RU2391409C1 - METHOD OF DECTING PASTEURELLA AND/OR Pseudomonas Aeruginosa bacteria - Google Patents
METHOD OF DECTING PASTEURELLA AND/OR Pseudomonas Aeruginosa bacteria Download PDFInfo
- Publication number
- RU2391409C1 RU2391409C1 RU2008144155/13A RU2008144155A RU2391409C1 RU 2391409 C1 RU2391409 C1 RU 2391409C1 RU 2008144155/13 A RU2008144155/13 A RU 2008144155/13A RU 2008144155 A RU2008144155 A RU 2008144155A RU 2391409 C1 RU2391409 C1 RU 2391409C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- pasteurella
- pseudomonas aeruginosa
- microorganisms
- genomic dna
- genus
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к ветеринарной микробиологии и биотехнологии, а именно к способам определения геномной дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) микроорганизмов.The invention relates to veterinary microbiology and biotechnology, and in particular to methods for determining the genomic deoxyribonucleic acid (DNA) of microorganisms.
Микроорганизмы рода Pasteurella, например Pasteurella multocida, Pasteurella galisepticum, Pasteurella haemolyticum, нередко локализуются в респираторной системе сельскохозяйственной птицы и животных. Возникновение псевдомоноза, вызванного Pseudomonas aeruginosa, также часто сопровождается патологией респираторной системы, поэтому, с одной стороны, существует потребность в дифференциальной диагностике пастереллеза и псевдомоноза, с другой стороны, необходим контроль носительства этих инфекций путем исследования проб биоматериала из респираторной системы. Таким образом, актуальна разработка более доступных достаточно точных методов молекулярной диагностики. Microorganisms of the genus Pasteurella, for example, Pasteurella multocida, Pasteurella galisepticum, Pasteurella haemolyticum, are often localized in the respiratory system of poultry and animals. The occurrence of pseudomonosis caused by Pseudomonas aeruginosa is also often accompanied by pathology of the respiratory system, therefore, on the one hand, there is a need for differential diagnosis of pasteurellosis and pseudomonosis, on the other hand, it is necessary to control the carriage of these infections by examining biomaterial samples from the respiratory system. Thus, the development of more affordable sufficiently accurate methods of molecular diagnostics is relevant.
Известен способ обнаружения ДНК Pseudomonas aeruginosa с помощью полимеразной цепной реакции (Theodore Spilker, Tom Coenye, Peter Vandamme, and John J. LiPuma PCR-Based Assay for Differentiation of Pseudomonas aeruginosa from Other Pseudomonas Species Recovered from Cystic Fibrosis Patients / Journal of Clinical Microbiology, May 2004, p.2074-2079, Vol.42, No.5). Для проведения реакции используют праймеры PA-SS-F GGGGGATCTTCGGACCTCA, PA-SS-R TCCTTAGAGTGCCCACCCG, программа амплификации состоит из следующих этапов: 95°С - 40 сек; 58°С - 40 сек, 72°С - 40 сек (30 циклов).A known method for detecting Pseudomonas aeruginosa DNA using a polymerase chain reaction (Theodore Spilker, Tom Coenye, Peter Vandamme, and John J. LiPuma PCR-Based Assay for Differentiation of Pseudomonas aeruginosa from Other Pseudomonas Species Recovered from Cystic Fibrosis Patients / Journal of Clinical Micro May 2004, p.2074-2079, Vol. 42, No.5). For the reaction, primers PA-SS-F GGGGGATCTTCGGACCTCA, PA-SS-R TCCTTAGAGTGCCCACCCG are used, the amplification program consists of the following steps: 95 ° C - 40 sec; 58 ° С - 40 sec; 72 ° С - 40 sec (30 cycles).
Однако данный способ не позволяет одновременно выявлять геномную ДНК пастерелл, а также заявлен авторами как способ прямой детекции Pseudomonas aeruginosa у людей больных фиброзным циститом. Таким образом, данный способ не адаптирован для исследования организма птиц.However, this method does not simultaneously detect the genomic DNA of pasteurells, and is also claimed by the authors as a way of direct detection of Pseudomonas aeruginosa in people with fibrous cystitis. Thus, this method is not adapted for the study of the organism of birds.
Наиболее близким по технической сущности к заявляемому и взятый за прототип является способ, основанный на мультиплексной полимеразной цепной реакции (ПЦР). (Henrik Christensen, Magne Bisgaard, Jesper Larsen, and John Elmerdahl Olsen PCR-Detection of Hemophilus paragallinarum, Hemophilus somnus, Mannheimia (Pasteurella) hemolytica, Mannheimia spp., Pasteurella trehalosi, and Pasteurella multocida / Metods in molecular biology. PCR detection of microbial pathogens. Vol.216 p.259-273). В данном способе существует возможность одновременной детекции геномной ДНК нескольких видов микроорганизмов. Недостаток данного способа заключается в невозможности определения геномной ДНК P.aeruginosa одновременно с детекцией микроорганизмов рода Pasteurella.The closest in technical essence to the claimed and taken as a prototype is a method based on multiplex polymerase chain reaction (PCR). (Henrik Christensen, Magne Bisgaard, Jesper Larsen, and John Elmerdahl Olsen PCR-Detection of Hemophilus paragallinarum, Hemophilus somnus, Mannheimia (Pasteurella) hemolytica, Mannheimia spp., Pasteurella trehalosi, and Pasteurella trehalosi, and biological Microdials pathogens. Vol. 216 p. 259-273). In this method, it is possible to simultaneously detect the genomic DNA of several types of microorganisms. The disadvantage of this method is the inability to determine the genomic DNA of P.aeruginosa simultaneously with the detection of microorganisms of the genus Pasteurella.
Технической задачей заявляемого решения является одновременное выявление микроорганизмов рода Pasteurella и Pseudomonas aeruginosa с использованием олигонуклеотидных праймеров, позволяющих проводить ПЦР в дуплексном режиме.The technical task of the proposed solution is the simultaneous identification of microorganisms of the genus Pasteurella and Pseudomonas aeruginosa using oligonucleotide primers that allow for PCR in duplex mode.
Поставленная техническая задача решается тем, что в способе выявления микроорганизмов рода Pasteurella и/или Pseudomonas aeruginosa, включающем отбор биоматериала из внутренних органов, исследование на наличие геномной ДНК микроорганизмов рода Pasteurella и Pseudomonas aeruginosa в полимеразной цепной реакции с использованием двух пар праймеров, согласно изобретению, для выявления наличия в биологическом материале микроорганизмов рода Pasteurella используют олигонуклеотидные праймеры, комплементарные области гена 16 S рибосомальной РНК микроорганизмов рода Pasteurella, имеющие следующий нуклеотидный состав: 5'-TGCCATAAGATGAGCCCAAGT-3', 5'-GCCCTTTACGCCCAGTTA-3', а для определения наличия в биологическом материале Pseudomonas aeruginosa используют синтетические олигонуклеотидные праймеры, комплементарные области гена «putative protein» Pseudomonas aeruginosa, имеющие следующий нуклеотидный состав: 5'-GCTATCCCCCTGGTTCCATT-3' и 5'-GACATCTCCATAGGGACCGC-3, продукты ПЦР разделяют методом горизонтального электрофореза в 2% агарозе, результаты ПЦР учитывают визуализируя окрашенный бромистым этидием ПЦР-продукт в ультрафиолетовом свете; при наличии в исследуемом биоматериале геномной ДНК микроорганизмов рода Pasteurella образуется ампликон размерами 360 п.н., а при наличии геномной ДНК Pseudomonas aeruginosa 283 п.н.The stated technical problem is solved in that in a method for detecting microorganisms of the genus Pasteurella and / or Pseudomonas aeruginosa, comprising selecting biomaterial from internal organs, examining the genomic DNA of microorganisms of the genus Pasteurella and Pseudomonas aeruginosa in a polymerase chain reaction using two pairs of primers, according to the invention, To detect the presence in the biological material of microorganisms of the Pasteurella genus, oligonucleotide primers are used, complementary regions of the 16 S gene of the ribosomal RNA of microorganisms of the Pasteurella genus, having the following nucleotide composition: 5'-TGCCATAAGATGAGCCCCCAAGT-3 ', 5'-GCCCTTTACGCCCAGTTA-3', and to determine the presence of Pseudomonas aeruginosa biological material, synthetic oligonucleotide primers complementary to the putative protein nucleotide nucleotide nucleotide nucleotide nucleotide nucleotide nucleotide nucleotide nucleotide nucleotide nucleotide composition are used: 5'-GCTATCCCCCCTGGTTCCATT-3 'and 5'-GACATCTCCATAGGGACCGC-3, the PCR products are separated by horizontal electrophoresis in 2% agarose, PCR results are taken into account by visualizing the ethidium bromide stained PCR product in ultraviolet light; in the presence of genomic DNA of microorganisms of the Pasteurella genus in the studied biomaterial, an amplicon of 360 bp is formed, and in the presence of genomic DNA of Pseudomonas aeruginosa 283 bp
Способ осуществляют следующим образом.The method is as follows.
Материал: пробы патологического материала сельскохозяйственных животных или птицы.Material: samples of pathological material of farm animals or poultry.
Отбор материала: пробы внутренних органов (например, печени) отбирают любым пригодным для последующей постановки ПЦР способом.Material sampling: samples of internal organs (e.g., liver) are taken by any method suitable for subsequent PCR formulation.
Традиционным способом производят выделение ДНК.In the traditional way, DNA is isolated.
Для постановки ПЦР реакцию проводят по следующему температурному режиму (табл.1):For PCR, the reaction is carried out according to the following temperature conditions (table 1):
В реакции используют праймеры со следующими нуклеотидными последовательностями:The reaction uses primers with the following nucleotide sequences:
5'-TGCCATAAGATGAGCCCAAGT-3',5'-TGCCATAAGATGAGCCCAAGT-3 ',
5'-GCCCTTTACGCCCAGTTA-3'5'-GCCCTTTACGCCCAGTTA-3 '
5'-GCTATCCCCCTGGTTCCATT-3'5'-GCTATCCCCCTGGTTCCATT-3 '
5'-GACATCTCCATAGGGACCGC-3.5'-GACATCTCCATAGGGACCGC-3.
Продукты ПЦР разделяют методом горизонтального электрофореза в 2% агарозе. Результаты ПЦР учитывают, визуализируя окрашенный бромистым этидием ПНР-продукт (ампликон) в ультрафиолетовом свете. В случае положительной реакции на Р. aeruginosa в электрофорезе появляется фрагмент ДНК размером 283 п.н., а в случае положительной реакции на микроорганизмы рода Pasteurella размер ампликона 360 п.н.PCR products are separated by horizontal electrophoresis in 2% agarose. PCR results are taken into account by visualizing an ethidium bromide-stained PNR product (amplicon) in ultraviolet light. In the case of a positive reaction to P. aeruginosa, a 283 bp DNA fragment appears in electrophoresis, and in the case of a positive reaction to microorganisms of the Pasteurella genus, the amplicon is 360 bp in size.
Для иллюстрации способа приведены примеры.Examples are provided to illustrate the method.
Пример 1. Для исследования отбирали материал от 10 голов птицы, павшей с признаками пневмонии (легкие).Example 1. For the study, material was selected from 10 birds that died with signs of pneumonia (lungs).
Геномную ДНК выделяли стандартным силико-сорбционным методом.Genomic DNA was isolated by a standard silico-sorption method.
ПЦР проводили в конечном объеме 25 мкл, содержащем 67 мМ трис-HCl (pH 8,9), 16 мМ сульфат аммония; 2,4 мМ MgCl2; 0,01% Твин 20; 0,2 mM дНТФ; 0,5 mкМ растворы олигонуклеотидных праймеров, 5'-TGCCATAAGATGAGCCCAAGT-3', 5'-GCCCTTTACGCCCAGTTA-3', 5'- GCTATCCCCCTGGTTCCATT-3, 5'-GACATCTCCATAGGGACCGC-3. 1ED Taq-полимеразы и 5 мкл исследуемой пробы. Помимо проб ставили реакции с заведомо положительным и отрицательным контролями.PCR was performed in a final volume of 25 μl containing 67 mM Tris-HCl (pH 8.9), 16 mM ammonium sulfate; 2.4 mM MgCl 2 ; 0.01% Tween 20; 0.2 mM dNTP; 0.5 μM solutions of oligonucleotide primers, 5'-TGCCATAAGATGAGCCCAAGT-3 ', 5'-GCCCTTTACGCCCAGTTA-3', 5'-GCTATCCCCCTGGTTCCATT-3, 5'-GACATCTCCATAGGGACCGC-3. 1ED Taq polymerase and 5 μl of the test sample. In addition to samples, reactions were set with obviously positive and negative controls.
Поиск праймеров осуществляли с использованием программ «Vektor NTI Suit», «Pimer premier 5.0». Специфичность взаимодействия моделируют с использованием программы «Blast» на основе нуклеотидных последовательностей различных видов микроорганизмов, представленных в базе данных GenBank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Genbank/GenbankSearch.html). Для исключения конкурентного ингибирования реакции праймерами и ампликонами дополнительно уделяли внимание подбору праймеров не образующих гетеродуплексы, имеющих близкие температуры отжига и формирующие ампликоны, различающиеся в длине, не менее чем на 20 п.н. и не более чем на 100 п.н.Search for primers was carried out using the programs "Vektor NTI Suit", "Pimer premier 5.0". The specificity of the interaction is modeled using the Blast program based on the nucleotide sequences of various types of microorganisms presented in the GenBank database (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Genbank/GenbankSearch.html). To exclude competitive inhibition of the reaction by primers and amplicons, additional attention was paid to the selection of primers that do not form heteroduplexes, which have similar annealing temperatures and form amplicons that differ in length by at least 20 bp. and not more than 100 bp
Реакцию проводили на амплификаторе «Терцик» с начальной денатурацией при 95°С 1 мин, далее в течение 45 циклов с денатурацией при 95°С 30 сек, отжигом при температуре 63°С в течение 30 сек и синтезом при 72°С 30 сек.The reaction was carried out on a Tertsik thermocycler with initial denaturation at 95 ° C for 1 min, then for 45 cycles with denaturation at 95 ° C for 30 sec, annealing at 63 ° C for 30 sec, and synthesis at 72 ° C for 30 sec.
Продукты ПНР разделяли методом горизонтального электрофореза в 2% агарозе. Результаты ПЦР учитывали, визуализируя окрашенный бромистым этидием ПЦР-продукт (ампликон) в ультрафиолетовом свете. А в пробах был обнаружен фрагмент ДНК размером 283 п.н., что позволило установить факт инфицирования цыплят Р. aeruginosa.NDP products were separated by horizontal electrophoresis in 2% agarose. PCR results were taken into account by visualizing ethidium bromide stained PCR product (amplicon) in ultraviolet light. A DNA fragment of 283 bp was detected in the samples, which made it possible to establish the fact of infection of P. aeruginosa chickens.
Пример 2. С целью подтверждения специфичности используемой ПЦР, данную реакцию ставили с геномной ДНК различных микроорганизмов и вирусов, которые могут присутствовать в организме птицы (табл.2).Example 2. In order to confirm the specificity of the PCR used, this reaction was performed with the genomic DNA of various microorganisms and viruses that may be present in the bird organism (Table 2).
Таким образом, в приведенном примере видна достаточная специфичность предложенной нами реакции.Thus, in the given example, sufficient specificity of the reaction proposed by us is visible.
Пример 3. Для оценки чувствительности метода была проведена серия десятикратных разведений бактериальных суспензий Р aeruginosa и Р. multocida с исходной концентрацией 1*106 КОЕ/мл. После этого с каждым разведением была поставлена ПЦР с использованием заявляемого способа и ПЦР приведенных в качестве аналога и прототипа (табл.3).Example 3. To assess the sensitivity of the method, a series of ten-fold dilutions of bacterial suspensions of P aeruginosa and P. multocida was carried out with an initial concentration of 1 * 10 6 CFU / ml. After that, with each dilution, PCR was performed using the proposed method and PCR are given as an analog and prototype (table 3).
Пример 4. Использование заявляемого способа для контроля динамики инфицированности микроорганизмами рода Pasteurella у птицы различного возраста показало, что в неблагополучных стадах 20%-ный уровень инфицированности достигается уже к 10 дневному возрасту. Однако проявление клинических признаков заболевания обнаруживается к 50 дню у несушки и к 40 дню у цыплят бройлеров. Как показывают наши исследования, при пастереллезах отмечается ярко выраженная возрастная манифестация болезни, т.е. молодняк не заболевает при заражении пастереллезом. Исследование инфицированности пастереллами клинически здоровой птицы показало, что инфицированность сохраняется в пределах 10% с 10 по 50 день.Example 4. The use of the proposed method for controlling the dynamics of infection with microorganisms of the genus Pasteurella in birds of different ages showed that in dysfunctional herds, a 20% level of infection is reached by 10 days of age. However, the manifestation of the clinical signs of the disease is detected by day 50 in the laying hen and by day 40 in broiler chickens. As our studies show, with pasteurellosis there is a pronounced age-related manifestation of the disease, i.e. young animals do not get sick when infected with pasteurellosis. A study of pasturella infection of a clinically healthy bird showed that infection remains within 10% from 10 to 50 days.
Таким образом, заявляемый способ позволяет более точно и в более ранние сроки оценивать инфицированность сельскохозяйственной птицы и животных микроорганизмами группы Pasteurella и P.aeruginosa.Thus, the claimed method allows more accurately and at an earlier time to assess the infection of poultry and animals with microorganisms of the group Pasteurella and P.aeruginosa.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008144155/13A RU2391409C1 (en) | 2008-11-06 | 2008-11-06 | METHOD OF DECTING PASTEURELLA AND/OR Pseudomonas Aeruginosa bacteria |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008144155/13A RU2391409C1 (en) | 2008-11-06 | 2008-11-06 | METHOD OF DECTING PASTEURELLA AND/OR Pseudomonas Aeruginosa bacteria |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2391409C1 true RU2391409C1 (en) | 2010-06-10 |
Family
ID=42681531
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2008144155/13A RU2391409C1 (en) | 2008-11-06 | 2008-11-06 | METHOD OF DECTING PASTEURELLA AND/OR Pseudomonas Aeruginosa bacteria |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2391409C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2477321C1 (en) * | 2012-02-20 | 2013-03-10 | Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ИЭВСиДВ Россельхозакадемии) | Method to detect pathogenic strains and isolates of bacteria pasteurella multocida |
RU2551962C1 (en) * | 2014-05-20 | 2015-06-10 | Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ИЭВСиДВ Россельхозакадемии) | METHOD OF DETECTING AND GENOTYPING BACTERIA Pasteurella multocida OF CATTLE OF SEROGROUPS A, B, D, E, F IN MULTIPLEX POLYMERASE CHAIN REACTION |
-
2008
- 2008-11-06 RU RU2008144155/13A patent/RU2391409C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
CHRISTENSEN H. ET AL., PCR-detection of Hemophilus paragallinarum, Hemophilus somnus, Mannheimia (Pasteurella) hemolytica, Mannheimia spp., Pasteurella trehalosi, and Pasteurella multocida, Methods Mol Biol., 2003, v.216, p.257-74. SPILKER T. ET AL. PCR-based assay for differentiation of Pseudomonas aeruginosa from other Pseudomonas species recovered from cystic fibrosis patients, J Clin Microbiol. 2004, v.42, n.5, p.2074-9. DAVIES R.L. ET AL. Phylogenetic relationships and diversity within the Pasteurella haemolytica complex based on 16S rRNA sequence comparison and outer membrane protein and lipopolysaccharide analysis, Int. J. Syst. BacterioL, 1996, v.46, n.3, p.736-744. KONG K.F ET AL. Characterization of poxB, a chromosomal-encoded Pseudomonas aeruginosa oxacillinase, 2005, Gene, v.358, p.82-92. SPENCER D.H. ET AL. Whole-Genome-Sequence variation among multiple isolates of Psedomonas aeruginosa library, 2002, J. Bacteriol. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2477321C1 (en) * | 2012-02-20 | 2013-03-10 | Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ИЭВСиДВ Россельхозакадемии) | Method to detect pathogenic strains and isolates of bacteria pasteurella multocida |
RU2551962C1 (en) * | 2014-05-20 | 2015-06-10 | Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ИЭВСиДВ Россельхозакадемии) | METHOD OF DETECTING AND GENOTYPING BACTERIA Pasteurella multocida OF CATTLE OF SEROGROUPS A, B, D, E, F IN MULTIPLEX POLYMERASE CHAIN REACTION |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Phuektes et al. | Multiplex polymerase chain reaction assay for simultaneous detection of Staphylococcus aureus and streptococcal causes of bovine mastitis | |
Duremdez et al. | Isolation of Streptococcus agalactiae from cultured silver pomfret, Pampus argenteus (Euphrasen), in Kuwait | |
Slana et al. | Distribution of Mycobacterium avium subsp. avium and M. a. hominissuis in artificially infected pigs studied by culture and IS901 and IS1245 quantitative real time PCR | |
Park et al. | Detection of Escherichia coli O157: H7, Salmonella spp., Staphylococcus aureus and Listeria monocytogenes in kimchi by multiplex polymerase chain reaction (mPCR) | |
EP3172337A1 (en) | Method for the detection of sepsis | |
Yong et al. | Identification of Brucella spp. isolated from human brucellosis in Malaysia using high-resolution melt (HRM) analysis | |
CN110714090A (en) | Kit for detecting free nucleic acid of blood stream infection pathogen in blood plasma | |
EP3250709B1 (en) | Compositions and methods for rapid detection of salmonella | |
Kalorey et al. | PCR analysis of Pasteurella multocida isolates from an outbreak of pasteurellosis in Indian pigs | |
RU2391409C1 (en) | METHOD OF DECTING PASTEURELLA AND/OR Pseudomonas Aeruginosa bacteria | |
Zhang et al. | Sensitive and rapid detection of Trueperella pyogenes using loop-mediated isothermal amplification method | |
WO2015103710A1 (en) | Methods, reagents and kits for the assessment of bacterial infection | |
KR101960016B1 (en) | Composition for detecting pathogens of respiratory disease, and using the same | |
US7041482B2 (en) | Oligonucleotide primers having SEQ ID NOs. 1 to 21 and a process for detection of parasite Salmonella using oligonucleotide primers | |
Christensen et al. | PCR-detection of Hemophilus paragallinarum, Hemophilus somnus, Mannheimia (Pasteurella) hemolytica, Mannheimia spp., Pasteurella trehalosi, and Pasteurella multocida | |
Negahdari et al. | Identification of Campylobacter jejuni and Campylobacter coli from diarrheic samples using PCR | |
US20050233345A1 (en) | Primers for detecting food poisoning bacteria and a use thereof | |
Nefedchenko et al. | Detection and genotyping Pasteurella multocida of five capsular groups in real time polymerase chain reaction | |
Hasan et al. | groEL gene-based molecular detection and antibiogram profile of Riemerella anatipestifer from duck in Bangladesh | |
KR101960017B1 (en) | Composition for detecting pathogens of respiratory disease, and using the same | |
US9944995B2 (en) | Diagnostic methods for detecting Clostridium difficile | |
Hassan et al. | PCR ribotyping for determining the diversity of some clinical pseudomonas aeruginosa isolates | |
Benga et al. | Differentiation among the most important Rodentibacter species by multiplex PCR assays targeting the ITSile+ ala sequences of the rRNA operons | |
Ramanarayana et al. | Cultural characterization and molecular identification of Pseudomonas aeruginosa from milk samples | |
RU2473698C1 (en) | Synthetic oligonucleotide primers and method for revealing bifidobacterium longum subspecies longum in starter cultures used during cultured milk products manufacture |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20121107 |