RU2296163C2 - Method for evaluating specific activity of bacteriophages - Google Patents
Method for evaluating specific activity of bacteriophages Download PDFInfo
- Publication number
- RU2296163C2 RU2296163C2 RU2005110248/13A RU2005110248A RU2296163C2 RU 2296163 C2 RU2296163 C2 RU 2296163C2 RU 2005110248/13 A RU2005110248/13 A RU 2005110248/13A RU 2005110248 A RU2005110248 A RU 2005110248A RU 2296163 C2 RU2296163 C2 RU 2296163C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- bacteriophage
- test
- microorganism
- culture
- monolayer
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины, медицинской токсикологии, микробиологии, биологии при испытании различных бактериофагов (например, лечебных), а именно к оценке специфической активности лечебных бактериофагов.The invention relates to the field of medicine, medical toxicology, microbiology, biology when testing various bacteriophages (for example, therapeutic), namely, to assess the specific activity of therapeutic bacteriophages.
Сущность способа сводится к тому, что в стандартных условиях монослоя культуры клеток эмбриона человека проводится совместное культивирование тест-штамма микроорганизма с соответствующим лечебным бактериофагом или комбинированным (поливалентным) бактериофагом, в состав которого входит соответствующий используемой тест-культуре микроорганизма фаг.The essence of the method boils down to the fact that under standard conditions a monolayer of the culture of human embryo cells, the test strain of the microorganism is co-cultured with the corresponding therapeutic bacteriophage or combined (multivalent) bacteriophage, which includes the phage corresponding to the used test culture of the microorganism.
В настоящее время бактериофаги широко используются для идентификации выделенных микроорганизмов, а также в качестве лечебного средства. Быстрый ответ необходим в клинике для постановки раннего диагноза и применения рациональной терапии, тем более что препараты лечебного бактериофага применяют только после определения чувствительности выделенной от больного культуры к фагу.Currently, bacteriophages are widely used to identify isolated microorganisms, as well as a therapeutic agent. A quick response is necessary in the clinic for an early diagnosis and the use of rational therapy, especially since the preparations of a therapeutic bacteriophage are used only after determining the sensitivity of the culture isolated from the patient to the phage.
Препараты бактериофага представляют собой различные лекарственные формы (сухой таблетированный, жидкий очищенный концентрат, линимент), активные в отношении наиболее часто встречающихся видов стафилококка, протея, стрептококка, кишечной и синегнойной палочки. В качестве примера поливалентного бактериофага использовали официнальный препарат пиобактериофага комбинированного очищенного концентрированного в форме жидкого очищенного концентрата.Bacteriophage preparations are various dosage forms (dry tablet, liquid purified concentrate, liniment) that are active against the most common types of staphylococcus, protea, streptococcus, E. coli and Pseudomonas aeruginosa. As an example of a polyvalent bacteriophage, the official preparation of the pyobacteriophage combined purified concentrated in the form of a purified liquid concentrate was used.
Тесты по определению чувствительности микроорганизмов к специфическому бактериофагу используются для решения ряда задач.Tests to determine the sensitivity of microorganisms to a specific bacteriophage are used to solve a number of problems.
Известна высокая специфичность литического действия фагов в пределах родов и семейств, поэтому пробу на лизис используют, когда возникает сомнение в родовой принадлежности штамма для ускорения идентификации микроба. Исследование можно провести, пользуясь обычными методами выращивания фагов на плотной и жидкой среде или упрощенным методом, который позволяет получить ориентировочные данные о способности изучаемого штамма лизироваться примененным фагом. Для выполнения этой пробы в две пробирки с бульоном засевают культуру определяемых микробов, в одну из них добавляют фаг от 1 до 10 капель в зависимости от литической силы фага. Обе пробирки ставят в термостат на 18-20 часов, после чего по густоте роста (мутности) учитывают полное или частичное воздействие фага на бактерии по сравнению с ростом в контрольной пробирке.The high specificity of the lytic action of phages within the genera and families is known, therefore, a lysis test is used when there is doubt about the generic affiliation of the strain to accelerate the identification of the microbe. The study can be carried out using conventional methods for growing phages in a dense and liquid medium or a simplified method that allows one to obtain indicative data on the ability of the studied strain to be lysed by the applied phage. To perform this test, culture of the determined microbes is seeded in two test tubes with the broth; phage from 1 to 10 drops is added to one of them, depending on the lytic strength of the phage. Both tubes are placed in a thermostat for 18-20 hours, after which, according to the growth density (turbidity), the full or partial effect of the phage on the bacteria is taken into account compared to growth in the control tube.
Также, например, воздействием фага пользуются для определения фаговарианта некоторых микробов - сальмонелл, тифа, паратифа, стафилококков, псевдомонад, протея - при внутриродовой идентификации, что очень важно для эпидемиологической практики. При эпидемиологических обследованиях может оказаться полезным определение фаговаров. Определение фаговаров стафилококков проводят при помощи фагов, разведенных до тест-разведения, обозначенного на этикетке. В чашке Петри на поверхность 1,2% агара, приготовленного на переваре Хоттингера с добавлением свежей мясной воды и 0,4% глюкозы (pH 7,6, перед разливкой в чашки в агар добавляют на 100 мл 0,2 мл стерильного 10% раствора CaCl2) и подсушенного в течение 30-40 мин в термостате, наливают 1-2 мл 4-часовой бульонной культуры, равномерно распределяют по поверхности агара, дают жидкости испариться. По предварительно нанесенной на дно сетке капают фаги, по одному в каждый квадрат. Дно засеянной чашки расчерчивают на 22 квадрата по числу фагов. Рекомендуется всегда соблюдать один и тот же порядок распределения фагов. Оставляют на 3 часа при 37°С и далее до 18-20 часов при комнатной температуре. Фаголизис прочитывают в падающем свете на темном фоне при помощи лупы. В зависимости от чувствительности культуры к фагу наблюдается разная степень лизиса - от полного (сливного) до единичных стерильных пятен. Результаты оцениваются плюсами: 4+ при сливной лизисе, 3+ при сливном лизисе с вторичным ростом, 2+ при наличии более чем 50 негативных колоний. Менее выраженный лизис не считают положительньм результатом. Если данная культура не лизируется фагом в тест-разведении, то опыт повторяют, пользуясь фагами, в 100 раз более концентрированными. При этом возможны ингибиторные реакции, трудно отличимые от вторичного роста, который может наблюдаться и в случае полного лизиса при наличии резистентных к фагу особей в культуре /1/.Also, for example, phage exposure is used to determine the phagovariant of certain microbes - salmonella, typhoid, paratyphoid, staphylococcus, pseudomonas, protea - with intrapartum identification, which is very important for epidemiological practice. In epidemiological surveys, the definition of phagovars may be useful. The definition of fagovar staphylococci is carried out using phages diluted to the test dilution indicated on the label. In a Petri dish, on the surface of 1.2% agar prepared on a Hottinger digest with the addition of fresh meat water and 0.4% glucose (pH 7.6, 0.2 ml of a sterile 10% solution is added per 100 ml to the cups in the agar CaCl 2 ) and dried for 30-40 minutes in a thermostat, pour 1-2 ml of a 4-hour broth culture, evenly distribute on the surface of the agar, allow the liquid to evaporate. Phages, one in each square, are dripped along a grid previously applied to the bottom. The bottom of the seeded cup is plotted into 22 squares according to the number of phages. It is recommended that you always follow the same phage distribution order. Leave for 3 hours at 37 ° C and then up to 18-20 hours at room temperature. Phagolysis is read in incident light on a dark background with a magnifier. Depending on the sensitivity of the culture to phage, a different degree of lysis is observed - from complete (confluent) to single sterile spots. The results are evaluated by the pluses: 4+ with confluent lysis, 3+ with confluent lysis with secondary growth, 2+ with more than 50 negative colonies. Less pronounced lysis is not considered a positive result. If this culture is not lysed with phage in test dilution, then the experiment is repeated using phages that are 100 times more concentrated. In this case, inhibitory reactions are possible that are difficult to distinguish from secondary growth, which can be observed in the case of complete lysis in the presence of phage-resistant individuals in the culture / 1 /.
С помощью вышеописанного способа оценки фаговаров определяется чувствительность выделенных микроорганизмов к лечебным бактериофагам.Using the above-described method for evaluating phagovar, the sensitivity of the isolated microorganisms to therapeutic bacteriophages is determined.
Указанные способы являются аналогами предлагаемому изобретению. Ближайшим аналогом (прототипом) предлагаемого способа является метод определения фаговаров стафилококков на плотной среде.These methods are analogues of the invention. The closest analogue (prototype) of the proposed method is a method for determining fagovar staphylococci in a dense environment.
Изложенные способы определения чувствительности микроорганизмов к специфическому бактериофагу длительны, сложны и трудоемки. Результаты тестирования могут быть получены только через 21-24 часа.The described methods for determining the sensitivity of microorganisms to a specific bacteriophage are long, complex and time-consuming. Test results can only be obtained after 21-24 hours.
Техническим результатом изобретения является повышение скорости выявления чувствительности тест-штамма микроорганизма к специфическому бактериофагу и оценка эффективности лечебного бактериофага за счет приближения условий оценки к условиям макроорганизма.The technical result of the invention is to increase the detection rate of the sensitivity of the test strain of the microorganism to a specific bacteriophage and to evaluate the effectiveness of the therapeutic bacteriophage by bringing the assessment conditions closer to the conditions of the macroorganism.
Результат изобретения достигается за счет того, что в стандартных условиях монослоя культуры клеток эмбриона человека проводят совместное культивирование в течение 2 часов тест-штамма микроорганизма с соответствующим лечебным бактериофагом или комбинированным (поливалентным) бактериофагом, в состав которого входит соответствующий используемой тест-культуре микроорганизма фаг, а результат оценивают по степени снижения адгезии тест-штамма микроорганизма по сравнению с контролем.The result of the invention is achieved due to the fact that, under standard conditions, the monolayer of the culture of human embryo cells carries out co-cultivation for 2 hours of the test strain of the microorganism with the corresponding therapeutic bacteriophage or combined (polyvalent) bacteriophage, which includes the phage corresponding to the used test culture of the microorganism, and the result is evaluated by the degree of decrease in adhesion of the test strain of the microorganism compared with the control.
Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.
Из пробирок Лейтона на покровное стекло с монослоем кожно-мышечных (ФКЭЧ) или легочных фибробластов (ФЛЭЧ) эмбриона человека, полученным по /2/, сливают ростовую среду и добавляют 1,8 мл препарата бактериофага и 0,2 мл суточной культуры тест-штамма в дозе 109 КОЕ/мл, получая конечную концентрацию тест-штамма 108 КОЕ/мл. Пробирки инкубируют 2 часа при 37°С, затем клетки монослоя отмывают от неприкрепившихся бактерий многократной сменой среды Игла, фиксируют 96° этиловым спиртом, окрашивают по Романовскому-Гимза и исследуют микроскопически, определяя степень инфицированности монослоя сравнительно с контролем. В контрольной пробирке проводят совместное инкубирование 1,8 мл поддерживающей среды Игла с 0,2 мл суточной культуры тест-штамма в конечной дозе 108 КОЕ/мл. Интенсивность процесса адгезии оценивают по следующим показателям: 1) индекс адгезии (ИА) выражают средним числом бактериальных клеток на одной эукариотической клетке; 2) процент пораженных клеток монослоя (ПК%); 3) обсемененность 100 клеток монослоя - микробную нагрузку (МН) - определяют по формуле МН=ИА×ПК%. Процент адгезии микроба определяют по показателю микробной нагрузки относительно контроля, принимаемого за 100%.From Leighton tubes onto a coverslip with a monolayer of musculocutaneous (FCEC) or pulmonary fibroblasts (PhEC) human embryo obtained by / 2 /, the growth medium is drained and 1.8 ml of the bacteriophage preparation and 0.2 ml of the daily culture of the test strain are added at a dose of 10 9 CFU / ml, obtaining a final concentration of the test strain of 10 8 CFU / ml. The tubes are incubated for 2 hours at 37 ° C, then the monolayer cells are washed from non-adherent bacteria by repeated change of the Eagle medium, fixed with 96 ° ethanol, stained according to Romanovsky-Giemsa and examined microscopically, determining the degree of infection of the monolayer compared to the control. In a control tube, 1.8 ml of the support medium are co-incubated with a needle with 0.2 ml of the daily culture of the test strain at a final dose of 10 8 CFU / ml. The intensity of the adhesion process is evaluated by the following indicators: 1) the adhesion index (IA) is expressed by the average number of bacterial cells in one eukaryotic cell; 2) the percentage of affected cells of the monolayer (PC%); 3) the contamination of 100 cells of the monolayer - microbial load (MN) - is determined by the formula MN = IA × PC%. The percentage of microbial adhesion is determined by the indicator of microbial load relative to the control, taken as 100%.
Пример 1. Определение бактериолитической активности препарата пиобактериофага (пиофага) в отношении тест-штаммов S.aureus 209, E.coli 1257, Ps.aeruginosa 15442 на культуре клеток (КК) ФКЭЧ. Среда для культивирования тест-культур микроорганизмов - мясо-пептонный бульон, для культивирования фибробластов - питательная среда Игла.Example 1. Determination of the bacteriolytic activity of the preparation of pyobacteriophage (pyophage) in relation to the test strains S.aureus 209, E. coli 1257, Ps.aeruginosa 15442 in cell culture (CC) FCEC. The medium for the cultivation of test cultures of microorganisms - meat-peptone broth, for the cultivation of fibroblasts - nutrient medium Needle.
В пробирку Лейтона на покровное стекло с монослоем ФКЭЧ помещали 1,8 мл пиофага и 0,2 мл суточной тест-культуры соответствующего микроорганизма в дозе 109 КОЕ/мл для получения конечной концентрации тест-штаммов 108 КОЕ/мл (опытный инокулят). В качестве контрольного инокулята использовали смесь 1,8 мл питательной среды Игла с 0,2 мл суточной тест-культуры соответствующего микроорганизма в той же дозе, помещенную в пробирку Лейтона на покровное стекло с монослоем ФКЭЧ. Пробирки инкубировали 2 часа при 37°С, затем клетки монослоя отмывали от неприкрепившихся микроорганизмов многократной сменой среды Игла, фиксировали 96° этиловым спиртом, окрашивали по Романовскому-Гимза и исследовали под микроскопом, определяя степень инфицированности монослоя и процент адгезии микроба по сравнению с соответствующим контролем без пиофага по показателю микробной нагрузки (таблица 1).In a Leighton test tube, 1.8 ml of pyophage and 0.2 ml of daily test culture of the corresponding microorganism at a dose of 10 9 CFU / ml were placed on a cover glass with a PCEC monolayer to obtain a final concentration of test strains of 10 8 CFU / ml (experimental inoculum). As a control inoculum, we used a mixture of 1.8 ml of Eagle's nutrient medium with 0.2 ml of the daily test culture of the corresponding microorganism in the same dose, placed in a Layton test tube on a coverslip with a monolayer of PCEC. The tubes were incubated for 2 hours at 37 ° C, then the monolayer cells were washed from non-attached microorganisms by repeated change of the Eagle medium, fixed with 96 ° ethanol, stained with Romanovsky-Giemsa and examined under a microscope, determining the degree of infection of the monolayer and the percentage of microbe adhesion compared with the corresponding control without a pyophage in terms of microbial load (table 1).
Как видно из данных таблицы, процент адгезии тест-штаммов достоверно снизился относительно контроля соответственно: для стафилококка - на 92,5%, для кишечной палочки - на 96,2%, для синегнойной палочки - на 92,1%. Снижение адгезивной активности тест-культур происходит за счет бактериолитического эффекта пиофага. Это подтверждается результатами проведенного дополнительного теста.As can be seen from the table, the percentage of adhesion of the test strains significantly decreased relative to the control, respectively: for staphylococcus - by 92.5%, for E. coli - by 96.2%, for Pseudomonas aeruginosa - by 92.1%. The decrease in the adhesive activity of the test cultures occurs due to the bacteriolytic effect of the pyophage. This is confirmed by the results of an additional test.
Производили высев инокулятов из пробирок Лейтона на чашки Петри с МПА до начала инкубации и после 2 часов термостатирования при 37°С. Результаты высева инокулятов из соответствующих контрольных и опытных пробирок показаны в таблице 2.Inoculums were inoculated from Leighton tubes onto Petri dishes with MPA before incubation and after 2 hours of incubation at 37 ° C. The results of seeding inoculum from the corresponding control and experimental tubes are shown in table 2.
Данные, представленные в таблице 2, свидетельствуют об отсутствии жизнеспособных клеток микроорганизмов как в контрольной, так и в опытной пробирках после 2 часов инкубации. Отсутствие роста микрофлоры на плотной питательной среде в контроле связано со 100% адгезией тест-штаммов к культуре клеток фибробластов в пробирках Лейтона. В то же время отсутствие роста тест-культур на МПА после 2 часов инкубации в опыте свидетельствует о гибели тест-штаммов за счет бактериолитического действия пиофага в связи с отсутствием адгезированных клеток микроорганизмов к культуре клеток фибробластов в пробирках Лейтона.The data presented in table 2 indicate the absence of viable cells of microorganisms in both control and experimental tubes after 2 hours of incubation. The absence of microflora growth on a solid nutrient medium in the control is associated with 100% adhesion of test strains to the fibroblast cell culture in Leighton tubes. At the same time, the lack of growth of test cultures on MPA after 2 hours of incubation in the experiment indicates the death of test strains due to the bacteriolytic action of the pyophage due to the absence of adherent microorganism cells to the fibroblast cell culture in Leighton tubes.
ЛитератураLiterature
1. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследований. // Под ред. М.О.Биргера. - 3-е изд., перераб. и доп. - М.: Медицина, 1982. - с.118, 254.1. Handbook of microbiological and virological research methods. // Ed. M.O. Birger. - 3rd ed., Revised. and add. - M .: Medicine, 1982. - p.118, 254.
2. К.Б.Грабовская, А.А.Тотолян Журн. Микробиол. - 1977. - №2. - с.32-36.2. K. B. Grabovskaya, A. A. Totolyan Zhurn. Microbiol. - 1977. - No. 2. - p. 32-36.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2005110248/13A RU2296163C2 (en) | 2005-04-08 | 2005-04-08 | Method for evaluating specific activity of bacteriophages |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2005110248/13A RU2296163C2 (en) | 2005-04-08 | 2005-04-08 | Method for evaluating specific activity of bacteriophages |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2005110248A RU2005110248A (en) | 2006-10-20 |
RU2296163C2 true RU2296163C2 (en) | 2007-03-27 |
Family
ID=37437467
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2005110248/13A RU2296163C2 (en) | 2005-04-08 | 2005-04-08 | Method for evaluating specific activity of bacteriophages |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2296163C2 (en) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2587636C1 (en) * | 2015-03-02 | 2016-06-20 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Тюменский научно-исследовательский институт краевой инфекционной патологии" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method of quantitative assessment of lytic activity of bacteriophages |
RU2624511C1 (en) * | 2016-08-03 | 2017-07-04 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Новосибирский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Я.Л. Цивьяна" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "ННИИТО им. Я.Л. Цивьяна" Минздрава России) | Method of evaluating efficiency of phagotherapy in treatment of infections diseases |
RU2664681C1 (en) * | 2017-09-06 | 2018-08-21 | Андрей Владимирович Алешкин | Method of treatment of infection related to the provision of medical assistance caused by a causative agent or pathogens with multiple drug resistance |
RU2723188C1 (en) * | 2019-04-27 | 2020-06-09 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Екатеринбургский научно-исследовательский институт вирусных инфекций" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН "ЕНИИВИ" Роспотребнадзора) | Method of assessing bacteriophage specific activity using cell cultures |
-
2005
- 2005-04-08 RU RU2005110248/13A patent/RU2296163C2/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
АДАМС М. Бактериофаги. - М.: Изд. ин.лит., 1961, с.113-126. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования./Под ред. М.О.Биргера. - М.: Медицина, 1982, с.118-119, 223-224. * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2587636C1 (en) * | 2015-03-02 | 2016-06-20 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Тюменский научно-исследовательский институт краевой инфекционной патологии" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method of quantitative assessment of lytic activity of bacteriophages |
RU2624511C1 (en) * | 2016-08-03 | 2017-07-04 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Новосибирский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Я.Л. Цивьяна" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "ННИИТО им. Я.Л. Цивьяна" Минздрава России) | Method of evaluating efficiency of phagotherapy in treatment of infections diseases |
RU2664681C1 (en) * | 2017-09-06 | 2018-08-21 | Андрей Владимирович Алешкин | Method of treatment of infection related to the provision of medical assistance caused by a causative agent or pathogens with multiple drug resistance |
RU2723188C1 (en) * | 2019-04-27 | 2020-06-09 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Екатеринбургский научно-исследовательский институт вирусных инфекций" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН "ЕНИИВИ" Роспотребнадзора) | Method of assessing bacteriophage specific activity using cell cultures |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2005110248A (en) | 2006-10-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN103282513B (en) | For detecting goods and the method for target microorganism | |
RU2296163C2 (en) | Method for evaluating specific activity of bacteriophages | |
Zaatout et al. | Interaction of primary mammary bovine epithelial cells with biofilm-forming staphylococci associated with subclinical bovine mastitis | |
RU2393229C1 (en) | Method for estimating adhesion staphylococcus spp to haemoproteins | |
RU2668406C1 (en) | Method of primary sowing of biomaterial, divided from the lower respiratory ways of patients with cystic fibrosis | |
Fuchs et al. | An improved protocol for harvesting Bacillus subtilis colony biofilms | |
RU2723188C1 (en) | Method of assessing bacteriophage specific activity using cell cultures | |
RU2337360C1 (en) | Method of determination of bacteriostatic properties of antibodies to virulence factors burkholderia pseudomallei | |
RU2791966C1 (en) | Identification of yeast-like fungus candida auris | |
Nazir et al. | Inhibitory effects of antifungal drugs on biofilm producing Aspergillus spp. recovered from drinking water system | |
CN102586396A (en) | Cylinder plate method-based leather material bacteriostasis effect test method | |
Maniruzzaman et al. | Isolation and identification of bacterial flora from milk of apparently healthy buffalo-cows | |
RU2791911C1 (en) | Method for identifying yeast-like fungus candida auris | |
Maroff | Determination of the inhibitory activity of some biological extracts agaiast multi rrsistans antibiotic Staphylococcus specis which and isolated from different sources of infechtion | |
Shawkat | Primary and Secondary Screening of Pseudomonas aeruginosa for Protease Production | |
RU2788607C1 (en) | Method for obtaining a nutrient medium for the selective detection of candida auris | |
RU2580227C1 (en) | Medium for isolation of legionella pneumophila | |
RU2818369C1 (en) | Method for assessing lactobacillus viability preservation under effect of various antiseptic concentrations | |
RU2485183C1 (en) | Method of diagnostics of candidiasis of upper respiratory tract in workers of agroindustrial complex | |
KR100316321B1 (en) | Kit for detecting microorganisms | |
RU2401862C2 (en) | Method of isolating enterococcus from fresh pathological material | |
Mahdi et al. | Biofilm Forming Bacteria Isolated From Human Eye Conjunctivitis and Keratitis Cases and their Ability to Adhere on Contact Lenses in vitro | |
RU2537128C1 (en) | Method for microorganism adhesive potential rapid test | |
Al-Salim et al. | Study of the effect of natural factors on the production and inhibition of biofilms of Staphylococcus aureus. | |
US20110275114A1 (en) | Method and medium for detecting the presence or absence of methicillin resistant staphylococcus aureus (mrsa) in a test sample |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20070409 |
|
NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20100227 |
|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20130409 |