RU2259214C1 - Method for preparing inactivated dry smallpox vaccine "ospavir" - Google Patents

Method for preparing inactivated dry smallpox vaccine "ospavir" Download PDF

Info

Publication number
RU2259214C1
RU2259214C1 RU2004102571/13A RU2004102571A RU2259214C1 RU 2259214 C1 RU2259214 C1 RU 2259214C1 RU 2004102571/13 A RU2004102571/13 A RU 2004102571/13A RU 2004102571 A RU2004102571 A RU 2004102571A RU 2259214 C1 RU2259214 C1 RU 2259214C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
virus
vaccine
containing liquid
concentration
liquid
Prior art date
Application number
RU2004102571/13A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2004102571A (en
Inventor
Л.Д. Быстрицкий (RU)
Л.Д. Быстрицкий
Н.Х. Ставицка (RU)
Н.Х. Ставицкая
Г.Г. Мальцева (RU)
Г.Г. Мальцева
В.В. Перекрест (RU)
В.В. Перекрест
Т.А. Васильева (RU)
Т.А. Васильева
О.И. Шарова (RU)
О.И. Шарова
М.А. Гаврилова (RU)
М.А. Гаврилова
Original Assignee
Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority to RU2004102571/13A priority Critical patent/RU2259214C1/en
Publication of RU2004102571A publication Critical patent/RU2004102571A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2259214C1 publication Critical patent/RU2259214C1/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology, vaccines.
SUBSTANCE: method involves preparing industrial strain, smallpox scrape off and virus-containing liquid. Virus-containing liquid is inactivated by gamma-radiation Co60. Integral (total) dose of irradiation is 1.75 x 106 R at the parent specific activity of virus-containing liquid from 1 x 109 to 1.9 x 109 OOE/ml and 1.9 x 106 R at the parent specific activity of virus-containing liquid from 2 x109 to 5 x 10 OOE/ml. The content of total protein is brought about to the concentration 100 mcg/ml and drying stabilizing agents are added. Vaccine elicits high immunogenicity, suitable in applying and absence of toxicity.
EFFECT: improved preparing method, improved and valuable properties of vaccine.
3 cl, 6 ex

Description

Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано для получения вакцины оспенной инактивированной сухой.The invention relates to microbiology and can be used to obtain vaccine smallpox inactivated dry.

Известен способ получения вакцины оспенной живой, включающий получение производственных штаммов, оспенных соскобов, вируссодержащей жидкости (регламент производства вакцины оспенной живой сухой №963-00 от 14.09.2000 г.). Также известен способ получения вакцины оспенной инактивированной (регламент производства вакцины инактивированной №249 от 1982 г.).A known method of producing vaccine smallpox live, including obtaining industrial strains, smallpox scrapings, virus-containing fluids (production schedule of smallpox live vaccine dry No. 963-00 from 09/14/2000). Also known is a method of producing a vaccine of smallpox inactivated (production schedule for inactivated vaccine No. 249 of 1982).

Однако применение вакцины оспенной живой ограничено рядом установленных противопоказаний, особенно в условиях, когда население длительное время не вакцинировалось или ранее не получало прививку против оспы.However, the use of smallpox live vaccine is limited by a number of established contraindications, especially in conditions where the population has not been vaccinated for a long time or has not previously been vaccinated against smallpox.

Задачей предлагаемого способа является создание грундиммунитета у человека, впервые вакцинируемого против оспы, и снижение реактогенности вакцины оспенной живой.The objective of the proposed method is the creation of grossimmunity in a person vaccinated for the first time against smallpox, and reducing the reactogenicity of the smallpox vaccine alive.

Поставленная задача достигается путем получения производственного штамма, оспенных соскобов, вируссодержащей жидкости и ее инактивирования, причем вирус вакцины инактивируют гамма-излучением Со60, интегральная (суммарная) доза облучения составляет 1,75·106 Р при исходной специфической активности вируссодержащей жидкости 1·109-1,9·109 ООЕ/мл или 1,9·1006 Р - при исходной специфической активности вируссодержащей жидкости 2·109-5·109 ООЕ/мл, доводят содержание общего белка до концентрации 100 мкг/мл, вводят в состав стабилизаторы сушки, в качестве стабилизаторов сушки используют сахарозу в конечной концентрации 5% и желатозу в конечной концентрации 1%, в качестве производственного штамма используют штамм вируса вакцины Л-ИВП (Листер, Институт вирусных препаратов).The problem is achieved by obtaining a production strain, smallpox scrapings, virus-containing liquid and its inactivation, moreover, the vaccine virus is inactivated by gamma radiation of Co 60 , the integral (total) dose of radiation is 1.75 · 10 6 R at the initial specific activity of the virus-containing liquid 1 · 10 9 -1.9 · 10 9 OOE / ml or 1.9 · 100 6 P - at the initial specific activity of the virus-containing liquid 2 · 10 9 -5 · 10 9 OOE / ml, the total protein content is adjusted to a concentration of 100 μg / ml, drying stabilizers are introduced into the composition, as abilizatorov drying sucrose is used at a final concentration of 5% and zhelatozu a final concentration of 1%, is used as production strain of vaccinia virus strain A-TTI (Lister Institute of Viral Preparations).

Процесс получения вакцины включает:The vaccine process includes:

- получение производственных штаммов;- obtaining production strains;

- получение оспенных соскобов;- receiving smallpox scrapings;

- приготовление вируссодержащей жидкости;- preparation of virus-containing fluid;

- приготовление инактивированной вирусной жидкости;- preparation of inactivated viral fluid;

- приготовление жидкого полуфабриката вакцины - сведение инактивированной вирусной жидкости, буферного раствора, растворов стабилизаторов;- preparation of a liquid semi-finished vaccine - mixing inactivated viral fluid, buffer solution, stabilizer solutions;

- разлив жидкого полуфабриката в ампулы, лиофилизация вакцины и герметизация ампул с вакциной;- pouring liquid semi-finished product into ampoules, lyophilization of the vaccine and sealing the ampoules with the vaccine;

- упаковка вакцины в комплекте с растворителем, в качестве которого используют раствор натрия хлорида 0,9%.- packaging of the vaccine complete with a solvent, which is used as a solution of sodium chloride 0.9%.

Получение производственных штаммов представляет собой:Obtaining production strains is:

- получение производственного штамма путем пассажа исходного штамма вируса вакцины на кроликах, получения соскоба, его размола, обработки фреоном-113, получения вируссодержащей жидкости с добавлением глицерина в конечной концентрации 50% (ляпина);- obtaining a production strain by passage of the original strain of the vaccine virus in rabbits, obtaining scraping, grinding, treatment with Freon-113, obtaining a virus-containing liquid with the addition of glycerin in a final concentration of 50% (lapine);

- получение маточного штамма путем пассажа производственного штамма (ляпины) на телятах, получения соскоба, его размола, обработки фреоном-113, получения вируссодержащей жидкости с добавлением глицерина в конечной концентрации 50% (ляпино-вакцина I генерации);- obtaining a uterine strain by passage of a production strain (lapins) on calves, obtaining a scraping, grinding it, processing with Freon-113, obtaining a virus-containing liquid with the addition of glycerin in a final concentration of 50% (lapino-vaccine of the 1st generation);

- получение посевного вируса путем пассажа на телятах маточного штамма, получения соскоба, его размола, обработки фреоном-113, получения вируссодержащей жидкости с добавлением глицерина в конечной концентрации 50% (ляпино-вакцина II генерации).- receiving the inoculum virus by passage on the calves of the uterine strain, obtaining scraping, grinding, treatment with Freon-113, obtaining virus-containing fluid with the addition of glycerol in a final concentration of 50% (lapino-vaccine of the II generation).

Специфическая активность производственных штаммов контролируется в реакции на хорион-аллантоисных оболочках двенадцатидневных куриных эмбрионов и должна быть: ляпины - не менее 5,0·108 ООЕ/мл, ляпино-вакцины I и II генерации - не менее 1,0·109 ООЕ/мл.The specific activity of production strains is controlled in the reaction on the chorion-allantoic membranes of twelve-day-old chicken embryos and should be: lapins — not less than 5.0 · 10 8 OOE / ml, lapino-vaccines I and II generation — not less than 1.0 · 10 9 OOE / ml

Получение оспенных соскобов представляет собой получение оспенного детрита при пассаже посевного вируса на телятах.Obtaining smallpox scrapings is the production of smallpox detritus during passage of the seed virus in calves.

Приготовление вируссодержащей жидкости:Preparation of virus-containing fluid:

- размол соскоба, обработка соскоба фреоном-113 гомогенизацией при 5-10 тыс. об/мин в течение 10 минут, получение вируссодержащей жидкости (ляпино-вакцина III генерации) в виде надосадочной жидкости после центрифугирования при 3000 об/мин в течение 20 минут.- grinding the scraping, processing the scraping with Freon-113 homogenization at 5-10 thousand rpm for 10 minutes, obtaining a virus-containing fluid (lyapino-vaccine III generation) in the form of a supernatant after centrifugation at 3000 rpm for 20 minutes.

Специфическая активность ляпино-вакцины III генерации контролируется в реакции на хорион-аллантоисных оболочках двенадцатидневных куриных эмбрионов и должна быть не менее 1,0·109 ООЕ/мл. Микробиологическая чистота контролируется в соответствии с ГФ XI вып.2: в 1 мл допускается не более 50 посторонних микроорганизмов, в том числе аэробных и факультативных анаэборных бактерий и грибов. Должны отсутствовать патогенные анаэробные бактерии, бактерии семейства Enterobacteriaceae и видов Pseudomonas aeruginosa и Staphylococcus aureus. Материал должен быть безвредным для морской свинки и двух белых мышей.The specific activity of the generation III lapino vaccine is controlled in the reaction on the chorion-allantoic membranes of twelve-day-old chicken embryos and should be at least 1.0 · 10 9 OOE / ml. Microbiological purity is controlled in accordance with the Global Fund XI issue 2: no more than 50 extraneous microorganisms are allowed in 1 ml, including aerobic and facultative anaobor bacteria and fungi. There should be no pathogenic anaerobic bacteria, bacteria of the Enterobacteriaceae family and Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus species. The material should be harmless to guinea pig and two white mice.

Приготовление инактивированной вирусной жидкости представляет собой процесс инактивации вируса гамма-излучением. Вируссодержащую жидкость облучают на изотопной установке с применением Со60.The preparation of inactivated viral fluid is the process of inactivating a virus with gamma radiation. Virus-containing liquid is irradiated in an isotopic installation using Co 60 .

Интегральная (суммарная) доза облучения вируссодержащей жидкости не зависит от ее объема и составляет 1,75·106 Р при исходной специфической активности вируссодержащей жидкости 1·109 ООЕ/мл - 1,9·109 ООЕ/мл или 1,9·106 Р при исходной специфической активности вируссодержащей жидкости 2·109 ООЕ/мл - 5·109 ООЕ/мл.The integral (total) dose of exposure to the virus-containing liquid does not depend on its volume and amounts to 1.75 · 10 6 R at the initial specific activity of the virus-containing liquid 1 · 10 9 OOE / ml - 1.9 · 10 9 OOE / ml or 1.9 · 10 6 P at the initial specific activity of the virus-containing liquid 2 · 10 9 OOE / ml - 5 · 10 9 OOE / ml

Инактивированная вирусная жидкость не должна содержать живой вирус, должна быть стерильна, нетоксична и содержать общий белок в количестве не менее 1 мг/мл.Inactivated viral fluid should not contain live virus, should be sterile, non-toxic and contain a total protein of at least 1 mg / ml.

Контроль полноты инактивации проводят на хорион-аллантоисных оболочках двенадцатидневных куриных эмбрионов, на которых не должно развиваться типичных специфических поражений от нанесения инактивированной вирусной жидкости.Monitoring the completeness of inactivation is carried out on the chorion-allantoic membranes of twelve-day-old chicken embryos, on which typical specific lesions from the application of inactivated viral fluid should not develop.

Приготовление жидкого полуфабриката вакцины:Preparation of liquid prefabricated vaccine:

Серию жидкого полуфабриката вакцины получают при добавлении стабилизаторов в инактивированную вирусную жидкость с расчетной концентрацией общего белка 100 мкг/мл.A series of liquid prefabricated vaccines is obtained by adding stabilizers to an inactivated viral liquid with a calculated total protein concentration of 100 μg / ml.

Стабилизаторы: желатозу в конечной концентрации 1% и сахарозу в конечной концентрации 5% вводят в виде растворов желатозы 10% и сахарозы 50%.Stabilizers: gelatose at a final concentration of 1% and sucrose at a final concentration of 5% are administered in the form of solutions of gelatose 10% and sucrose 50%.

Концентрация общего белка в инактивированной вирусной жидкости до 100 мкг/мл доводится буферным раствором Мак-Ильвейна 0,007 М рН 7,2-7,4.The concentration of total protein in inactivated viral fluid to 100 μg / ml is adjusted with Mc Ilvein's buffer solution of 0.007 M pH 7.2-7.4.

Разлив жидкого полуфабриката в ампулы, лиофилизация вакцины и герметизация ампул с вакциной:Spilling liquid prefabricated into ampoules, freeze-drying the vaccine and sealing the ampoules with the vaccine:

Препарат разливают в стерильные ампулы. Номинальный объем вакцины в ампуле при ее разливе - 0,5 мл. Процесс разлива проводят в потоке стерильного воздуха.The drug is poured into sterile ampoules. The nominal volume of the vaccine in the ampoule during its spill is 0.5 ml. The spill process is carried out in a stream of sterile air.

Затем кассеты с препаратом помещают в низкотемпературный прилавок для замораживания продукта до конечной температуры минус 50-55°С. Замороженный препарат лиофилизируют в течение 36 часов. Начальная температура полок минус 40°С, скорость подогрева полок 5°С, конечная температура продукта 25°С.Then the drug cassettes are placed in a low-temperature counter to freeze the product to a final temperature of minus 50-55 ° C. The frozen preparation is lyophilized for 36 hours. The initial temperature of the shelves is minus 40 ° С, the heating rate of the shelves is 5 ° С, the final product temperature is 25 ° С.

Высушенный препарат запаивают в потоке стерильного азота для защиты от кислорода воздуха. Концентрация остаточного кислорода в препарате после герметизации должна быть не более 3%.The dried preparation is sealed in a stream of sterile nitrogen to protect against oxygen in the air. The concentration of residual oxygen in the preparation after sealing should be no more than 3%.

Упаковка вакцины в комплекте с растворителем:Vaccine packaging complete with solvent:

Вакцина выпускается в комплекте с растворителем - раствором натрия хлорида 0,9%. Первичная упаковка вакцины - по 1 дозе (0,5 мл) в ампулах ШП-1, ШП-2 из стекла марки НС-1 или НС-3 или аналогичного качества, или импортных, разрешенных к применению в РФ, упаковка растворителя - по 0,5 мл в таких же ампулах.The vaccine is supplied complete with a solvent - 0.9% sodium chloride solution. Primary vaccine packaging - 1 dose (0.5 ml) in ampoules ШП-1, ШП-2 made of glass grade НС-1 or НС-3 or of similar quality, or imported, approved for use in the Russian Federation, solvent packaging - 0 , 5 ml in the same ampoules.

На ампулы с вакциной и растворителем наносят маркировку быстрозакрепляющейся краской методом печати или этикетированием.Vaccines with a vaccine and solvent are labeled with fast-curing ink by printing or labeling.

Комплект состоит из одной ампулы вакцины и одной ампулы растворителя. По 5 или 10 комплектов вместе с инструкцией по применению и ножом ампульным или скарификатором упаковывают в пачку из картона коробочного или в контурную ячейковую упаковку. По одной или две контурные упаковки помещают в пачку из картона.The kit consists of one vaccine ampoule and one solvent ampoule. For 5 or 10 sets, together with the instructions for use and an ampoule knife or a scarifier, they are packed in a pack of cardboard boxed or in blister packs. One or two contour packs are placed in a pack of cardboard.

Основным качественным показателем вакцины, характеризующим иммунобиологические свойства, является специфическая активность. Специфическую активность препарата, обусловленную активным компонентом - инактивированным антигеном вируса вакцины, оценивают по способности вызывать у иммунизированных белых крыс образование вируснейтрализующих антител к вирусу вакцины. Концентрацию специфических вируснейтрализующих антител (титр) в сыворотке крови иммунизированных животных определяют в реакции биологической нейтрализации на куриных эмбрионах, используя в качестве тест-штамма вирус вакцины. Среднегеометрический титр вируснейтрализующих антител в сыворотках крови крыс, вакцинированных одной дозой вакцины внутривенно, должен быть не менее 1:80.The main quality indicator of a vaccine characterizing immunobiological properties is specific activity. The specific activity of the drug, due to the active component, the inactivated antigen of the vaccine virus, is evaluated by the ability to induce the formation of virus-neutralizing antibodies to the vaccine virus in immunized white rats. The concentration of specific virus-neutralizing antibodies (titer) in the blood serum of immunized animals is determined in the biological neutralization reaction on chicken embryos using the vaccine virus as a test strain. The geometric mean titer of virus-neutralizing antibodies in the blood serum of rats vaccinated with a single dose of the vaccine intravenously should be at least 1:80.

В качестве производственного штамма для получения инактивированной оспенной вакцины используют штамм вируса вакцины Л-ИВП.As a production strain for producing inactivated smallpox vaccine, the L-IVP vaccine virus strain is used.

Предлагаем примеры приготовления серии жидкого полуфабриката вакцины.We offer examples of the preparation of a series of liquid prefabricated vaccines.

Пример 1. Вируссодержащая жидкость, полученная после обработки соскоба (РП №963-00 от 14.09.00) имеет специфическую активность 1,0·109 ООЕ/мл. Вирус инактивируют на изотопной установке гамма-излучением Со60 при интегральной дозе облучения (Д) 1,75·106 Р. При мощности дозы излучения (W) 22,45 Р/с продолжительность инактивации (Т), рассчитанная по формуле

Figure 00000001
, составляет
Figure 00000002
c или 21 час 40 минут.Example 1. Virus-containing liquid obtained after processing scraping (RP No. 963-00 from 09/14/00) has a specific activity of 1.0 · 10 9 OOE / ml The virus is inactivated in an isotope installation with Co 60 gamma radiation at an integrated radiation dose (D) of 1.75 · 10 6 R. At a radiation dose rate (W) of 22.45 R / s, the inactivation duration (T) calculated by the formula
Figure 00000001
is
Figure 00000002
c or 21 hours 40 minutes.

Инактивированная вирусная жидкость должна быть безопасна (контроль полноты инактивации), стерильна, нетоксична и содержание общего белка должно быть не менее 100 мкг/мл. В примере концентрации общего белка установлена 3,0 мг/мл. Для приготовления серии полуфабриката вакцины объемом 15,55 л необходимо приготовить 12,5 л инактивированной вирусной жидкости с расчетной концентрацией общего белка 100 мкг/мл. Для этого 417 мл инактивированной вирусной жидкости с концентрацией белка 3,0 мг/мл доводят до 12500 мл стерильным апирогенным нетоксичным буферным раствором Мак-Ильвейна 0,007 М рН 7,2-7,4 (расчетное количество добавляемого буферного раствора 12083 мл). Жидкость перемешивают, не допуская вспенивания, и берут выемку 20 мл для контроля концентрации общего белка. Затем в полученную жидкость добавляют стабилизаторы: желатозу до конечной концентрации 1% в виде стерильного апирогенного нетоксичного раствора желатозы 10% - 1560 мл и сахарозу до конечной концентрации 5% в виде стерильного апирогенного нетоксичного раствора сахарозы 50% - 1560 мл. Полученную жидкость перемешивают и берут пробу 50 мл на контроль стерильности. Серию жидкого полуфабриката вакцины объемом 15,55 л передают на разлив в ампулы.Inactivated viral fluid should be safe (control the completeness of inactivation), sterile, non-toxic and the total protein content should be at least 100 μg / ml. In an example of a concentration of total protein, 3.0 mg / ml was established. To prepare a series of semi-finished vaccines with a volume of 15.55 L, it is necessary to prepare 12.5 L of inactivated viral fluid with a calculated total protein concentration of 100 μg / ml. To do this, 417 ml of inactivated viral fluid with a protein concentration of 3.0 mg / ml is adjusted to 12500 ml with McIlvein's sterile pyrogen-free non-toxic buffer solution of 0.007 M pH 7.2-7.4 (estimated amount of added buffer solution is 12083 ml). The liquid is stirred to prevent foaming, and a 20 ml recess is taken to control the concentration of total protein. Then stabilizers are added to the obtained liquid: gelatose to a final concentration of 1% in the form of a sterile pyrogen-free non-toxic solution of gelatose 10% - 1560 ml and sucrose to a final concentration of 5% in the form of a sterile pyrogen-free non-toxic solution of sucrose 50% - 1560 ml. The resulting liquid is mixed and a 50 ml sample is taken for sterility control. A series of liquid prefabricated vaccines with a volume of 15.55 L is transferred for filling into ampoules.

Пример 2. Вируссодержащая жидкость, полученная после обработки соскоба (РП №963-00 от 14.09.00) имеет специфическую активность 1,5·109 ООЕ/мл. Вирус инактивируют на изотопной установке гамма-излучением Со60 при интегральной дозе облучения (Д) 1,75·106 Р. При мощности дозы излучения (W) 24 Р/с продолжительность инактивации (Т), рассчитанная по формуле

Figure 00000003
составляет
Figure 00000004
с или 20 часов 15 минут.Example 2. Virus-containing liquid obtained after processing scraping (RP No. 963-00 from 09/14/00) has a specific activity of 1.5 · 10 9 OOE / ml The virus is inactivated in an isotope installation with Co 60 gamma radiation at an integrated radiation dose (D) of 1.75 · 10 6 R. At a radiation dose rate (W) of 24 R / s, the inactivation duration (T) calculated by the formula
Figure 00000003
makes up
Figure 00000004
from or 20 hours 15 minutes.

Инактивированная вирусная жидкость должна быть безопасна (контроль полноты инактивации), стерильна, нетоксична, и содержание общего белка должно быть не менее 100 мкг/мл. В примере концентрация общего белка установлена 2,0 мг/мл. Для приготовления серии полуфабриката вакцины объемом 15,55 л необходимо приготовить 12,5 л инактивированной вирусной жидкости с расчетной концентрацией общего белка 100 мкг/мл. Для этого 625 мл инактивированной вирусной жидкости с концентрацией белка 2,0 мг/мл доводят до 12500 мл стерильным апирогенным нетоксичным буферным раствором Мак-Ильвейна 0,007 М рН 7,2-7,4 (расчетное количество добавляемого буферного раствора 11875 мл). Жидкость перемешивают, не допуская вспенивания, и берут выемку 20 мл для контроля концентрации общего белка. Затем в полученную жидкость добавляют стабилизаторы: желатозу до конечной концентрации 1% в виде стерильного апирогенного нетоксичного раствора желатозы 10% - 1560 мл и сахарозу до конечной концентрации 5% в виде стерильного апирогенного нетоксичного раствора сахарозы 50% - 1560 мл. Полученную жидкость перемешивают и берут пробу 50 мл на контроль стерильности. Серию жидкого полуфабриката вакцины объемом 15,55 л передают на разлив в ампулы.Inactivated viral fluid should be safe (control the completeness of inactivation), sterile, non-toxic, and the total protein content should be at least 100 μg / ml. In the example, the concentration of total protein is set to 2.0 mg / ml. To prepare a series of semi-finished vaccines with a volume of 15.55 L, it is necessary to prepare 12.5 L of inactivated viral fluid with a calculated total protein concentration of 100 μg / ml. For this, 625 ml of inactivated viral fluid with a protein concentration of 2.0 mg / ml is adjusted to 12500 ml with McIlvein's sterile pyrogen-free non-toxic buffer solution of 0.007 M pH 7.2-7.4 (estimated amount of buffer solution added is 11875 ml). The liquid is stirred to prevent foaming, and a 20 ml recess is taken to control the concentration of total protein. Then stabilizers are added to the obtained liquid: gelatose to a final concentration of 1% in the form of a sterile pyrogen-free non-toxic solution of gelatose 10% - 1560 ml and sucrose to a final concentration of 5% in the form of a sterile pyrogen-free non-toxic solution of sucrose 50% - 1560 ml. The resulting liquid is mixed and a 50 ml sample is taken for sterility control. A series of liquid prefabricated vaccines with a volume of 15.55 L is transferred for filling into ampoules.

Пример 3. Вируссодержащая жидкость, полученная после обработки соскоба (РП №963-00 от 14.09.00) имеет специфическую активность 1,9·109 ООЕ/мл. Вирус инактивируют на изотопной установке гамма-излучением Со60 при интегральной дозе облучения (Д) 1,75·106 Р. При мощности дозы излучения (W) 26 Р/с продолжительность инактивации (Т), рассчитанная по формуле

Figure 00000005
, составляет
Figure 00000006
или 18 часов 41 минуту.Example 3. Virus-containing fluid obtained after processing scraping (RP No. 963-00 from 09/14/00) has a specific activity of 1.9 · 10 9 OOE / ml The virus is inactivated in an isotope installation with Co 60 gamma radiation at an integrated radiation dose (D) of 1.75 · 10 6 R. At a radiation dose rate (W) of 26 R / s, the inactivation duration (T) calculated by the formula
Figure 00000005
is
Figure 00000006
or 18 hours 41 minutes.

Инактивированная вирусная жидкость должна быть безопасна (контроль полноты инактивации), стерильна, нетоксична и содержание общего белка должно быть не менее 100 мкг/мл. В примере концентрация общего белка установлена 3,25 мг/мл. Для приготовления серии полуфабриката вакцины объемом 15,55 л необходимо приготовить 12,5 л инактивированной вирусной жидкости с расчетной концентрацией общего белка 100 мкг/мл. Для этого 385 мл инактивированной вирусной жидкости с концентрацией белка 3,25 мг/мл доводят до 12500 мл стерильным апирогенным нетоксичным буферным раствором Мак-Ильвейна 0,007 М рН 7,2-7,4 (расчетное количество добавляемого буферного раствора 12115 мл). Жидкость перемешивают, не допуская вспенивания, и берут выемку 20 мл для контроля концентрации общего белка. Затем в полученную жидкость добавляют стабилизаторы: желатозу до конечной концентрации 1% в виде стерильного апирогенного нетоксичного раствора желатозы 10% - 1560 мл и сахарозу до конечной концентрации 5% в виде стерильного апирогенного нетоксичного раствора сахарозы 50% - 1560 мл. Полученную жидкость перемешивают и берут пробу 50 мл на контроль стерильности. Серию жидкого полуфабриката вакцины объемом 15,55 л передают на разлив в ампулы.Inactivated viral fluid should be safe (control the completeness of inactivation), sterile, non-toxic and the total protein content should be at least 100 μg / ml. In the example, the concentration of total protein is set to 3.25 mg / ml. To prepare a series of semi-finished vaccines with a volume of 15.55 L, it is necessary to prepare 12.5 L of inactivated viral fluid with a calculated total protein concentration of 100 μg / ml. For this, 385 ml of inactivated viral fluid with a protein concentration of 3.25 mg / ml is adjusted to 12500 ml with McIlvein's sterile pyrogen-free non-toxic buffer solution of 0.007 M pH 7.2-7.4 (estimated amount of buffer solution added is 12115 ml). The liquid is stirred to prevent foaming, and a 20 ml recess is taken to control the concentration of total protein. Then stabilizers are added to the obtained liquid: gelatose to a final concentration of 1% in the form of a sterile pyrogen-free non-toxic solution of gelatose 10% - 1560 ml and sucrose to a final concentration of 5% in the form of a sterile pyrogen-free non-toxic solution of sucrose 50% - 1560 ml. The resulting liquid is mixed and a 50 ml sample is taken for sterility control. A series of liquid prefabricated vaccines with a volume of 15.55 L is transferred for filling into ampoules.

Пример 4. Вируссодержащая жидкость, полученная после обработки соскоба (РП №963-00 от 14.09.00) имеет специфическую активность 2,0·109 ООЕ/мл. Вирус инактивируют на изотопной установке гамма-излучением Со60 при интегральной дозе облучения (Д) 1,9·106 Р. При мощности дозы излучения (W) 24 Р/с продолжительность инактивации (Т), рассчитанная по формуле

Figure 00000005
, составляет
Figure 00000007
или 22 часа.Example 4. Virus-containing liquid obtained after processing scraping (RP No. 963-00 from 09/14/00) has a specific activity of 2.0 · 10 9 OOE / ml The virus is inactivated in an isotope installation with Co 60 gamma radiation at an integrated radiation dose (D) of 1.9 · 10 6 R. At a radiation dose rate (W) of 24 R / s, the inactivation duration (T) calculated by the formula
Figure 00000005
is
Figure 00000007
or 22 hours.

Инактивированная вирусная жидкость должна быть безопасна (контроль полноты инактивации), стерильна, нетоксична и содержание общего белка должно быть не менее 100 мкг/мл. В примере концентрации общего белка установлена 3,5 мг/мл. Для приготовления серии полуфабриката вакцины объемом 15,55 л необходимо приготовить 12,5 л инактивированной вирусной жидкости с расчетной концентрацией общего белка 100 мкг/мл. Для этого 357 мл инактивированной вирусной жидкости с концентрацией белка 3,5 мг/мл доводят до 12500 мл стерильным апирогенным нетоксичным буферным раствором Мак-Ильвейна 0,007 М рН 7,2-7,4 (расчетное количество добавляемого буферного раствора 12143 мл). Жидкость перемешивают, не допуская вспенивания, и берут выемку 20 мл для контроля концентрации общего белка. Затем в полученную жидкость добавляют стабилизаторы: желатозу до конечной концентрации 1% в виде стерильного апирогенного нетоксичного раствора желатозы 10% - 1560 мл и сахарозу до конечной концентрации 5% в виде стерильного апирогенного нетоксичного раствора сахарозы 50% - 1560 мл. Полученную жидкость перемешивают и берут пробу 50 мл на контроль стерильности. Серию жидкого полуфабриката вакцины объемом 15,55 л передают на разлив в ампулы.Inactivated viral fluid should be safe (control the completeness of inactivation), sterile, non-toxic and the total protein content should be at least 100 μg / ml. In an example of a total protein concentration, 3.5 mg / ml was established. To prepare a series of semi-finished vaccines with a volume of 15.55 L, it is necessary to prepare 12.5 L of inactivated viral fluid with a calculated total protein concentration of 100 μg / ml. For this, 357 ml of inactivated viral fluid with a protein concentration of 3.5 mg / ml is adjusted to 12500 ml with McIlvein's sterile pyrogen-free non-toxic buffer solution of 0.007 M pH 7.2-7.4 (the estimated amount of buffer solution added is 12143 ml). The liquid is stirred to prevent foaming, and a 20 ml recess is taken to control the concentration of total protein. Then stabilizers are added to the obtained liquid: gelatose to a final concentration of 1% in the form of a sterile pyrogen-free non-toxic solution of gelatose 10% - 1560 ml and sucrose to a final concentration of 5% in the form of a sterile pyrogen-free non-toxic solution of sucrose 50% - 1560 ml. The resulting liquid is mixed and a 50 ml sample is taken for sterility control. A series of liquid prefabricated vaccines with a volume of 15.55 L is transferred for filling into ampoules.

Пример 5. Вируссодержащая жидкость, полученная после обработки соскоба (РП №963-00 от 14.09.00) имеет специфическую активность 4,4·109 ООЕ/мл. Вирус инактивируют на изотопной установке гамма-излучением Со60 при интегральной дозе облучения (Д) 1,9·106 Р. При мощности дозы излучения (W) 22,45 Р/с продолжительность инактивации (Т), рассчитанная по формуле

Figure 00000005
, составляет
Figure 00000008
или 23 часа 28 минут.Example 5. The virus-containing fluid obtained after processing the scraping (RP No. 963-00 from 09/14/00) has a specific activity of 4.4 · 10 9 OOE / ml The virus is inactivated in an isotope installation with Co 60 gamma radiation at an integrated radiation dose (D) of 1.9 · 10 6 R. At a radiation dose rate (W) of 22.45 R / s, the inactivation duration (T) calculated by the formula
Figure 00000005
is
Figure 00000008
or 23 hours 28 minutes.

Инактивированная вирусная жидкость должна быть безопасна (контроль полноты инактивации), стерильна, нетоксична и содержание общего белка должно быть не менее 100 мкг/мл. В примере концентрации общего белка установлена 3,125 мг/мл. Для приготовления серии полуфабриката вакцины объемом 15,55 л необходимо приготовить 12,5 л инактивированной вирусной жидкости с расчетной концентрацией общего белка 100 мкг/мл, для чего 400 мл инактивированной вирусной жидкости с концентрацией белка 3,125 мг/мл доводят до 12500 мл стерильным апирогенным нетоксичным буферным раствором Мак-Ильвейна 0,007 М рН 7,2-7,А (расчетное количество добавляемого буферного раствора 12100 мл). Жидкость перемешивают, не допуская вспенивания, и берут выемку 20 мл для контроля концентрации общего белка. Затем в полученную жидкость добавляют стабилизаторы: желатозу до конечной концентрации 1% в виде стерильного апирогенного нетоксичного раствора желатозы 10% - 1560 мл и сахарозу до конечной концентрации 5% в виде стерильного апирогенного нетоксичного раствора сахарозы 50% - 1560 мл. Полученную жидкость перемешивают и берут пробу 50 мл на контроль стерильности. Серию жидкого полуфабриката вакцины объемом 15,55 л передают на разлив в ампулы.Inactivated viral fluid should be safe (control the completeness of inactivation), sterile, non-toxic and the total protein content should be at least 100 μg / ml. In an example of a concentration of total protein, 3.125 mg / ml was established. To prepare a series of semi-finished vaccines with a volume of 15.55 L, it is necessary to prepare 12.5 L of inactivated viral fluid with a calculated total protein concentration of 100 μg / ml, for which 400 ml of inactivated viral fluid with a protein concentration of 3.125 mg / ml is adjusted to 12500 ml with sterile pyrogen-free non-toxic McIlvein buffer solution 0.007 M pH 7.2-7, A (estimated amount of buffer solution added is 12100 ml). The liquid is stirred to prevent foaming, and a 20 ml recess is taken to control the concentration of total protein. Then stabilizers are added to the obtained liquid: gelatose to a final concentration of 1% in the form of a sterile pyrogen-free non-toxic solution of gelatose 10% - 1560 ml and sucrose to a final concentration of 5% in the form of a sterile pyrogen-free non-toxic solution of sucrose 50% - 1560 ml. The resulting liquid is mixed and a 50 ml sample is taken for sterility control. A series of liquid prefabricated vaccines with a volume of 15.55 L is transferred for filling into ampoules.

Пример 6. Вируссодержащая жидкость, полученная после обработки соскоба (РП №963-00 от 14.09.00) имеет специфическую активность 5,0·109 ООЕ/мл. Вирус инактивируют на изотопной установке гамма-излучением Со60 при интегральной дозе облучения (Д) 1,9·106 Р. При мощности дозы излучения (W) 26 Р/с продолжительность инактивации (Т), рассчитанная по формуле

Figure 00000005
, составляет
Figure 00000009
или 20 часов 17 минут.Example 6. Virus-containing fluid obtained after processing scraping (RP No. 963-00 from 09/14/00) has a specific activity of 5.0 · 10 9 OOE / ml The virus is inactivated in an isotope installation with Co 60 gamma radiation at an integrated radiation dose (D) of 1.9 · 10 6 R. At a radiation dose rate (W) of 26 R / s, the inactivation duration (T) calculated by the formula
Figure 00000005
is
Figure 00000009
or 20 hours 17 minutes.

Инактивированная вирусная жидкость должна быть безопасна (контроль полноты инактивации), стерильна, нетоксична и содержание общего белка должно быть не менее 100 мкг/мл. В примере концентрация общего белка установлена 2,5 мг/мл. Для приготовления серии полуфабриката вакцины объемом 15,55 л необходимо приготовить 12,5 л инактивированной вирусной жидкости с расчетной концентрацией общего белка 100 мкг/мл. Для этого 500 мл инактивированной вирусной жидкости с концентрацией белка 2,5 мг/мл доводят до 12500 мл стерильным апирогенным нетоксичным буферным раствором Мак-Ильвейна 0,007 М рН 7,2-7,4 (расчетное количество добавляемого буферного раствора 12000 мл). Жидкость перемешивают, не допуская вспенивания, и берут выемку 20 мл для контроля концентрации общего белка. Затем в полученную жидкость добавляют стабилизаторы: желатозу до конечной концентрации 1% в виде стерильного апирогенного нетоксичного раствора желатозы 10% - 1560 мл и сахарозу до конечной концентрации 5% в виде стерильного апирогенного нетоксичного раствора сахарозы 50% - 1560 мл. Полученную жидкость перемешивают и берут пробу 50 мл на контроль стерильности. Серию жидкого полуфабриката вакцины объемом 15,55 л передают на разлив в ампулы.Inactivated viral fluid should be safe (control the completeness of inactivation), sterile, non-toxic and the total protein content should be at least 100 μg / ml. In the example, the concentration of total protein is set to 2.5 mg / ml. To prepare a series of semi-finished vaccines with a volume of 15.55 L, it is necessary to prepare 12.5 L of inactivated viral fluid with a calculated total protein concentration of 100 μg / ml. For this, 500 ml of inactivated viral fluid with a protein concentration of 2.5 mg / ml is adjusted to 12500 ml with McIlvein's sterile pyrogen-free non-toxic buffer solution of 0.007 M pH 7.2-7.4 (estimated amount of added buffer solution is 12000 ml). The liquid is stirred to prevent foaming, and a 20 ml recess is taken to control the concentration of total protein. Then stabilizers are added to the obtained liquid: gelatose to a final concentration of 1% in the form of a sterile pyrogen-free non-toxic solution of gelatose 10% - 1560 ml and sucrose to a final concentration of 5% in the form of a sterile pyrogen-free non-toxic solution of sucrose 50% - 1560 ml. The resulting liquid is mixed and a 50 ml sample is taken for sterility control. A series of liquid prefabricated vaccines with a volume of 15.55 L is transferred for filling into ampoules.

Вакцина не содержит консерванта. Вакцину высушивают под вакуумом из замороженного состояния в ампулах и запаивают под азотом. Полученную предлагаемым способом вакцину «Оспавир» можно использовать в медицине для вакцинации против оспы.The vaccine does not contain a preservative. The vaccine is dried under vacuum from a frozen state in ampoules and sealed under nitrogen. Obtained by the proposed method, the vaccine "Ospavir" can be used in medicine for vaccination against smallpox.

Преимущества полученной вакцины состоят в том, что вакцина имеет упаковку по одной дозе в ампуле. Назначение: первичная вакцинация при двухэтапном методе вакцинации для активной профилактики оспы у детей с двухлетнего возраста, подростков и взрослых. Вакцина вводится лицам, подлежащим первичной вакцинации. Кроме того, вакцина «Оспавир» имеет преимущество перед аналогичной мультидозной вакциной в силу простоты и удобства применения, а также исключения ятрогенной ошибки.The advantages of the resulting vaccine are that the vaccine has a single dose package in an ampoule. Purpose: primary vaccination with a two-stage vaccination method for the active prevention of smallpox in children from two years of age, adolescents and adults. The vaccine is given to persons subject to primary vaccination. In addition, the Ospavir vaccine has an advantage over a similar multidose vaccine due to its simplicity and ease of use, as well as the elimination of iatrogenic error.

Claims (3)

1. Способ получения вакцины оспенной инактивированной сухой путем получения производственного штамма, оспенных соскобов, вируссодержащей жидкости и ее инактивирования, отличающийся тем, что вируссодержащую жидкость инактивируют гамма-излучением Со60, при этом интегральная доза облучения составляет 1,75·106 Р при исходной специфической активности вируссодержащей жидкости 1·109-1,9·109 ООЕ/мл и 1,9·106 Р - при исходной специфической активности вируссодержащей жидкости от 2·109 до 5·109 ООЕ/мл, затем доводят содержание общего белка до концентрации 100 мкг/мл и добавляют стабилизаторы сушки.1. A method of obtaining a vaccine of smallpox inactivated dry by obtaining a production strain, smallpox scrapings, virus-containing liquid and its inactivation, characterized in that the virus-containing liquid is inactivated by Co 60 gamma radiation, wherein the integral radiation dose is 1.75 · 10 6 P at the initial the specific activity of the virus-containing liquid 1 · 10 9 -1.9 · 10 9 OOE / ml and 1.9 · 10 6 P - with the initial specific activity of the virus-containing liquid from 2 · 10 9 to 5 · 10 9 OOE / ml, then the content is adjusted total protein to concentration 100 μg / ml and drying stabilizers are added. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве стабилизаторов сушки используют сахарозу в конечной концентрации 5% и желатозу в конечной концентрации 1%.2. The method according to claim 1, characterized in that sucrose in a final concentration of 5% and gelatose in a final concentration of 1% are used as drying stabilizers. 3. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве производственного штамма используют штамм вируса вакцины Л-ИВП.3. The method according to claim 1, characterized in that the strain of the vaccine virus L-IVP is used as the production strain.
RU2004102571/13A 2004-01-28 2004-01-28 Method for preparing inactivated dry smallpox vaccine "ospavir" RU2259214C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2004102571/13A RU2259214C1 (en) 2004-01-28 2004-01-28 Method for preparing inactivated dry smallpox vaccine "ospavir"

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2004102571/13A RU2259214C1 (en) 2004-01-28 2004-01-28 Method for preparing inactivated dry smallpox vaccine "ospavir"

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2004102571A RU2004102571A (en) 2005-08-10
RU2259214C1 true RU2259214C1 (en) 2005-08-27

Family

ID=35844297

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2004102571/13A RU2259214C1 (en) 2004-01-28 2004-01-28 Method for preparing inactivated dry smallpox vaccine "ospavir"

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2259214C1 (en)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2651040C2 (en) * 2016-08-08 2018-04-18 Федеральное государственное бюджетное учреждение "48 Центральный научно-исследовательский институт" Министерства обороны Российской Федерации Inactivated fetal dry tableted smallpox vaccine for oral administration of “thaovin” and a method for its preparation
RU2740920C2 (en) * 2013-09-27 2021-01-21 Интервет Интернэшнл Б.В. Vaccines, stable at room temperature
RU2744707C1 (en) * 2020-01-10 2021-03-15 Федеральное государственное бюджетное учреждение "48 Центральный научно-исследовательский институт" Министерства обороны Российской Федерации A method of obtaining a smallpox inactivated embryonic dry vaccine in tablet form for oral administration

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2740920C2 (en) * 2013-09-27 2021-01-21 Интервет Интернэшнл Б.В. Vaccines, stable at room temperature
RU2651040C2 (en) * 2016-08-08 2018-04-18 Федеральное государственное бюджетное учреждение "48 Центральный научно-исследовательский институт" Министерства обороны Российской Федерации Inactivated fetal dry tableted smallpox vaccine for oral administration of “thaovin” and a method for its preparation
RU2744707C1 (en) * 2020-01-10 2021-03-15 Федеральное государственное бюджетное учреждение "48 Центральный научно-исследовательский институт" Министерства обороны Российской Федерации A method of obtaining a smallpox inactivated embryonic dry vaccine in tablet form for oral administration

Also Published As

Publication number Publication date
RU2004102571A (en) 2005-08-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6596008B2 (en) Liquid stable porcine virus vaccine
EP3107571A2 (en) Poultry virus vaccines that are liquid stable
KR20170094186A (en) Process for ready-to-use pcv2/m.hyo combination vaccine
KR890004019B1 (en) Method for preparing vaccine for the treatment of urinary tract infections containing aluminium phosphate
RU2603003C1 (en) Inactivated sorptive vaccine to fmd types a, o, asia-1
CN111808826B (en) Porcine type-A seneca virus SVA/CH-Fuj strain and application thereof
RU2259214C1 (en) Method for preparing inactivated dry smallpox vaccine "ospavir"
US3423505A (en) Rabies vaccine and process for preparation thereof
JP2021519782A (en) Poliovirus inactivated by irradiation, composition containing it, and preparation method
JP3812814B2 (en) Multivalent oil adjuvant vaccine for animals
Reitman et al. Gamma-irradiated Venezuelan equine encephalitis vaccines
US3318775A (en) Production of viral antigens with n-acetyl-ethyleneimine
CN1345603A (en) Composite disinfection live vaccin for rainbow virus or streptococcus infection and complication thereof of fishes
RU2220744C1 (en) Vaccine against foot-and-mouth asia-1 type and method for it preparing
JPH0341034A (en) Peritonitis vaccine infectious for felid animal
RU2817255C1 (en) Associated vaccine against distemper, parvovirus and coronavirus enteritis, adenovirus infection and canine rabies
PT1387693E (en) Saponin inactivated mycoplasma vaccine
RU2325437C1 (en) Attenuated strain of goatpox virus
JP5121230B2 (en) Q fever vaccine preparation and method for producing the vaccine preparation
RU2806164C1 (en) Associated vaccine against canine distemper, parvovirus and coronavirus enteritis, adenovirus infection of dogs
RU2741643C1 (en) Associated vaccine against myxomatosis, pasteurellosis and viral haemorrhagic disease 1 and type 2 of rabbits
WO2011014418A1 (en) Vaccine stabilizer
RU2463073C1 (en) Swine transmissible gastroenteritis vaccine and method for preparing it
RU2056861C1 (en) Mixed vaccine against anthrax and foot-and-mouth and a method of anthrax and foot-and-mouth prophylaxis
JPS5879929A (en) Mixed vaccine of japanese encephalitis and swine parvo

Legal Events

Date Code Title Description
PD4A Correction of name of patent owner
PC43 Official registration of the transfer of the exclusive right without contract for inventions

Effective date: 20180716

PD4A Correction of name of patent owner