RU2310685C1 - Bacterium serratia marcescens strain producing lipilytic enzymes for preparation for waste water from fats - Google Patents
Bacterium serratia marcescens strain producing lipilytic enzymes for preparation for waste water from fats Download PDFInfo
- Publication number
- RU2310685C1 RU2310685C1 RU2006107802/13A RU2006107802A RU2310685C1 RU 2310685 C1 RU2310685 C1 RU 2310685C1 RU 2006107802/13 A RU2006107802/13 A RU 2006107802/13A RU 2006107802 A RU2006107802 A RU 2006107802A RU 2310685 C1 RU2310685 C1 RU 2310685C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- strain
- serratia marcescens
- fats
- lipase
- lipilytic
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к микробиологии и биотехнологии и касается штамма бактерий - продуцента фермента липазы.The invention relates to microbiology and biotechnology and relates to a strain of bacteria - producer of the lipase enzyme.
Липазы катализируют гидролиз триацилглицеридов с образованием жирных кислот и глицерина. Пищевые предприятия загрязняют окружающую среду стоками, содержащими высокие концентрации растительных и животных жиров. Поиск новых штаммов микроорганизмов - продуцентов липазы, проявляющих активность по деструкции жиров растительного и животного происхождения, является актуальной задачей.Lipases catalyze the hydrolysis of triacylglycerides to form fatty acids and glycerol. Food enterprises pollute the environment with effluents containing high concentrations of vegetable and animal fats. The search for new strains of microorganisms - lipase producers that are active in the destruction of fats of plant and animal origin, is an urgent task.
Основными продуцентами липаз являются штаммы грибов Rhizopus [1, 2], Fusarium [3], некоторые дрожжи (Jarrowia) [4]. Известен, например, штамм грибов Fusarium oxysporum - продуцент липазы [3]. Данный штамм выращивают при температуре 30°С в течение 150-200 часов на питательной среде, содержащей, г/л:The main producers of lipases are strains of the fungi Rhizopus [1, 2], Fusarium [3], some yeast (Jarrowia) [4]. Known, for example, a strain of fungi Fusarium oxysporum - lipase producer [3]. This strain is grown at a temperature of 30 ° C for 150-200 hours on a nutrient medium containing, g / l:
Через 150 часов культивирования достигается максимальное накопление в культуральной жидкости специфической липазной активности - 150 ед.акт./мг биомассы (по сухому весу). Недостатком известного штамма является длительность культивирования (6-7 суток), сложность питательной среды и трудоемкость процедуры получения культуральной жидкости (освобождение от грибного мицелия).After 150 hours of cultivation, the maximum accumulation of specific lipase activity in the culture fluid is achieved - 150 units / mg of biomass (by dry weight). A disadvantage of the known strain is the duration of cultivation (6-7 days), the complexity of the nutrient medium and the complexity of the procedure for obtaining culture fluid (release from fungal mycelium).
Использование бактерий-продуцентов липаз обладает по сравнению с грибами преимуществом, заключающимся в ускорении процесса культивирования. Это может сделать более выгодным технологический процесс получения липазы. Известен, например, штамм Serratia marcescens 345 [5], который выращивают при температуре 30°С на питательной среде (рН 7,0), содержащей, г/л:The use of bacteria producing lipases has an advantage over fungi in accelerating the cultivation process. This may make the lipase manufacturing process more advantageous. Known, for example, a strain of Serratia marcescens 345 [5], which is grown at a temperature of 30 ° C in a nutrient medium (pH 7.0), containing, g / l:
Через 24 часа в культуральной жидкости накапливается максимальное количество липазы со специфической активностью 95 ед.акт./мг биомассы (по сухому весу). Недостатком данного штамма является низкая специфическая активность продуцируемого фермента.After 24 hours, the maximum amount of lipase with a specific activity of 95 units / mg of biomass (by dry weight) accumulates in the culture fluid. The disadvantage of this strain is the low specific activity of the produced enzyme.
Наиболее близким к заявляемому штамму - прототипом является штамм Serratia marcescens В-10 L-1 [6], который выращивают при температуре 28-30°С на питательной среде (рН 7,0), содержащей, г/л:Closest to the claimed strain, the prototype is a strain of Serratia marcescens B-10 L-1 [6], which is grown at a temperature of 28-30 ° C in a nutrient medium (pH 7.0), containing, g / l:
Максимальное накопление липазы характеризуется величиной, составляющей 800 ед.акт./мг биомассы (по сухому весу).The maximum accumulation of lipase is characterized by a value of 800 units.act./mg biomass (dry weight).
Недостатком данного штамма является сравнительно низкая специфическая активность продуцируемого фермента.The disadvantage of this strain is the relatively low specific activity of the produced enzyme.
Технической задачей изобретения является получение нового бактериального штамма, обеспечивающего более высокий выход липазы, проявляющей активность по деструкции твердых жиров животного и растительного происхождения.An object of the invention is to obtain a new bacterial strain that provides a higher yield of lipase, which is active in the destruction of solid fats of animal and vegetable origin.
Поставленная задача достигается предлагаемым штаммом Serratia marcescens ИБ 2-2, выделенным из образца сточных вод, отобранного в аэротенке биологических очистных сооружений пермского мясокомбината. Штамм поддерживается в коллекции микроорганизмов Института биологии Уфимского научного центра РАН. Штамм Serratia marcescens ИБ 2-2 характеризуется следующими признаками.The task is achieved by the proposed strain of Serratia marcescens IB 2-2, isolated from a wastewater sample taken in the aeration tank of the biological treatment facilities of the Perm meat processing plant. The strain is maintained in the collection of microorganisms of the Institute of Biology of the Ufa Scientific Center of the Russian Academy of Sciences. The strain of Serratia marcescens IB 2-2 is characterized by the following features.
Морфологические признаки. Клетки палочковидные, прямые, размером 0,5-0,8×1,0-3,0 мкм, подвижные, одиночные, парные или в цепочках, спор не образуют. Грамотрицательные.Morphological signs. The cells are rod-shaped, straight, 0.5-0.8 × 1.0-3.0 μm in size, motile, single, paired or in chains, do not form spores. Gram-negative.
Морфологию колонии определяли после 4-5 суток роста при 28°С. На мясопептонном агаре (МПА) - круглые с ровными краями, гладкие, слегка выпуклые, непрозрачные, блестящие, кремовые, мягкой консистенции колонии, диаметр 3-5 мм.Colony morphology was determined after 4-5 days of growth at 28 ° C. On meat-peptone agar (MPA) - round with smooth edges, smooth, slightly convex, opaque, shiny, cream, soft colony consistency, diameter 3-5 mm.
Физиологические и биохимические признаки. Штамм является факультативным анаэробом, обладает и дыхательным и бродильным типами метаболизма, не требователен к факторам роста. Оптимальная температура роста 28-30°С, растут при 5°С и 40°С. Разжижает желатин, пептонизирует и свертывает молоко, гидролизует лецитин. Способен расти на среде Симмонса с цитратом, реакция Фогеса-Проскауэра положительная. Проба с метиловым красным положительная. Дает отрицательный оксидазный, положительный каталазный тесты. Ферментирует с образованием кислоты глюкозу, ксилозу, арабинозу, сахарозу, маннозу, галактозу, фруктозу, лактозу, мальтозу, крахмал, сорбитол, ацетат. Растет на МПА с 8% NaCl.Physiological and biochemical characteristics. The strain is a facultative anaerobic, has both respiratory and fermentative types of metabolism, is not picky about growth factors. The optimum growth temperature is 28-30 ° С; they grow at 5 ° С and 40 ° С. It dilutes gelatin, peptones and coagulates milk, hydrolyzes lecithin. Able to grow on Simmons medium with citrate, the Voges-Proskauer reaction is positive. The test with methyl red is positive. It gives negative oxidase, positive catalase tests. Ferments with the formation of acid glucose, xylose, arabinose, sucrose, mannose, galactose, fructose, lactose, maltose, starch, sorbitol, acetate. It grows on MPA with 8% NaCl.
Штамм хранится на косяках МПА в холодильнике с пересевом на свежие косяки через 2-4 месяца, а также в лиофильно-высушенном состоянии.The strain is stored on the jambs of the MPA in the refrigerator with reseeding on fresh jambs after 2-4 months, as well as in the freeze-dried state.
Штамм идентифицирован по определителю Bergey′s Manual of Determinative Bacteriology. Анализ штамма путем секвенирования двух фрагментов гена 16S РНК и последующее сравнение этих фрагментов со всеми известными последовательностями, депонированными во Всемирной базе генов (GenBank), подтвердили достоверность идентификации.The strain is identified by the identifier Bergey′s Manual of Determinative Bacteriology. The analysis of the strain by sequencing two fragments of the 16S RNA gene and the subsequent comparison of these fragments with all known sequences deposited in the World Genes Database (GenBank) confirmed the validity of the identification.
Для культивирования штамма Serratia marcescens ИБ 2-2 с целью получения липазы применяют питательную среду следующего состава, г/л: соевая мука - 5; дрожжевой экстракт - 60; К2НРО4 - 5,0; (NH4)2SO4 - 1,0.For the cultivation of the strain Serratia marcescens IB 2-2 in order to obtain lipase, a nutrient medium of the following composition is used, g / l: soy flour - 5; yeast extract - 60; K 2 NRA 4 - 5.0; (NH 4 ) 2 SO 4 - 1.0.
Количество накапливаемой биомассы штамма ИБ 2-2 определяют путем подсчета числа жизнеспособных клеток в культуральной жидкости. Для этого методом посева определяют титр бактерий в 1 мл культуральной жидкости и пересчитывают его в мг биомассы (по сухому весу), исходя из того, что 109 клеток бактерий весит 0,28 мг [6].The amount of accumulated biomass of strain IB 2-2 is determined by counting the number of viable cells in the culture fluid. For this, the bacterial titer in 1 ml of culture fluid is determined by the inoculation method and converted to mg of biomass (by dry weight) based on the fact that 10 9 bacterial cells weigh 0.28 mg [6].
Активность липазы определяют следующим образом. К реакционной смеси, содержащей 4,5 мл 0,05 М фосфатного буфера (рН 8,0) и 5 мл 40%-ной эмульсии оливкового масла в 2%-ном поливиниловом спирте приливают 0,5 мл супернатанта культуральной жидкости. Тест-пробу инкубируют в течение 30 мин при температуре 37°С, после чего добавляют 10 мл смеси этанол: ацетон (1:1). Степень расщепления оливкового масла определяют, оттитровывая продукты гидролиза раствором гидроокиси натрия (0,05 М NaOH), в присутствии 1%-ного тимолфталеина, до возникновения голубой окраски. Контрольную пробу обрабатывают аналогично тест-пробе, но липазу вносят непосредственно перед титрованием. Специфическую активность липазы выражают в микромолях олеиновой кислоты, освобождающейся за 1 час при гидролизе субстрата 1 мл культуральной жидкости, в пересчете на количество биомассы, содержащейся в 1 мл культуральной жидкости. Расчет специфической липазной активности (ЛА), в ед. акт./мг биомассы (по сухому весу), производят по формуле:Lipase activity is determined as follows. 0.5 ml of culture fluid supernatant is added to a reaction mixture containing 4.5 ml of 0.05 M phosphate buffer (pH 8.0) and 5 ml of a 40% emulsion of olive oil in 2% polyvinyl alcohol. The test sample is incubated for 30 min at a temperature of 37 ° C, after which 10 ml of a mixture of ethanol: acetone (1: 1) are added. The degree of cleavage of olive oil is determined by titration of the hydrolysis products with a solution of sodium hydroxide (0.05 M NaOH), in the presence of 1% thymolphthalein, until a blue color occurs. The control sample is treated similarly to the test sample, but the lipase is applied immediately before titration. The specific activity of lipase is expressed in micromoles of oleic acid released in 1 hour by hydrolysis of the substrate with 1 ml of culture fluid, calculated on the amount of biomass contained in 1 ml of culture fluid. Calculation of specific lipase activity (LA), in units act. / mg of biomass (dry weight), produced by the formula:
ЛА=(V-Vk) ·K/t·VE·C,LA = (VV k ) · K / t · V E · C,
где V - количество 0,05 М NaOH, израсходованного на титрование тест-пробы, мл;where V is the amount of 0.05 M NaOH spent on titration of the test sample, ml;
Vk - количество 0,05 М NaOH, израсходованного на титрование контрольной пробы, мл;V k - the amount of 0.05 M NaOH consumed in the titration of a control sample, ml;
К - количество олеиновой кислоты, оттитровываемое 1 мл 0,05 М NaOH (К=50), мкмоль;K is the amount of oleic acid titrated with 1 ml of 0.05 M NaOH (K = 50), mcmol;
t - время реакции, час;t is the reaction time, hour;
VE - объем культуральной жидкости, добавляемой к реакционной смеси, мл;V E is the volume of the culture fluid added to the reaction mixture, ml;
С - концентрация биомассы (по сухому весу), мг/мл.C is the concentration of biomass (by dry weight), mg / ml.
Результаты определения липолитической активности культуральной жидкости, полученной при культивировании штамма Serratia marcescens ИБ 2-2, приведены в таблице. Эти данные свидетельствуют о высокой активности липазы, продуцируемой предлагаемым штаммом микроорганизмов. Так, максимальная специфическая активность фермента штамма Serratia marcescens ИБ 2-2 составляет 1018 мкМ олеиновой кислоты/ мг биомассы, что в 1,27 раза превышает величину максимальной специфической активности (800 ед. акт./мг биомассы) штамма по прототипу.The results of determining the lipolytic activity of the culture fluid obtained by culturing a strain of Serratia marcescens IB 2-2 are shown in the table. These data indicate a high activity of lipase produced by the proposed strain of microorganisms. So, the maximum specific activity of the enzyme strain Serratia marcescens IB 2-2 is 1018 μm oleic acid / mg biomass, which is 1.27 times higher than the maximum specific activity (800 units act./ mg biomass) of the strain according to the prototype.
Способность липолитических ферментов, продуцируемых штаммом Serratia marcescens ИБ 2-2, к деструкции твердых жиров растительного и животного происхождения определяли следующим образом.The ability of lipolytic enzymes produced by the strain of Serratia marcescens IB 2-2 to the destruction of solid fats of plant and animal origin was determined as follows.
Пример 1. Утилизацию кулинарного жира проводят путем периодического выращивания штамма Serratia marcescens ИБ 2-2 в колбах на качалке (200 об/мин), объем среды 100 мл. Состав питательной среды: соевая мука - 5; дрожжевой экстракт - 60; К2HPO4 - 5,0; (NH4)2SO4 - 1,0; рН среды 7,0, температура выращивания 28°С. Время выращивания 40 час. Исходное содержание кулинарного жира составляет 1 мас.%. Оценку роста бактерий проводили микроскопированием на твердой (агаризованной) питательной среде. Степень деструкции твердых жиров определяли весовым методом с использованием процесса экстракции. По окончании процесса ферментации штамма Serratia marcescens ИБ 2-2 титр бактерий в культуральной жидкости составил 3,0·109 КОЕ/мл, а деструкция кулинарного жира - 100%.Example 1. Utilization of cooking oil is carried out by periodically growing a strain of Serratia marcescens IB 2-2 in flasks on a shaker (200 rpm), the volume of the medium is 100 ml. The composition of the nutrient medium: soy flour - 5; yeast extract - 60; K 2 HPO 4 - 5.0; (NH 4 ) 2 SO 4 - 1.0; the pH of the medium is 7.0, the temperature of cultivation 28 ° C. Growing time 40 hours. The initial content of cooking oil is 1 wt.%. Bacterial growth was evaluated by microscopy on a solid (agarized) growth medium. The degree of destruction of solid fats was determined by the gravimetric method using the extraction process. At the end of the fermentation process of the Serratia marcescens strain IB 2-2, the bacterium titer in the culture fluid was 3.0 · 10 9 CFU / ml, and the degradation of cooking oil was 100%.
Пример 2. Аналогично примеру 1 утилизацию свиного жира проводят путем периодического выращивания штамма Serratia marcescens ИБ 2-2 в колбах на качалке при параметрах процесса и составе питательной среды, приведенным в примере 1. Время выращивания 40 часов. Исходное содержание свиного жира составляет 1 мас.%. По окончании процесса ферментации штамма Serratia marcescens ИБ 2-2 титр бактерий в культуральной жидкости составил 4,0·109 КОЕ/мл, а деструкция свиного жира - 100%.Example 2. Analogously to example 1, the utilization of pork fat is carried out by periodically growing the strain Serratia marcescens IB 2-2 in flasks on a rocking chair with the process parameters and the composition of the nutrient medium shown in example 1. Growth time 40 hours. The initial content of pork fat is 1 wt.%. At the end of the fermentation process of the Serratia marcescens strain IB 2-2, the bacterium titer in the culture fluid was 4.0 · 10 9 CFU / ml, and the destruction of pork fat was 100%.
Пример 3. Аналогично примеру 1 утилизацию говяжьего жира проводят путем периодического выращивания штамма Serratia marcescens ИБ 2-2 в колбах на качалке при параметрах процесса и составе питательной среды, приведенном в примере 1. Время выращивания 51 час. Исходное содержание говяжьего жира составляет 1 мас.%. По окончании процесса ферментации штамма Serratia marcescens ИБ 2-2 титр бактерий в культуральной жидкости составил 3,0·109 КОЕ/мл, а деструкция говяжьего жира - 100%.Example 3. Analogously to example 1, the utilization of beef fat is carried out by periodically growing the strain Serratia marcescens IB 2-2 in flasks on a rocking chair with process parameters and the composition of the nutrient medium shown in example 1. Growing time 51 hours. The initial content of beef fat is 1 wt.%. At the end of the fermentation process of the Serratia marcescens strain IB 2-2, the bacterium titer in the culture fluid was 3.0 · 10 9 CFU / ml, and the destruction of beef fat was 100%.
Результаты экспериментов, приведенные в примерах 1-3, свидетельствуют о высокой эффективности процесса биодеструкции твердых жиров животного и растительного происхождения под действием липолитических ферментов, продуцируемых штаммом Serratia marcescens ИБ 2-2.The experimental results shown in examples 1-3 indicate the high efficiency of the biodegradation process of solid fats of animal and vegetable origin under the action of lipolytic enzymes produced by the Serratia marcescens strain IB 2-2.
Результаты экспериментов, приведенные в примерах 1-3, свидетельствуют о высокой эффективности процесса биодеструкции твердых жиров животного и растительного происхождения под действием липолитических ферментов, продуцируемых штаммом Serratia marcescens ИБ 2-2.The experimental results shown in examples 1-3 indicate the high efficiency of the biodegradation process of solid fats of animal and vegetable origin under the action of lipolytic enzymes produced by the Serratia marcescens strain IB 2-2.
Таким образом, получен штамм Serratia marcescens ИБ 2-2, обладающий высокой липолитической активностью, который может быть использован в качестве основы биопрепарата для биологической очистки сточных вод или канализационных систем от жиров.Thus, a strain of Serratia marcescens IB 2-2 was obtained, which has high lipolytic activity, which can be used as the basis of a biological product for biological treatment of wastewater or sewage systems from fats.
Список литературыBibliography
1. А.с. СССР 1581742 А1, опубл. 30.07.90.1. A.S. USSR 1581742 A1, publ. 07/30/90.
2. А.с. СССР 1726513 А1, опубл. 15.04.92.2. A.S. USSR 1726513 A1, publ. 04/15/92.
3. Р.Rapp. Production, regulation and some properties of lipase activity from Fusarium oxysporum f. sp. vasinfectum // Enzyme and Microbial Technology. - 1995. - V.17. - P.832-838.3. P. Rapp. Production, regulation and some properties of lipase activity from Fusarium oxysporum f. sp. vasinfectum // Enzyme and Microbial Technology. - 1995. - V.17. - P.832-838.
4. А.с. СССР 1454852 А1, опубл. 30.01.89.4. A.S. USSR 1454852 A1, publ. 01/30/89.
5. Башкатова Н.А., Северина Л.О. Влияние условий культивирования на биосинтез липазы у Serratia marcescens // Микробиология. - 1979. - Т.68, вып.5. - С.826.5. Bashkatova N.A., Severina L.O. The influence of cultivation conditions on lipase biosynthesis in Serratia marcescens // Microbiology. - 1979.- T.68, issue 5. - S.826.
6. Патент RU 2148645 С1, опубл. 10.05.2000.6. Patent RU 2148645 C1, publ. 05/10/2000.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2006107802/13A RU2310685C1 (en) | 2006-03-13 | 2006-03-13 | Bacterium serratia marcescens strain producing lipilytic enzymes for preparation for waste water from fats |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2006107802/13A RU2310685C1 (en) | 2006-03-13 | 2006-03-13 | Bacterium serratia marcescens strain producing lipilytic enzymes for preparation for waste water from fats |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2310685C1 true RU2310685C1 (en) | 2007-11-20 |
Family
ID=38959412
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2006107802/13A RU2310685C1 (en) | 2006-03-13 | 2006-03-13 | Bacterium serratia marcescens strain producing lipilytic enzymes for preparation for waste water from fats |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2310685C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2011182782A (en) * | 2010-02-09 | 2011-09-22 | Sekisui Aqua System Kk | Oil-and-fat splitting microorganism, microorganism-immobilization carrier, method for treating waste water and system for treating waste water |
RU2501014C1 (en) * | 2012-08-15 | 2013-12-10 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Иркутский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт Сибири и Дальнего Востока" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" | Method for determining lipolytic activity in subcellular fractions of bacteria |
-
2006
- 2006-03-13 RU RU2006107802/13A patent/RU2310685C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
БАШКАТОВА Н.А. и др. Влияние условий культивирования на биосинтез липазы у serratia marcescens. - Микробиология, 1979, т.68, вып.5, с.826-832. Bashkatova N.A. and et. Isolation of the intracellular lipase of serratia marcescens, Microbiologia, 1979, Nov-Dec., 48(6):994-998. GaoL., and et., Optimization of serratia marcescens lipase production for enantioselective hydrolysis of 3-phenylglycidic acid ester, Ind Microbiol. Biotechnolol., 2004, Dec; 31(11):525-530. Abdou AM., Purfication and partial characterization of psychrotrophic serratia marcescens lipase., J. Daily, Sci., 2003., Jan; 86(1):127-132. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2011182782A (en) * | 2010-02-09 | 2011-09-22 | Sekisui Aqua System Kk | Oil-and-fat splitting microorganism, microorganism-immobilization carrier, method for treating waste water and system for treating waste water |
RU2501014C1 (en) * | 2012-08-15 | 2013-12-10 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Иркутский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт Сибири и Дальнего Востока" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" | Method for determining lipolytic activity in subcellular fractions of bacteria |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Malathi et al. | Production of alkaline protease by a new Aspergillus flavus isolate under solid-substrate fermentation conditions for use as a depilation agent | |
Uma et al. | Production and properties of invertase from a Cladosporium cladosporioides in SmF using pomegranate peel waste as substrate | |
CN103232963A (en) | Collagenase producing strain | |
WO2005098014A1 (en) | Microbe method for producing valienamine and validamine | |
CN115873754A (en) | Enteromorpha clotrimaca RS804 and application thereof | |
CN113897319A (en) | Bacillus amyloliquefaciens and application thereof | |
EU et al. | Screening, isolation and characterization of amylase producing bacteria and optimization for production of amylase | |
CN111172058A (en) | Bacillus amyloliquefaciens and application thereof | |
RU2310685C1 (en) | Bacterium serratia marcescens strain producing lipilytic enzymes for preparation for waste water from fats | |
El-Sawah et al. | Enzymatic properties of lipase and characteristics production by Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus | |
RU2308485C1 (en) | Bacterium strain serrata species as lipase producer | |
CN107151640A (en) | A kind of Psychrobacter bacterial strain of galactopoiesis carbohydrase and the method that low temperature lactase is prepared using the bacterial strain | |
NO824162L (en) | MICRO-ORGANISMS OF GENUS HYPOMICROBIUM AND PROCEDURES FOR THE BINDING OF METHYL GROUP-CONTAINING COMPOUNDS IN Aqueous SOLUTIONS | |
RU2687137C1 (en) | Strain of heterotrophic bacteria klebsiella pneumonia is an associate for producing a microbial protein mass | |
RU2500811C1 (en) | Recombinant bacillus subtilis bacteria strain-producer of specific phospholipase | |
RU2397247C1 (en) | Lipase biosynthesis method | |
CN108192848A (en) | A kind of Psychrobacter bacterial strain of galactopoiesis carbohydrase and the method that low temperature lactase is prepared using the bacterial strain | |
CN110423711B (en) | Low-temperature chitinase-producing strain from Antarctic and fermentation method thereof | |
CN106754829A (en) | A kind of method of utilization bacillus HS17 fermenting and producing chitosan enzymes and its application | |
CN106244505B (en) | The method of the application and its yielding lipase of Burkholderia pyrrocinia | |
CA2671797C (en) | Microbial process for production of enzymes | |
Shumi et al. | Production of protease from Listeria monocytogenes | |
RU2784717C1 (en) | Nutritional mineral medium based on arabinogalactan for cultivation of microorganisms and method for cultivation of microorganisms strains synthesing an enzyme for arabinogalactan hydrolysis | |
Kanlayakrit et al. | Isolation and characterization of extracellular halophilic ribonuclease from halotolerant Pseudomonas species | |
CN116286557B (en) | Salt-tolerant bacillus beijerinckii for producing cellulase and culture method thereof |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20130314 |