предметное стекло, накрывают покровным стеклом. Избыток влаги удаляют фильтрованной бумагой. При этом спермии в остающемся слое жидкости располагались свободно, в один слой. Края покровного стекла обрабатывают вазелином, чтобы в процессе просматривания не происходило высыхания препарата. Просмотр проводят в оптическом микроскопе при увеличении ×400-500, используя конденсор темного поля ОИ-10 или ОИ-13. В каждом препарате подсчитывают 200 спермиев, отдельно регистрируя неподвижные спермии и спермии с поврежденными акросомами (включая полное отсутствие акросом).Before immobilization, a 1% aqueous solution of sodium fluoride is used to immobilize sperm. A drop of sperm prepared for use is applied to a glass slide, covered with a coverslip. Excess moisture is removed with filtered paper. In this case, sperm in the remaining fluid layer were located freely, in one layer. The edges of the coverslip are treated with petroleum jelly so that the drug does not dry out during viewing. Viewing is carried out in an optical microscope at a magnification of × 400-500 using a dark field capacitor OI-10 or OI-13. In each preparation, 200 sperm are counted, separately recording immobile sperm and sperm with damaged acrosomes (including the complete absence of acrosome).

Характер и степень структурных повреждений оценивают следующим образом. У неповрежденных спермиев четко просматривается ярко светящийся контур головки и жгутиков. Среди остальных спермиев различают 4 категории их неполноценности:The nature and extent of structural damage is evaluated as follows. In intact sperm, the brightly glowing contour of the head and flagella is clearly visible. Among the remaining sperm, there are 4 categories of their inferiority:

- I категория - общее разбухание акросомы, что выражено тусклыми ее контурами;- I category - general swelling of the acrosome, which is expressed by its dull contours;

- II категория - начало отслоения акросомы - отсутствие свечения в области экваториального сегмента;- Category II - the beginning of the detachment of the acrosome - the absence of glow in the region of the equatorial segment;

- III категория - потеря акросомы, когда видны только задний ядерный колпачок и жгутики;- Category III - loss of acrosome when only the posterior nuclear cap and flagella are visible;

- IV категория - полная утеря головки, виден только жгутик.

Figure 00000002
- IV category - complete loss of head, only flagellum visible.
Figure 00000002

Как видно из таблицы 6, при криоконсервации спермы в желточно-трис-глюкозном разбавителе было 82% спермиев с повреждениями акросомы, при этом 36% с отслоением и полной потерей акросомы. После 2 часов сохранения оттаянной спермы при 38°C количество поврежденных спермиев увеличилось до 86%, при 38% с отслоением и полной потерей акросомы.As can be seen from table 6, when cryopreservation of sperm in the yolk-Tris-glucose diluent was 82% of sperm with damage to the acrosome, while 36% with exfoliation and complete loss of acrosome. After 2 hours of preservation of thawed sperm at 38 ° C, the number of damaged sperm increased to 86%, at 38% with exfoliation and complete loss of acrosome.

При криоконсервации спермы в экспериментальной среде (примеры 10, 11, 14, 15) спермиев с повреждениями акросомы было на 13-15% меньше сразу после оттаивания и на 14-17% меньше через 2 ч после оттаивания.When cryopreservation of sperm in an experimental medium (examples 10, 11, 14, 15) of sperm with damaged acrosome was 13-15% less immediately after thawing and 14-17% less 2 hours after thawing.

Испытание средыEnvironmental test

Биологическая полноценность спермы после криоконсервации в различных средах проверялась в научно-производственном опыте на клинически здоровых козах зааненской породы, подобранных по принципу аналогов.The biological usefulness of sperm after cryopreservation in various environments was tested in a scientific and production experiment on clinically healthy goats of the Saanen breed, selected on the basis of analogues.

Цель эксперимента состоит в том, чтобы установить качество новой среды для криоконсервации спермы козлов в сравнении с существующими.The purpose of the experiment is to establish the quality of a new environment for cryopreservation of goat sperm in comparison with existing ones.

Сперму получают в искусственную вагину, исследуют по «Инструкции по технологии работы организаций по искусственному осеменению и трансплантации эмбрионов сельскохозяйственных животных» (2000).Sperm is obtained in an artificial vagina, examined according to the “Instructions on the technology of organizations for artificial insemination and transplantation of farm animal embryos” (2000).

Для разбавления спермы были взяты: глюкозо-цитратно-желточный разбавитель для овец, рекомендованный «Инструкцией по технологии работы организаций по искусственному осеменению и трансплантации эмбрионов сельскохозяйственных животных» (2000), молочный разбавитель для козлов (Франция), желточно-трис-глюкозный разбавитель для козлов (Австралия) и экспериментальная среда. Сперму разбавляют в соотношении 1:3.For dilution of sperm were taken: glucose-citrate-yolk diluent for sheep, recommended by the "Instructions on the technology of organizations for artificial insemination and transplantation of farm animal embryos" (2000), milk diluent for goats (France), vitelline-glucose diluent for Goats (Australia) and experimental environment. Sperm is diluted in a ratio of 1: 3.

Проводят искусственное осеменение в шейку матки дважды в течение половой охоты с интервалом 12 ч в дозе 0,2 мл/гол.Artificial insemination is carried out in the cervix twice during sexual hunting with an interval of 12 hours at a dose of 0.2 ml / goal.

По результатам козления проводят учет оплодотворяемости и плодовитости.According to the results of the goat, fertility and fertility are recorded.

Из эксперимента выяснено, что оплодотворяемость коз при осеменении криоконсервированной спермой, разбавленной экспериментальной средой, выше на 28-12%, чем при осеменении спермой, разбавленной существующими средами. Плодовитость при этом выше 6,7-15,0% соответственно.From the experiment it was found that the fertility of goats during insemination with cryopreserved sperm diluted with experimental medium is higher by 28-12% than with insemination with sperm diluted with existing media. Fertility is above 6.7-15.0%, respectively.

Таблица 7Table 7 Результаты осеменения коз криоконсервированной спермойResults of insemination of goats with cryopreserved sperm РазбавительDiluent Осеменено коз, гол.Inseminated goats goal. Из них окозлилось, гол.Of them, the goal was pissed off. Оплодотворяемость, %Fertility,% Получено козлят, гол.Received kids, goal. ПлодовитостьFertility Глюкозо-цитратно-желточныйGlucose-citrate-vitelline 2525 11eleven 44,044.0 14fourteen 127,3127.3 МолочныйLactic 2525 88 32,032,0 1010 125,0125.0 Желточно-трис-глюкозныйVitelline Tris Glucose 2525 1212 48,048.0 1616 133,3133.3 Экспериментальная средаExperimental environment 2525 15fifteen 60,060.0 2121 140,0140.0

Таким образом, из эксперимента следует, что заявляемое изобретение по сравнению с прототипом и другими известными техническими решениями обладает рядом преимуществ.Thus, from the experiment it follows that the claimed invention in comparison with the prototype and other known technical solutions has several advantages.

1. Применение среды повышает защитные свойства спермы при замораживании (Т=-196°C) и способствует сохранению оплодотворяющей способности спермы после оттаивания.1. The use of the medium increases the protective properties of sperm during freezing (T = -196 ° C) and helps to maintain the fertilizing ability of sperm after thawing.

2. Учитываются видовые особенности животных, для которых среда предназначена.2. The species characteristics of animals for which the medium is intended are taken into account.

3. Среда проста по составу и технологична в приготовлении.3. The environment is simple in composition and technological in preparation.

4. Среда не требует использования дорогостоящих препаратов.4. The environment does not require the use of expensive drugs.

Claims (1)

Среда для криоконсервации спермы козлов, включающая глюкозу кристаллическую, трис-(гидроксиметил)-аминометан, лимонную кислоту 1-водную, желток куриный, глицерин, воду дистиллированную, отличающаяся тем, что она дополнительно содержит янтарную кислоту и альгинат натрия при следующем соотношении компонентов, мас.%:
Глюкоза кристаллическая 0,600-0,667 Трис-(гидроксиметил)-аминометан 3,635-4,039 Лимонная кислота 1-водная 1,887-2,084 Янтарная кислота 0,197-0,232 Альгинат натрия 0,020-0,040 Глицерин 5,000-5,500 Желток куриный 2,500-3,000 Вода дистиллированная Остальное
Goat sperm cryopreservation medium, including crystalline glucose, tris- (hydroxymethyl) aminomethane, citric acid 1-water, chicken yolk, glycerin, distilled water, characterized in that it additionally contains succinic acid and sodium alginate in the following ratio of components, wt .%:
Crystalline glucose 0.600-0.667 Tris (hydroxymethyl) aminomethane 3,635-4,039 Citric Acid 1-Aqueous 1,887-2,084 succinic acid 0.197-0.232 Sodium Alginate 0,020-0,040 Glycerol 5,000-5,500 Chicken Yolk 2,500-3,000 Distilled water Rest
RU2010118373/13A 2010-05-06 2010-05-06 Medium for cryopreservation of goat sperm RU2436299C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010118373/13A RU2436299C1 (en) 2010-05-06 2010-05-06 Medium for cryopreservation of goat sperm

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010118373/13A RU2436299C1 (en) 2010-05-06 2010-05-06 Medium for cryopreservation of goat sperm

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2436299C1 true RU2436299C1 (en) 2011-12-20

Family

ID=45404044

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2010118373/13A RU2436299C1 (en) 2010-05-06 2010-05-06 Medium for cryopreservation of goat sperm

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2436299C1 (en)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2517848C1 (en) * 2012-11-09 2014-06-10 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт птицеводства Россельхозакадемии (ГНУ ВНИТИП Россельхозакадемии) Method of cryoconservation of rooster semen
WO2015027354A2 (en) 2013-08-29 2015-03-05 Universidad Austral De Chile Method for the cooling and cryopreservation of horse semen and diluents used in said method
CN115251042A (en) * 2022-09-08 2022-11-01 安徽科技学院 Poultry semen dilution buffer solution, preparation method thereof and poultry semen cold storage method
CN115500346A (en) * 2022-10-11 2022-12-23 甘肃省家畜繁育改良管理站 Preparation method of bovine semen diluent
CN117965432A (en) * 2024-03-29 2024-05-03 内蒙古大学 Through NAD+Method for improving activity of separated bovine sperm

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
EVANS, W.M.C. Maxwell Salamon's Artificial Incemination of Sheep and Goats. - Sedney: Butterworth, 1987. *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2517848C1 (en) * 2012-11-09 2014-06-10 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт птицеводства Россельхозакадемии (ГНУ ВНИТИП Россельхозакадемии) Method of cryoconservation of rooster semen
WO2015027354A2 (en) 2013-08-29 2015-03-05 Universidad Austral De Chile Method for the cooling and cryopreservation of horse semen and diluents used in said method
CN115251042A (en) * 2022-09-08 2022-11-01 安徽科技学院 Poultry semen dilution buffer solution, preparation method thereof and poultry semen cold storage method
CN115251042B (en) * 2022-09-08 2023-06-02 安徽科技学院 Poultry semen dilution buffer solution and preparation method thereof and poultry semen cooling method
CN115500346A (en) * 2022-10-11 2022-12-23 甘肃省家畜繁育改良管理站 Preparation method of bovine semen diluent
CN117965432A (en) * 2024-03-29 2024-05-03 内蒙古大学 Through NAD+Method for improving activity of separated bovine sperm

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Andrabi Factors affecting the quality of cryopreserved buffalo (Bubalus bubalis) bull spermatozoa
Juyena et al. Seminal plasma: an essential attribute to spermatozoa
JP5069280B2 (en) Methods and compositions for improving survival and function of germ cells and embryos
Lotfi et al. Hyaluronic acid improves frozen-thawed sperm quality and fertility potential in rooster
RU2436299C1 (en) Medium for cryopreservation of goat sperm
Forouzanfar et al. Can permeable super oxide dismutase mimetic agents improve the quality of frozen–thawed ram semen?
Iaffaldano et al. Cryopreservation of rabbit semen using non-permeable cryoprotectants: effectiveness of different concentrations of low-density lipoproteins (LDL) from egg yolk versus egg yolk or sucrose
US8202558B2 (en) Reproductive cell function preservation system
Yusoff et al. Effect of seminal plasma removal, washing solutions, and centrifugation regimes on Boer goat semen cryopreservation
EP2651424B1 (en) Reproductive cell maintenance system
Abe et al. Artificial insemination with canine spermatozoa frozen in a skim milk/glucose-based extender
EP2639298B1 (en) The method for preparing human semen for in vitro fertilization or for artificial insemination
Daramola et al. Effects of pyridoxine supplementation or in combination with other antioxidants on motility, in vitro capacitation and acrosome reaction of goat buck spermatozoa during cryopreservation
Talukdar et al. Cryopreservation induces capacitation-like changes of the swamp buffalo spermatozoa
RU2323701C2 (en) Synthetic medium for bull sperm freezing
Zaenuri et al. Effects of additional crude extract of fig fruit (Ficus carica L) into Tris egg yolk based extender on quality of buck semen
US20030077566A1 (en) Method for cryopreserving mammalian cells and tissues
RU2323702C2 (en) Synthetic medium for ram sperm dilution and cryopreservation
CN100383237C (en) Low-temp freezing method for storing sperm of gayal
Stelletta et al. Use of biochemical and protein profiles of seminal plasma to prediction of semen quality and fertility in stallions
Diwan et al. Studies on cryogenic preservation of sperm of certain cultivable marine fishes
CN110882250B (en) Application of Scriptaid in preparation of medicine, reagent and apparatus for treating asthenospermia
Isnaini et al. The Quality of Cryopreserved Semen of Local Chickens Treated with Ringer’s Lactate-Egg Yolk Extender Supplemented with Glycine and Glucose
Singh et al. Effect of graphene oxide as cryoprotectant on post-thaw sperm functional and kinetic parameters of cross bred (HF X Sahiwal) and Murrah buffalo (Bubalus bubalis) bulls
SU698617A1 (en) Synthetic medium for freezing and storing ram sperm

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20120507