RU2329505C1 - Method of immunosorbent production for virus-specific antibody binding - Google Patents
Method of immunosorbent production for virus-specific antibody binding Download PDFInfo
- Publication number
- RU2329505C1 RU2329505C1 RU2007105449/15A RU2007105449A RU2329505C1 RU 2329505 C1 RU2329505 C1 RU 2329505C1 RU 2007105449/15 A RU2007105449/15 A RU 2007105449/15A RU 2007105449 A RU2007105449 A RU 2007105449A RU 2329505 C1 RU2329505 C1 RU 2329505C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- virus
- immunosorbent
- graphite
- carrier
- sorbent
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине и биологии, в частности к вирусологии - к способам получения иммуносорбентов, и может найти применение в диагностике вирусных инфекций.The invention relates to medicine and biology, in particular to virology - to methods for producing immunosorbents, and may find application in the diagnosis of viral infections.
Иммуносорбенты являются основными биоактивными компонентами тест-систем для иммунодиагностики. Иммуносорбенты для обнаружения антител к вирусам получают путем иммобилизации вирусов или антигенов на полимерном (RU 2138286, А61К 38/36, С07К 14/00, G01N 33/53, 27.09.1999; SU 1517545, G01N 33/53, опубл. 15.12.1993) или неорганическом носителе (RU 2140084, G01N 33/551, G01N 33/552, G01N 33/533, B01J 20/02, B01J 20/10, опубл. 20.10.1999; RU 2192013, G01N 33/543, G01N 33/531, опубл. 27.10.2002).Immunosorbents are the main bioactive components of test systems for immunodiagnostics. Immunosorbents for detecting antibodies to viruses are obtained by immobilizing viruses or antigens on a polymer (RU 2138286, А61К 38/36, С07К 14/00, G01N 33/53, 09/27/1999; SU 1517545, G01N 33/53, publ. 15.12.1993 ) or inorganic carrier (RU 2140084, G01N 33/551, G01N 33/552, G01N 33/533, B01J 20/02, B01J 20/10, publ. 20.10.1999; RU 2192013, G01N 33/543, G01N 33 / 531, publ. 10/27/2002).
Например, известен способ получения иммуносорбента для диагностики вирусного гепатита С, включающий инкубирование полимерного носителя с вирусспецифическим белком в течение 20-24 час при 4°С, отмывку избытка белка и высушивание полученного иммуносорбента. В качестве вирусспецифического белка используют белок, продуцируемый рекомбинантным штаммом Е. Coli, в виде раствора в ацетатном или фосфатном буфере. Для снижения неспецифической сорбции иммуносорбента его после высушивания обрабатывают 10%-ным раствором осветленной сыворотки крупного рогатого скота или 5-7%-ным раствором обезжиренного молока (RU 2095815, G01N 33/543, опубл. 10.11.1997).For example, a method for producing an immunosorbent for diagnosing viral hepatitis C is known, including incubating the polymer carrier with a virus-specific protein for 20-24 hours at 4 ° C, washing the excess protein and drying the resulting immunosorbent. As a virus-specific protein, a protein produced by a recombinant E. coli strain is used as a solution in acetate or phosphate buffer. To reduce the non-specific sorption of the immunosorbent, it is treated after drying with a 10% solution of clarified cattle serum or 5-7% solution of skim milk (RU 2095815, G01N 33/543, publ. 10.11.1997).
Недостатками данного известного способа получения иммуносорбента являются его ограниченность только одним вирусспецифическим белком, а также проблематичность его применения для других носителей, в частности неорганических.The disadvantages of this known method of producing an immunosorbent are its limitedness to only one virus-specific protein, as well as the difficulty of its use for other carriers, inorganic in particular.
Наиболее близким к предлагаемому способу получения иммуносорбента является способ получения иммуносорбента, способного связывать антитела к вирусам гриппа, заключающийся в инкубации порошка сульфата бария (BaSO4) (в качестве неорганического сорбента-носителя) с жидкостью, содержащей вирус гриппа, при 4°С в течение 1 часа из расчета 1 г BaSO4 на начальную концентрацию вируса, равную 1 миллиону гемагглютинирующих единиц (ГЕ) или 1000 ГЕ на 1 мг BaSO4 - используют концентрированный вирусный препарат, содержащий не менее 2000 ГЕ в 0,2 мл. Полученную взвесь центрифугируют при 2000 об/мин, осадок отмывают от избытка вируса физиологическим раствором с рН 7,2. Иммуносорбент можно хранить в лиофилизованном виде до 18 мес. или в физиологическом растворе в виде 50%-ной взвеси при 4°С до 2 мес. (Закстельская Л.Я., Шендерович С.Ф. Использование иммуносорбента для удаления противогриппозных антител из диагностических сывороток. Лабораторное дело, 1979, №12, стр.748-749 - прототип).Closest to the proposed method for producing an immunosorbent is a method for producing an immunosorbent capable of binding antibodies to influenza viruses, which consists in incubating barium sulfate powder (BaSO 4 ) (as an inorganic sorbent carrier) with a liquid containing influenza virus at 4 ° C for 1 hour based on 1 g of BaSO 4 per initial virus concentration equal to 1 million hemagglutinating units (CU) or 1000 CU per 1 mg of BaSO 4 - use a concentrated viral preparation containing at least 2000 CU in 0.2 ml. The resulting suspension is centrifuged at 2000 rpm, the precipitate is washed from the excess virus with physiological saline with a pH of 7.2. Immunosorbent can be stored in lyophilized form for up to 18 months. or in physiological saline in the form of a 50% suspension at 4 ° C for up to 2 months. (Zakstelskaya L.Ya., Shenderovich SF. Use of an immunosorbent to remove anti-influenza antibodies from diagnostic sera. Laboratory, 1979, No. 12, pp. 748-749 - prototype).
Недостатком способа-прототипа является низкая сорбционная способность используемого в нем сорбента-носителя, что приводит к низкой эффективности иммуносорбента в процессе связывания гриппозных антител. Кроме того, способ требует строгого соблюдения температурного режима, что усложняет процесс.The disadvantage of the prototype method is the low sorption ability of the sorbent carrier used in it, which leads to low efficiency of the immunosorbent in the process of binding of influenza antibodies. In addition, the method requires strict adherence to temperature conditions, which complicates the process.
Задачей предлагаемого изобретения является разработка такого способа получения иммуносорбента для связывания вирусспецифических антител, который позволит значительно повысить сорбционную способность сорбента-носителя и обеспечит высокую эффективность иммуносорбента при связывании вирусных антител и, кроме того, позволит упростить процесс.The objective of the invention is to develop such a method of producing an immunosorbent for binding of virus-specific antibodies, which will significantly increase the sorption ability of the sorbent carrier and will provide high efficiency of the immunosorbent in binding of viral antibodies and, in addition, will simplify the process.
Решение поставленной задачи достигается предлагаемым способом получения иммуносорбента, включающим инкубирование неорганического сорбента-носителя с вируссодержащей жидкостью, в котором, согласно изобретению, в качестве неорганического сорбента-носителя используют ультрадисперсный кислородсодержащий графит в виде вспученных частиц слоистого графита, содержащий кислород в количестве 12-14 мас.% на 73-76 мас.% углерода, который предварительно подвергают обработке водой при 95-100°С, затем центрифугируют и полученный осадок суспендируют в водном буферном растворе, полученную суспензию сорбента-носителя при содержании графита не менее 2 мас.% инкубируют с вируссодержащей жидкостью при температуре 5-35°С.The solution of this problem is achieved by the proposed method for producing an immunosorbent, including incubation of an inorganic sorbent carrier with a virus-containing liquid, in which, according to the invention, ultrafine oxygen-containing graphite in the form of expanded particles of layered graphite containing oxygen in an amount of 12-14 wt is used as an inorganic sorbent carrier % by 73-76% by weight of carbon, which is preliminarily treated with water at 95-100 ° C, then centrifuged and the resulting precipitate is suspended in one buffer solution, the resulting suspension of the sorbent carrier with a graphite content of at least 2 wt.% incubated with a virus-containing liquid at a temperature of 5-35 ° C.
В способе можно использовать ультрадисперсный кислородсодержащий графит с удельной поверхностью 1500-2000 м3/г и с размером частиц 25-50 мкм.In the method, you can use ultrafine oxygen-containing graphite with a specific surface of 1500-2000 m 3 / g and with a particle size of 25-50 microns.
Вируссодержащая жидкость может содержать оболочечный вирус.The virus-containing fluid may contain an enveloped virus.
Оболочечный вирус в вируссодержащей жидкости может быть вирусом гриппа.An enveloped virus in a virus-containing fluid may be an influenza virus.
При выборе сорбента-носителя главным критерием была высокая сорбционная способность по отношению к вирусам.When choosing a carrier sorbent, the main criterion was a high sorption ability with respect to viruses.
Одним из наиболее известных в вирусологии сорбентов для связывания вирусов является суспензия формализованных куриных эритроцитов (Ровнова З.И. Вопросы вирусологии, 1959, №4, стр.465). Однако широкого практического применения этот сорбент не нашел, так как процесс сорбции требует строгого соблюдения специального температурного режима, при нарушении которого комплекс эритроцитов с вирусами разрушается, и вирионы выходят в раствор.One of the most known sorbents for viral binding in virology is a suspension of formalized chicken erythrocytes (Rovnova ZI Issues of Virology, 1959, No. 4, p. 465). However, this sorbent did not find wide practical application, since the sorption process requires strict adherence to a special temperature regime, in violation of which the complex of red blood cells with viruses is destroyed, and the virions enter the solution.
До последнего времени считалось, что сорбенты на основе активированных углей не способны удалять вирусы из воды (RU 2237022, C02F 1/28, C02F 1/50, опубл. 27.09.2004, приоритет США от 20.05.1999).Until recently, it was believed that sorbents based on activated carbon were not able to remove viruses from water (RU 2237022, C02F 1/28, C02F 1/50, publ. 09/27/2004, US priority of 05/20/1999).
Однако ряд исследований указывает на возможность использования различных модификаций активированного угля для адсорбции вирусов.However, a number of studies indicate the possibility of using various modifications of activated carbon for the adsorption of viruses.
В работе (dark K.J, Sarr A.B et al. Vet. Microbiol. 1998, v.63 (2-4), p.137-146) глина или древесный уголь использовались как сорбенты для рота- и коронавирусов коров, вызывающих гастроэнтериты у млекопитающих и птиц. В работе (Zadorozhnaia V.I. Mikrobiol. J., 1996, v.58 (3), p.83-7) угольный сорбент был предложен для удаления из растворов энтеровирусов (полиовирусов типа 2). В патенте (RU 2237022, C02F 1/28, C02F 1/50, опубл. 27.09.2004, приоритет США от 20.05.1999) предложен угольный сорбент, представляющий собой частицы активированного угля, имеющие размер от 0,1 до 5000 мкм, способный удалять патогены нано-размера, например вирусы, из воды (на примере бактериофага MS-2). Сорбент для применения помещают на фильтр специальной конструкции, при этом предусматривается предварительное экструдирование частиц активированного угля в виде полых трубок.Clay (dark KJ, Sarr AB et al. Vet. Microbiol. 1998, v.63 (2-4), p.137-146) used clay or charcoal as sorbents for rotaviruses and coronaviruses of cows that cause gastroenteritis in mammals and birds. In (Zadorozhnaia V.I. Mikrobiol. J., 1996, v. 58 (3), p. 83-7), a carbon sorbent was proposed for removal of enteroviruses (type 2 polioviruses) from solutions. The patent (RU 2237022, C02F 1/28, C02F 1/50, publ. 09/27/2004, US priority 05/20/1999) proposes a carbon sorbent, which is an activated carbon particle having a size of from 0.1 to 5000 microns, capable of remove nano-sized pathogens, such as viruses, from water (using the bacteriophage MS-2 as an example). The sorbent for use is placed on a filter of a special design, while preliminary extrusion of activated carbon particles in the form of hollow tubes is provided.
Следует отметить, что в зависимости от состава и способа получения активированных углей наблюдается широкий диапазон их сорбционных свойств, в частности распределения пор по размерам и величины удельной поверхности.It should be noted that, depending on the composition and method of producing activated carbon, a wide range of their sorption properties is observed, in particular, pore size distribution and specific surface area.
В настоящее время известны различные формы модифицированного графита в виде слоистых соединений графита, которые используются в различных областях хозяйства (SU 1614350, С01В 31/04, опубл. 20.02.1995; SU 1813711, С01В 31/04, опубл. 07.05.1993; RU 2089495, С01В 31/04, опубл. 10.09.1997; RU 2090498, С01В 31/04, опубл. 20.09.1997).Currently, various forms of modified graphite are known in the form of layered graphite compounds that are used in various fields of economy (SU 1614350, СВВ 31/04, publ. 02.20.1995; SU 1813711, СВВ 31/04, publ. 07.05.1993; RU 2089495, СВВ 31/04, publ. 09/10/1997; RU 2090498, С01В 31/04, publ. 09/20/1997).
Для исследований был выбран ультрадисперсный кислородсодержащий графит (содержание кислорода 12-14 мас.% на 73-76 мас.% углерода) с удельной поверхностью 1500-2000 м3/г, содержащий вспученные частицы слоистого графита размером 25-50 мкм, получение которого описано в патенте RU 2198137, С01В 31/04, опубл. 10.02.2003. Выбор данного ультрадисперсного графита был обусловлен тем, что он является относительно дешевым материалом и обладает высокой сорбционной емкостью к ароматическим и алифатическим химическим соединениям. Для адсорбции биологических объектов из водных сред данный графитовый сорбент не удобен из-за чрезвычайно низкого удельного веса (0,25 г/см3).An ultrafine oxygen-containing graphite (oxygen content of 12-14 wt.% Per 73-76 wt.% Carbon) with a specific surface area of 1500-2000 m 3 / g, containing expanded particles of layered graphite 25-50 microns in size, the preparation of which was described, was selected for research. in patent RU 2198137, СВВ 31/04, publ. 02/10/2003. The choice of this ultrafine graphite was due to the fact that it is a relatively cheap material and has a high sorption capacity for aromatic and aliphatic chemical compounds. For the adsorption of biological objects from aqueous media, this graphite sorbent is not convenient due to the extremely low specific gravity (0.25 g / cm 3 ).
В результате проведенных экспериментов был разработан предлагаемый способ получения иммуносорбента, включающий предварительную обработку ультрадисперсного графита водой при 95-100°С, что позволило существенно повысить эффективность взаимодействия сорбента с объектами, адсорбируемыми из жидких сред: при гидротермической обработке (при 95-100°С) происходит замещение в исходном ультрадисперсном графите газовой компоненты жидкой средой. Одновременно происходит стерилизация сорбента-носителя.As a result of the experiments, the proposed method for producing an immunosorbent was developed, including preliminary processing of ultrafine graphite with water at 95-100 ° С, which allowed significantly increasing the efficiency of the interaction of the sorbent with objects adsorbed from liquid media: during hydrothermal treatment (at 95-100 ° С) In the initial ultrafine graphite, the gas component is replaced by a liquid medium. At the same time, the sorbent carrier is sterilized.
Для получения иммуносорбента использовались оболочечные вирусы, к которым относятся, например, ортомиксовирусы, парамиксовирусы, арбовирусы и др. Для испытаний были взяты эталонные и эпидемические штаммы вирусов гриппа A (H1N1, H3N2) и В (относящиеся к семейству ортомиксовирусов), изолированные в период 1982-2004 гг., обладающие различной структурой поверхностных белков и соответственно физико-химическими свойствами. Вирусы гриппа культивировались в различных системах (куриные эмбрионы (КЭ), культуры тканей MDCK). В работе использовались также очищенные в градиенте концентрации сахарозы 10-50% концентрированные аллантоисные вирусы гриппа (выращенные на КЭ).To obtain the immunosorbent, enveloped viruses were used, which include, for example, orthomyxoviruses, paramyxoviruses, arboviruses, etc. Reference and epidemic strains of influenza viruses A (H1N1, H3N2) and B (belonging to the family of orthomyxoviruses) isolated during 1982 were taken -2004, with a different structure of surface proteins and, accordingly, physico-chemical properties. Influenza viruses were cultured in various systems (chicken embryos (CE), tissue culture MDCK). The work also used 10-50% concentrated sucrose allantoic influenza viruses (grown on TBE) purified in a gradient of sucrose concentration.
Определение концентрации вирусов в растворе проводили с помощью реакции гемагглютинирующей активности (РГА). Определение концентрации антител в сыворотках - с помощью реакции торможения гемагглютинирующей активности (РТГА). Обе реакции осуществляли с использованием 0,75%-ной взвеси эритроцитов крови человека с 0(I) группой крови. Концентрацию белка в растворах определяли по методу Лоури (Lowry O.K. et al. Protein measurement with folin reagent. J. Biol. Chem., 1951, V.193, p.265-267).Determination of the concentration of viruses in solution was carried out using the reaction of hemagglutinating activity (RGA). Determination of the concentration of antibodies in serum - using the inhibition of hemagglutinating activity (rtga). Both reactions were carried out using a 0.75% suspension of human blood red blood cells with a 0 (I) blood group. Protein concentration in solutions was determined according to the Lowry method (Lowry O.K. et al. Protein measurement with folin reagent. J. Biol. Chem., 1951, V.193, p.265-267).
Предлагаемый способ получения иммуносорбента осуществляют следующим образом.The proposed method for producing immunosorbent is as follows.
Сухой ультрадисперсный кислородсодержащий графит с удельной поверхностью 1500-2000 м3/г, содержащий вспученные частицы слоистого графита размером 25-50 мкм, смешивают с дистиллированной водой при массовом соотношении графит:вода 1:1000-5000, смесь нагревают до кипения и кипятят в течение 10-15 мин, затем перемешивают 20 мин и центрифугируют в течение не менее 10 мин при 10000 об/мин. Полученный осадок суспендируют в водном буферном растворе, например, в Трис-HCl буфере (рН 7,2). Содержание графита в суспензии не менее 2 мас.%. Полученную суспензию графита инкубируют с вируссодержащей жидкостью на шейкере при температуре 5-35°С в течение 15-30 мин и центрифугируют при 2000-3000 об/мин в течение 3-5 мин. Надосадочную жидкость исследуют на наличие вируса с помощью РГА. Осадок - иммуносорбент - отмывают физиологическим раствором с рН 7,2 (ФР) до отсутствия вируса в надосадочной жидкости (контроль по РГА) и используют в экспериментах по связыванию вирусспецифических антител из иммунных сывороток. Иммуносорбент хранят в физиологическом растворе при 4°С.Dry ultrafine oxygen-containing graphite with a specific surface of 1500-2000 m 3 / g, containing expanded particles of layered graphite with a size of 25-50 microns, is mixed with distilled water at a mass ratio of graphite: water of 1: 1000-5000, the mixture is heated to boiling and boiled for 10-15 minutes, then stirred for 20 minutes and centrifuged for at least 10 minutes at 10,000 rpm. The resulting precipitate was suspended in an aqueous buffer, for example, in Tris-HCl buffer (pH 7.2). The graphite content in the suspension is at least 2 wt.%. The resulting suspension of graphite is incubated with a virus-containing liquid on a shaker at a temperature of 5-35 ° C for 15-30 minutes and centrifuged at 2000-3000 rpm for 3-5 minutes. The supernatant is examined for the presence of the virus using RGA. The precipitate, an immunosorbent, is washed with physiological saline with a pH of 7.2 (RF) until the virus is absent in the supernatant (RGA control) and is used in experiments on the binding of virus-specific antibodies from immune serums. The immunosorbent is stored in physiological saline at 4 ° C.
Исследование сорбции разных штаммов вирусов гриппа А и В на модифицированном гидротермической обработкой ультрадисперсном графите (сорбенте-носителе) показало, что все вирусы успешно взаимодействовали с сорбентом-носителем при разных условиях независимо от антигенных свойств поверхностных белков. Вирусы гриппа А и В сорбировались из различных вируссодержащих жидкостей: аллантоисной жидкости КЭ культуральной жидкости MDCK, ФР и буферных растворов. В опытах навески суспензии сорбента-носителя варьировались от 50 до 200 мг при постоянном объеме добавляемой вируссодержащей жидкости Vo=200 мкл.A study of the sorption of different strains of influenza A and B viruses on hydrothermally modified ultrafine graphite (carrier sorbent) showed that all viruses successfully interacted with the carrier sorbent under different conditions, regardless of the antigenic properties of surface proteins. Influenza viruses A and B were sorbed from various virus-containing fluids: the allantoic fluid CE of the MDCK culture fluid, FR, and buffer solutions. In the experiments, the weighed suspension of the carrier sorbent ranged from 50 to 200 mg with a constant volume of added virus-containing liquid V o = 200 μl.
Изобретение иллюстрируется следующими примерами, представленными в таблицах.The invention is illustrated by the following examples presented in tables.
В таблице 1 приведены данные по иммобилизации различных вирусов в зависимости от концентрации вируса (титра в ГЕ) в вируссодержащей жидкости. Диапазон начальных титров вируса в вирусных препаратах - от 16 до 32768 ГЕ в 200 мкл. Начальные титры вирусов в пересчете на 1 мг суспензии сорбента-носителя находились в диапазоне от 0,3 до 650 ГЕ (в пересчете на сухой графит - 15-32500 ГЕ на 1 мг). Конечные титры (после сорбции) в растворе составляли 2-256 ГЕ (в пересчете на 1 мг суспензии сорбента-носителя 0,04-5,0 ГЕ соответственно), то есть наблюдалось падение гемагглютинирующего титра вирусов гриппа после сорбции в 8-128 раз. С увеличением концентрации вируса в исходном растворе процессы сорбции протекают эффективнее.Table 1 shows the data on the immobilization of various viruses depending on the concentration of the virus (titer in GE) in the virus-containing fluid. The range of initial titers of the virus in viral preparations is from 16 to 32768 GE in 200 μl. The initial titers of viruses in terms of 1 mg suspension of the sorbent carrier were in the range from 0.3 to 650 GE (in terms of dry graphite - 15-32500 GE for 1 mg). The final titers (after sorption) in the solution amounted to 2-256 GE (in terms of 1 mg suspension of the carrier sorbent 0.04-5.0 GE, respectively), that is, a drop in the hemagglutinating titer of influenza viruses after sorption was 8-128 times. With an increase in the concentration of the virus in the initial solution, sorption processes proceed more efficiently.
Помимо регистрации падения титра вируса в вируссодержащей жидкости в результате иммобилизации вируса на сорбенте-носителе были проведены контрольные опыты по определению (по методу Лоури) сорбции белков, присутствующих в вируссодержащей жидкости (в том числе и вирусных). Для оценки сорбционной способности сорбента-носителя использовали белки с различным молекулярным весом и различным размером молекул: аллантоисные белки, бычий сывороточный альбумин, белки иммунной сыворотки.In addition to detecting a drop in the virus titer in a virus-containing liquid as a result of virus immobilization on a sorbent carrier, control experiments were carried out to determine (by the Lowry method) the sorption of proteins present in a virus-containing liquid (including viral ones). To assess the sorption ability of the sorbent carrier, proteins with different molecular weights and different molecular sizes were used: allantoic proteins, bovine serum albumin, and immune serum proteins.
Было показано, что бычий сывороточный альбумин полностью сорбируется из 1%-ного водного раствора на сорбент-носитель при контакте в течение 30 мин при 22°С. Сорбция белков сыворотки происходила до 53%. При изучении взаимодействия сорбента-носителя с аллантоисной жидкостью как содержащей вирусы гриппа, так и без них, было установлено, что белки из аллантоисной жидкости, не содержащей вируса, сорбировались примерно на 64%. Процент сорбции белков на сорбент-носитель из аллантоисной вируссодержащей жидкости варьировал от 69 до 83%, то есть на долю адсорбированных вирусов приходится примерно до 19% белка. Следует отметить, что сорбция белков несколько возрастала, если аллантоисный вирус был разведен буфером.It was shown that bovine serum albumin is completely sorbed from a 1% aqueous solution onto a sorbent carrier upon contact for 30 minutes at 22 ° C. Serum protein sorption occurred up to 53%. When studying the interaction of the sorbent carrier with the allantoic fluid containing and without influenza viruses, it was found that proteins from the allantoic fluid containing no virus were sorbed by approximately 64%. The percentage of protein sorption on a sorbent carrier from an allantoic virus-containing liquid ranged from 69 to 83%, that is, adsorbed viruses account for about 19% of the protein. It should be noted that protein sorption increased slightly if the allantoic virus was diluted with buffer.
Было проанализировано также влияние температуры и отношения массы суспензии сорбента-носителя к объему раствора, содержащего вирусы. Масса суспензии сорбента-носителя в образцах варьировала от 50 до 200 мг, объем вируссодержащей жидкости был постоянен и равнялся 200 мкл. Как показали исследования (см. таблицу 2), иммобилизация вирусов (на примере А/Сичуань/2/87 A/H3N2) происходит одинаково интенсивно при температурах от 5 до 35°С. Изменение навески суспензии сорбента-носителя от 50 до 200 мг на интенсивности сорбции вирусов не сказывается.The effect of temperature and the ratio of the mass of the suspension of the sorbent carrier to the volume of the solution containing viruses was also analyzed. The mass of the suspension of the sorbent carrier in the samples varied from 50 to 200 mg, the volume of the virus-containing liquid was constant and equal to 200 μl. As studies have shown (see table 2), the immobilization of viruses (for example, A / Sichuan / 2/87 A / H3N2) occurs equally intensively at temperatures from 5 to 35 ° C. A change in the weight of the suspension of the carrier sorbent from 50 to 200 mg does not affect the intensity of sorption of viruses.
Для определения оптимального времени контакта вируссодержащей жидкости с сорбентом-носителем были проведены исследования влияния длительности ее инкубирования с сорбентом-носителем на процесс сорбции. Результаты опытов (на примере вируса А/Сичуань/2/87 A/H3N2) показали (см. таблицу 3), что сорбция происходит практически одинаково в диапазоне времени от 15 до 120 мин.To determine the optimal time of contact of the virus-containing liquid with the carrier sorbent, studies were carried out on the effect of the duration of its incubation with the carrier sorbent on the sorption process. The results of the experiments (for example, the virus A / Sichuan / 2/87 A / H3N2) showed (see table 3) that sorption occurs almost identically in the time range from 15 to 120 minutes.
Особый интерес представляло определить, насколько стабильно связан вирус с сорбентом-носителем в иммуносорбенте. Для этого исследовали десорбцию вируса с иммуносорбента в два раствора: буфер Трис-HCl и ФР. В опытах иммуносорбент смешивали с одним из указанных растворов (объем 200 мкл) и выдерживали в течение 72 час при 35°С или помещали на шейкер на 1 час при 20°С. Затем иммуносорбент центрифугировали в течение 5 мин при 2000-3000 об/мин. Надосадочную жидкость исследовали на наличие вируса в РГА. Было установлено, что вирус в иммуносорбенте прочно связан с сорбентом-носителем, так как процесс десорбции выражен слабо: титры вируса в надосадочной жидкости после десорбции не превышали 8 ГЕ (см. таблицу 4).Of particular interest was to determine how stable the virus is associated with the carrier sorbent in the immunosorbent. To do this, we studied the desorption of the virus from the immunosorbent in two solutions: Tris-HCl buffer and FR. In the experiments, the immunosorbent was mixed with one of these solutions (200 μl volume) and kept for 72 hours at 35 ° C or placed on a shaker for 1 hour at 20 ° C. Then the immunosorbent was centrifuged for 5 min at 2000-3000 rpm. The supernatant was examined for the presence of virus in the RGA. It was found that the virus in the immunosorbent is firmly bound to the carrier sorbent, since the desorption process is weakly expressed: the titers of the virus in the supernatant after desorption did not exceed 8 GE (see table 4).
Изучение взаимодействия иммуносорбента с антителами.The study of the interaction of immunosorbent with antibodies.
Приготовленный иммуносорбент с иммобилизованным вирусом А/Сичуань/2/87 A(H3N2) смешивали с раствором иммунной сыворотки, содержащей гомологичные антитела к этому вирусу. Смесь выдерживали при различных условиях: 1) в течение 30 мин при 22°С или при 37°С и 2) 16 час при 4°С. Затем смесь центрифугировали. Надосадочную жидкость исследовали на наличие антител в РТГА. Анализ раствора сыворотки до и после взаимодействия с иммуносорбентом показал, что титр сыворотки снижался с 1/640 до <1/20, что указывает на связывание антител к вирусу гриппа из сыворотки иммуносорбентом в исследованных условиях (таблица 5). Аналогичные результаты были получены для иммуносорбентов с вирусами гриппа A(H1N1) и В при взаимодействии с гомологичными сыворотками.The prepared immunosorbent with immobilized virus A / Sichuan / 2/87 A (H3N2) was mixed with a solution of immune serum containing homologous antibodies to this virus. The mixture was kept under various conditions: 1) for 30 min at 22 ° C or at 37 ° C and 2) 16 hours at 4 ° C. Then the mixture was centrifuged. The supernatant was examined for the presence of antibodies in rtga. Analysis of the serum solution before and after interaction with the immunosorbent showed that the serum titer decreased from 1/640 to <1/20, which indicates the binding of antibodies to the influenza virus from serum by immunosorbent under the studied conditions (table 5). Similar results were obtained for immunosorbents with influenza A (H1N1) and B viruses when interacting with homologous sera.
Таким образом, разработанный способ получения иммуносорбента позволяет значительно повысить сорбционную способность сорбента-носителя и обеспечивает получаемому иммуносорбенту способность полностью связывать вирусспецифические антитела из иммунных сывороток. Использование различных вирусов позволит получать широкий набор иммуносорбентов для определения спектра антител в иммунных сыворотках. Способ отличается простотой и высокой воспроизводимостью.Thus, the developed method for producing an immunosorbent can significantly increase the sorption ability of the sorbent carrier and provides the resulting immunosorbent with the ability to fully bind virus-specific antibodies from immune serums. The use of various viruses will allow you to get a wide range of immunosorbents to determine the spectrum of antibodies in immune sera. The method is simple and highly reproducible.
Claims (2)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007105449/15A RU2329505C1 (en) | 2007-02-14 | 2007-02-14 | Method of immunosorbent production for virus-specific antibody binding |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007105449/15A RU2329505C1 (en) | 2007-02-14 | 2007-02-14 | Method of immunosorbent production for virus-specific antibody binding |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2329505C1 true RU2329505C1 (en) | 2008-07-20 |
Family
ID=39809256
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2007105449/15A RU2329505C1 (en) | 2007-02-14 | 2007-02-14 | Method of immunosorbent production for virus-specific antibody binding |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2329505C1 (en) |
-
2007
- 2007-02-14 RU RU2007105449/15A patent/RU2329505C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ЗАКСТЕЛЬСКАЯ Л.Я. и др. Использование иммуносорбента для удаления противогриппозных антител из диагностических сывороток. - Лабораторное дело, 1979, №2, с.748-749. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Clark et al. | In vitro studies on the use of clay, clay minerals and charcoal to adsorb bovine rotavirus and bovine coronavirus | |
Bucknall et al. | Studies with human coronaviruses II. Some properties of strains 229E and OC43 | |
Danner et al. | In vitro studies on Borna virus: II. Properties of the virus | |
KR101617464B1 (en) | Ipv-dpt vaccine | |
CN102586157A (en) | Method for enriching and capturing vibrio patahaemolyticus with high throughput | |
JPH11511335A (en) | Method for adsorbing virus from liquid composition | |
CN113801855B (en) | Salmonella typhimurium phage T102 and application thereof in enrichment and separation of salmonella | |
CN109988753B (en) | Freeze-drying protective agent for Klebsiella pneumoniae bacteriophage and preparation method and application thereof | |
JPS62286932A (en) | Inactivation of proliferative filterable pathogen | |
US20100297604A1 (en) | Methods and reagents for virus isolation and detection | |
RU2329505C1 (en) | Method of immunosorbent production for virus-specific antibody binding | |
Hummeler et al. | Removal of anticomplementary activity and host antigens from viral preparations by fluorocarbon | |
RU2372951C2 (en) | Polyaniline as sorbents for removing viruses, non-viral proteins and as immunosorbent base, method of removing or attaching viruses using said sorbents, immunoadsorption method using said sorbents, sorption method using said sorbents | |
CN104845941A (en) | Avian infectious bronchitis virus IBV-K136, monoclonal antibody cell line 3D5 prepared by using avian infectious bronchitis virus IBV-K136, monoclonal antibodies, and applications of avian infectious bronchitis virus IBV-K136 and monoclonal antibodies | |
RU2380708C1 (en) | Method for making antibody test system for latex fixation test | |
Bishai et al. | Stability of different viruses in a newly developed transport medium | |
RU2614960C1 (en) | Method for bifunctional affinity sorbent preparation for chromatographic purification of fluorescent immunoglobulins | |
RU2055889C1 (en) | Method for production of antigen preparation of virus of transmission gastroenteritis at pig | |
RU2569510C2 (en) | Sorbent representing nanodiamond material (versions), methods for obtaining and application thereof | |
WO2015032302A1 (en) | Ovomucin liquid formulation and preparation method thereof | |
JP5172218B2 (en) | Immobilized erythrocytes stably holding a viral receptor on the surface, production method thereof and use thereof | |
RU2815532C1 (en) | Diagnostic kit for detecting antibodies to avian influenza virus and identifying subtype of hemagglutinating viral agent in hemagglutination inhibition reaction | |
CN114591919B (en) | Salmonella pullorum phage Pu29 and application thereof in enrichment and separation of salmonella | |
Lang et al. | Wilmot virus a new influenza A virus infecting turkeys | |
Tanaka et al. | Bovine Diarrhea Virus: III. Physicochemical Properties of Bovine Diarrhea Virus |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20140215 |