RU2413533C2 - Method for making serum for diagnosing bovine q fever in indirect immunofluorescence test - Google Patents
Method for making serum for diagnosing bovine q fever in indirect immunofluorescence test Download PDFInfo
- Publication number
- RU2413533C2 RU2413533C2 RU2009119959/15A RU2009119959A RU2413533C2 RU 2413533 C2 RU2413533 C2 RU 2413533C2 RU 2009119959/15 A RU2009119959/15 A RU 2009119959/15A RU 2009119959 A RU2009119959 A RU 2009119959A RU 2413533 C2 RU2413533 C2 RU 2413533C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- serum
- antigen
- rabbits
- fever
- hyperimmunization
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Способ получения коксиеллезной сыворотки для реакции непрямой иммунофлуоресценции (РНИФ) относится к методам лабораторной диагностики коксиеллеза (Ку-лихорадки) крупного рогатого скота и может быть использован в ветеринарной медицине.A method for producing coxiellosis serum for the indirect immunofluorescence (RNIF) reaction relates to laboratory methods for the diagnosis of coxiellosis (Q fever) in cattle and can be used in veterinary medicine.
Известны способы получения диагностических сывороток при бруцеллезе, лептоспирозе животных путем гипериммунизации кроликов, используемые для РНИФ, ранее описанные в рефератах российских патентных документов за 1994-2007 г.г. (№№2257581, 2005.07.27, 95117746, 1997.10.10).Known methods for producing diagnostic sera for brucellosis, leptospirosis of animals by hyperimmunization of rabbits, used for RNIF, previously described in abstracts of Russian patent documents for 1994-2007 (No. 22257581, 2005.07.27, 95117746, 1997.10.10).
Однако у известных способов присутствует ряд недостатков:However, the known methods have several disadvantages:
1. Длительные сроки гипериммунизации.1. Long periods of hyperimmunization.
2. Невысокие титры образующихся в крови кроликов антител.2. Low titers of antibodies formed in the blood of rabbits.
3. Низкая активность полученных сывороток.3. Low activity of the obtained sera.
Наиболее близким по технической сущности к заявляемому способу является способ получения микоплазмозных сывороток для РНИФ путем гипериммунизации кроликов по схеме D.Shimmel (1967) в модификации Новиковой Н.Н. (2002), (Новикова Н.Н. Экспресс-методы диагностики ассоциативного урогенитального микоплазмоза плотоядных: дис... канд. вет. наук.: 16.00.03. / Н.Н.Новикова; - Новосибирск - 2002. - С.55-60), который проводится следующим образом:The closest in technical essence to the claimed method is a method for producing mycoplasmous serum for RNIF by hyperimmunization of rabbits according to the scheme D.Shimmel (1967) in the modification of Novikova N.N. (2002), (Novikova NN Express methods for the diagnosis of associative urogenital urogenital mycoplasmosis of carnivores: Candidate of Science in Science: 16.00.03. / NN Novikova; - Novosibirsk - 2002. - P.55 -60), which is carried out as follows:
1. Для гипериммунизации используются трехсуточные культуры микоплазм (M.fermentans, M.canis, M.laidlawii, U.urealyticum). Культуральную жидкость центрифугируют при 6 тыс.оборотах /мин в течение часа. Осадок после трехкратного ресуспендирования в физиологическом растворе и последующего центрифугирования доводят до концентрации 1,7 млрд микробных тел в 1 мл по бактериальному стандарту мутности.1. Three-day cultures of mycoplasmas (M.fermentans, M.canis, M.laidlawii, U.urealyticum) are used for hyperimmunization. The culture fluid is centrifuged at 6 thousand rpm for 1 hour. The precipitate after triple resuspension in physiological saline and subsequent centrifugation was adjusted to a concentration of 1.7 billion microbial bodies in 1 ml according to the bacterial turbidity standard.
2. Гипериммунизацию проводят на 12 кроликах (по 3 головы на каждый штамм) весом 2,5-3 кг. Суть гипериммунизации состоит в дробном внутривенном введении антигена кроликам каждые три дня с двукратным применением иммуностимулятора левамизола подкожно.2. Hyperimmunization is carried out on 12 rabbits (3 heads for each strain) weighing 2.5-3 kg. The essence of hyperimmunization is the fractional intravenous administration of antigen to rabbits every three days with a double use of the levamisole immunostimulant subcutaneously.
Динамику синтеза антител изучают на 7, 14, 21 и 30 сутки после первого введения антигена в реакции непрямой иммунофлуоресценции, которую ставят на предметных стеклах по стандартной методике, учет реакции проводят в крестах, свечение менее чем на два креста считают отрицательным. В качестве антигенов в РНИФ применяют 1 млрд взвеси микоплазм, инактивированных на водяной бане при 70°С - 30 мин. На 30-е сутки всех кроликов тотально обескровливают и получают микоплазмозные диагностические сыворотки.The dynamics of antibody synthesis is studied on the 7th, 14th, 21st and 30th days after the first injection of antigen in the indirect immunofluorescence reaction, which is set on glass slides according to the standard method, the reaction is recorded in crosses, the glow of less than two crosses is considered negative. In the RNIF, 1 billion suspensions of mycoplasmas inactivated in a water bath at 70 ° C for 30 minutes are used as antigens. On the 30th day, all rabbits are completely bled and receive mycoplasmosis diagnostic sera.
Наиболее высокий уровень антител регистрируется на 21-30 дни после гипериммунизации, который колеблется в пределах 1:320-1:640 соответственно (табл.2).The highest level of antibodies is recorded at 21-30 days after hyperimmunization, which ranges from 1: 320-1: 640, respectively (Table 2).
Цель нашего изобретения - получение коксиеллезной сыворотки для диагностики коксиеллеза крупного рогатого скота в реакции непрямой иммунофлуоресценции путем гипериммунизации кроликов.The purpose of our invention is the production of coxiellosis serum for the diagnosis of cattle coxiellosis in the reaction of indirect immunofluorescence by hyperimmunization of rabbits.
Поставленная цель достигается при соблюдении ряда приемов:The goal is achieved while observing a number of techniques:
1. Получение антигена из вакцины Ку-риккетсиозной сухой живой М-44 производства НИИЭиМ им. Н.Ф.Гамалеи.1. Obtaining antigen from the vaccine Kuricketsiosis dry live M-44 production NIIEiM them. N.F. Gamalei.
2. Гипериммунизация кроликов путем дробного внутривенного введения антигена каждые три, четыре дня с применением иммуностимулятора левамизола.2. Hyperimmunization of rabbits by fractional intravenous administration of antigen every three, four days using the immunostimulant levamisole.
Описание метода получения сыворотки:Description of the method of obtaining serum:
Для гипериммунизации используется антиген, полученный из вакцинного штамма С.burnetii М-44. Вакцину разводили стандартным разбавителем и прогревали на водяной бане при +70° в течение 30 минут с целью инактивации возбудителя.For hyperimmunization, an antigen obtained from the vaccine strain C. burnetii M-44 is used. The vaccine was diluted with a standard diluent and warmed up in a water bath at + 70 ° C for 30 minutes in order to inactivate the pathogen.
Затем стерильным физиологическим раствором доводили до концентрации 1,7×109 микробных тел в 1 мл по ОСМ ГИСК им. Л.А.Тарасевича. Гипериммунизацию проводили на 2 кроликах породы шиншилла весом 2,5-3 кг по схеме, указанной в таблице 3.Then, sterile saline was adjusted to a concentration of 1.7 × 10 9 microbial bodies in 1 ml according to the OSM GISK named after L.A. Tarasevich. Hyperimmunization was carried out on 2 chinchilla rabbits weighing 2.5-3 kg according to the scheme shown in table 3.
Титры антител учитывали на 7, 14, 21 и 30 сутки после введения антигена в РНИФ, антиген для которой готовили из этого же штамма и использовали после прогревания в водяной бане при 70°С в течение 30 мин в концентрации 0,85 млрд м.т., т.к. было установлено, что при данной концентрации антигена реакция более демонстративна. Из полученной гипериммунной сыворотки готовили ряд последовательных двукратных разведений на физиологическом растворе, начиная с 1:10. Разведения делали микродозатором в пластиковых планшетах.Antibody titers were taken into account on days 7, 14, 21, and 30 after administration of the antigen in RNIF, the antigen for which was prepared from the same strain and used after heating in a water bath at 70 ° C for 30 min at a concentration of 0.85 billion mt ., as it was found that at a given concentration of antigen, the reaction is more demonstrative. From the obtained hyperimmune serum, a series of serial two-fold dilutions in physiological saline was prepared, starting at 1:10. Dilutions were made with a microdoser in plastic tablets.
Постановка РНИФRNIF staging
Реакцию непрямой иммунофлуоресценции ставили по следующей методике. На чистые тщательно обезжиренные без царапин предметные стекла наносили параллельно друг другу несколько капель антигена. Антигены высушивали и фиксировали над пламенем спиртовки. Затем на каждую каплю антигена наносили равную по объему каплю сыворотки из каждого разведения, начиная с последнего. Одновременно ставили контроль:The indirect immunofluorescence reaction was performed using the following procedure. Several clean drops of antigen were applied parallel to each other on clean, thoroughly degreased, non-scratch slides. Antigens were dried and fixed over the flame of an alcohol lamp. Then, an equal volume drop of serum from each dilution, starting from the last, was applied to each drop of antigen. At the same time they put control:
1) антиген+сыворотка положительная;1) antigen + serum is positive;
2) антиген+сыворотка отрицательная;2) antigen + serum negative;
3) антиген+физиологический раствор.3) antigen + saline.
Стекла выдерживали во влажной камере при 37-38°С в течение 50-60 минут для образования комплекса антиген - антитело. После чего их промывали дистиллированной водой от не связавшихся антител, подсушивали и наносили в красящем титре (подобранном опытным путем) ослиный антикроличий глобулин, меченный ФИТЦ. Затем стекла помещали на 15-20 минут во влажную камеру при температуре 37-38°С. По истечении этого времени мазки промывали дистиллированной водой, просушивали и просматривали в люминесцентном микроскопе при увеличении ×1500.The glasses were kept in a humid chamber at 37-38 ° C for 50-60 minutes to form an antigen-antibody complex. After that, they were washed with distilled water from unbound antibodies, dried and applied in a coloring titer (selected experimentally) a donkey anti-rabbit globulin labeled with FITC. Then the glass was placed for 15-20 minutes in a humid chamber at a temperature of 37-38 ° C. After this time, the smears were washed with distilled water, dried and examined under a luminescent microscope at a magnification of × 1500.
Интенсивность свечения оценивали в крестах:The intensity of the glow was evaluated in crosses:
1) очень яркая люминесценция по периферии микробной клетки, четко контрастирующая с телом клетки - ++++;1) very bright luminescence on the periphery of the microbial cell, clearly contrasting with the cell body - ++++;
2) яркая люминесцирующая периферия клетки - +++;2) bright luminescent cell periphery - +++;
3) слабое свечение периферии клетки - ++ или +;3) a weak glow of the periphery of the cell - ++ or +;
4) при отрицательной реакции люминесценция клеток отсутствует.4) with a negative reaction, cell luminescence is absent.
За положительный результат принимали яркое специфическое свечение контуров микробов в виде ободков с оценкой в 3 и 4 креста; сомнительные результаты оценивали в 2 креста при наличии слабого свечения контуров клеток.For a positive result, a bright specific glow of the contours of microbes in the form of rims with an assessment of 3 and 4 crosses was taken; dubious results were evaluated at 2 crosses in the presence of a weak glow of cell contours.
При этом высокий уровень антител регистрировали на 30 сутки после начала гипериммунизации, который доходил до уровня 1:1280 (табл.4).At the same time, a high level of antibodies was recorded on the 30th day after the start of hyperimmunization, which reached the level of 1: 1280 (Table 4).
Контроль на чувствительность, специфичность и активность коксиеллезной сыворотки в РНИФ.Control for the sensitivity, specificity and activity of coxiella serum in RNIF.
Для изучения чувствительности, видовой специфичности и активности использовали кроличьи коксиеллезные сыворотки в разведениях: 1:10, 1:40, 1:80, 1:160, 1:320, 1:640, 1:1280, 1:2560, 1:5120, коксиеллезный антиген, полученный вышеописанным способом и гетерологичные антигены (табл.5). Сыворотка, полученная путем гипериммунизации кроликов коксиеллезным антигеном, с разведениия 1:10 была строго специфична к коксиеллезному антигену с высоким уровнем активности антител в титре 1:1280.To study the sensitivity, species specificity and activity, rabbit coxiella serum was used in dilutions: 1:10, 1:40, 1:80, 1: 160, 1: 320, 1: 640, 1: 1280, 1: 2560, 1: 5120 , coxiellosis antigen obtained by the above method and heterologous antigens (table 5). Serum obtained by hyperimmunization of rabbits with a coxiellosis antigen with a 1:10 dilution was strictly specific for a coxiella antigen with a high level of antibody activity in a titer of 1: 1280.
Приемущество данного способа получения противококсиеллезной сыворотки в более высоких диагностических титрах антител и возможность использования полученной сыворотки для диагностики коксиеллеза крупного рогатого скота в РНИФ.The advantage of this method of producing antioxidant serum in higher diagnostic antibody titers and the possibility of using the obtained serum for the diagnosis of cattle coxiellosis in RNIF.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009119959/15A RU2413533C2 (en) | 2009-05-26 | 2009-05-26 | Method for making serum for diagnosing bovine q fever in indirect immunofluorescence test |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009119959/15A RU2413533C2 (en) | 2009-05-26 | 2009-05-26 | Method for making serum for diagnosing bovine q fever in indirect immunofluorescence test |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2009119959A RU2009119959A (en) | 2010-12-10 |
RU2413533C2 true RU2413533C2 (en) | 2011-03-10 |
Family
ID=46305995
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2009119959/15A RU2413533C2 (en) | 2009-05-26 | 2009-05-26 | Method for making serum for diagnosing bovine q fever in indirect immunofluorescence test |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2413533C2 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2482875C1 (en) * | 2011-12-06 | 2013-05-27 | Войсковая Часть 41598 | Method for preparing hyperimmune rickettsial serums |
RU2557951C1 (en) * | 2014-05-27 | 2015-07-27 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "ФНИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи" Минздрава России) | Method for producing multiplex rickettsial diagnostic preparation |
US10688129B2 (en) | 2013-11-26 | 2020-06-23 | Central Biomedia, Inc. | Method of producing a designer blood product, method of using a designer blood product, and diet for selectively enhancing blood profile |
-
2009
- 2009-05-26 RU RU2009119959/15A patent/RU2413533C2/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
JOHNSON J.W. et al., Biological properties of M-44 strain of Coxiella burnetti, J.Infect.Dis., 1976, 133, 334-338. * |
НОВИКОВА Н.Н. Экспресс-методы диагностики ассоциативного урогенитального микоплазмоза плотоядных, дисс. на соиск. уч. стен. канд. вет. наук, Новосибирск, 2002, с.55-60. * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2482875C1 (en) * | 2011-12-06 | 2013-05-27 | Войсковая Часть 41598 | Method for preparing hyperimmune rickettsial serums |
US10688129B2 (en) | 2013-11-26 | 2020-06-23 | Central Biomedia, Inc. | Method of producing a designer blood product, method of using a designer blood product, and diet for selectively enhancing blood profile |
US11419893B2 (en) | 2013-11-26 | 2022-08-23 | Central Biomedia, Inc. | Method of producing a designer blood product, method of using a designer blood product, and diet for selectively enhancing blood profile |
RU2557951C1 (en) * | 2014-05-27 | 2015-07-27 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "ФНИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи" Минздрава России) | Method for producing multiplex rickettsial diagnostic preparation |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2009119959A (en) | 2010-12-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Taylor-Robinson et al. | A colour test for the measurement of antibody to certain mycoplasma species based upon the inhibition of acid production | |
Cradock-Watson et al. | IgG, IgA and IgM responses in acute rubella determined by the immunofluorescent technique | |
RU2413533C2 (en) | Method for making serum for diagnosing bovine q fever in indirect immunofluorescence test | |
NO832407L (en) | PREPARATION FOR USE IN DIAGNOSIS OF CHLAMYDIAL INFECTIONS. | |
Robardet et al. | Comparative assay of fluorescent antibody test results among twelve European National Reference Laboratories using various anti-rabies conjugates | |
Romero et al. | Identification of group B streptococci by immunofluorescence staining | |
Whang et al. | Immunogenicity of the common enterobacterial antigen produced by smooth and rough strains | |
Carter et al. | Specific staining of various bacteria with a single fluorescent antiglobulin | |
US4666851A (en) | Specific mycoplasma membrane antigen and antibody and their clinical applications | |
CN102435732A (en) | Toxoplasma IgM antibody immunoblotting kit and preparation method thereof | |
Roy et al. | Biochemical and immunological characterization of anthrax spore vaccine in goat. | |
Safiulah et al. | Laboratory methods for diagnosing leptospirosis: a review | |
RU2368393C2 (en) | Serum collection method for diagnostics of anaplasmosis of cattle in reaction of indirect immunofluorescence by means of hyperimmunisation of rabbits | |
Saba et al. | Anti-Trypanosoma cruzi cross-reactive antibodies detected at high rate in non-exposed individuals living in non-endemic regions: seroprevalence and association to other viral serologies | |
CN108948185B (en) | Alliin antigen and rabbit alliin antibody obtained by immune response of alliin antigen | |
RU2355422C1 (en) | Method of obtaining mycoplasmosis diagnostic serums for indirect immunofluorescence reaction by rabbit hyperimmunisation | |
RU2394496C1 (en) | Syphilis diagnostic technique by simultaneous detection of reaginic and treponema-specific t pallidum antibodies on microscope aldehyde slides | |
Bradbury | The use of chicken antiserum for the identification of avian mycoplasmas by immunofluorescence | |
Cakir-Koc et al. | Conjugation and Characterization of Latex Particles with Toxoplasma gondii–specific Immunoglobulin Y Antibodies for Diagnostic Aim and Evaluation Efficiency in In Vitro Culture | |
US20170160275A1 (en) | Blood-based lateral-flow dipstick assay for detection of enteric fever | |
RU2449290C2 (en) | Method of obtaining erythrocytic antigenic diagnosticum | |
Fedorchenko et al. | Medical microbiology: guide for preparing for the licensed integrated exam “Krok 1 | |
Celli | Intracellular localization of Brucella abortus and Francisella tularensis in primary murine macrophages | |
RU2451083C1 (en) | Method for detecting bacterial antigens | |
RU2800470C1 (en) | Method of obtaining a monoclonal peroxidase conjugate for the identification of typical and atypical strains of vibrio cholerae o1, including r-variants in dot-elisa |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20120527 |