RU2425371C1 - Method of laboratory detection of consequences of perinatal central nervous system affections and severity determination in children - Google Patents
Method of laboratory detection of consequences of perinatal central nervous system affections and severity determination in children Download PDFInfo
- Publication number
- RU2425371C1 RU2425371C1 RU2010104191/15A RU2010104191A RU2425371C1 RU 2425371 C1 RU2425371 C1 RU 2425371C1 RU 2010104191/15 A RU2010104191/15 A RU 2010104191/15A RU 2010104191 A RU2010104191 A RU 2010104191A RU 2425371 C1 RU2425371 C1 RU 2425371C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- activity
- aat1
- aat2
- destructive process
- severity
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Область техники: медицина, биотехнология, иммунология, детская неврология, психиатрия.Field of technology: medicine, biotechnology, immunology, pediatric neurology, psychiatry.
Уровень техникиState of the art
Проблема своевременного выявления перинатальных поражений нервной системы (ППНС) и их последствий чрезвычайно актуальна в связи с их широкой распространенностью, высоким риском неблагоприятных последствий (церебральные параличи, умственная отсталость, стойкие сенсорные дефекты, вегетовисцеральные нарушения и т.д.) и декомпенсацией в последующие этапы жизни, в том числе и у детей с минимальными мозговыми дисфункциями. Это означает, что индуцированный ППНС деструктивный процесс может продолжаться и в последующие месяцы/годы.The problem of timely detection of perinatal lesions of the nervous system (PPS) and their consequences is extremely urgent due to their widespread prevalence, high risk of adverse effects (cerebral palsy, mental retardation, persistent sensory defects, vegetovisceral disturbances, etc.) and decompensation in subsequent stages life, including in children with minimal cerebral dysfunctions. This means that the PPNS-induced destructive process can continue in the following months / years.
Использование клинического (невролого-психологического) метода для диагностики ППНС и/или их последствий часто связано с определенными трудностями, в связи с тем, что на первом году жизни эти нарушения проявляются лишь в виде неспецифических симптомокомплексов (повышенная нервно-рефлекторная возбудимость, нарушения мышечного тонуса, нарушение темпов психомоторного развития). Вместе с тем, чрезвычайно важна ранняя диагностика этих состояний для своевременного начала реабилитационных мероприятий на этапах максимальной пластичности нервной системы.The use of the clinical (neuro-psychological) method for the diagnosis of PPNS and / or their consequences is often associated with certain difficulties, due to the fact that in the first year of life these disorders appear only in the form of nonspecific symptom complexes (increased neuro-reflex irritability, muscle tone disorders , violation of the pace of psychomotor development). At the same time, early diagnosis of these conditions is extremely important for the timely start of rehabilitation measures at the stages of maximum plasticity of the nervous system.
Современные представления о существовании тесных взаимосвязей между нервной и иммунной системами предполагают вовлеченность иммунных механизмов в формирование патологии нервной системы, в том числе ППНС и их последствий, что подтверждено многочисленными исследованиями.Modern ideas about the existence of close relationships between the nervous and immune systems suggest the involvement of immune mechanisms in the formation of the pathology of the nervous system, including PPNS and their consequences, which is confirmed by numerous studies.
Известно, что одним из основных этиопатогенетических факторов подавляющего большинства ППНС является ишемия, запускающая ряд нейровоспалительных реакций, включающих активацию микроглии, повышенный синтез провоспалительных цитокинов, специфических молекул адгезии и хемотаксических факторов, а также скопление на эндотелии сосудов гематоэнцефалического барьера (ГЭБ) активированных макрофагов из кровяного русла, вазоактивных веществ. Следствием этого является нарушение проницаемости ГЭБ и выход в кровяное русло нейроантигенов. Вышедшие в кровяное русло нейроантигены связываются с соответствующими аутоантителами (аАТ) из пула физиологических регуляторных аутоантител и, в ряде случаев, активируют соответствующие клоны В-лимфоцитов, продуцирующие специфические аАТ. Изменение уровня аАТ к нейроантигенгам является одним из маркеров нарушения развития и функционирования нервной системы. Определение уровня аАТ к нейроантигенам было предложено ранее определения степени риска развития нервно-психических заболеваний (патент РФ № 2218569 на «Способ выявления групп риска развития нервно-психических заболеваний»; авторы Морозов С.Г., Гнеденко Б.Б., Полещук В.В., Клюшник Т.П. и др.).It is known that one of the main etiopathogenetic factors of the vast majority of PPNS is ischemia, which triggers a number of neuroinflammatory reactions, including activation of microglia, increased synthesis of pro-inflammatory cytokines, specific adhesion molecules and chemotactic factors, as well as an accumulation of the blood-brain barrier (BBB) from the active poppy on the endothelium (BBB) channels, vasoactive substances. The consequence of this is a violation of the BBB permeability and the release of neuroantigens into the bloodstream. The neuroantigens that enter the bloodstream bind to the corresponding autoantibodies (aAT) from the pool of physiological regulatory autoantibodies and, in some cases, activate the corresponding clones of B-lymphocytes producing specific aAT. Changes in the level of aAT to neuroantigens is one of the markers of impaired development and functioning of the nervous system. Determining the level of aAT to neuroantigens was previously proposed to determine the degree of risk of developing neuropsychiatric diseases (RF patent No. 2218569 on "A method for identifying risk groups for the development of neuropsychiatric diseases"; authors Morozov SG, Gnedenko BB, Poleshchuk V. V., Klyushnik T.P. et al.).
Однако необходимо иметь ввиду, что повышенный синтез аАТ к антигенам нервной ткани - это специфическая реакция иммунитета на деструктивный процесс в ткани мозга. Эта реакция является отставленной по времени, а время полужизни молекул иммуноглобулинов в крови составляет 24-32 дня, поэтому определение аАТ в крови не может быть использовано для мониторинга состояния нервной системы ребенка в короткие интервалы времени (2-3 недели). Кроме того, моногочисленные клинико-иммунологические исследования свидетельствуют о том, что аутоиммунный компонент характерен лишь для наиболее тяжелых поражений нервной системы.However, it must be borne in mind that increased synthesis of aAT to antigens of nervous tissue is a specific reaction of the immune system to the destructive process in brain tissue. This reaction is delayed in time, and the half-life of immunoglobulin molecules in the blood is 24-32 days, therefore, the determination of aAT in the blood cannot be used to monitor the state of the child’s nervous system in short time intervals (2-3 weeks). In addition, numerous clinical and immunological studies suggest that the autoimmune component is characteristic only of the most severe lesions of the nervous system.
Наиболее ранней и неспецифической реакцией на какое-либо тканевое повреждение является активация врожденного неспецифического иммунитета. Филогенетически более древний врожденный иммунитет выступает как первая линия обороны на пути чужеродного агента. В основе его действия - воспаление и фагоцитоз.The earliest and nonspecific reaction to any tissue damage is the activation of innate nonspecific immunity. Phylogenetically more ancient innate immunity acts as the first line of defense on the path of a foreign agent. At the heart of its action is inflammation and phagocytosis.
Клеточное звено врожденного иммунитета представлено моноцитами/макрофагами, гранулоцитами, дендритными клетками и натуральными киллерными клетками. Гуморальное звено включает в себя калликреин-кининовую систему, белки острой фазы воспаления, лизоцим, маннансвязывающий лектин. Активированные нейтрофилы секретируют в кровь протеолитический фермент - лейкоцитарную эластазу (ЛЭ). Попадая во внеклеточное пространство, лейкоцитарная эластаза расщепляет основное вещество, эластиновые и коллагеновые волокна сосудистых базальных мембран, выступая в ряде случаев в качестве мощного деструктивного фактора, способствующего поддержанию повреждения ГЭБ и нарушению функций мозга. Проведенные клинико-биологические исследования показали, что нарушения развития и функционирования мозга сопровождаются активацией врожденного иммунитета, а ряд показателей, например активность ЛЭ, коррелирует со степенью тяжести этих нарушений.The cellular link of innate immunity is represented by monocytes / macrophages, granulocytes, dendritic cells and natural killer cells. The humoral link includes the kallikrein-kinin system, acute phase proteins, lysozyme, mannan-binding lectin. Activated neutrophils secrete a proteolytic enzyme in the blood - leukocyte elastase (LE). Once in the extracellular space, leukocyte elastase breaks down the main substance, elastin and collagen fibers of the vascular basement membranes, and in some cases acts as a powerful destructive factor that contributes to the maintenance of BBB damage and impaired brain function. Clinical and biological studies have shown that impaired development and functioning of the brain are accompanied by activation of innate immunity, and a number of indicators, such as LE activity, correlate with the severity of these disorders.
Все вышесказанное явилось основанием для разработки лабораторного способа выявления последствий ППНС и определения степени их тяжести у детей первых лет жизни с помощью комплексного определения ряда параметров врожденного и приобретенного иммунитета: активности ферментов - ЛЭ и α1-протеиназного ингибитора (α1-ПИ), уровня идиотипических (аАТ1) и антиидиотипических (аАТ2) аутоантител к спектру различных нейроантигенов.All of the above was the basis for the development of a laboratory method for identifying the consequences of PPNS and determining their severity in children of the first years of life by comprehensively determining a number of parameters of innate and acquired immunity: enzyme activity - LE and α1-proteinase inhibitor (α1-PI), idiotypic level ( aAT1) and anti-idiotypic (aAT2) autoantibodies to the spectrum of various neuroantigens.
В качестве наиболее близкого аналога предлагаемого изобретения может служить способ, описанный в патенте РФ № 2231074 на «Способ определения характера патофизиологических нарушений психомоторного развития детей первого года жизни»; авторы Клюшник Т.П., Щербакова И.В., Хачатрян Л.Г. В то же время данный способ обладает рядом существенных недостатков.As the closest analogue of the invention, the method described in RF patent No. 2231074 on “A method for determining the nature of the pathophysiological disorders of the psychomotor development of children of the first year of life”; authors Klyushnik T.P., Scherbakova I.V., Khachatryan L.G. At the same time, this method has a number of significant disadvantages.
Во-первых, он позволяет регистрировать изменение уровня аАТ лишь к одному антигену нервной ткани - фактору роста нервов (ФРН). Вместе с тем, при нарушениях в системе аутоиммунитета с направленностью к антигенам нервной ткани уровни аАТ к различным нейроантигенам не всегда изменяются сонаправленно. Поэтому всегда более точный результат получается при определении уровней аАТ не к одному, а к нескольким антигенам нервной ткани.First, it allows you to register a change in the level of aAT to only one antigen of nerve tissue - the nerve growth factor (NGF). At the same time, in case of disturbances in the autoimmunity system with a focus on neural tissue antigens, the levels of aAT to various neuroantigens do not always change in the same direction. Therefore, a more accurate result is always obtained when determining aAT levels not to one, but to several antigens of nervous tissue.
Во-вторых, иммуноферментный анализ, примененный в методе-аналоге, позволяет регистрировать лишь уровень идиотипических аАТ к ФРН. Вместе с тем, более целостное представление об изменениях в системе аутоиммунитета дает комплексное исследование содержания аАТ1 вместе с их «функциональными противовесами» - аАТ2. Это связано с тем, что большое значение имеет соотношение аАТ1/аАТ2, которое дает представление о том, насколько аАТ1 «экранированы» соответствующими антиидиотипами, которые могут ограничивать неблагоприятное воздействие повышенных уровней аАТ1.Secondly, the enzyme-linked immunosorbent assay used in the analogue method allows only the level of idiotypic aAT to NGF to be recorded. At the same time, a more holistic view of changes in the system of autoimmunity gives a comprehensive study of the content of aAT1 together with their “functional balances” - aAT2. This is due to the fact that the ratio aAT1 / aAT2 is of great importance, which gives an idea of how aAT1 is “shielded” by the corresponding anti-idiotypes, which can limit the adverse effects of elevated levels of aAT1.
В-третьих, метод-аналог позволяет регистрировать лишь один параметр врожденного иммунитета, а именно активность ЛЭ - сериновой протеазы, содержащейся в азурофильных гранулах нейтрофилов и секретирующейся во внеклеточное пространство при активации нейтрофилов различными факторами, в том числе эндогенными продуктами деструкции тканей. Вместе с тем, для оценки возможного деструктивного потенциала ЛЭ необходимо оценивать также активность фермента, регулирующего активность ЛЭ, а именно α1-ПИ. α1-ПИ подавляет активность ЛЭ с высокой константой ассоциации (>107 М-1·с-1). В сыворотке крови ЛЭ находится преимущественно в комплексе с α1-ПИ и лишена протеолитической активности. α1-ПИ является гликопротеином, синтезирующимся гепатоцитами. Контролируя протеолитическую активность ЛЭ, этот ингибитор создает условия для ограничения очага воспаления или деструкции, поэтому уровень α1-ПИ в сыворотке крови определяет течение многих воспалительных и деструктивных процессов.Thirdly, the analogue method allows registering only one parameter of innate immunity, namely, the activity of LE - a serine protease contained in azurophilic granules of neutrophils and secreted into the extracellular space upon activation of neutrophils by various factors, including endogenous tissue destruction products. However, to assess the possible destructive potential of LE, it is also necessary to evaluate the activity of the enzyme that regulates the activity of LE, namely α1-PI. α1-PI suppresses the activity of LE with a high association constant (> 10 7 M -1 · s -1 ). In blood serum, LE is predominantly in combination with α1-PI and lacks proteolytic activity. α1-PI is a glycoprotein synthesized by hepatocytes. By controlling the proteolytic activity of LE, this inhibitor creates the conditions for limiting the focus of inflammation or destruction, therefore, the level of α1-PI in blood serum determines the course of many inflammatory and destructive processes.
В отличие от рассмотренного выше способа-аналога предлаIn contrast to the above method, the analogue of the proposal
гаемый новый способ позволяетThe proposed new method allows
- регистрировать изменение уровня аАТ1 и аАТ2 к ряду антигенов нервной ткани, а также определять соотношение АТ1/АТ2;- register a change in the level of aAT1 and aAT2 to a number of antigens of the nervous tissue, as well as determine the ratio of AT1 / AT2;
- регистрировать активность не только ЛЭ, но и α1-ПИ, характеризующего выраженность компенсаторного потенциала.- register the activity of not only LE, but also α1-PI, which characterizes the severity of the compensatory potential.
Комплексное определение вышеперечисленных параметров врожденного и приобретенного иммунитета, связанных с процессами развития и функционирования мозга, позволяет дать более точную оценку состояния нервной системы ребенка, выявить деструктивный процесс в ткани мозга, уточнить его тяжесть, а также выраженность компенсаторного потенциала.A comprehensive definition of the above parameters of innate and acquired immunity associated with the processes of development and functioning of the brain allows a more accurate assessment of the state of the child’s nervous system, to reveal the destructive process in the brain tissue, to clarify its severity, as well as the severity of the compensatory potential.
Целью заявляемого способа является повышение надежности прогноза нормального или аномального развития центральной и периферической нервной системы у детей, выявление лиц с текущим деструктивным процессом в мозге, индуцированным перинатальным поражением нервной системы и уточнение его тяжести с помощью определения в сыворотке крови таких параметров врожденного и приобретенного иммунитета как активность ЛЭ, α1-ПИ, уровня aAT1 и аАТ2 к антигенам нервной ткани. В качестве последних могут быть использованы белок мозга S100, глиофибриллярный кислый белок (GFAP), основной белок миелина (ОБМ), ФРН.The aim of the proposed method is to increase the reliability of the prognosis of normal or abnormal development of the central and peripheral nervous system in children, to identify individuals with the current destructive process in the brain induced by perinatal damage to the nervous system and to clarify its severity by determining in blood serum such parameters of innate and acquired immunity as activity of LE, α1-PI, aAT1 and aAT2 levels to antigens of nervous tissue. As the latter, brain protein S100, gliofibrillar acid protein (GFAP), basic myelin protein (MBP), NGF can be used.
Реализация существенных признаков предлагаемого изобретения осуществляется следующим образом. В образцах сыворотки крови проводится определение активности ЛЭ и α1-ПИ спектрофотометрическим энзиматическим методом и определение уровня aAT1 и аАТ2 к нейроантигенам методом твердофазного иммуноферментного анализа. В ходе тестирования выявляются лица, содержащие измененную (повышенную или пониженную по сравнению с образцами сыворотки здоровых лиц аналогичной возрастной группы) активность/уровень одного или нескольких определяемых иммунологических показателей, что является характерным иммунологичским признаком нарушения развития/функционирования нервной системы. Степень отклонения определяемых показателей врожденного и/или приобретенного иммунитета от аналогичных показателей образцов сыворотки здоровых лиц соответствующего возраста указывает на наличие и характеризует степень тяжести ППНС.The implementation of the essential features of the invention is as follows. In blood serum samples, the activity of LE and α1-PI is determined by spectrophotometric enzymatic method and the level of aAT1 and aAT2 to neuroantigens is determined by enzyme-linked immunosorbent assay. During testing, individuals are identified that contain altered (increased or decreased compared to serum samples of healthy individuals of a similar age group) activity / level of one or more determined immunological parameters, which is a characteristic immunological sign of impaired development / functioning of the nervous system. The degree of deviation of the determined indices of innate and / or acquired immunity from similar indices of serum samples of healthy individuals of the corresponding age indicates the presence and characterizes the severity of PPNS.
Все определения проводятся в образцах крови, взятой из пальца, пятки или из вены в сухие пробирки. После образования кровяного сгустка образец крови центрифугируют при 2500 g, отбирают с помощью автоматической пипетки сыворотку, которая и используется для анализа. Сыворотка может быть также заморожена и храниться до проведения анализа в течение месяца при температуре от -18°С до -24°С.All determinations are carried out in blood samples taken from a finger, heel or from a vein into dry tubes. After the formation of a blood clot, a blood sample is centrifuged at 2500 g, and serum is taken using an automatic pipette, which is used for analysis. Serum can also be frozen and stored until analysis for a month at temperatures from -18 ° C to -24 ° C.
Не вытекает из известного уровня техники тот факт, что по комплексной оценке активности ЛЭ и α1-ПИ, а также уровней aAT1 и аАТ2 к нейроантигенам можно выявить наличие последствий ППНС и охарактеризовать степень их тяжести.It does not follow from the prior art that, according to a comprehensive assessment of the activity of LE and α1-PI, as well as the levels of aAT1 and aAT2 to neuroantigens, it is possible to identify the effects of PPNS and to characterize their severity.
Сущность изобретенияSUMMARY OF THE INVENTION
Поэтапное проведение определения иммунологических показателей.Phased determination of immunological parameters.
I. Определение активности ЛЭ. Для определения активности ЛЭ, находящейся в сыворотке крови в комплексе с α1-ПИ, применяется спектрофотометрический метод с использованием в качестве хромогенного субстрата N-терт-бутокси-карбонил-аланин-n-нитрофенилового эфира (BOC-Ala-ONp) в присутствии ацетонитрила. В присутствии органического растворителя и при определенном составе буферного раствора происходит разрыхление комплекса, приводящее к оттеснению ингибитора и проникновению BOC-Ala-ONp к активному центру фермента.I. Determination of LE activity. To determine the activity of LE located in the blood serum in complex with α1-PI, the spectrophotometric method is used using N-tert-butoxy-carbonyl-alanine-n-nitrophenyl ether (BOC-Ala-ONp) in the presence of acetonitrile as a chromogenic substrate. In the presence of an organic solvent and with a certain composition of the buffer solution, the complex loosens, leading to the displacement of the inhibitor and the penetration of BOC-Ala-ONp to the active center of the enzyme.
Ход проведения анализа.The progress of the analysis.
1. Флакон с буферным раствором помещают в термостат при температуре +25°С на 15 мин.1. A bottle with a buffer solution is placed in a thermostat at a temperature of + 25 ° C for 15 minutes.
2. Непосредственно перед использованием в пробирку с навеской BOC-Ala-ONp вносят 500 мкл ацетонитрила и тщательно перемешивают.2. Immediately prior to use, 500 μl of acetonitrile is added to a BOC-Ala-ONp tube and mixed thoroughly.
3. В кювету спектрофотометра, предварительно нагретую до +25°С, вносят 480 мкл нагретого до +25°С буферного раствора, добавляют 20 мкл раствора субстрата BOC-Ala-ONp, 5 мкл анализируемой сыворотки и тщательно перемешивают.3. In a cuvette of a spectrophotometer preheated to + 25 ° C, add 480 μl of a buffer solution heated to + 25 ° C, add 20 μl of a BOC-Ala-ONp substrate solution, 5 μl of the analyzed serum and mix thoroughly.
4. Параллельно готовят контрольную пробу: 480 мкл буферного раствора с добавлением 20 мкл ацетонитрила.4. In parallel, prepare a control sample: 480 μl of a buffer solution with the addition of 20 μl of acetonitrile.
5. Измеряют оптическую плотность опытной пробы против контрольной 4 раза с интервалом времени 1 мин (точно!) при длине волны 347,5 нм.5. The optical density of the experimental sample is measured against the control 4 times with a time interval of 1 min (exactly!) At a wavelength of 347.5 nm.
6. Рассчитывают изменение оптической плотности анализируемой пробы за 1 мин (ДЕ/мин) по формуле:6. Calculate the change in optical density of the analyzed sample for 1 min (DE / min) according to the formula:
ΔЕ/мин=ΔEn/t,ΔE / min = ΔE n / t,
где ΔEn - изменение оптической плотности анализируемой пробы, ед. опт. плотн.,where ΔE n is the change in optical density of the analyzed samples, units opt. tight.,
t - интервал времени между определениями, мин.t is the time interval between determinations, min.
Активность ЛЭ в анализируемом образце сыворотки определяют по формуле:The activity of LE in the analyzed serum sample is determined by the formula:
А=ΔЕ/мин×0,108/0,005,A = ΔE / min × 0.108 / 0.005,
где 0,108 - пересчетный коэффициент, учитывающий объем пробы (0,5 мл) и коэффициент молярной экстинкции субстрата (4,6 мл × моль-1 × см-1);where 0.108 is the conversion factor taking into account the sample volume (0.5 ml) and the molar extinction coefficient of the substrate (4.6 ml × mol -1 × cm -1 );
0,005 - объем внесенной в кювету сыворотки (в мл).0.005 is the volume of serum added to the cuvette (in ml).
Измерение активности ЛЭ каждого образца сыворотки проводят 3 раза, после чего рассчитывают среднее арифметическое значение активности ЛЭ.The activity of LEs of each serum sample is measured 3 times, after which the arithmetic average of the activity of LEs is calculated.
II. Определение активности α1-ПИ. Спектрофотометрический метод определения активности α1-ПИ в сыворотке крови основан на взаимодействии этого ингибитора с трипсином при использовании в качестве субстрата N-α-бензоил-L-аргининэтилового эфира (БАЭЭ): α1-ПИ сыворотки крови образует с трипсином комплекс, не расщепляющий БАЭЭ. Поэтому активность α1-ПИ определяется по степени торможения расщепления трипсином низкомолекулярного субстрата.II. Determination of α1-PI activity. The spectrophotometric method for determining the activity of α1-PI in blood serum is based on the interaction of this inhibitor with trypsin when N-α-benzoyl-L-arginine ethyl ether (BAEE) is used as a substrate: blood serum α1-PI forms a trypsin complex that does not break down BAEE. Therefore, the activity of α1-PI is determined by the degree of inhibition of trypsin cleavage of a low molecular weight substrate.
Ход проведения анализа.The progress of the analysis.
1. Вскрывают флакон с буферным раствором, его содержимое переносят в мерный цилиндр и добавляют дистиллированную воду до отметки 100 мл.1. Open the bottle with buffer solution, its contents are transferred to a graduated cylinder and distilled water is added to the level of 100 ml.
2. Растворяют содержимое пробирки с БАЭЭ в 60 мл дистиллированной воды и тщательно перемешивают. Выдерживают оба раствора в термостате при +25°С в течение не менее 15 мин.2. Dissolve the contents of the tube with BAEE in 60 ml of distilled water and mix thoroughly. Withstand both solutions in a thermostat at + 25 ° C for at least 15 minutes.
3. Переносят раствор для разведения трипсина в пробирку с трипсином и аккуратно перемешивают покачиванием.3. Transfer the trypsin dilution solution to a trypsin tube and mix gently with swaying.
4. Исследуемые образцы сыворотки разводят физиологическим раствором в соотношении 1:50.4. The studied serum samples are diluted with saline in a ratio of 1:50.
5. В кювету спектрофотометра, предварительно нагретую до +25°С, вносят 2,0 мл буферного раствора и 0,01 мл раствора трипсина, перемешивают и инкубируют в кювете в течение 5 мин при +25°С.5. 2.0 ml of a buffer solution and 0.01 ml of trypsin solution are added to a spectrophotometer cuvette, previously heated to + 25 ° С, mixed and incubated in a cuvette for 5 min at + 25 ° С.
6. Добавляют в кювету 1,0 мл раствора субстрата, перемешивают и измеряют оптическую плотность 4 раза с интервалом в 1 мин (точно!) при длине волны 253 нм (контрольная проба).6. Add 1.0 ml of the substrate solution to the cuvette, mix and measure the optical density 4 times with an interval of 1 min (exactly!) At a wavelength of 253 nm (control sample).
7. Рассчитывают изменение оптической плотности контрольной пробы за 1 мин (ΔЕ/минконтроль) по формуле:7. Calculate the change in optical density of the control sample for 1 min (ΔE / min control ) according to the formula:
ΔЕ/минконтроль=ΔЕк/t,ΔЕ / min control = ΔЕ к / t,
где ΔЕк - изменение оптической плотности контрольной пробы, ед.опт. плотн., t - интервал времени между определениями, мин.where ΔE to - the change in optical density of the control sample, ed. tight., t - time interval between determinations, min.
8. Затем в предварительно нагретую до +25°С кювету вносят 1,9 мл буферного раствора, 0,01 мл раствора трипсина и 0,1 мл предварительно разведенного 1:50 образца анализируемой сыворотки крови, перемешивают и инкубируют в кювете в течение 5 мин при +25°С.8. Then, 1.9 ml of a buffer solution, 0.01 ml of trypsin solution and 0.1 ml of a pre-diluted 1:50 sample of the analyzed blood serum are added to a cuvette preheated to + 25 ° C, mixed and incubated in a cuvette for 5 min at + 25 ° С.
9. Добавляют в кювету 1,0 мл раствора субстрата, перемешивают и измеряют оптическую плотность 4 раза с интервалом в 1 мин (точно!) при длине волны 253 нм (исследуемая проба).9. Add 1.0 ml of the substrate solution to the cuvette, mix and measure the optical density 4 times with an interval of 1 min (exactly!) At a wavelength of 253 nm (test sample).
10. Рассчитывают изменение оптической плотности пробы за 1 мин по формуле: ΔЕ/минпроба=ΔEn/t,10. Calculate the change in optical density of the sample for 1 min by the formula: ΔE / min sample = ΔE n / t,
где ΔEn - изменение оптической плотности исследуемой пробы сыворотки крови, ед.опт. плотн.; t - интервал времени между определениями, мин.where ΔE n is the change in optical density of the investigated blood serum samples, unit opt. tight .; t is the time interval between determinations, min.
11. Вычисляют разность изменения оптической плотности контрольной и исследуемой пробы (ΔЕ) по формуле:11. Calculate the difference in the optical density of the control and test samples (ΔE) by the formula:
ΔЕ=ΔЕ/минконтроль-ΔЕ/минпроба;ΔE = ΔE / min control -ΔE / min sample ;
активность α1-ПИ в исследуемой пробе определяют по формуле:the activity of α1-PI in the test sample is determined by the formula:
А=ΔЕ×F,A = ΔE × F,
где А - активность α1-ПИ, ИЕ/мл; ΔЕ - разность изменения оптической плотности контрольной и исследуемой пробы, ед.опт. плотн.; F - фактор пересчета.where A is the activity of α1-PI, IE / ml; ΔЕ is the difference in the optical density of the control and test samples, unit opt. tight .; F is the conversion factor.
III. Определение содержания аАТ к нейроантигенам.III. Determination of the content of aAT to neuroantigens.
В качестве антигенов нервной ткани можно использовать ОБМ, S100, GFAP и ФРН. Возможно использование нескольких из указанных белков в любой комбинации или других нейроантигенов. В качестве антигенов для определения аАТ1 можно брать их самих, а также их иммунохимические аналоги (например, F(ab)2-фрагменты соответствующих антиидиотипических антител). Для определения аАТ2 в качестве антигенов используют F(ab)2-фрагменты антиидиотипических антител с направленностью к тем антигенам, которые использовались для определения аАТ1.As antigens of the nervous tissue, MBM, S100, GFAP and NGF can be used. It is possible to use several of these proteins in any combination or other neuroantigens. They can be taken as antigens for determining aAT1 themselves, as well as their immunochemical analogues (for example, F (ab) 2 fragments of the corresponding anti-idiotypic antibodies). To determine aAT2, F (ab) 2 fragments of anti-idiotypic antibodies with the orientation to those antigens that were used to determine aAT1 are used as antigens.
При проведении анализа можно не проводить определение аАТ2 к антигенам нервной ткани, однако это может несколько снизить точность полученных результатов.During the analysis, it is possible not to determine aAT2 to antigens of the nervous tissue, however, this may somewhat reduce the accuracy of the results.
Ход проведения анализаAnalysis progress
1. Растворы используемых в работе антигенов, диализованные против карбонатного буфера, pH 8,5-9,8, вносят в отдельные лунки стандартных 96-луночных плоскодонных планшетов для иммуноферментного анализа. Затем планшеты инкубируют 12-18 ч при +2…+4°С.1. Solutions of the antigens used in the work, dialyzed against a carbonate buffer, pH 8.5-9.8, are added to individual wells of standard 96-well flat-bottom plates for enzyme immunoassay. Then the plates are incubated for 12-18 hours at + 2 ... + 4 ° C.
2. Удаляют (стряхиванием) из лунок растворы с несвязавшимися компонентами и (без дополнительной отмывки) заливают в них блокирующий буфер (например, 0.5% раствор желатина на 0.15 М NaCl). Инкубируют 1 ч при 37°С.2. Remove (by shaking) the solutions with unbound components from the wells and (without additional washing) fill in a blocking buffer (for example, 0.5% gelatin solution with 0.15 M NaCl). Incubated for 1 h at 37 ° C.
3. Отмывают планшеты отмывочным буфером (с 0,05% твин-20).3. Wash the plates with wash buffer (with 0.05% tween-20).
4. Вносят на планшеты образцы тестируемых и эталонной сывороток в разведении 1:200 на отмывочном буфере. Инкубируют 12-18 ч при +4°С.4. Make samples of the test and reference serums at a dilution of 1: 200 in washing buffer on the plates. Incubated for 12-18 hours at + 4 ° C.
5. Отмывают планшеты отмывочным буфером.5. Wash the plates with wash buffer.
6. Проявление реакции осуществляют следующим образом. Раствор конъюгата пероксидазы хрена (или иного фермента) с антивидовыми антителами к IgG (или к IgG и IgM) человека вносят во все лунки планшета. Затем планшеты инкубируют 60-90 мин при 37°С или 12-16 ч при +2…+4°С, после чего коньюгат удаляют, а планшеты отмывают отмывочным буфером. Сразу после этого в лунки вносят раствор субстрата (например, 0.01-0.05% о-фенилендиамина с 0.001-0.005% перекиси водовода на 0.01-0.05 М цитрат-фосфатном буфере в случае применения пероксидазных конъюгатов). Инкубируют планшеты в темноте 10-20 мин при комнатной температуре.6. The manifestation of the reaction is as follows. A solution of horseradish peroxidase conjugate (or other enzyme) with anti-species antibodies to human IgG (or IgG and IgM) is added to all wells of the plate. Then the plates are incubated for 60-90 minutes at 37 ° C or 12-16 hours at + 2 ... + 4 ° C, after which the conjugate is removed, and the tablets are washed with washing buffer. Immediately after this, a substrate solution is added to the wells (for example, 0.01-0.05% o-phenylenediamine with 0.001-0.005% hydrogen peroxide in 0.01-0.05 M citrate-phosphate buffer in the case of peroxidase conjugates). Incubate the tablets in the dark for 10-20 minutes at room temperature.
7. По достижении оптимального уровня окрашивания реакцию останавливают добавлением 0.2-0.4 М серной кислоты.7. Upon reaching the optimal level of staining, the reaction is stopped by the addition of 0.2-0.4 M sulfuric acid.
8. Интенсивность окрашивания оценивают с помощью ридера для иммуноферментного анализа любой модели.8. The staining intensity is evaluated using a reader for enzyme-linked immunosorbent assay of any model.
9. Обрабатывают полученные данные.9. Process the received data.
а) Из трех дублирующих друг друга значений результатов реакции эталонной и тестируемых образцов сыворотки выбирают среднее.a) From three duplicate values of the reaction results of the reference and test serum samples, choose the average.
б) Рассчитывают относительную интенсивность реакции с компонентами тест-системы исследуемых сывороток по отношению к реакции эталонной сыворотки (в процентах) по полученным значениям оптической плотности лунок. Рассчитывают коэффициент I, представляющий собою отношение аАТ1/аАТ2. Коэффициент I рассчитывают для каждой пары аАТ1-аАТ2.b) Calculate the relative intensity of the reaction with the components of the test system of the studied sera in relation to the reaction of the reference serum (in percent) according to the obtained values of the optical density of the holes. The coefficient I, which is the ratio aAT1 / aAT2, is calculated. Coefficient I is calculated for each pair of aAT1-aAT2.
В качестве эталонной сыворотки используют пулированную сыворотку здоровых доноров в возрасте от 18 до 40 лет. Эмпирически были установлены следующие нормативы для различных возрастных групп:As a reference serum, the pulsed serum of healthy donors aged 18 to 40 years is used. Empirically, the following standards were established for various age groups:
IV. Интерпретация полученных данных.IV. Interpretation of the received data.
Активность ЛЭ и α1-ПИ сыворотки крови отражают степень активации врожденного иммунитета, а также состояние антипротеолитического (компенсаторного потенциала). У детей с текущим деструктивным процессом в мозге, индуцированным ППНС, имеет место повышение активности ЛЭ по сравнению с контролем, коррелирующее с тяжестью клинической симптоматики. Параллельное увеличение, по сравнению с контролем, активности α1-ПИ, направленное на ограничение деструктивных реакций, характеризует сохранность антипротеолитического потенциала. Сниженная, по сравнению с контролем, активность α1-ПИ, является неблагоприятным прогностическим фактором в плане дальнейшего развертывания деструктивного процесса.The activity of LE and α1-PI of blood serum reflect the degree of activation of innate immunity, as well as the state of antiproteolytic (compensatory potential). In children with the current destructive process in the brain induced by PPNS, there is an increase in LE activity compared to the control, which correlates with the severity of clinical symptoms. A parallel increase, in comparison with the control, of α1-PI activity, aimed at limiting destructive reactions, characterizes the safety of the antiproteolytic potential. The decreased α1-PI activity compared with the control is an unfavorable prognostic factor in terms of the further development of the destructive process.
Понижение уровня аАТ к антигенам нервной ткани соответствует поражениям мозга легкой и/или средней степени тяжести. При таких патологических состояниях связывание и элиминация поступающих из мозга в кровь нейроантигенов происходит за счет пула естественных (регуляторных) аАТ. Повышение уровня аАТ по сравнению с контролем свидетельствует о запуске специфических аутоиммунных реакций, которые сопровождают наиболее тяжелые поражения нервной системы.Lowering the level of AAT to antigens of the nervous tissue corresponds to brain lesions of mild and / or moderate severity. In such pathological conditions, the binding and elimination of neuroantigens from the brain to the blood occurs due to a pool of natural (regulatory) aATs. An increase in the level of aAT compared with the control indicates the launch of specific autoimmune reactions that accompany the most severe lesions of the nervous system.
Таким образом, комплексное определение вышеперечисленных показателей иммунитета позволяет выявить наличие патологического деструктивного процесса в ткани мозга и уточнить его тяжесть, а также выраженность компенсаторного потенциала.Thus, a comprehensive determination of the above indicators of immunity allows us to identify the presence of a pathological destructive process in the brain tissue and to clarify its severity, as well as the severity of the compensatory potential.
По совокупности иммунологических показателей могут быть выделены следующие основные группы образцов сыворотки:Based on the totality of immunological parameters, the following main groups of serum samples can be distinguished:
Исследование следует проводить не ранее, чем через 2-3 недели после перенесенного острого инфекционного заболевания для исключения ложноположительных результатов.The study should be carried out no earlier than 2-3 weeks after suffering an acute infectious disease to exclude false-positive results.
Технико-экономическая и социальная значимостьTechno-economic and social significance
Использование предлагаемого способа позволяет выявить индуцированный ППНС деструктивный процесс на ранних, часто доклинических этапах, что может способствовать своевременному назначению адекватных способов терапии и уменьшению заболеваемости тяжелыми формами патологии нервной системы у детей.Using the proposed method allows to identify the induced PPPS destructive process in the early, often preclinical stages, which can contribute to the timely appointment of adequate methods of therapy and reduce the incidence of severe forms of pathology of the nervous system in children.
С помощью предлагаемого способа может быть определена степень тяжести деструктивного процесса в мозге ребенка, а также выраженность компенсаторного потенциала, что способствует оптимизации терапевтических мероприятий, в том числе лекарственной терапии.Using the proposed method, the severity of the destructive process in the brain of the child can be determined, as well as the severity of the compensatory potential, which helps to optimize therapeutic measures, including drug therapy.
Предложенный способ позволяет проводить мониторинг состояния нервной системы ребенка, объективно оценивать эффективность терапии.The proposed method allows monitoring the state of the nervous system of the child, objectively evaluate the effectiveness of therapy.
При наличии деструктивного процесса в ткани мозга использование предлагаемого способа позволяет оптимизировать сроки вакцинации больных детей, которую целесообразно проводить в тот период, когда последствия ППНС указанным способом не обнаруживаются или выявляемые изменения незначительны.In the presence of a destructive process in brain tissue, the use of the proposed method allows to optimize the timing of vaccination of sick children, which is advisable to carry out at a time when the consequences of PPNS by this method are not detected or the detected changes are insignificant.
Примеры использования изобретенияExamples of the use of the invention
Пример 1.Example 1
Пациент К., возраст 5 мес. При первом обращении к неврологу в возрасте 1 мес наблюдались срыгивание, вздрагивание. Клиническое обследование: голову удерживает нетвердо, взгляд не фиксирует. Безусловные рефлексы нечеткие, проприоцептивные рефлексы R=S. Диагноз: синдром мышечной дистонии ишемического генеза. Лабораторное обследование «Нейротест»: активность ЛЭ 229 нмоль/(мин·мл), активность α1-ПИ 36 ИЕ/мл, уровни aAT1 и аАТ2 к антигенам нервной ткани 40-45% относительно эталонной сыворотки, соответствующие коэффициенты аАТ1/аАТ2 0,8-1,1. Результаты анализа соответствуют текущему деструктивному процессу в ткани мозга легкой степени тяжести с выраженным компенсаторным потенциалом.Patient K., age 5 months. At the first visit to a neurologist at the age of 1 month, regurgitation, trembling were observed. Clinical examination: the head does not hold firmly, the gaze does not fix. Unconditioned reflexes are fuzzy, proprioceptive reflexes R = S. Diagnosis: syndrome of muscular dystonia of ischemic origin. Laboratory examination "Neurotest": the activity of LE 229 nmol / (min · ml), the activity of α1-PI 36 IE / ml, the levels of aAT1 and aAT2 to antigens of nervous tissue 40-45% relative to the reference serum, the corresponding coefficients of aAT1 / aAT2 0.8 -1.1. The results of the analysis correspond to the current destructive process in the brain tissue of mild severity with a pronounced compensatory potential.
При повторном обследовании через 4 мес выявлена положительная динамика выявленных неврологических нарушений: относительная нормализация тонуса мышц, твердое удержание головы, ребенок тянется к игрушкам и удерживает их. Остается повышенная реакция на звуковые раздражители. Повторное лабораторное обследование «Нейротест»: активность ЛЭ 200 нмоль/(мин·мл), активность α1-ПИ 27 ИЕ/мл, уровни aAT1 и аАТ2 к антигенам нервной ткани - в пределах нормальных значений, соответствующие коэффициенты аАТ1/аАТ2 0,8-1,1. Результаты анализа также свидетельствуют о затухании деструктивного процесса в мозге и соответствуют контрольным показателям.Upon repeated examination after 4 months, a positive dynamics of the revealed neurological disorders was revealed: the relative normalization of muscle tone, firm head retention, the child reaches for the toys and holds them. An increased reaction to sound stimuli remains. Repeated laboratory examination “Neurotest”: activity of LE 200 nmol / (min · ml), activity of α1-PI 27 IU / ml, levels of aAT1 and aAT2 to nerve tissue antigens - within normal values, corresponding coefficients of aAT1 / aAT2 0.8- 1.1. The results of the analysis also indicate the attenuation of the destructive process in the brain and correspond to the control indicators.
Пример 2.Example 2
Пациент Е., 1 год. При первом обращении к неврологу в 3 мес отмечались признаки задержки психомоторного развития: мышечный гипертонус, повышенная реакция на звуковые раздражители, задержка редукции поискового, хоботкового, сосательного, хватательного рефлексов Моро и Бабкина, нетвердое удержание головы, захвата и удержания игрушки нет, комплекс оживления сформирован недостаточно. Диагноз: задержка психомоторного развития. Лабораторное обследование: активность ЛЭ 280 нмоль/(мин·мл), активность α1-ПИ 48 ИЕ/мл, уровни aAT1 и аАТ2 к антигенам нервной ткани 40-50% относительно эталонной сыворотки, соответствующие коэффициенты аАТ1/аАТ2 0,8-1,1. Результаты анализа соответствуют текущему деструктивному процессу в ткани мозга средней степени тяжести с выраженным компенсаторным потенциалом.Patient E., 1 year. At the first visit to a neurologist at 3 months, there were signs of a delay in psychomotor development: muscle hypertonicity, increased reaction to sound stimuli, delayed reduction in search, proboscis, sucking, grasping reflexes of Moro and Babkin, there was no insecure head retention, capture and retention of the toy, a revitalization complex was formed not enough. Diagnosis: delayed psychomotor development. Laboratory examination: LE activity of 280 nmol / (min · ml), α1-PI activity of 48 IE / ml, aAT1 and aAT2 levels to nervous tissue antigens of 40-50% relative to the reference serum, the corresponding coefficients of aAT1 / aAT2 are 0.8-1, one. The results of the analysis correspond to the current destructive process in the brain tissue of moderate severity with pronounced compensatory potential.
При повторном обследовании через 9 мес выявлена в целом положительная динамика отмеченных неврологических нарушений: относительная нормализация тонуса мышц, ребенок самостоятельно сидит, ползает, но не ходит, недостаточное развитие мелкой моторики, отмечается общая моторная неловкость, недостаточное развитие эмоционального резонанса. Остается повышенная реакция на звуковые раздражители, нарушение суточного ритма настроения. Повторное лабораторное обследование «Нейротест»: активность ЛЭ 220 нмоль/(мин·мл), активность α1-ПИ 36 ИЕ/мл, уровни aAT1 и аАТ2 к антигенам нервной ткани - в пределах нормальных значений, соответствующие коэффициенты аАТ1/аАТ2 0,8-1,1. Результаты анализа свидетельствуют об относительном улучшении определяемых показателей по сравнению с первым обследованием, однако деструктивный процесс в мозге полностью не прекратился и квалифицируется как процесс легкой степени тяжести.A repeated examination after 9 months revealed a generally positive dynamics of the noted neurological disorders: the relative normalization of muscle tone, the child sits alone, crawls, but does not walk, insufficient development of fine motor skills, general motor awkwardness, insufficient development of emotional resonance. There remains an increased reaction to sound stimuli, a violation of the circadian rhythm of mood. Repeated laboratory examination “Neurotest”: activity of LE 220 nmol / (min · ml), activity of α1-PI 36 IU / ml, levels of aAT1 and aAT2 to antigens of the nervous tissue - within normal values, the corresponding coefficients of aAT1 / aAT2 are 0.8- 1.1. The results of the analysis indicate a relative improvement in the determined parameters compared with the first examination, however, the destructive process in the brain has not completely stopped and qualifies as a mild process.
Пример 3.Example 3
Пациент Д., 4 мес. При первом обращении к неврологу в возрасте 2 мес - тяжелые неврологические нарушения: задержка редукции безусловных рефлексов, нарушение сосательного рефлекса, гипертонус мышц, гиперэргическая реакция на звуки, спонтанный рефлекс Моро, отсутствие комплекса оживления, зрительно-моторной координации. Диагноз: задержка психомоторного развития, органическое поражение мозга. Лабораторное обследование: активность ЛЭ 320 нмоль/(мин·мл), активность α1-ПИ 35 ИЕ/мл, уровни aAT1 и аАТ2 к антигенам нервной ткани 110-120% относительно эталонной сыворотки, соответствующие коэффициенты аАТ1/аАТ2 1,3-1,5. Результаты анализа соответствуют текущему деструктивному процессу в ткани мозга тяжелой степени тяжести с недостаточно выраженным компенсаторным потенциалом.Patient D., 4 months. At the first visit to a neurologist at the age of 2 months, severe neurological disorders: delayed reduction of unconditioned reflexes, impaired sucking reflex, muscle hypertonicity, hyperergic reaction to sounds, Moro spontaneous reflex, absence of an animation complex, and visual-motor coordination. Diagnosis: delayed psychomotor development, organic brain damage. Laboratory examination: LE activity of 320 nmol / (min · ml), α1-PI activity of 35 IE / ml, levels of aAT1 and aAT2 to neural tissue antigens 110-120% relative to the reference serum, the corresponding coefficients of aAT1 / aAT2 are 1.3-1, 5. The results of the analysis correspond to the current destructive process in the brain tissue of a severe degree of severity with insufficiently expressed compensatory potential.
При повторном клиническом обследовании через 2 мес - незначительная динамика выявленных нарушений: остается нарушение мышечного тонуса и гиперэргическая реакция на звуки, ребенок не удерживает голову, комплекс оживления выражен недостаточно, на игрушки не реагирует. Повторное лабораторное обследование: активность ЛЭ 300 нмоль/(мин·мл), активность α1-ПИ 25 ИЕ/мл, уровни aAT1 и аАТ2 к антигенам нервной ткани 100-125% относительно эталонной сыворотки, соответствующие коэффициенты аАТ1/аАТ2 1,3-1,5. Результаты анализа соответствуют текущему деструктивному процессу в ткани мозга тяжелой степени тяжести с истощенным компенсаторным потенциалом.At a repeated clinical examination after 2 months, there is a slight dynamics of the revealed violations: there is a violation of muscle tone and a hyperergic reaction to sounds, the child does not hold his head, the revitalization complex is not expressed enough, does not respond to toys. Repeated laboratory examination: LE activity of 300 nmol / (min · ml), α1-PI activity of 25 IE / ml, levels of aAT1 and aAT2 to neural tissue antigens 100-125% relative to the reference serum, the corresponding coefficients of aAT1 / aAT2 are 1.3-1 ,5. The results of the analysis correspond to the current destructive process in the brain tissue of severe severity with exhausted compensatory potential.
Пример 4.Example 4
Пациент В., 8 мес. Синдром вегетативной дисфункции: длительное засыпание, поверхностный сон с частыми просыпаниями, диспептические расстройства, слабость сосания. Задержка моторного развития: голову стал удерживать к 4 мес, переворачиваться в 7 мес. Недостаточное развитие мелкой моторики. Мимические нарушения: гипомания, запаздывание формирования улыбки. Лабораторное обследование: активность ЛЭ 260 нмоль/(мин·мл), активность α1-ПИ 45 ИЕ/мл, уровни aAT1 к антигенам нервной ткани 40-50% относительно эталонной сыворотки. Результаты анализа соответствуют текущему деструктивному процессу в ткани мозга средней степени тяжести с выраженным компенсаторным потенциалом.Patient B., 8 months. Vegetative dysfunction syndrome: prolonged falling asleep, superficial sleep with frequent waking up, dyspeptic disorders, weak sucking. Delay in motor development: he began to hold his head for 4 months, turn over in 7 months. Underdevelopment of fine motor skills. Mimic disorders: hypomania, delay in the formation of a smile. Laboratory examination: LE activity 260 nmol / (min · ml), α1-PI activity 45 IU / ml, aAT1 levels to nervous tissue antigens of 40-50% relative to the reference serum. The results of the analysis correspond to the current destructive process in the brain tissue of moderate severity with pronounced compensatory potential.
Claims (2)
- при выявлении активности ЛЭ 201-250 нмоль/(мин·мл) и при уровне аАТ1 и аАТ2 ниже нормы диагностируют деструктивный процесс в ткани мозга легкой степени тяжести;
- при выявлении активности ЛЭ 251-300 нмоль/(мин·мл), активности α1-ПИ выше 35 ИЕ/мл, и при уровне аАТ1 и аАТ2 ниже нормы диагностируют деструктивный процесс в ткани мозга средней степени тяжести с выраженным компенсаторным потенциалом;
- при выявлении активности ЛЭ 251-300 нмоль/(мин·мл), активности α1-ПИ ниже 25 ИЕ/мл и при уровне аАТ1 и аАТ2 ниже нормы диагностируют деструктивный процесс в ткани мозга средней степени тяжести с истощенным компенсаторным потенциалом;
- при выявлении активности ЛЭ выше 300 нмоль/(мин·мл), активности α1-ПИ от 35 до 45 ИЕ/мл и при уровне аАТ1 и аАТ2 выше нормы диагностируют деструктивный процесс в ткани мозга тяжелой степени с недостаточно выраженным компенсаторным потенциалом;
- при выявлении активности ЛЭ выше 300 нмоль/(мин·мл), активности α1-ПИ ниже 35 ИЕ/мл и при уровне аАТ1 и аАТ2 выше нормы диагностируют деструктивный процесс в ткани мозга тяжелой степени с истощенным компенсаторным потенциалом;
- при повышении коэффициента I выше 1,3 судят о более тяжелом деструктивном процессе в ткани мозга.1. A method for laboratory identification of the consequences of perinatal lesions of the central nervous system and their severity in children, including blood sampling, obtaining serum, determining the level of serum autoantibodies to antigens of the nervous tissue aAT1 and aAT2 and their ratio (coefficient I), determining the activity of leukocyte elastase (LE) ), the activity of the α1-proteinase inhibitor (α1-PI) and
- when the activity of LE 201-250 nmol / (min · ml) is detected and when the level of aAT1 and aAT2 is below normal, a destructive process in the brain tissue of mild severity is diagnosed;
- when LE activity of 251-300 nmol / (min · ml) is detected, α1-PI activity is higher than 35 IE / ml, and at aAT1 and aAT2 level below normal, a destructive process in brain tissue of moderate severity with a pronounced compensatory potential is diagnosed;
- upon detection of LE activity of 251-300 nmol / (min · ml), α1-PI activity below 25 IE / ml and at aAT1 and aAT2 level below normal, a destructive process in brain tissue of moderate severity with depleted compensatory potential is diagnosed;
- when detecting LE activity above 300 nmol / (min · ml), α1-PI activity from 35 to 45 IE / ml and at aAT1 and aAT2 levels above normal, a destructive process in the brain tissue of a severe degree with insufficiently expressed compensatory potential is diagnosed;
- when detecting LE activity above 300 nmol / (min · ml), α1-PI activity below 35 IE / ml and at aAT1 and aAT2 levels above normal, a destructive process in the brain tissue of a severe degree with exhausted compensatory potential is diagnosed;
- with an increase in coefficient I above 1.3, a more severe destructive process in the brain tissue is judged.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2010104191/15A RU2425371C1 (en) | 2010-02-10 | 2010-02-10 | Method of laboratory detection of consequences of perinatal central nervous system affections and severity determination in children |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2010104191/15A RU2425371C1 (en) | 2010-02-10 | 2010-02-10 | Method of laboratory detection of consequences of perinatal central nervous system affections and severity determination in children |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2425371C1 true RU2425371C1 (en) | 2011-07-27 |
Family
ID=44753669
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2010104191/15A RU2425371C1 (en) | 2010-02-10 | 2010-02-10 | Method of laboratory detection of consequences of perinatal central nervous system affections and severity determination in children |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2425371C1 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2475747C1 (en) * | 2011-12-15 | 2013-02-20 | Учреждение Российской академии медицинских наук Научный центр здоровья детей РАМН (НЦЗД РАМН) | Method of predicting psychomotor development of children with perinatal affection of central nervous system |
RU2489965C1 (en) * | 2012-03-30 | 2013-08-20 | Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Дополнительного Профессионального Образования "Иркутская Государственная Медицинская Академия Последипломного Образования" | Method of predicting version of minimal brain dysfunction (mbd) course |
RU2648745C1 (en) * | 2016-12-15 | 2018-03-28 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научный центр психического здоровья" | Method of estimation of patient's mental condition with endogenic mental disorders at their clinical examination and method of complex evaluation of the state of the immune system of such patients |
-
2010
- 2010-02-10 RU RU2010104191/15A patent/RU2425371C1/en active
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2475747C1 (en) * | 2011-12-15 | 2013-02-20 | Учреждение Российской академии медицинских наук Научный центр здоровья детей РАМН (НЦЗД РАМН) | Method of predicting psychomotor development of children with perinatal affection of central nervous system |
RU2489965C1 (en) * | 2012-03-30 | 2013-08-20 | Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Дополнительного Профессионального Образования "Иркутская Государственная Медицинская Академия Последипломного Образования" | Method of predicting version of minimal brain dysfunction (mbd) course |
RU2648745C1 (en) * | 2016-12-15 | 2018-03-28 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научный центр психического здоровья" | Method of estimation of patient's mental condition with endogenic mental disorders at their clinical examination and method of complex evaluation of the state of the immune system of such patients |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Stoevesandt et al. | Over-and underestimated parameters in severe Hymenoptera venom–induced anaphylaxis: Cardiovascular medication and absence of urticaria/angioedema | |
Lövheim et al. | Reactivated herpes simplex infection increases the risk of Alzheimer's disease | |
Ayers et al. | Gait dysfunction in motoric cognitive risk syndrome | |
Kafa et al. | Alterations in the brain electrical activity in a rat model of sepsis-associated encephalopathy | |
Hwang et al. | Elevated serum autoantibody against high mobility group box 1 as a potent surrogate biomarker for amyotrophic lateral sclerosis | |
RU2425371C1 (en) | Method of laboratory detection of consequences of perinatal central nervous system affections and severity determination in children | |
CN111602057A (en) | Workflow for risk assessment and patient management using procalcitonin and mesogenic adrenomedullin | |
Werle et al. | Antibodies against serotonin have no diagnostic relevance in patients with fibromyalgia syndrome. | |
Shen et al. | Peripheral vascular endothelial dysfunction in glaucomatocyclitic crisis: a preliminary study | |
Ekman et al. | Fenfluramine treatment of twenty children with autism | |
Ciprandi et al. | Serotonin in allergic rhinitis: a possible role for behavioural symptoms | |
Rafalska et al. | Stratifying risk for progression in IgA nephropathy: how to predict the future | |
Dambinova et al. | Biomarkers for cerebral ischemia as a novel method for validating the efficacy of neurocytoprotectors | |
RU2298188C1 (en) | Method for predicting unfavorable clinical course of uveitis | |
RU2333497C1 (en) | Method predicting chronic renal insufficiency at patients with postcapillarotoxic glomerulonephritis | |
Sadarzanska-Terzieva et al. | Abnormally high levels of anti-collagen type IV IgG antibodies in the serum of patients with a clinically isolated syndrome correlate with an increased risk of conversion to MS | |
RU2782491C1 (en) | Method for preventive assessment of the risk of reducing the level of health of adolescent boys | |
RU2310393C1 (en) | Method for predicting exacerbation of leprous neuropathies in patients at leprosy | |
RU2196334C2 (en) | Method for diagnosing progredient course of cerebral injury disease | |
RU2694193C1 (en) | Method of preventive diagnostics of health level reduction in children arriving from a social catastrophe zone | |
KAREKALPATIL | Study of Microalbuminuria in Essential Hypertension | |
CN1867829A (en) | A method for diagnosing immunity recurrent spontaneous abortion and method for treating and monitoring | |
CN106257287A (en) | The new opplication of the growth and differentiation factor 15 assessment starting apoplexy of hyperpietic | |
Vázquez-Agra et al. | Analysis of inflammatory markers in patients with abnormal circadian rhythm of blood pressure | |
RU2648745C1 (en) | Method of estimation of patient's mental condition with endogenic mental disorders at their clinical examination and method of complex evaluation of the state of the immune system of such patients |