RU2356538C1 - Antigen-containing liposome preparation process - Google Patents

Antigen-containing liposome preparation process Download PDF

Info

Publication number
RU2356538C1
RU2356538C1 RU2008113988/15A RU2008113988A RU2356538C1 RU 2356538 C1 RU2356538 C1 RU 2356538C1 RU 2008113988/15 A RU2008113988/15 A RU 2008113988/15A RU 2008113988 A RU2008113988 A RU 2008113988A RU 2356538 C1 RU2356538 C1 RU 2356538C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
antigen
liposomes
solution
dialysis
lipids
Prior art date
Application number
RU2008113988/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Константин Александрович Ротов (RU)
Константин Александрович Ротов
Наталья Петровна Храпова (RU)
Наталья Петровна Храпова
Владимир Валерьевич Алексеев (RU)
Владимир Валерьевич Алексеев
Евгений Александрович Снатенков (RU)
Евгений Александрович Снатенков
Лидия Васильевна Ломова (RU)
Лидия Васильевна Ломова
Виктор Яковлевич Курилов (RU)
Виктор Яковлевич Курилов
Владимир Петрович Васильев (RU)
Владимир Петрович Васильев
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение здравоохранения Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение здравоохранения Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора filed Critical Федеральное государственное учреждение здравоохранения Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора
Priority to RU2008113988/15A priority Critical patent/RU2356538C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2356538C1 publication Critical patent/RU2356538C1/en

Links

Images

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention refers to medicine and biotechnology and concerns antigen-containing liposome preparation process. Substance of the invention includes mixing the dissolved H and D fractions of pseudocholera agent antigens, dissolving the neutral lipids in chloroform, blending the mixed dissolved antigen and lipids, preparing the liposomes by phase-inversion evaporation, removing unenclosed material vesicles by dialysis thereby using phosphate buffer 0.01 M, pH 7.2. The prepared liposomes contain 89-93% H and D fractions of pseudocholera agent antigens of size 600-800 nm.
EFFECT: advantage of the invention consists in liposome preparation of high load of pseudocholera antigen.
2 ex, 2 dwg

Description

Изобретение относится к медицине, а более конкретно к проблеме создания носителя, содержащего антигенный материал.The invention relates to medicine, and more specifically to the problem of creating a carrier containing antigenic material.

Проблема специфической профилактики мелиоидоза с помощью химических вакцин, создающих напряженный иммунитет и лишенных побочных эффектов, еще далека от успешного решения. В работах последних лет показано, что отдельные фракции поверхностных мелиоидозных антигенов обладают протективной способностью при небольших заражающих дозах возбудителя мелиоидоза (Пивень Н.Н. Антигенный состав возбудителей мелиоидоза и сапа в аспектах идентификации, диагностики и патогенности: Дисс… докт. мед. наук. - Волгоград, 1997. - 296 с.); Викторов Д.В. Белковый и антигенный состав штаммов В. pseudomallei различной вирулентности: Дисс… канд. биол. наук. - Волгоград, 1997. - 110 с). Ряд авторов показали возможность повышения протективности антигенов различных возбудителей иммобилизованных в липосомы (синегнойной инфекции, чумы, бруцеллеза) (Минухин Б.В., Бородина Н.С., Цыганенко А.Я. с соавт. Иммуногенные свойства липосомальной формы анатоксина синегнойной палочки // Вестн. АМН СССР. - 1990. - №8. - С.44-47; Бямбаа А., Ефременко В.И., Таран Т.В., Таран В.И., Оверченко В.В. Изучение протективных свойств антигенсодержащих липосом при чуме // Диагностика, лечение и профилактика опасных инфекционных заболеваний. Биотехнология. Ветеринария: Материалы Юбил. Научн. - практ. конференции, посвященной 70-летию НИИ Микробиологии МО РФ, 30 ноября - 1 декабря 1998. - Киров, 1998. - С.62-63; Куликов В.Н., Кашкин К.П., Драновская Е.А. Включение протективного антигена В. abortus в липосомы и иммуногенные свойства антигенсодержащих липосом // ЖМЭИ. - 1985. - №12 - С.69-72).The problem of specific prophylaxis of melioidosis with the help of chemical vaccines that create intense immunity and are devoid of side effects is still far from a successful solution. In recent years it has been shown that certain fractions of surface melioid antigens have protective ability at low infectious doses of the causative agent of melioidosis (Piven N.N. Volgograd, 1997 .-- 296 p.); Viktorov D.V. Protein and antigenic composition of B. pseudomallei strains of different virulence: Diss ... cand. biol. sciences. - Volgograd, 1997 .-- 110 s). A number of authors have shown the possibility of increasing the efficiency of antigens of various pathogens immobilized in liposomes (Pseudomonas infection, plague, brucellosis) (Minukhin BV, Borodina NS, Tsyganenko A.Ya. et al. Immunogenic properties of the liposomal form of Pseudomonas aeruginosa // Vestnik of the USSR Academy of Medical Sciences. - 1990. - No. 8. - P.44-47; Byambaa A., Efremenko V.I., Taran T.V., Taran V.I., Overchenko V.V. Study of the protective properties of antigen-containing liposomes in case of plague // Diagnosis, treatment and prevention of dangerous infectious diseases. Biotechnology. Veterinary ia: Materials of the Anniversary Scientific and Practical Conference dedicated to the 70th anniversary of the Research Institute of Microbiology of the Ministry of Defense of the Russian Federation, November 30 - December 1, 1998. - Kirov, 1998. - P. 62-63; Kulikov V.N., Kashkin K.P. ., Dranovskaya E.A. Inclusion of the protective antigen of B. abortus in liposomes and immunogenic properties of antigen-containing liposomes // ZhMEI. - 1985. - No. 12 - P.69-72).

Перспективность липосом основывается на двух их основных свойствах: сходстве с природными мембранами и универсальности. Универсальность состоит в том, что благодаря полусинтетической природе липосом можно широко изменять их по размерам, поверхностным характеристикам, составу. Липосомы не токсичны и легко биодеградируемы. Возможность использования в меньших дозах, снижение частоты аллергических и иммунологических реакций, внутриклеточная направленность везикул и увеличение времени элиминации - вот основные преимущества использования липосом. Вместе с тем проблема экстренной иммунопрофилактики мелиоидоза разработана недостаточно.The prospects of liposomes are based on two of their main properties: similarity with natural membranes and universality. Universality lies in the fact that, due to the semi-synthetic nature of liposomes, they can be widely varied in size, surface characteristics, and composition. Liposomes are non-toxic and easily biodegradable. The possibility of using in lower doses, reducing the frequency of allergic and immunological reactions, the intracellular orientation of the vesicles and increasing the elimination time are the main advantages of using liposomes. However, the problem of emergency immunoprophylaxis of melioidosis is not sufficiently developed.

Приготовление моноламеллярных липосом, содержащих антигены путем впрыскивания этанольного раствора фосфолипидов в водную фазу:Preparation of monolamellar liposomes containing antigens by injecting an ethanol solution of phospholipids into the aqueous phase:

50 мг смеси липидов (фосфатидилхолин, холестерин, дицетилфосфат в соотношении 7:2:1) растворяют в 1 мл 96° этанола. Этанольный раствор липидов набирают в шприц с иглой и быстро вводят в 15 мл раствора включаемого 100 мкг антигенного материала в 0,01 М фосфатном буфере рН 7,5. Невключившийся материал удаляют центрифугированием. Образующиеся липосомы включают во внутренний объем в среднем 2,5% материала. Данный метод позволяет включать лабильные биологические макромолекулы без потери специфической активности. Недостатком метода является ограничение в количестве липидов - 3,5 мг, которое можно внести в 1,0 мл водной фазы, что требует в ряде случаев последующего концентрирования препарата липосом (Kremer J.М.Н., Esker М.W.J., Pathmamanoharan С., Wiersema Р.Н. Vesicles of variable diameter prepared by a modified injection method. - Biochemistry, 1977, vol.16, p.3933-3935).50 mg of a mixture of lipids (phosphatidylcholine, cholesterol, dicetylphosphate in a ratio of 7: 2: 1) is dissolved in 1 ml of 96 ° ethanol. An ethanolic lipid solution is drawn into a syringe with a needle and quickly injected into 15 ml of a solution of included 100 μg antigenic material in 0.01 M phosphate buffer pH 7.5. Unincorporated material is removed by centrifugation. The resulting liposomes comprise an average of 2.5% of the material in the internal volume. This method allows the inclusion of labile biological macromolecules without loss of specific activity. The disadvantage of this method is the limitation in the amount of lipids - 3.5 mg, which can be added to 1.0 ml of the aqueous phase, which in some cases requires subsequent concentration of the liposome preparation (Kremer J.M.N., Esker M.WJ, Pathmamanoharan C. , Wiersema, R.N., Vesicles of variable diameter prepared by a modified injection method. - Biochemistry, 1977, vol. 16, p. 3933-3935).

Приготовление липосом методом «ручного» встряхивания:Preparation of liposomes by the method of "manual" shaking:

100 мг смеси липидов (фосфатидилхолин, холестерин, дицетилфосфат в соотношении 7:2:1) растворяют в 50 мл хлороформа в 200 мл круглодонной колбе для роторного испарителя и при пониженном давлении проводили выпаривание органического растворителя. Время окончания выпаривания определяли по исчезновению запаха хлороформа в колбе, при этом на ее стенках образовывалась тонкая пленка липидов. Снятую с роторного испарителя колбу продували газообразным азотом для предотвращения окисления липидов и затем вносили 5 мл, содержащих 100 мкг антигенного материала в 0,01 М фосфатном буфере рН 7,2. После 2-часовой инкубации при комнатной температуре смеси для образования гомогенной суспензии липосом в колбу помещали несколько стеклянных бусинок и энергично встряхивали в течение 5 минут. Невключившийся антигенный материал удаляли центрифугированием. Мягкие условия приготовления и большие размеры липосом позволяют использовать этот метод для включения крупных биологических макромолекул, без значительной потери активности. Недостатком метода является низкий процент включения материала (1-3%) (Acuto O., Pugliese O., Muler М., Tosi R. Preparation of liposomes incorporating membrane components from human lymphoid cells // Tissue Antigenes. - 1979. - V.14, №5. - P.385-397).100 mg of a mixture of lipids (phosphatidylcholine, cholesterol, dicetylphosphate in a ratio of 7: 2: 1) was dissolved in 50 ml of chloroform in a 200 ml round bottom flask for a rotary evaporator, and the organic solvent was evaporated under reduced pressure. The end time of evaporation was determined by the disappearance of the smell of chloroform in the flask, while a thin lipid film was formed on its walls. The flask removed from the rotary evaporator was purged with nitrogen gas to prevent lipid oxidation and then 5 ml containing 100 μg of antigenic material in 0.01 M phosphate buffer pH 7.2 was added. After a 2-hour incubation at room temperature, several glass beads were placed in a flask to form a homogeneous suspension of liposomes and shaken vigorously for 5 minutes. Unincorporated antigenic material was removed by centrifugation. Mild cooking conditions and large liposome sizes allow this method to be used to incorporate large biological macromolecules without significant loss of activity. The disadvantage of this method is the low percentage inclusion of the material (1-3%) (Acuto O., Pugliese O., Muler M., Tosi R. Preparation of liposomes incorporating membrane components from human lymphoid cells // Tissue Antigenes. - 1979. - V. 14, No. 5. - P.385-397).

Наиболее близким аналогом является метод получения липосом предложенный Szoka F., Papahandjopoulos D. Procedure for preparation of liposomes with large internal space and high capture by reverse-phase evaporation // Proc. Nat. Sci. USA. - 1978. - V.75, N 9. - P.4194-4198. Согласно методу 30 мг липидов (фосфатидилхолин, холестерин, дицетилфосфат в соотношении 7:2:1) растворяют в 3 мл смеси эфира с хлороформом 2:1 и вносят в круглодонную колбу роторного испарителя объемом 100 см3 1 мл раствора включаемого материала в 0,01 М фосфатном буфере рН 7,5, добавляют к раствору липидов в органической фазе и обработкой ультразвуком 20 кГц, мощностью 200 Вт в течение 5 минут достигают образования эмульсии типа «вода в масле». Колбу с эмульсией присоединяют к роторному испарителю и постепенно понижая давление так, чтобы не происходило кипение и полностью удаляют органический растворитель. Об окончании выпаривания судят по образованию геля в колбе и исчезновения запаха органического растворителя. В процессе выпаривания поддерживают температуру смеси выше температуры фазового перехода фосфолипидов (20-25°С). Колбу снимают с испарителя, к образовавшемуся гелю добавляют 5 мл 0,01 М фосфатного буфера рН 7,5 и встряхивают до образования гомогенной суспензии липосом. Липосомы, полученные данным методом, характеризуются высокой эффективностью включения - до 50-60% и большими размерами - до 1,0-1,2 мкм. Невключившийся материал удаляют центрифугированием. Недостатками является малая устойчивость эмульсии и геля типа «вода в масле», вследствие чего в каждом конкретном случае требуется подбор состава липидной смеси, техники выпаривания и навыка в работе, использование смеси растворителей с разной температурой кипения, что приводит к неоднородному образованию фосфолипидных везикул (температура кипения эфира + 34,5°С, температура кипения хлороформа + 61,2°С), а также токсическое воздействие ионов титана на антигенный материал и фосфолипиды (Г.Грегориадис., А.Аллисон. Липосомы в биологических системах. - М.: Медицина. - 1983. - С.28-29).The closest analogue is the liposome preparation method proposed by Szoka F., Papahandjopoulos D. Procedure for preparation of liposomes with large internal space and high capture by reverse-phase evaporation // Proc. Nat. Sci. USA - 1978. - V.75, N 9. - P.4194-4198. According to the method, 30 mg of lipids (phosphatidylcholine, cholesterol, dicetylphosphate in a ratio of 7: 2: 1) are dissolved in 3 ml of a mixture of ether and chloroform 2: 1 and introduced into a round bottom flask of a rotary evaporator with a volume of 100 cm 3 1 ml of a solution of the included material in 0.01 M phosphate buffer pH 7.5, add to the solution of lipids in the organic phase and sonication with 20 kHz, 200 W power for 5 minutes to achieve the formation of an emulsion of the type "water in oil". The emulsion flask is attached to a rotary evaporator and gradually lowering the pressure so that boiling does not occur and the organic solvent is completely removed. The end of evaporation is judged by the formation of gel in the flask and the disappearance of the smell of an organic solvent. During the evaporation process, the temperature of the mixture is maintained above the phase transition temperature of phospholipids (20-25 ° C). The flask was removed from the evaporator, 5 ml of 0.01 M phosphate buffer, pH 7.5, were added to the resulting gel and shaken until a homogeneous suspension of liposomes was formed. Liposomes obtained by this method are characterized by high inclusion efficiency - up to 50-60% and large sizes - up to 1.0-1.2 microns. Unincorporated material is removed by centrifugation. The disadvantages are the low stability of the emulsion and the gel type "water in oil", as a result of which, in each case, it is necessary to select the composition of the lipid mixture, the evaporation technique and skill in use, the use of a mixture of solvents with different boiling points, which leads to an inhomogeneous formation of phospholipid vesicles (temperature boiling of ether + 34.5 ° С, boiling temperature of chloroform + 61.2 ° С), as well as the toxic effect of titanium ions on antigenic material and phospholipids (G. Gregoriadis, A. Allison. Liposomes in biological systems topics. - M .: Medicine. - 1983. - S.28-29).

Целью изобретения является разработка способа получения антигенсодержащих липосом с высоким количеством иммобилизации фракций (Н, D) антигена возбудителя мелиоидоза.The aim of the invention is to develop a method for producing antigen-containing liposomes with a high amount of immobilization of fractions (H, D) of the antigen of the causative agent of melioidosis.

Поставленная цель достигается тем, что вследствие увеличения липидной нагрузки, повышается стабильность мембраны липосом, их количество и возрастает процент инкапсуляции антигенных мелиоидозных фракций (Н, D). Универсальность носителя обеспечивается нейтральным зарядом мембраны липосом. Получение эмульсии на роторном миксере позволяет исключить токсическое влияние ионов титана (титановый зонд ультразвукового дезинтегратора) на антигенные фракции. Для этого 56, 7 мг смеси липидов (фосфатидилхолин, холестерин в соотношении 7:3) растворяли в 3,8 мл хлороформа. Включаемый материал, растворенный в 0,01 М фосфатном буфере рН 7,2, в объеме 1,5 мл добавляли к раствору липидов в органической фазе, и обработкой на роторном миксере мощностью 500 Вт при 15000 об/мин в течение 1 мин достигали образования эмульсии. При пониженном давлении в роторном испарителе полностью удаляли органический растворитель. К образовавшемуся гелю добавляли 5 мл 0,01 М фосфатного буфера рН 7,2 и тщательно перемешивали в колбе на роторном испарителе. Удаление невключившегося антигенного материала осуществляли диализом. В качестве диализующего раствора использовали буфер, взятый для приготовления липосом (0,01 М фосфатный буфер рН 7,2). Диализ проводили при + 4°С, постоянно перемешивая на магнитной мешалке диализующий раствор в течение 2 ч, после чего производили смену буфера. Для полного удаления невключившегося в липосомы антигенного материала достаточно 4-х смен буфера.This goal is achieved by the fact that due to an increase in lipid load, the stability of the liposome membrane increases, their number and the percentage of encapsulation of antigenic melioid fractions (H, D) increases. The universality of the carrier is ensured by the neutral charge of the liposome membrane. Obtaining an emulsion on a rotary mixer eliminates the toxic effect of titanium ions (titanium probe of an ultrasonic disintegrator) on antigenic fractions. For this, 56.7 mg of a mixture of lipids (phosphatidylcholine, cholesterol in a ratio of 7: 3) was dissolved in 3.8 ml of chloroform. The included material, dissolved in 0.01 M phosphate buffer pH 7.2, in a volume of 1.5 ml was added to the lipid solution in the organic phase, and emulsion formation was achieved by treatment with a 500 W rotary mixer at 15,000 rpm for 1 min for 1 min . The organic solvent was completely removed under reduced pressure on a rotary evaporator. To the resulting gel was added 5 ml of 0.01 M phosphate buffer pH 7.2 and thoroughly mixed in a flask on a rotary evaporator. Removal of unincorporated antigenic material was carried out by dialysis. As a dialysis solution, a buffer taken for the preparation of liposomes (0.01 M phosphate buffer, pH 7.2) was used. Dialysis was carried out at + 4 ° C, constantly stirring the dialysate solution on a magnetic stirrer for 2 hours, after which the buffer was changed. For complete removal of antigenic material that is not included in the liposomes, 4 buffer changes are sufficient.

Вследствие увеличения липидной нагрузки достигнута высокая устойчивость эмульсии и геля типа «вода в масле». Универсальность носителя обеспечивается нетральным зарядом мембраны липосом. Используемый метод позволяет применять один органический растворитель с определенной температурой кипения. Получение эмульсии на роторном миксере позволяет исключить токсическое влияние ионов титана (титановый зонд ультразвукового дезинтегратора) и сократить время обработки. Данный способ позволяет инкапсулировать внутрь липосом 89-93% Н и D фракций мелиоидозного антигена.Due to the increase in lipid load, high stability of the emulsion and the water-in-oil gel has been achieved. The universality of the carrier is ensured by the non-neutral charge of the liposome membrane. The method used allows the use of one organic solvent with a specific boiling point. Obtaining an emulsion on a rotary mixer eliminates the toxic effect of titanium ions (titanium probe of an ultrasonic disintegrator) and reduces the processing time. This method allows you to encapsulate inside liposomes 89-93% of H and D fractions of the melioid antigen.

Примеры конкретного выполнения.Examples of specific performance.

Пример 1. Иммобилизация внутрь липосом Н-фракции антигена возбудителя мелиоидоза.Example 1. Immobilization of liposomes of the H-fraction of the antigen of the causative agent of melioidosis.

Для этого 56, 7 мг смеси липидов (фосфатидилхолин, холестерин в соотношении 7:3) растворяли в 3,8 мл хлороформа. 100 мкг фракции Н-антигена возбудителя мелиоидоза, в 0,01 М фосфатном буфере рН 7,2, в объеме 1,5 мл добавляли к раствору липидов в органической фазе и обрабатывали на роторном миксере мощностью 500 Вт при 15000 об/мин в течение 1 мин до образования эмульсии. При пониженном давлении в роторном испарителе полностью удаляли органический растворитель. К образовавшемуся гелю добавляли 5 мл 0,01 М фосфатного буфера рН 7,2 и тщательно перемешивали в колбе на роторном испарителе. Удаление невключившегося материала (фракции Н-антигена) осуществляли диализом. В качестве диализующего раствора использовали буфер, взятый для приготовления липосом (0,01 М фосфатный буфер рН 7,2). Диализ проводили при + 4°С, постоянно перемешивая на магнитной мешалке диализующий раствор в течение 2 ч, после чего производили смену буфера. Для полного удаления невключившегося в липосомы антигенного материала проводили 4 смены буфера. Процент иммобилизации Н-фракции определяли хемилюминесценцией и радиоизотопным методом. Он составлял 89%. При этом сорбции Н-фракции антигена на поверхности мембраны липосом не отмечалось. Размеры липосомального препарата при электронно-микроскопическом исследовании составляли 600-800 нм (фиг.1). Степень окисления лиипдов мембраны липосом составляла 0,8±0,02 (перекисный индекс Клейна) (Klein R.A. The detection of oxidation in liposome preparations // Biochim. Biophys. Acta. - 1970. - N 21. - P.486-489).For this, 56.7 mg of a mixture of lipids (phosphatidylcholine, cholesterol in a ratio of 7: 3) was dissolved in 3.8 ml of chloroform. 100 μg of the H-antigen fraction of the melioidosis pathogen, in 0.01 M phosphate buffer, pH 7.2, in a volume of 1.5 ml was added to the lipid solution in the organic phase and processed on a 500 W rotary mixer at 15,000 rpm for 1 min until the formation of the emulsion. The organic solvent was completely removed under reduced pressure on a rotary evaporator. To the resulting gel was added 5 ml of 0.01 M phosphate buffer pH 7.2 and thoroughly mixed in a flask on a rotary evaporator. Removing unincorporated material (fractions of H-antigen) was carried out by dialysis. As a dialysis solution, a buffer taken for the preparation of liposomes (0.01 M phosphate buffer, pH 7.2) was used. Dialysis was carried out at + 4 ° C, constantly stirring the dialysate solution on a magnetic stirrer for 2 hours, after which the buffer was changed. To completely remove antigenic material that was not included in the liposomes, 4 buffer changes were performed. The percentage of immobilization of the H-fraction was determined by chemiluminescence and the radioisotope method. He accounted for 89%. In this case, sorption of the H-fraction of antigen on the surface of the liposome membrane was not observed. The size of the liposomal preparation during electron microscopy was 600-800 nm (figure 1). The oxidation state of liposome membrane lipids was 0.8 ± 0.02 (Klein peroxide index) (Klein RA The detection of oxidation in liposome preparations // Biochim. Biophys. Acta. - 1970. - N 21. - P.486-489) .

Пример 2. Получение инкапсулированной в липосомы D-фракции антигена возбудителя мелиоидозаExample 2. Obtaining the D-fraction encapsulated in liposomes of the antigen of the causative agent of melioidosis

При получении липосом с D-фракцией антигена возбудителя мелиоидоза методика приготовления препарата идентична указанной в примере №1. Процент иммобилизации D-фракции составлял 93%. При этом сорбции D-фракции антигена на поверхности мембраны липосом не отмечалось. Размеры липосомального препарата при электронно-микроскопическом исследовании составляли 600-700 нм (фиг.2). Степень окисления липидов мембраны липосом составляла 0,8±0,02.Upon receipt of liposomes with a D-fraction of the antigen of the causative agent of melioidosis, the method of preparation of the drug is identical to that specified in example No. 1. The percent immobilization of the D fraction was 93%. In this case, sorption of the D fraction of antigen on the surface of the liposome membrane was not observed. The size of the liposomal preparation during electron microscopy was 600-700 nm (figure 2). The lipid oxidation state of the liposome membrane was 0.8 ± 0.02.

Таким образом, вследствие увеличения нагрузки липидов в исходных навесках достигнута высокая стабильность и пластичность мембраны липосом и возросло их количество. Получение эмульсии на роторном миксере позволило исключить токсическое влияние на антигенный материал ионов титана (титановый зонд ультразвукового дезинтегратора) и сократить время обработки. Универсальность носителя обеспечивается нейтральным зарядом мембраны липосом. Данный способ позволяет получать стабильные липосомы, содержащие 89-93% Н- и D-фракций антигенов возбудителей мелиоидоза.Thus, due to an increase in the load of lipids in the initial samples, high stability and ductility of the liposome membrane was achieved and their number increased. The preparation of an emulsion on a rotary mixer made it possible to eliminate the toxic effect of titanium ions on the antigenic material (titanium probe of an ultrasonic disintegrator) and to reduce the processing time. The universality of the carrier is ensured by the neutral charge of the liposome membrane. This method allows to obtain stable liposomes containing 89-93% of H- and D-fractions of antigens of the causative agents of melioidosis.

Claims (1)

Способ получения антигенсодержащих липосом, включающий растворение навесок липидов в хлороформе, приготовление раствора фракций антигена, создание эмульсии из хлороформенного раствора липидов и антигенного материала, получение липосом выпариванием с обращением фаз, удаление невключившегося внутрь везикул антигенного материала диализом, перевод в раствор для применения и хранения, отличающийся тем, что для получения липосом с высоким содержаним нативных Н и D антигенов возбудителя мелиоидоза 56, 7 мг смеси липидов (фосфатидилхолин, холестерин в соотношении 7:3) растворяют в 3,8 мл хлороформа, затем 100 мкг фракции антигена, растворенного в 0,01 М фосфатном буфере рН 7,2, в объеме 1,5 мл добавляют к раствору липидов в органической фазе и обрабатывают на роторном миксере мощностью 500 Вт при 15000 об/мин в течение 1 мин до достижения образования эмульсии, после чего понижают давление в роторном испарителе и полностью удаляют органический растворитель, к образовавшемуся гелю добавляют до 5 мл 0,01 М фосфатного буфера рН 7,2 и тщательно перемешивают в колбе на роторном испарителе, удаление невключившегося материала осуществляют диализом, в качестве диализующего раствора используют буфер, взятый для приготовления липосом (0,01 М фосфатный буфер рН 7,2), диализ проводят при температуре +4°С при постоянном перемешивании магнитной мешалкой диализующего раствора в течение 2 ч, после чего производят 4 смены буфера, полученные липосомы при хемилюминесцентном и радиоизотопном исследовании содержали 89-93% Н- и D-фракций мелиоидозного антигена, а при электронномикроскопическом исследовании размеры антигенсодержащих липосом составляли 600-800 нм. A method for producing antigen-containing liposomes, including dissolving a portion of lipids in chloroform, preparing a solution of antigen fractions, creating an emulsion from a chloroform solution of lipids and antigenic material, preparing liposomes by evaporation with phase reversal, removing antigenic material that has not been incorporated into the vesicles by dialysis, transferring it to a solution for use and storage, characterized in that to obtain liposomes with a high content of native H and D antigens of the causative agent of melioidosis 56, 7 mg of a mixture of lipids (phosphatidylcholine, chol esterin in the ratio of 7: 3) is dissolved in 3.8 ml of chloroform, then 100 μg of the fraction of antigen dissolved in 0.01 M phosphate buffer pH 7.2 in a volume of 1.5 ml is added to the lipid solution in the organic phase and processed on 500 W rotary mixer at 15,000 rpm for 1 min until the formation of an emulsion is achieved, then the pressure in the rotary evaporator is reduced and the organic solvent is completely removed, up to 5 ml of 0.01 M phosphate buffer pH 7.2 is added to the resulting gel and mix thoroughly in a flask on a rotary evaporator, removing The cured material is carried out by dialysis, the buffer taken for liposome preparation (0.01 M phosphate buffer, pH 7.2) is used as the dialysis solution, dialysis is carried out at a temperature of + 4 ° C with constant stirring with a magnetic stirrer of the dialysis solution for 2 hours, after of which 4 buffer changes are made, the liposomes obtained in the chemiluminescent and radioisotope studies contained 89-93% of the H- and D-fractions of the melioid antigen, and in the electron microscopic examination, the sizes of antigen-containing liposomes were 600-80 0 nm.
RU2008113988/15A 2008-04-09 2008-04-09 Antigen-containing liposome preparation process RU2356538C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2008113988/15A RU2356538C1 (en) 2008-04-09 2008-04-09 Antigen-containing liposome preparation process

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2008113988/15A RU2356538C1 (en) 2008-04-09 2008-04-09 Antigen-containing liposome preparation process

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2356538C1 true RU2356538C1 (en) 2009-05-27

Family

ID=41023248

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2008113988/15A RU2356538C1 (en) 2008-04-09 2008-04-09 Antigen-containing liposome preparation process

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2356538C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2582969C1 (en) * 2015-03-24 2016-04-27 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method of producing liposome with encapsulated doxycycline hydrochloride and surface localised monoclonal antibodies

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
SZOKA S. et al. Procedure for preparation of liposomes with large internal space and high capture by reverse-phase evaporation, Pros. Natl. Sci. USA, 1976, v.75, №9, pp.4194-4198. STEVEN M.P. et al. Attenuated virulence and protective efficacy of a B. pseudomallei bsa type III secretion mutant in murine models of melioidosis, Microbiology, 2004 Aug; 150 (pt 8): 2669-76. PILATZ S. et al. Identification of B. Pseudomallei genes required for the intracellular life cycle and vivo virulence, Infect. Immunol. 2006 Jun; 74(6): 3576-86. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2582969C1 (en) * 2015-03-24 2016-04-27 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method of producing liposome with encapsulated doxycycline hydrochloride and surface localised monoclonal antibodies

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Frezard Liposomes: from biophysics to the design of peptide vaccines
JP7333563B2 (en) lipid nanoparticles
JP2518605B2 (en) Microdroplets containing water-insoluble drug
US20080187553A1 (en) Immunstimulating lipid formulation
KR100726818B1 (en) Oil adjuvant vaccine
JPS6238330B2 (en)
FR2598622A1 (en) IMMUNOLOGICAL ADJUVANTS FOR POLYSACCHARIDE VACCINES
WO2008109031A2 (en) Liposome carriers for in vivo delivery of fullerenes
WO1998053799A2 (en) Immunogenic compositions
US20100047329A1 (en) Novel Vaccination Carrier
RU2356538C1 (en) Antigen-containing liposome preparation process
RU2446822C2 (en) Immunostimulating complex, method for preparing and using it
AU2803500A (en) Vaccine composition
BR112012033284B1 (en) vaccine vehicle to induce cellular immune response, and, vaccine composition
RU2376012C1 (en) Method for production of combined liposome antibacterial preparation
ES2234152T3 (en) VECTOR OF ANTIGENS IN THE FORM OF MULTILAMELARY VESICLES.
CA2761917C (en) Method for detoxification of lipopolysaccharide (lps) or of lipid a of gram-negative bacteria
FR2798288A1 (en) VACCINE COMPOSITIONS FOR MUCOSAL ADMINISTRATION
RU2582969C1 (en) Method of producing liposome with encapsulated doxycycline hydrochloride and surface localised monoclonal antibodies
UNNISA et al. Formulation And Evalution of Cefixime by Liposomal
CN116570722A (en) Pickering emulsion delivery system and preparation method and application thereof
UNNISA et al. Formulation And Evalution of Cefixime by Liposomal Technique.
RU2319506C2 (en) Method for preparing carrier of antigens based on lipids from sea macrophytes and triterpene glycoside cucumarioside
KR20230026261A (en) Multi-layered vesicles for induction of immunity, pharmaceutical composition for inducing immunity comprising same, and method of manufacturing multi-layered vesicles for induction of immunity
CN117398348A (en) Pickering emulsion for efficiently loading virus particles, and preparation method and application thereof

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20100410