RU2344832C1 - Vaccine drug against colibacteriosis - Google Patents
Vaccine drug against colibacteriosis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2344832C1 RU2344832C1 RU2007115551/13A RU2007115551A RU2344832C1 RU 2344832 C1 RU2344832 C1 RU 2344832C1 RU 2007115551/13 A RU2007115551/13 A RU 2007115551/13A RU 2007115551 A RU2007115551 A RU 2007115551A RU 2344832 C1 RU2344832 C1 RU 2344832C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- vaccine
- liposome
- mixture
- escherichia coli
- colibacteriosis
- Prior art date
Links
Classifications
-
- Y02A50/474—
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области ветеринарии, в частности к птицеводству, а именно к вакцинным препаратам против инфекционных заболеваний, а именно против колибактериоза.The invention relates to the field of veterinary medicine, in particular to poultry farming, in particular to vaccines against infectious diseases, namely against colibacteriosis.
Колибактериоз (колисептицемия, колиинфекция, эшерихиоз) - энзоотическая септическая болезнь различных видов домашних птиц (преимущественно кур, уток, гусей), вызываемая патогенными типами кишечной палочки различных серологических групп. Клинически колибактериоз проявляется угнетением, потерей аппетита, диареей, затрудненным дыханием, хрипами или прекращением яйцекладки. При патологоанатомическом вскрытии отмечают перикардит, перигепатит, аэросаккулит, сальпенгит, овариит, перитонит. Болезнь наносит существенный экономический ущерб птицеводству.Colibacteriosis (colisepticemia, coli infection, escherichiosis) is an enzootic septic disease of various species of poultry (mainly chickens, ducks, geese) caused by pathogenic types of E. coli of various serological groups. Clinically, colibacteriosis is manifested by depression, loss of appetite, diarrhea, shortness of breath, wheezing, or termination of oviposition. With postmortem autopsy, pericarditis, perihepatitis, aerosacculitis, salpengitis, ovaryitis, peritonitis are noted. The disease causes significant economic damage to poultry farming.
В настоящее время для профилактики и лечения инфекционных заболеваний широко используются антибиотики, сульфаниламидные, нитрофурановые и различные комплексные препараты. В частности, для профилактики и лечения колибактериоза рекомендуются окситетрациклин, тетрациклин, биовит, левомицитин, тетрахлорид, сульфагин, фтазин, биофузол и ряд других препаратов (Ветеринарные препараты: Справочник / Сост. Л.П.Маланин и др. М., Агропромиздат, 1988, с.5-33; Романов Е.А. Биологические ветеринарные препараты в России: вакцины, сыворотки, диагностикумы: Справочник. - Издательство: К.: РУТЕН, 2005, с.636).Currently, antibiotics, sulfonamide, nitrofuran and various complex preparations are widely used for the prevention and treatment of infectious diseases. In particular, for the prevention and treatment of colibacteriosis, oxytetracycline, tetracycline, biovit, levomycetin, tetrachloride, sulfagin, phthazine, biofusol and several other drugs are recommended (Veterinary preparations: Handbook / Comp. L.P. Malanin et al. M., Agropromizdat, 1988 , p.5-33; Romanov EA Biological veterinary preparations in Russia: vaccines, serums, diagnostics: Reference book. - Publisher: K .: RUTEN, 2005, p.636).
Недостатками большинства препаратов является невысокая эффективность, особенно для решения профилактических задач, большое число противопоказаний, высокая себестоимость препаратов.The disadvantages of most drugs are low efficiency, especially for solving preventive problems, a large number of contraindications, high cost of drugs.
В профилактике колибактериоза основную роль играет строгое выполнение комплекса организационно-хозяйственных, зоогигиенических и ветеринарно-санитарных мероприятий, однако важная роль отводится специфической профилактике. При этом наиболее эффективным способом борьбы с ветеринарными инфекциями является вакцинация поголовья зараженного стада.In the prevention of colibacillosis, the main role is played by the strict implementation of a set of organizational, economic, zoohygienic and veterinary and sanitary measures, however, specific prevention plays an important role. In this case, the most effective way to combat veterinary infections is to vaccinate the livestock of the infected herd.
В настоящее время известно значительное количество живых и инактивированных вакцин, как правило, моно- или двухвалентных, предназначенных для профилактики отдельных инфекционных заболеваний, таких как болезнь Ньюкастла, реовирус птиц и т.д. (ЕР 0100752; ЕР 0044920; US 4515777; US 4302444; Н.Г.Рыбальский, B.C.Романова и др. Вакцины как объект изобретения, М., ВНИИГПЭ, 1988, с.110-229). Более удобные поливалентные вакцинные препараты, обеспечивающие защиту поголовья одновременно от нескольких вирусных заболеваний, не нашли пока широкого применения, т.к. создание таких препаратов весьма трудоемко в связи с необходимостью учета взаимодействия как самих компонентов вакцин, так и антител, возникающих в организме вакцинированного животного или птицы при их введении.Currently, a significant number of live and inactivated vaccines are known, usually mono- or divalent, designed to prevent certain infectious diseases, such as Newcastle disease, avian reovirus, etc. (EP 0100752; EP 0044920; US 4515777; US 4302444; N.G. Rybalsky, B.C. Romanova and other Vaccines as an object of the invention, M., VNIIGPE, 1988, pp. 110-229). More convenient multivalent vaccine preparations that protect the livestock simultaneously from several viral diseases have not yet been widely used, because the creation of such drugs is very time-consuming due to the need to take into account the interaction of both the vaccine components themselves and the antibodies that arise in the body of the vaccinated animal or bird when they are introduced.
В частности, известна вакцина против колибактериоза птиц (SU 1792330), получаемая культивированием штамма Escherichia coli (E.coli) с последующей инактивацией клеток ацетоном и выделением полученного осадка. Недостатком вакцины является ее невысокая эффективность и высокая вероятность заражения птиц выжившими клетками бактерий.In particular, a vaccine against colibacteriosis of birds (SU 1792330) is known, obtained by culturing a strain of Escherichia coli (E. coli), followed by inactivation of the cells with acetone and isolating the resulting pellet. The disadvantage of the vaccine is its low efficiency and the high probability of infection of birds by surviving bacterial cells.
Наиболее близкой к заявляемой вакцине по составу и достигаемому эффекту является инактивированная вакцина (ТУ 10-19.68-89), представляющая собой мелкодисперсную суспензию белого цвета, содержащую инактивированные формалином бактерии Escherichia coli серотипа 078 в смеси с адъювантом на основе гидроокиси алюминия (ГОА формолвакцина). Вакцинацию проводят методом однократной инъекции в грудную или бедренную мышцу в объеме 0.5 мл всем здоровым птицам в возрасте 28-32 дней.The closest to the claimed vaccine in terms of composition and achieved effect is an inactivated vaccine (TU 10-19.68-89), which is a finely divided white suspension containing formalin-inactivated bacteria Escherichia coli serotype 078 in a mixture with an adjuvant based on aluminum hydroxide (GOA formolvaccine). Vaccination is carried out by a single injection into the pectoral or femoral muscle in a volume of 0.5 ml to all healthy birds aged 28-32 days.
Недостатками данной вакцины являются недостаточно высокие антигенная и иммуногенная активности, а также возможность возникновения воспалительных реакций на месте ее введения с последующим развитием гранулем и абсцессов.The disadvantages of this vaccine are not sufficiently high antigenic and immunogenic activity, as well as the possibility of inflammatory reactions at the site of its administration with the subsequent development of granulomas and abscesses.
Технической задачей, решаемой в рамках настоящего изобретения, являлось создание более эффективной вакцины против колибактериоза.The technical problem solved in the framework of the present invention was the creation of a more effective vaccine against colibacteriosis.
Технический результат достигался созданием вакцины, представляющей собой композицию, содержащую в жидком виде следующие ингредиенты, мас.%:The technical result was achieved by creating a vaccine, which is a composition containing in liquid form the following ingredients, wt.%:
Дополнительно препарат, предназначенный для дальнейшей сушки, может содержать хлороформ или иной растворитель.Additionally, the preparation intended for further drying may contain chloroform or another solvent.
Получаемый вакцинный препарат представляет собой суспензию липосом, содержащих смесь инактивированного антигена к бактерии Escherichia coli штамм №389 (078) с аминоэтилэтиленимином, заключенный в липосомальную везикулу. Вместо штамма Е.coli №389 (078) может быть использован и другой штамм Е.coli, вызывающей колибактериоз.The resulting vaccine preparation is a suspension of liposomes containing a mixture of inactivated antigen for the bacterium Escherichia coli strain No. 389 (078) with aminoethylethyleneimine enclosed in a liposomal vesicle. Instead of E. coli strain No. 389 (078), another E. coli strain causing colibacteriosis can also be used.
В основе заявляемой новой вакцины было заложено предположение, что при обработке бактериальных клеток аминоэтилэтиленимином удается, с одной стороны, исключить наличие в вакцине живых микроорганизмов, а с другой стороны, обеспечить за счет разрушения клеток повышение содержания в суспензии антигена, что повышает ее эффективность. Вместе с тем, введение в композицию липосом обеспечивает помещение активного материала в везикулу, разрушающуюся непосредственно в организме животного, что обеспечивает максимальную концентрацию антигена в зоне введения и соответственно повышенную выработку антител организмом вакцинируемой птицы.The proposed new vaccine was based on the assumption that, when treating bacterial cells with aminoethylethylenimine, it is possible, on the one hand, to exclude the presence of live microorganisms in the vaccine, and, on the other hand, to ensure an increase in the content of antigen suspension due to cell destruction, which increases its effectiveness. At the same time, the introduction of liposomes into the composition ensures the placement of the active material in the vesicle, which is destroyed directly in the animal’s body, which ensures the maximum concentration of antigen in the injection zone and, accordingly, the increased production of antibodies by the body of the vaccinated bird.
Использование АЭЭИ в концентрации менее 0.5 мас.% снижает эффективность вакцины и повышает опасность наличия в ней живых бактерий, обеспечивает повышение концентрации более 3%, не влияя на концентрацию антигена, делает вакцину более токсичной.The use of AEEI in a concentration of less than 0.5 wt.% Reduces the effectiveness of the vaccine and increases the risk of the presence of live bacteria in it, provides an increase in the concentration of more than 3%, without affecting the concentration of antigen, makes the vaccine more toxic.
Природа используемых ЛИС на выработку антител практически не влияет. Так, в качестве ЛИС использовали промышленно выпускаемые как индивидуальные фосфолипиды, так и их смеси, полученные из растительного, животного или биотехнологического сырья; смесь фосфолипидов и сухих наполнителей (сахаров, полиолов, солей) по технологии, описанной в RU 2130771, или смесь, содержащую фосфолипиды, с 10-12% сахаров и 1-3% водорастворимых полимеров, ранее использованную в патенте авторов (RU 2169581, RU 012968). Природа используемых липосом на выработку антител практически не влияет.The nature of the LIS used does not significantly affect antibody production. So, both individual phospholipids and their mixtures obtained from plant, animal or biotechnological raw materials were commercially available as LIS; a mixture of phospholipids and dry fillers (sugars, polyols, salts) according to the technology described in RU 2130771, or a mixture containing phospholipids with 10-12% sugars and 1-3% water-soluble polymers previously used in the authors patent (RU 2169581, RU 012968). The nature of the liposomes used has almost no effect on antibody production.
Содержание ЛИС в концентрации более 15 мас.% повышает вязкость препарата, в концентрации менее 7,3% не обеспечивает полноту помещения антигена в везикулу и ухудшает его стабильность при хранении.The content of LIS in a concentration of more than 15 wt.% Increases the viscosity of the drug, in a concentration of less than 7.3% does not ensure the completeness of the antigen in the vesicle and impairs its storage stability.
Вакцинация птиц с использованием заявляемой вакцины заключается во введении вышеупомянутой липосомальной вакцины в организм птицы парентерально, внутримышечно в грудную или бедренную мышцу.Vaccination of birds using the inventive vaccine consists in the introduction of the aforementioned liposomal vaccine into the body of the bird parenterally, intramuscularly in the pectoral or femoral muscle.
Как правило, показанием к применению вакцины служит неблагополучие хозяйства по вышеназванным инфекциям. Вакцинируют всю клинически здоровую птицу в возрасте 28-32 дней. Препарат вводят внутримышечно в грудную или бедренную мышцу в дозе 0,5 мл на 1 голову.As a rule, the indication for the use of the vaccine is the lack of economy on the above infections. All clinically healthy birds are vaccinated at the age of 28-32 days. The drug is administered intramuscularly in the pectoral or femoral muscle at a dose of 0.5 ml per 1 head.
Сущность и практическая применимость заявляемых изобретений иллюстрируются следующими примерами.The essence and practical applicability of the claimed invention are illustrated by the following examples.
ПРИМЕР 1. Вакцину готовили по следующей методике. 0.45 л суспензии клеток Escherichia coli штамм №389 (078) с концентрацией 2×1010 КОЕ/см3, полученной из ВГНКИ, смешивали при температуре 37°С в режиме постоянного перемешивания с 50 мл 20% раствора АЭЭИ в течение 20 мин. Полученный препарат содержал антигены и не содержал жизнеспособных клеток бактерий.EXAMPLE 1. The vaccine was prepared according to the following procedure. 0.45 L of a suspension of cells of Escherichia coli strain No. 389 (078) with a concentration of 2 × 10 10 CFU / cm 3 obtained from VGNKI was mixed at a temperature of 37 ° C under continuous stirring with 50 ml of 20% AEEI solution for 20 min. The resulting preparation contained antigens and did not contain viable bacterial cells.
20 мл препарата, содержащего антигены, смешали с 2.0 г суммарных фосфолипидов растительного лецитина, 0.5 г бутилоксианизола и 0.5 г лактозы. Смесь гомогенизировали в течение 10 минут при скорости вращения 700g и температуре смеси 22-24°С.20 ml of a preparation containing antigens was mixed with 2.0 g of total phospholipids of plant lecithin, 0.5 g of butyloxyanisole and 0.5 g of lactose. The mixture was homogenized for 10 minutes at a rotation speed of 700g and a mixture temperature of 22-24 ° C.
Жидкая вакцина в 1 мл содержала 1.5×1010 клеток Escherichia coli штамм №389 (078); 0.002 г АЭЭИ, 0,14 г ЛОС.The liquid vaccine in 1 ml contained 1.5 × 10 10 cells of Escherichia coli strain No. 389 (078); 0.002 g AEEI, 0.14 g VOC.
Пример 2. Вакцину готовили по следующей методике. 0.475 л суспензии клеток Escherichia coli штамм №389 (078) с концентрацией 2×1010 КОЕ/см3, полученной из ВГНКИ, смешивали при температуре 37°С в режиме постоянного перемешивания с 25 мл 20% раствора АЭЭИ в течение 20 мин. Полученный препарат содержал антигены и не содержал жизнеспособных клеток.Example 2. The vaccine was prepared according to the following method. 0.475 l of a suspension of cells of Escherichia coli strain No. 389 (078) with a concentration of 2 × 10 10 CFU / cm 3 obtained from VGNKI, was mixed at a temperature of 37 ° C in continuous mixing with 25 ml of a 20% solution of AEEI for 20 minutes The resulting preparation contained antigens and did not contain viable cells.
20 мл суспензии, содержащей антигены, 1.2 г суммарных фосфолипидов из семян подсолнечника, 0.8 г сорбита и 5.0 г хлороформа, помещали в герметически закрывающуюся емкость объемом 30 см, при температуре 37°С. Сушку проводили при вакуумировании в течение 1 часа, при температуре 37°С и постоянном перемешивании со скоростью 50 об/мин. В результате было получено 2.1 г сухого мелкодисперсного порошка с влажностью 0.7%, содержащего 2×1011 клеток Escherichia coli штамм №389 (078); 0.2 г АЭЭИ, 1,8 г ЛОС.20 ml of a suspension containing antigens, 1.2 g of total phospholipids from sunflower seeds, 0.8 g of sorbitol and 5.0 g of chloroform were placed in a hermetically sealed container with a volume of 30 cm, at a temperature of 37 ° C. Drying was carried out under vacuum for 1 hour, at a temperature of 37 ° C and constant stirring at a speed of 50 rpm The result was 2.1 g of dry fine powder with a moisture content of 0.7%, containing 2 × 10 11 cells of Escherichia coli strain No. 389 (078); 0.2 g AEEI, 1.8 g VOC.
Для вакцинации 0.5 г липосомального препарата растворяли в 10 мл дистилированной воды.For vaccination, 0.5 g of the liposome preparation was dissolved in 10 ml of distilled water.
Пример 3. Вакцину готовили по следующей методике. 1.0 л суспензии клеток Escherichia coli штамм №389 (078) с концентрацией 2×1010 КОЕ/см3, полученной из ВГНКИ, смешивали при температуре 37°С в режиме постоянного перемешивания с 150 мл 20% раствора АЭЭИ в течение 20 мин. Полученный препарат содержал антиген и не содержал жизнеспособных бактерий.Example 3. The vaccine was prepared according to the following method. 1.0 l of a suspension of cells of Escherichia coli strain No. 389 (078) with a concentration of 2 × 10 10 CFU / cm 3 obtained from VGNKI, was mixed at a temperature of 37 ° C in continuous mixing with 150 ml of a 20% solution of AEEI for 20 minutes The resulting preparation contained antigen and did not contain viable bacteria.
20 мл препарата, содержащего антигены, смешали с 1.0 г суммарных фосфолипидов из семян подсолнечника, 0.6 г сорбита и 5.0 г хлороформа в герметически закрывающейся емкости объемом 150 см, при температуре 37°С. Емкость закрыли, откачали воздух до достижения вакуума 0.3 атм и выдерживали смесь в течение 1 часа при температуре 37°С и постоянном перемешивании со скоростью 50 об/мин. В результате было получено 15 мл концентрата, содержащего 2.0 г липосомальных везикул.20 ml of a preparation containing antigens was mixed with 1.0 g of total phospholipids from sunflower seeds, 0.6 g of sorbitol and 5.0 g of chloroform in a hermetically sealed container with a volume of 150 cm, at a temperature of 37 ° C. The container was closed, air was pumped out until a vacuum of 0.3 atm was reached, and the mixture was kept for 1 hour at a temperature of 37 ° C with constant stirring at a speed of 50 rpm. The result was 15 ml of concentrate containing 2.0 g of liposomal vesicles.
К 100 объемам концентрата липосомальных везикул антигенов добавляли 5 объемов 20% водного раствора желатины и 50 объемов 20% раствора сахарозы. Полученную смесь тщательно перемешивали и разливали в поддоны слоем толщиной 3.0-10.0 мм, закрывали крышками и переносили на полки сублимационной камеры. Материал замораживали до температуры - 30-40°С и выдерживали при этой температуре 2-3 часа, после чего камеру вакуумировали при 120-130 мм рт.ст. В дальнейшем полки нагревали до +24°С со скоростью 4 град/час. Общее время высушивания составляло 42-46 часов. Для вакцинации 0.5 г липосомального препарата растворяли в 10 мл дистилированной воды.To 100 volumes of a concentrate of liposome antigen vesicles, 5 volumes of a 20% aqueous gelatin solution and 50 volumes of a 20% sucrose solution were added. The resulting mixture was thoroughly mixed and poured into pallets with a layer thickness of 3.0-10.0 mm, closed with lids and transferred to the shelves of the sublimation chamber. The material was frozen to a temperature of -30-40 ° C and kept at this temperature for 2-3 hours, after which the chamber was evacuated at 120-130 mm Hg. Subsequently, the shelves were heated to + 24 ° C at a speed of 4 deg / h. The total drying time was 42-46 hours. For vaccination, 0.5 g of the liposome preparation was dissolved in 10 ml of distilled water.
ПРИМЕР 4. Вакцину готовили по методике примера 1. 0.43 л суспензии клеток Escherichia coli штамм №389 (078) с концентрацией 2×1010 КОЕ/см3, полученной из ВГНКИ, смешивали при температуре 37°С в режиме постоянного перемешивания с 70 мл 25% раствора АЭЭИ в течение 20 мин. Полученный препарат содержал антигены и не содержал жизнеспособных клеток бактерий.EXAMPLE 4. The vaccine was prepared according to the method of example 1. 0.43 l of a suspension of cells of Escherichia coli strain No. 389 (078) with a concentration of 2 × 10 10 CFU / cm 3 obtained from VGNKI, was mixed at a temperature of 37 ° C with constant stirring with 70 ml 25% AEEI solution for 20 minutes The resulting preparation contained antigens and did not contain viable bacterial cells.
20 мл препарата, содержащего антигены, смешали с 2.3 г суммарных фосфолипидов растительного лецитина, 0.6 г бутилоксианизола и 0.6 г лактозы. Смесь гомогенизировали в течение 10 минут при скорости вращения 700 g и температуре смеси 22-24°С, после чего использовали для вакцинации.20 ml of a preparation containing antigens was mixed with 2.3 g of total phospholipids of plant lecithin, 0.6 g of butyloxyanisole and 0.6 g of lactose. The mixture was homogenized for 10 minutes at a rotation speed of 700 g and a mixture temperature of 22-24 ° C, after which it was used for vaccination.
ПРИМЕР 5. Вакцину готовили по методике примера 1. 0.489 л суспензии клеток Escherichia coli штамм №389 (078) с концентрацией 2×1010 КОЕ/см3 , полученной из ВГНКИ, смешивали при температуре 37°С в режиме постоянного перемешивания с 11 мл 25% раствора АЭЭИ в течение 20 мин. Полученный препарат содержал антигены и не содержал жизнеспособных клеток бактерий.EXAMPLE 5. The vaccine was prepared as described in Example 1. 0.489 l cell suspension Escherichia coli strain №389 (078) with a concentration of 2 × 10 October CFU / cm 3, obtained from VGNKI were mixed at 37 ° C in a constant stirring with 11 ml 25% AEEI solution for 20 minutes The resulting preparation contained antigens and did not contain viable bacterial cells.
20 мл препарата, содержащего антигены, смешали с 1.2 г суммарных фосфолипидов растительного лецитина, 0.3 г бутилоксианизола и 0.3 г лактозы. Смесь гомогенизировали в течение 10 минут при скорости вращения 700 g и температуре смеси 22-24°С, после чего использовали для вакцинации.20 ml of a preparation containing antigens was mixed with 1.2 g of total phospholipids of plant lecithin, 0.3 g of butyloxyanisole and 0.3 g of lactose. The mixture was homogenized for 10 minutes at a rotation speed of 700 g and a mixture temperature of 22-24 ° C, after which it was used for vaccination.
Состав полученных вакцинных препаратов (без учета его изменения при сушке) приведен в таблице 1.The composition of the obtained vaccine preparations (without taking into account its changes during drying) is shown in table 1.
Пример 6. Вакцину использовали для профилактики колибактериоза птиц в условиях опытной базы Санкт-Петербургской государственной академии ветеринарной медицины. Препарат вводили внутримышечно в грудную или бедренную мышцу в дозе 0,5 мл на 1 голову.Example 6. The vaccine was used to prevent colibacillosis of birds in the experimental base of the St. Petersburg State Academy of Veterinary Medicine. The drug was administered intramuscularly into the pectoral or femoral muscle at a dose of 0.5 ml per head.
Вакцину проверяли на безвредность антигенную и иммуногенную активность. Напряженность поствакцинального иммунитета определяют через 7, 28, 45, 60, 90 суток после прививки в реакции агглютинации. Полученные результаты испытаний представлены в таблицах 2-4.The vaccine was tested for safety of antigenic and immunogenic activity. The intensity of post-vaccination immunity is determined 7, 28, 45, 60, 90 days after vaccination in the agglutination reaction. The test results obtained are presented in tables 2-4.
Как следует из приведенных результатов, вакцинный препарат безвреден для птицы, обладает выраженной антигенной и иммуногенной активностью.As follows from the above results, the vaccine preparation is harmless to birds, has a pronounced antigenic and immunogenic activity.
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007115551/13A RU2344832C1 (en) | 2007-04-25 | 2007-04-25 | Vaccine drug against colibacteriosis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007115551/13A RU2344832C1 (en) | 2007-04-25 | 2007-04-25 | Vaccine drug against colibacteriosis |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2007115551A RU2007115551A (en) | 2008-10-27 |
RU2344832C1 true RU2344832C1 (en) | 2009-01-27 |
Family
ID=40544094
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2007115551/13A RU2344832C1 (en) | 2007-04-25 | 2007-04-25 | Vaccine drug against colibacteriosis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2344832C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2498817C1 (en) * | 2012-07-24 | 2013-11-20 | Государственное научное учреждение Саратовский научно-исследовательский ветеринарный институт Российской академии сельскохозяйственных наук | Method for prevention of colibacillosis in chicken |
-
2007
- 2007-04-25 RU RU2007115551/13A patent/RU2344832C1/en not_active IP Right Cessation
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2498817C1 (en) * | 2012-07-24 | 2013-11-20 | Государственное научное учреждение Саратовский научно-исследовательский ветеринарный институт Российской академии сельскохозяйственных наук | Method for prevention of colibacillosis in chicken |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2007115551A (en) | 2008-10-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Heddleston et al. | Fowl cholera: cross-immunity induced in turkeys with formalin-killed in-vivo-propagated Pasteurella multocida | |
WO2001013896A1 (en) | A vaccine composition and method of using the same | |
US4622222A (en) | Process for the preparation of a lyophilized vaccine against duck virus hepatitis | |
RU2344832C1 (en) | Vaccine drug against colibacteriosis | |
US11738075B2 (en) | Method for lyophilizing live vaccine strains of Francisella tularensis | |
CN114042167B (en) | Newcastle disease and infectious bronchitis bivalent live vaccine heat-resistant protective agent and preparation method and application thereof | |
KR100825870B1 (en) | Combined inactivated vaccine for iridovirus infectious diseases, streptococcus infectious diseases and combined diseases thereof in fishes | |
CN112608382B (en) | Duplex egg yolk antibody for duck reovirus disease and duck viral hepatitis and preparation method thereof | |
CN114377127A (en) | Triple egg yolk antibody preparation and preparation method and application thereof | |
JP3812814B2 (en) | Multivalent oil adjuvant vaccine for animals | |
RU2337706C1 (en) | Method of antigen production for cattle and small cattle anaplasmosis vaccine preparation, method of anaplasmosis vaccine preparation, anaplasmosis vaccine and method of cattle and small cattle anaplasmosis prevention | |
RU2396978C1 (en) | Method for prevention of cattle leukosis development | |
PT1387693E (en) | Saponin inactivated mycoplasma vaccine | |
RU2741643C1 (en) | Associated vaccine against myxomatosis, pasteurellosis and viral haemorrhagic disease 1 and type 2 of rabbits | |
RU2259214C1 (en) | Method for preparing inactivated dry smallpox vaccine "ospavir" | |
RU2265451C2 (en) | Method for obtaining prophylactic preparations against respiratory mycoplasmosis in poultry and method for prophylaxis | |
RU2169581C1 (en) | Vaccine preparation and method of poultry vaccination | |
RU2340357C2 (en) | Vaccine against animal colibacillosis | |
KR102336245B1 (en) | Vaccine composition of novel inactivated Actinobacillus pleuroneumoniae bacteria | |
RU2306949C2 (en) | Protective medium for virus vaccine production in aviculture | |
RU2183968C2 (en) | Method to produce inactivated emulsified vaccine against syndrome of decreased egg yield - 76 poultry ones | |
RU2402348C1 (en) | Dry rabies vaccine for cattle and small cattle | |
RU2147892C1 (en) | Method of preparing preparation based on virus-bacterial strains from local focus for preparing mixed vaccine or polyvalent hyperimmune serum against cattle disease | |
RU2304447C1 (en) | Culture vaccine against poultry pox out of hen's virus (ospovac) (variants) | |
RU2018321C1 (en) | Vaccine against trychophytosis of animals |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20100426 |