RU2360253C2 - Way of revealing antibodies to antigens of hepatitis viruses - Google Patents
Way of revealing antibodies to antigens of hepatitis viruses Download PDFInfo
- Publication number
- RU2360253C2 RU2360253C2 RU2006145537/15A RU2006145537A RU2360253C2 RU 2360253 C2 RU2360253 C2 RU 2360253C2 RU 2006145537/15 A RU2006145537/15 A RU 2006145537/15A RU 2006145537 A RU2006145537 A RU 2006145537A RU 2360253 C2 RU2360253 C2 RU 2360253C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- hepatitis
- antibodies
- antigens
- strip
- antigen
- Prior art date
Links
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины, в частности к диагностике инфекционных заболеваний. Способ обеспечивает дифференциальную скрининговую экпресс-диагностику гепатитов А, В и С. Для этой цели проводят дифференциальное выявление антител к антигену гепатитов, при этом антигены гепатитов А, В и С наносят раздельно, формируя диагностический участок для каждого антигена в пределах одного имунохроматографического стрипа. В процессе иммунохроматографии комплекс антител к соответствующим антигенам из исследуемых сывороток и конъюгатов наноколлоидных частиц с антителами против иммуноглобулинов человека, предварительно иммобилизованных в инертном несорбирующем носителе в зоне нанесения образца, мигрируют и связываются в зоне нанесения соответствующего антигена, визуализируя наличие антител к антигенам вирусов гепатитов А, В и С, что позволяет одновременно выявить наличие таких антител и определить, к какому из вирусов они специфичны.The invention relates to medicine, in particular to the diagnosis of infectious diseases. The method provides differential screening express diagnostics of hepatitis A, B and C. For this purpose, differential detection of antibodies to the hepatitis antigen is carried out, while the hepatitis A, B and C antigens are applied separately, forming a diagnostic area for each antigen within the same immunochromatographic strip. In the course of immunochromatography, a complex of antibodies to the corresponding antigens from the studied sera and conjugates of nanocolloidal particles with antibodies against human immunoglobulins, previously immobilized in an inert non-absorbent carrier in the sample application zone, migrate and bind in the application area of the corresponding antigen, visualizing the presence of antibodies to hepatitis A virus antigens, B and C, which allows us to simultaneously detect the presence of such antibodies and determine which of the viruses they are specific to.
Описание изобретенияDescription of the invention
Изобретение относится к медицине, в частности к прикладной иммунологии и диагностике инфекционных заболеваний.The invention relates to medicine, in particular to applied immunology and the diagnosis of infectious diseases.
Известен иммуноферментный метод обнаружения в нарастающем титре антител к вирусу гепатита А в продромальном периоде заболевания и начальной фазе периода разгара (Е.П.Шувалова. Инфекционные болезни. М., 1990, с.154). Недостатком данного способа является его длительность и выявление антител только к вирусу гепатита А.Known enzyme-linked immunosorbent assay for detecting progressive titers of antibodies to hepatitis A virus in the prodromal period of the disease and the initial phase of the heat-up period (EP Shuvalova. Infectious diseases. M., 1990, p. 154). The disadvantage of this method is its duration and the detection of antibodies only to hepatitis A.
Известен способ диагностики гепатита А с помощью иммуноферментной диагностической тест-системы для выявления вируса гепатита с помощью магносорбентов (патент RU 2065164). Недостатком данного метода является низкая диагностическая ценность в связи с незначительным количеством антигена в биологических жидкостях. Кроме того, данный способ позволяет диагностировать только гепатит А.A known method for the diagnosis of hepatitis A using an enzyme-linked immunosorbent diagnostic test system for detecting hepatitis virus using magnosorbents (patent RU 2065164). The disadvantage of this method is the low diagnostic value due to the small amount of antigen in biological fluids. In addition, this method allows you to diagnose only hepatitis A.
Известен способ иммуноферментного определения гепатита С путем выявления антител к пептидной композиции, моделирующей антигенный состав вируса гепатита С (патент RU 2071350). Недостатком данного способа является длительность анализа и то, что способ позволяет определять только вирус гепатита С.There is a method of enzyme immunoassay for the determination of hepatitis C by detecting antibodies to a peptide composition that simulates the antigenic composition of the hepatitis C virus (patent RU 2071350). The disadvantage of this method is the duration of the analysis and the fact that the method allows you to determine only hepatitis C.
Известна нанодиагностическая тест-система для выявления вируса гепатитов, включающая использование двухканального биосенсора "резонансное зеркало" с биочипом, состоящим из биосенсорной кюветы, в основании которой расположена призма с сопряженным с нею волноводом, образованным из слоя среды с высоким показателем преломления - "nel" и слоя кварца с низким показателем преломления "ncl" толщинами порядка нескольких сотен нанометров в зависимости от материала слоя, к чувствительной поверхности которого, являющейся одновременно поверхностью дна кюветы, иммобилизуются молекулы-зондов, образующие в биологической жидкости специфичные комплексы с макромолекулярными маркерами заболеваний в поверхностном к волноводу слое размером нескольких сотен нанометров, путем взаимодействия молекул антител (анти-HBs) и HBsAg (антигена вируса гепатита В), и/или взаимодействия поверхностного нуклеокапсидного антигена гепатита С и антитела к нему, и/или гибридизацией олигонуклеотидов с комплементарными участками к ДНК вируса гепатита В, и/или гибридизацией олигонуклеотидов с комплементарными участками к РНК вируса гепатита С, с последующим определением изменения коэффициента преломления света в поверхностном слое на границе волновода (Заявка на изобретение RU 2004134192/15). Недостатком данной системы является необходимость наличия специальных приборов для детекции и интерпретации полученных результатов.Known nanodiagnostic test system for the detection of hepatitis virus, including the use of a two-channel biosensor "resonant mirror" with a biochip consisting of a biosensor cell, at the base of which is a prism with a waveguide conjugated to it, formed from a layer of a medium with a high refractive index - "nel" and a quartz layer with a low refractive index "ncl" with thicknesses of the order of several hundred nanometers, depending on the material of the layer, to the sensitive surface of which is simultaneously the surface on cuvettes, probe molecules are immobilized, forming specific complexes in the biological fluid with macromolecular disease markers in the surface layer of a few hundred nanometers in size to the waveguide, by the interaction of antibody molecules (anti-HBs) and HBsAg (hepatitis B virus antigen), and / or interaction hepatitis C surface nucleocapsid antigen and antibodies to it, and / or hybridization of oligonucleotides with complementary regions to hepatitis B DNA, and / or hybridization of oligonucleotides with complementary asthma to hepatitis C virus RNA, with the subsequent determination of changes in the refractive index of light in the surface layer at the waveguide boundary (Application for invention RU 2004134192/15). The disadvantage of this system is the need for special devices for the detection and interpretation of the results.
Известны иммунохроматографические стрипы для выявления антител к антигенам вируса гепатита С производства фирмы VedaLab (Франция). Недостатком этих тестов является то, что они не позволяют диагностировать другие виды гепатитов. Таким образом универсального экспресс теста, позволяющего дифференциально диагностировать наличие AT классов IgG и IgM к гепатитам А, В и С в настоящее время не предложено.Known immunochromatographic strips for detecting antibodies to hepatitis C virus antigens manufactured by VedaLab (France). The disadvantage of these tests is that they do not allow the diagnosis of other types of hepatitis. Thus, a universal rapid test that allows to differentially diagnose the presence of AT classes of IgG and IgM to hepatitis A, B and C is not currently proposed.
Известны иммунохроматографические стрипы для выявления HBs-антигена производства фирмы Syntron (США) (наиболее близкий аналог), однако эти тесты позволяют диагностировать только больных гепатитом В.Known immunochromatographic strips for the detection of HBs antigen manufactured by Syntron (USA) (the closest analogue), however, these tests only diagnose patients with hepatitis B.
Задачей, стоящей перед авторами, являлось создание экспресс-системы для комплексной дифференциальной диагностики гепатитов А, В и С путем одновременного определения антител классов G (IgG) и М (IgM) к антигенам этих гепатитов в сыворотке крови пациентов. Для этой цели была предложена конструкция стрипа для непрямого иммунохроматографического анализа, включающая следующие элементы (чертеж):The challenge facing the authors was to create an express system for the complex differential diagnosis of hepatitis A, B and C by simultaneously determining antibodies of classes G (IgG) and M (IgM) to the antigens of these hepatitis in the blood serum of patients. For this purpose, a strip design for indirect immunochromatographic analysis was proposed, including the following elements (drawing):
1) пластиковую подложку (1), покрытую адгезивным слоем (12) с низкой проникающей способностью;1) a plastic substrate (1) coated with an adhesive layer (12) with low penetration;
2) смонтированную на ней микропористую нитратцеллюлозную мембрану (2) с напыленной на прилежащую к подложке сторону защитной полимерной основой, причем на мембрану с незащищенной стороны наносили перпендикулярно длинной стороне стрипа смеси антигенов вирусов гепатита А (АГВГА) (3), гепатита В (АГВГВ) (4), гепатита С (АГВГС) (5) таким образом, что полосы были параллельны друг другу;2) a microporous cellulose nitrate membrane mounted on it (2) with a protective polymer base sprayed onto the side adjacent to the substrate, and on the membrane from the unprotected side they are applied perpendicular to the long side of the strip of the mixture of hepatitis A virus antigens (AHAG) (3), hepatitis B (AGHB) (4) hepatitis C (AHVHC) (5) so that the bands are parallel to each other;
3) стекловолоконную несорбирующую матрицу - ПЭД (6), на которой были нанесены и иммобилизованы с помощью высушивания полосы, содержащие конъюгаты окрашенных наноколлоидных частиц с моноклональными антителами к иммуноглобулинам G-IgG (7) и М-IgM (8) человека, причем антитела были нанесены перпендикулярно длинной стороне стрипа, при этом полосы были параллельны друг другу;3) a glass fiber non-absorbent matrix — PED (6), on which strips containing conjugates of colored nanocolloidal particles with monoclonal antibodies to human G-IgG (7) and M-IgM (8) human immunoglobulins were applied and immobilized by drying, moreover, the antibodies were applied perpendicular to the long side of the strip, while the stripes were parallel to each other;
4) целлюлозный фильтр-отсос (9);4) cellulose filter suction (9);
5) нижняя защитная лавсановая маска (10);5) lower protective dacron mask (10);
6) верхняя защитная лавсановая маска (11).6) the upper protective mylar mask (11).
В процессе иммунохроматографии ПЭД стрипа смачивали исследуемой сывороткой (разведенной или цельной), предположительно содержащей антитела к антигенам одного из вирусов гепатита. В процессе латерального движения образец растворял конъюгаты, находящиеся в ПЭДе, образовывая в случае наличия исследуемых антигенов комплекс конъюгат против IgG (кг α IgG) или конъюгат против IgM (кг α IgM) с антителами (AT) вирусов гепатита А (АТВГА), гепатита В (АТВГВ) и С (АТВГС), которые, в свою очередь, в процессе дальнейшего латерального движения через тест-зоны 3, 4 и 5 связывались с соответствующими антигенами, образуя комплексы кг α IgA-АТВГА-АГВГА, кг α IgB-АТВГВ-АГВГВ, кг α IgC-АТВГС-АГВГС. Такие комплексы, иммобилизуясь в соответствующих тест-зонах, визуализировали наличие соответствующих антител, образуя окрашенные полосы. При отсутствии AT к данным АГ ни одна из полос не окрашивалась, что свидетельствовало об отсутствии контакта пациента с исследуемыми вирусами. Таким образом с помощью одного стрипа удавалось определить антитела классов IgG и IgM человека к АГ вирусов гепатита А, В и С по появлению окрашенных полос в тест-зоне стрипа, причем тип вируса дифференцировался с помощью местоположения окрашенной полосы.In the course of immunochromatography, the PED of the strip was moistened with the test serum (diluted or whole), presumably containing antibodies to the antigens of one of the hepatitis viruses. During lateral movement, the sample dissolved the conjugates in the PED, forming, in the case of the studied antigens, a complex conjugate against IgG (kg α IgG) or conjugate against IgM (kg α IgM) with antibodies (AT) of hepatitis A viruses (ATVGA), hepatitis B (ATVHV) and C (ATVGS), which, in turn, in the process of further lateral movement through test zones 3, 4 and 5 bind to the corresponding antigens, forming complexes of kg α IgA-ATVGA-AGHVA, kg α IgB-ATVHV- AGVGV, kg α IgC-ATVGS-AGVGS. Such complexes, immobilizing in the corresponding test zones, visualized the presence of the corresponding antibodies, forming colored bands. In the absence of AT, no band was stained for these AHs, indicating the absence of patient contact with the studied viruses. Thus, using one strip, it was possible to determine antibodies of the human IgG and IgM classes to AH of hepatitis A, B, and C viruses by the appearance of colored bands in the test zone of the strip, and the type of virus was differentiated by the location of the colored strip.
Концентрация смеси антигенов в опытных полосах при нанесении варьировала от 0,1 до 1 мг/мл. В качестве позитивного и негативного контроля реакции использовали сыворотки производства ГИСК им. Тарасевича. Было исследовано по десять сывороток, содержащих каждое из исследованных AT, и десять сывороток доноров, не содержащих таких антител. Эти же сыворотки исследовали с помощью иммуноферментных тест-систем производства ЗАО «Вектор-Бест», Совпадение данных иммуноферментного анализа и иммунохроматографического анализа составили 100%.The concentration of the mixture of antigens in the experimental bands during application ranged from 0.1 to 1 mg / ml As a positive and negative control of the reaction used serum production GISK them. Tarasevich. Ten sera containing each of the tested ATs and ten donor sera not containing such antibodies were tested. The same sera were examined using enzyme-linked immunosorbent assay systems manufactured by Vector-Best CJSC. The coincidence of enzyme-linked immunosorbent assay and immunochromatographic analysis was 100%.
Пример 1. На блок, состоящий из пластиковой подложки (1), покрытой адгезивным слоем (12), и смонтированной на нем нитроцеллюлозной мембраной с диаметром пор 10 мкм производства фирмы MDI (Индия), монтировали отсос (9) таким образом, что он на 1 мм перекрывал мембрану, но при этом не выходил за границу подложки (1). На мембрану (2) наносили в концентрации 0,1 мг/мл полосами шириной 1 мм смеси геноинженерных АГ фирмы ООО НПО. Диагностические системы (Россия) в следующем порядке - АГВГС (5) в 1,5 см от края отсоса, АГВГВ (4) - в 2 см, АГВГА (3) - в 2,5 см и высушивали в ламинарном потоке воздуха при 37°С в течение 30 минут. Смеси АГ имели следующий состав:Example 1. On a block consisting of a plastic substrate (1) coated with an adhesive layer (12) and mounted on it with a nitrocellulose membrane with a pore diameter of 10 μm manufactured by MDI (India), a suction (9) was mounted so that it 1 mm overlapped the membrane, but did not go beyond the border of the substrate (1). A mixture of genetically engineered AGs from NPO LLC was applied to the membrane (2) at a concentration of 0.1 mg / ml in stripes 1 mm wide. Diagnostic systems (Russia) in the following order - AGVGS (5) 1.5 cm from the edge of the suction, AGVGV (4) - 2 cm, AGVGA (3) - 2.5 cm and dried in a laminar air flow at 37 ° C for 30 minutes. Mixtures of AG had the following composition:
причем в каждой смеси входящие в нее АГ брали в равных весовых частях.moreover, in each mixture, the constituent AGs were taken in equal weight parts.
Конъюгаты наноколлоидных частиц получали путем сорбции моноклональных антител против IgG и IgM на коллоидное золото с диаметром частиц 30 нм фирмы «ImmunoGold» (Великобритания) согласно прилагавшейся к коллоидному золоту прописи. После сорбции конъюгат центрифугировали при десяти тысячах оборотах в минуту и температуре 4°С в течение 30 минут и стабилизировали добавлением к осадку равного объема тридцатитрехпроцентного раствора бычьего сывороточного альбумина (SIGMA, США). Конъюгаты наносили на ПЭД полосой толщиной 2-4 мм и высушивали двумя полосами кг IgG (7) и кг IgM (8) при 37°С. После высушивания ПЭД монтировали на адгезивную поверхность (12) подложки (1), противоположную той, на которой монтировали отсос (9) таким образом, что край ПЭДа на 1 мм выступал над краем мембраны, а противоположный край ПЭДа совпадал с краем блока. Затем поверх ПЭДа монтировали маску таким образом, что она на 1 мм выступала за край ПЭДа на нитроцеллюлозу, а ее противоположный край совпадал с краем блока. Прилежащая к ПЭДу сторона маски была покрыта адгезивным слоем и фиксировалась на ПЭДе и нитроцеллюлозе. Свободная сторона маски была окрашена таким образом, чтобы отличаться от маски, покрывающей отсос. На нее были нанесены стрелки, указывающие на противоположный краю нитроцеллюлозы край ПЭДа. Этот край входит в контакт с образцом в процессе постановки реакции, поэтому стрелки на маске необходимы для исключения неверной ориентации стрипа в ходе анализа. Сверху отсоса монтировали маску таким образом, чтобы она на 1 мм выступала над краем отсоса на нитроцеллюлозу. Ее противоположный край совпадал с краем блока. Адгезивный слой внутренней части маски приклеивал маску к отсосу и нитроцеллюлозе. После окончания монтажа блока его нарезали на стрипы шириной 5 мм и хранили в герметичных пакетах из аллюминизированного ламината с осушителем при температуре 4-25°С.Conjugates of nanocolloidal particles were obtained by sorption of monoclonal antibodies against IgG and IgM on colloidal gold with a particle diameter of 30 nm from ImmunoGold (Great Britain) according to the copy attached to colloidal gold. After sorption, the conjugate was centrifuged at ten thousand rpm and a temperature of 4 ° C for 30 minutes and stabilized by adding an equal volume of a thirty-three percent solution of bovine serum albumin to the precipitate (SIGMA, USA). The conjugates were applied onto PED with a strip of 2-4 mm thickness and dried with two bands of kg IgG (7) and kg IgM (8) at 37 ° С. After drying, the PEM was mounted on the adhesive surface (12) of the substrate (1), opposite to that on which the suction (9) was mounted so that the edge of the PED was 1 mm above the edge of the membrane, and the opposite edge of the PED coincided with the edge of the block. Then, a mask was mounted on top of the PED so that it protruded 1 mm beyond the edge of the PED to nitrocellulose, and its opposite edge coincided with the edge of the block. The side of the mask adjacent to the PED was coated with an adhesive layer and was fixed on the PED and nitrocellulose. The free side of the mask was painted so as to differ from the mask covering the suction. Arrows were drawn on it, pointing to the edge of the PED opposite the edge of nitrocellulose. This edge comes into contact with the sample during the reaction, so the arrows on the mask are necessary to eliminate the wrong orientation of the strip during analysis. A mask was mounted on top of the suction so that it protrudes 1 mm above the edge of the suction on nitrocellulose. Its opposite edge coincided with the edge of the block. The adhesive layer of the inside of the mask stuck the mask to the suction and nitrocellulose. After the installation of the block was completed, it was cut into strips 5 mm wide and stored in sealed bags from an aluminized laminate with a desiccant at a temperature of 4-25 ° C.
Испытания полученных стрипов проводили следующим образом. Разведенный в соответствии с инструкцией исследуемые сыворотки помещали в лунки 96-луночной плашки (350 мкл/лунку). В эти же лунки помещали край стрипов, помеченный стрелками. Реакцию учитывали через 10 минут после начала постановки. Было использовано по 10 опытных сывороток, содержащих антитела к ВГА, ВГВ, ВГС, и 10 контрольных сывороток. Совпадение результатов иммунохроматографии с данными ГИСК им. Тарасевича о данных сыворотках оказалось 100%.Testing of the obtained strips was carried out as follows. Diluted in accordance with the instructions of the studied sera were placed in the wells of a 96-well plate (350 μl / well). The edge of the strips marked with arrows was placed in the same wells. The reaction was taken into account 10 minutes after the start of the formulation. We used 10 experimental sera containing antibodies to HAV, HBV, HCV, and 10 control sera. The coincidence of the results of immunochromatography with the data of GISK them. Tarasevich about these sera was 100%.
Пример 2. Стрипы приготовили аналогично Примеру №1. В тест-зоны 3, 4 и 5 наносили соответственно АГ в концентрации 1 мг/мл - АГВГА (3) - в 2,5 см от края отсоса, АГВГВ (4) - в 2 см, АГВГС (5) в 1,5 см. Было использовано по 10 опытных сывороток, содержащих антитела к ВГА, ВГВ, ВГС, и 10 контрольных сывороток. Совпадение результатов иммунохроматографии с данными ГИСК им.Тарасевича о данных сыворотках оказалось 100%.Example 2. Strips were prepared similarly to Example No. 1. In test zones 3, 4 and 5, respectively, AH at a concentration of 1 mg / ml was applied - AGHA (3) - 2.5 cm from the edge of the suction, AGHH (4) - 2 cm, AGHH (5) 1.5 see. We used 10 experimental sera containing antibodies to HAV, HBV, HCV, and 10 control sera. The coincidence of the results of immunochromatography with the GISK im.Tarasevich on these sera was 100%.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2006145537/15A RU2360253C2 (en) | 2006-12-21 | 2006-12-21 | Way of revealing antibodies to antigens of hepatitis viruses |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2006145537/15A RU2360253C2 (en) | 2006-12-21 | 2006-12-21 | Way of revealing antibodies to antigens of hepatitis viruses |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2006145537A RU2006145537A (en) | 2008-06-27 |
RU2360253C2 true RU2360253C2 (en) | 2009-06-27 |
Family
ID=39679677
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2006145537/15A RU2360253C2 (en) | 2006-12-21 | 2006-12-21 | Way of revealing antibodies to antigens of hepatitis viruses |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2360253C2 (en) |
-
2006
- 2006-12-21 RU RU2006145537/15A patent/RU2360253C2/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
FABRIZI F. et al., Serotyping strip immunoblot assay for assessing hepatitis C virus strains in dialysis patients. Am. J.Kidney. Dis. 2000 May; 35(5): 832-8. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2006145537A (en) | 2008-06-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
AU2020233741B2 (en) | Method and device for combined detection of viral and bacterial infections | |
JP4270751B2 (en) | Neutralization of polycations in whole blood chromatography devices | |
JP4040110B2 (en) | Analytical instrument for membrane-based assays | |
US7344893B2 (en) | Immuno-gold lateral flow assay | |
US8389209B2 (en) | Test device for rapid diagnostics | |
EP0480497B1 (en) | Device for performing a rapid single manual assay | |
US20160084832A1 (en) | Method and Device for Combined Detection of Viral and Bacterial Infections | |
JPH07504747A (en) | Method for isolating red blood cells for specific binding assays | |
CN111164095A (en) | Assay methods for improved analyte detection | |
US20030045001A1 (en) | Immunochromatographic test strip with arcuate sample application zone for ease-of-use in the field | |
US20130196311A1 (en) | Method and Device for Combined Detection of Viral and Bacterial Infections | |
EP3807618A1 (en) | Systems, devices, and methods for amplifying signals of a lateral flow assay | |
US20100322823A1 (en) | Rapid Detection of Post-Vaccination Antibody Response | |
JP2022505934A (en) | Lateral flow assay for differential isotype detection | |
KR102631862B1 (en) | Method of enhancing the signal intensity in immunochromatographic assay | |
RU2360253C2 (en) | Way of revealing antibodies to antigens of hepatitis viruses | |
EP1933148B1 (en) | Urinary immunochromatographic multiparameter detection cup | |
KR20190085684A (en) | Lateral Flow Assay-based Biosensors Using Surface Modified Gold Nanoparticles | |
WO2005069002A1 (en) | Rapid test for antibodies against hiv in urine | |
JP2001228151A (en) | Immunological chromatographic device | |
JP3713178B2 (en) | Immunoanalyzer for syphilis antibody detection | |
WO2016035099A1 (en) | A flow through device for detection of multiple bioanalytes and a process thereof | |
CA2052909A1 (en) | Device for performing a rapid single manual assay |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20081222 |
|
NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20110710 |
|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20121222 |