RU2351020C1 - Способ лечения полнослойных дефектов хряща коленного сустава с использованием культуры аутологичных мезенхимальных стволовых клеток - Google Patents

Способ лечения полнослойных дефектов хряща коленного сустава с использованием культуры аутологичных мезенхимальных стволовых клеток Download PDF

Info

Publication number
RU2351020C1
RU2351020C1 RU2007123941/14A RU2007123941A RU2351020C1 RU 2351020 C1 RU2351020 C1 RU 2351020C1 RU 2007123941/14 A RU2007123941/14 A RU 2007123941/14A RU 2007123941 A RU2007123941 A RU 2007123941A RU 2351020 C1 RU2351020 C1 RU 2351020C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
knee joint
cartilage
defect
full
stem cells
Prior art date
Application number
RU2007123941/14A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2007123941A (ru
Inventor
ба Тарас Андреевич Кул (RU)
Тарас Андреевич Куляба
Николай Николаевич Корнилов (RU)
Николай Николаевич Корнилов
Вадим Сергеевич Горностаев (RU)
Вадим Сергеевич Горностаев
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение "Российский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Р.Р. Вредена Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" ( ФГУ "РНИИТО им. Р.Р. Вредена Росмедтехнологий")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение "Российский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Р.Р. Вредена Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" ( ФГУ "РНИИТО им. Р.Р. Вредена Росмедтехнологий") filed Critical Федеральное государственное учреждение "Российский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Р.Р. Вредена Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" ( ФГУ "РНИИТО им. Р.Р. Вредена Росмедтехнологий")
Priority to RU2007123941/14A priority Critical patent/RU2351020C1/ru
Publication of RU2007123941A publication Critical patent/RU2007123941A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2351020C1 publication Critical patent/RU2351020C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Prostheses (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области экспериментальной медицины и может быть применимо для моделирования лечения полнослойных дефектов хряща коленного сустава. Моделируют стенки и дно дефекта. Производят забор фрагмента ткани жирового тела для последующего выделения и культивирования аутологичных мезенхимальных стволовых клеток. Вводят куьтивированные клетки пункционно трехкратно в полость коленного сустава. Способ позволяет замедлить прогрессирование дегенеративно-дистрофических изменений, оптимизировать формирование регенерата в области дефекта. 4 ил.

Description

Изобретение относится к области медицины, а именно к ортопедии и травматологии, и может быть использовано для лечения полнослойных дефектов хряща коленного сустава.
Длительно использующимся в клинической практике способом лечения локальных повреждений хряща коленного сустава, сопровождающихся обнажением субхондральной кости, является резекция нестабильных его участков и последующая туннелизация субхондральной кости (Ogilvie-Harris, Jackson, 1984). В последние годы все шире применяется так называемый «микрофрактуринг» - формирование микропереломов субхондральной кости, направленное на создание так называемого "суперсгустка" крови, стимуляцию мезенхимальных клеток с последующей трансформацией соединительной ткани в хрящеподобную (Steadmen et al., 2001). Основным недостатком этих способов является то, что они приводят к образованию в области деструкции рубцовой ткани или волокнистого хряща, значительно уступающих по своим функциональным свойствам гиалиновому, в результате чего развивается диффузное дегенеративно-дистрофическое поражение коленного сустава, которое приводит к тяжелому нарушению функции конечности.
Более перспективным методом хирургического лечения локальных глубоких повреждений хряща коленного сустава, позволяющим более оптимально восстановить гиалиновый хрящ по данным гистологического исследования, представляется пересадка культуры аутохондроцитов с периостальным лоскутом (Minas, Peterson, 1997). Этапами данного метода являются артроскопический забор хрящевой ткани из медиального или латерального мыщелков бедренной кости, ее культивирование в течение 3-4 недель для выращивания 10-12 миллионов жизнеспособных хондроцитов, имплантация культуры хондроцитов в область повреждения под периостальный лоскут, взятый из медиального мыщелка бедренной кости. Субпериостальная имплантация культуры аутогенных хондроцитов позволяет добиться хороших отдаленных результатов более чем у 85% пациентов в сроки до 12 лет после операции (Gillogly, 2002). Основными недостатками данного метода являются дополнительное повреждение хряща при заборе ткани, трудоемкость и высокая стоимость культивирования хондроцитов, двухэтапность хирургического лечения и соответственно необходимость повторной госпитализации пациента для выполнения второго этапа.
Разработанный нами, экспериментально подтвержденный способ лечения глубоких повреждений хряща коленного сустава позволяет оптимизировать формирование полноценного регенерата в области дефекта суставной поверхности, существенно замедлить развитие и прогрессирование дегенеративно-дистрофических изменений в суставе и избежать необходимости повторного оперативного вмешательства.
Результат изобретения достигается за счет того, что во время хирургического вмешательства после моделирования стенок и дна дефекта из ткани жирового тела коленного сустава выделяются и культивируются аутологичные мезенхимальные стволовые клетки, которые затем пункционно трехкратно вводятся в пораженный коленный сустав.
На фигурах изображено следующее.
Фиг.1. Макроскопический препарат правого коленного сустава (основная группа) через год после операции, сохраняются контуры сформированного дефекта хряща, отсутствуют признаки гонартроза.
Фиг.2. Микроскопия дефекта хряща коленного сустава (основная группа), дно дефекта представлено базальным слоем суставного хряща, вне зоны дефекта хрящ обычного строения.
Фиг.3. Макроскопический препарат левого коленного сустава (контрольная группа) через год после операции, сохраняются контуры сформированного дефекта хряща, выраженные признаки гонартроза.
Фиг.4. Микроскопия дефекта хряща коленного сустава (контрольная группа), дно дефекта представлено склерозированной костной тканью - костными шлифами, в субхондральной костной пластинке костные кисты.
Способ осуществляется следующим образом. Для создания однотипных условий проведения эксперимента у всех животных использовали оригинальную методику формирования полнослойного локального дефекта круглой формы в нагружаемой зоне мыщелка бедренной кости только на толщину гиалинового хряща без повреждения подлежащей субхондральной кости. Под общим наркозом, после обработки и драпировки операционного поля, выполняли передневнутреннюю артротомию правого коленного сустава, надколенник вывихивали кнаружи, мобилизировали жировое тело, коленный сустав сгибали до острого угла для доступа к наиболее нагружаемым отделам мыщелков бедренной кости, после чего в одном из них полой фрезой диаметром 5 мм с ограничителем строго перпендикулярно суставной поверхности производили аккуратное удаление хряща на всю его толщину. Ограничитель, располагающийся внутри фрезы, препятствовал повреждению субхондральной кости. Резецировали 3-5 мм3 жирового тела коленного сустава и помещали его в пробирку с питательной средой. Затем рану промывали раствором антисептика, выполняли контроль гемостаза и далее послойный шов раны. Аналогичным способом формировали дефект суставной поверхности внутреннего мыщелка бедренной кости левого коленного сустава (контрольная группа). В послеоперационном периоде иммобилизацию суставов не применяли, дополнительных назначений медикаментов не требовалось, животные находились в клетках вивария.
Аутологичные мезенхимальные клетки из жирового тела получали путем измельчения ткани в диссоциирующем растворе, осаждения клеток центрифугированием, отмывки раствором DPBS без ионов Са2+ и Mg2+ и посева во флаконы в среде DMEM с 10% сыворотки эмбрионов коров. Клетки выращивали в течение 10-14 дней, после чего одну их часть вводили животным, а другую замораживали в жидком азоте для повторных введений собакам.
Через 4, 12 и 26 недель после операции под внутривенным наркозом с соблюдением асептики выполняли пункцию правого коленного сустава и внутрисуставно вводили взвесь аутологичных мезенхимальных стволовых клеток в количестве 5×106 клеток в 1 мл 0,9% раствора хлорида натрия. В левый коленный сустав внутрисуставно вводили 1 мл 0,9% раствора хлорида натрия.
Через год собак выводили из эксперимента. Осуществляли забор и препаровку макропрепаратов коленных суставов, визуально оценивали наличие признаков их дегенеративно-дистрофического поражения: цвет, толщина, плотность и равномерность хрящевого покрытия мыщелков бедренной и большеберцовой костей, наличие краевых костно-хрящевых разрастаний, состояние синовиальной оболочки.
После соответствующей обработки выполняли микроскопию срезов внутренних мыщелков бедренной кости в области сформированных ранее дефектов суставной поверхности.
Клинический пример.
У беспородной половозрелой собаки №1 в операционной под внутривенным наркозом из передневнутреннего доступа выполнили артротомию правого коленного сустава. В нагружаемой зоне внутреннего мыщелка бедренной кости полой фрезой диаметром 5 мм сформировали полнослойный дефект хряща до субхондральной кости без ее пенетрации. Резецировали часть жирового тела и поместили его в стерильную пробирку с питательной средой. Рану послойно ушили. Аналогичным способом после артротомии сформировали дефект суставной поверхности внутреннего мыщелка бедренной кости левого коленного сустава. В послеоперационном периоде иммобилизацию суставов не применяли, раны зажили первичным натяжением.
Аутологичные мезенхимальные клетки из жирового тела получали путем измельчения тела в диссоциирующем растворе, осаждения клеток центрифугированием, отмывки раствором DPBS без ионов Са2+ и Mg2+ и посева во флаконы в среде DMEM с 10% сыворотки эмбрионов коров. Клетки выращивали в течение 10-14 дней, после чего одну их часть вводили животным, а другую замораживали в жидком азоте для повторных введений собакам.
Через 4, 12 и 26 недель в операционной под внутривенным наркозом выполнили пункцию правого коленного сустава и внутрисуставно ввели взвесь аутологичных мезенхимальных стволовых клеток в количестве 5×106 клеток в 1 мл 0,9% раствора хлорида натрия.
Через год собаку вывели из эксперимента и осуществили забор и препаровку коленных суставов.
При визуальной оценке наличия и степени выраженности признаков дегенеративно-дистрофического поражения правого и левого коленных суставов отмечена существенная разница.
Хрящ правого коленного сустава имел нормальную окраску и плотность, сохранялись очертания дефекта суставной поверхности, однако он был неглубоким, заполненным тканью, напоминающей хрящевую, но более мягкую при пальпации. Костно-хрящевых разрастаний по краю суставной поверхности мыщелков бедренной и большеберцовой костей не было, в синовиальной оболочке отсутствовали признаки острого или хронического воспаления (фиг.1). При микроскопическом исследовании дефект сохранял округлую форму, дно его было представлено базальным слоем суставного хряща, покрытым тонкой прослойкой фиброзной ткани и фибрина. В подлежащей кости наблюдались явления склерозирования. Хрящ вне зоны дефекта имел обычное строение (фиг.2).
Хрящ левого коленного сустава был тусклым, размягченным, с очаговыми истончениями в наиболее нагружаемых отделах. Сохранялись четкие границы глубокого дефекта суставной поверхности внутреннего мыщелка бедра, дном которого была субхондральная кость. По краю суставной поверхности мыщелков бедренной и большеберцовой костей сформировались выраженные костно-хрящевые разрастания, в синовиальной оболочке отмечались умеренные признаки хронического воспаления (застойная гиперемия, гипертрофия ворсин, незначительный отек и уплотнение) (фиг.3). При микроскопическом исследовании дно дефекта было представлено склерозированной костной тканью - костными шлифами, по краям которых определялись костно-хрящевые разрастания. В субхондральной костной пластинке формировались кисты (фиг.4).
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Gillogly S.D. Cartisel: indications, technique and results // Surgical treatment of complex knee ligament, patellofemoral and articular cartilage disorders. - Rosemont, 2002. - P.201-204.
2. Minas Т., Peterson L. Chondrocyte transplantation // Operative Techniques in Orthopaedics. - 1997. - V.7. - P.323-333.
3. Ogilvie-Harris D.J., Jackson R.W. The arthroscopic treatment of chondromalacia patellae // J. Bone Jt. Surgery. - 1984. - V.66-B, №5. - P.660-665.
4. Steadman J.R., Rodkey W.G., Rodrigo J.J. Microfracture: surgical technique and rehabilitation to treat chondral defects // Clin. Orthop. - 2001. - №391. - P.362-369.

Claims (1)

  1. Способ моделирования лечения полнослойных дефектов хряща коленного сустава, отличающийся тем, что после моделирования стенок и дна дефекта производят забор фрагмента ткани жирового тела для последующего выделения и культивирования аутологичных мезенхимальных стволовых клеток, которые затем пункционно трехкратно вводят в полость коленного сустава.
RU2007123941/14A 2007-06-25 2007-06-25 Способ лечения полнослойных дефектов хряща коленного сустава с использованием культуры аутологичных мезенхимальных стволовых клеток RU2351020C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007123941/14A RU2351020C1 (ru) 2007-06-25 2007-06-25 Способ лечения полнослойных дефектов хряща коленного сустава с использованием культуры аутологичных мезенхимальных стволовых клеток

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007123941/14A RU2351020C1 (ru) 2007-06-25 2007-06-25 Способ лечения полнослойных дефектов хряща коленного сустава с использованием культуры аутологичных мезенхимальных стволовых клеток

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2007123941A RU2007123941A (ru) 2008-12-27
RU2351020C1 true RU2351020C1 (ru) 2009-03-27

Family

ID=40543039

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2007123941/14A RU2351020C1 (ru) 2007-06-25 2007-06-25 Способ лечения полнослойных дефектов хряща коленного сустава с использованием культуры аутологичных мезенхимальных стволовых клеток

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2351020C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2452527C1 (ru) * 2010-12-27 2012-06-10 Александр Сергеевич Тепляшин Способ регенерации хрящевой гиалиновой ткани суставов на начальных стадиях деструктивных заболеваний

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
AUGELLO A. Cell therapy using allogeneic bone marrow mesenchymal stem cells prevents tissue damage in collagen-induced arthritis. Arthritis Rheum. 2007 Apr; 56(4):1175-86 (Abstract). *
ВИШНЕВСКИЙ В.А. Низкоинтенсивное лазерное излучение в лечении остеоартроза. - Вiсник морскоi медицини, 2000б №4(12), [ON-LINE], 12.06.2002, [найдено 12.06.2002], www.port.odessa.ua/medic/sea_med/0004/000431.htm. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2452527C1 (ru) * 2010-12-27 2012-06-10 Александр Сергеевич Тепляшин Способ регенерации хрящевой гиалиновой ткани суставов на начальных стадиях деструктивных заболеваний

Also Published As

Publication number Publication date
RU2007123941A (ru) 2008-12-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gooding et al. A prospective, ranomised study comparing two techniques of autologous chondrocyte implantation for osteochondral defects in the knee: periosteum covered versus type I/III collagen covered
Giannini et al. Cartilage repair evolution in post-traumatic osteochondral lesions of the talus: from open field autologous chondrocyte to bone-marrow-derived cells transplantation
Manfredini et al. Autologous chondrocyte implantation: a comparison between an open periosteal-covered and an arthroscopic matrix-guided technique
Ferruzzi et al. Autologous chondrocyte implantation in the knee joint: open compared with arthroscopic technique: comparison at a minimum follow-up of five years
Salzmann et al. Second-generation autologous minced cartilage repair technique
Riboh et al. Particulated articular cartilage for symptomatic chondral defects of the knee
Richter et al. Matrix-associated stem cell transplantation (MAST) in chondral defects of foot and ankle is effective
Giannini et al. Failures in bipolar fresh osteochondral allograft for the treatment of end-stage knee osteoarthritis
Richter et al. Matrix-associated stem cell transplantation (MAST) in chondral defects of the ankle is safe and effective–2-year-followup in 130 patients
Johnson et al. Cell cultured chondrocyte implantation and scaffold techniques for osteochondral talar lesions
CN106421917A (zh) 制备用于软骨损伤修复的组合物的方法
RU2351020C1 (ru) Способ лечения полнослойных дефектов хряща коленного сустава с использованием культуры аутологичных мезенхимальных стволовых клеток
US20190307928A1 (en) Polymeric patch scaffolds for articular cartilage regeneration
RU2637103C2 (ru) Способ замещения дефектов хрящевой ткани
RU2692228C1 (ru) Способ хирургического лечения костно-хрящевых дефектов мыщелков бедренной кости
Zellner et al. Is the transplant quality at the time of surgery adequate for matrix-guided autologous cartilage transplantation? A pilot study
Kyriakidis et al. Matrix-induced adipose-derived mesenchymal stem cells implantation for knee articular cartilage repair Two years follow-up
Beth et al. Arthroscopic implantation of a cartilage matrix for an osteochondral defect of the talus: a case report
Gomoll et al. Technical enhancements and update on chondrocyte implantation
CN106421918A (zh) 软骨细胞组合物
Patzer et al. Arthroscopic autologous chondrocyte transplantation for osteochondritis dissecans of the elbow
Segal et al. Other surgical techniques for osteoarthritis
Piontek et al. Arthroscopic treatment of chondral and osteochondral defects in the ankle using the autologous matrix-induced chondrogenesis technique
Brittberg Articular Cartilage Repair in the Knee Joint with Autologous Chondrocytes and Periosteal Graft: Technical Aspects
EP2651465B1 (en) Arthroscopy method