RU2295538C2 - Method for preparing heparins of low molecular mass - Google Patents
Method for preparing heparins of low molecular mass Download PDFInfo
- Publication number
- RU2295538C2 RU2295538C2 RU2005105423/15A RU2005105423A RU2295538C2 RU 2295538 C2 RU2295538 C2 RU 2295538C2 RU 2005105423/15 A RU2005105423/15 A RU 2005105423/15A RU 2005105423 A RU2005105423 A RU 2005105423A RU 2295538 C2 RU2295538 C2 RU 2295538C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- immobilized
- heparin
- enzyme
- water
- papain
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины и может быть использовано для создания эффективного средства профилактики и лечения тромботических состояний (инфаркты, инсульты различной локализации).The invention relates to medicine and can be used to create an effective means of prevention and treatment of thrombotic conditions (heart attacks, strokes of various localization).
В последнее десятилетие низкомолекулярные гепарины (НМГ) с более узким молекулярно-массовым распределением 4-6 кДа начали вытеснять нефракционированный гепарин как лекарственный препарат. Главное преимущество НМГ следует из их фармакокинетических свойств: в 2-4 раза большее время полувыведения из организма, заметно лучшая биодоступность при подкожном введении и более стабильная дозовая реакция (доза может быть рассчитана только исходя из веса пациента, без дополнительного лабораторного исследования). Меньший токсический эффект связан с вызываемой нефракционированным гепарином тромбоцитопенией, что в свою очередь обусловлено меньшим взаимодействием НМГ с тромбоцитами.In the last decade, low molecular weight heparins (LMWH) with a narrower molecular weight distribution of 4-6 kDa have begun to displace unfractionated heparin as a drug. The main advantage of LMWH follows from their pharmacokinetic properties: a 2-4 times longer half-life from the body, noticeably better bioavailability with subcutaneous administration and a more stable dose response (the dose can be calculated only based on the patient’s weight, without additional laboratory tests). A smaller toxic effect is associated with thrombocytopenia caused by unfractionated heparin, which in turn is due to a lesser interaction of LMWH with platelets.
Известны разные способы получения НМГ с низким выходом путем фракционирования природного препарата или с высоким выходом контролируемой деполимеризацией [1]. Возможно получение НМГ путем частичной деполимеризации α-гликозидных связей гепарина с помощью гепариназы. Используемый в этом процессе фермент продуцируется Flavobacterium heparinum [2]. Получение НМГ ферментативным путем, минимально затрагивающим структуру молекулы гепарина, на основе этого процесса получают препарат Логипарин [1].There are various methods for producing LMWH with a low yield by fractionation of a natural preparation or with a high yield by controlled depolymerization [1]. It is possible to obtain LMWH by partial depolymerization of heparin α-glycosidic bonds using heparinase. The enzyme used in this process is produced by Flavobacterium heparinum [2]. Obtaining LMWH in an enzymatic manner that minimally affects the structure of the heparin molecule, Logiparin is obtained on the basis of this process [1].
Мы исследовали возможность получения НМГ под влиянием гидролитических ферментов, никогда с этой целью не использовавшихся. Цель изобретения - получение НМГ действием иммобилизованных гидролаз.We investigated the possibility of obtaining NMH under the influence of hydrolytic enzymes that have never been used for this purpose. The purpose of the invention is the obtaining of NMH by the action of immobilized hydrolases.
Данная цель достигается тем, что для гидролиза используются папаин, химотрипсин, «протеза С» или целловиридин.This goal is achieved by the fact that for hydrolysis, papain, chymotrypsin, "prosthesis C" or celloviridine are used.
Описан гидролиз такого полисахарида, как хитозан, действием различных гидролаз: гемицеллюлаз, лизоцима, папаин, липазы, глюканазы, протеазы и других ферментов [3, 4]. Мы предположили, что гепарин, возможно, тоже будет подвергаться неспецифическому действию гидролитических ферментов. Нами были выбраны такие протеолитические ферментные препараты, как препарат «Протеаза С», папаин и химотрипсин, также ферментный препарат целловиридин - промышленный ферментный препарат гидролаз на основе штамма Trichoderma viride. Целловиридин Г20Х содержит целлюлазы, ксилоназы, β-глюканазы и гемицеллюлазы, кислую протеазу и др. Препарат активен в диапазоне рН от 3 до 6 при температурах 30-55°С и используется в ветеринарии в качестве кормовой добавки. Препарат «Протеаза С» представляет собой смесь экзопротеиназ. В состав препарата входят: сериновая протеиназа I, сериновая протеиназа II, нейтральная протеиназа, арбоксипептидаза, аминопептидаза. Препарат активен в диапазоне рН от 5 до 10,5 при температурах 30-50°С и представляет собой медицинскую субстанцию на основе штамма Acremonium chrysogenum, предназначенную для изготовления на ее основе лекарственных средств, используемых в различных направлениях медицины, а также в пищевой промышленности. Папаин - это тиоловая цистеиновая эндопротеаза из подкласса КФ 3.4.22, имеющая в активном центре SH-группу цистерна. По характеру ферментативного действия ее называют «растительным пепсином». Но в отличие от пепсина папаин активен не только в кислых, но и в нейтральных и щелочных средах (диапазон рН 3-12, оптимум рН 5). Он сохраняет активность в широком температурном диапазоне. Папаин обладает широкой специфичностью и сохраняет активность в широком температурном диапазоне. Для проявления максимальной активности при его использовании необходима предварительная активация с помощью мягких восстановителей, например добавление 5 мМ L-цистеина и 2 мМ этилендиаминтетраацетата натрия. Путь катализируемой папаином реакции сходен с таковым для химотрипсина, но в случае папаина в качестве интермедиата образуется тиоацилфермент. Папаин имеет меньшую специфичность, чем химотрипсин.The hydrolysis of such a polysaccharide as chitosan has been described by the action of various hydrolases: hemicellulases, lysozyme, papain, lipase, glucanase, protease, and other enzymes [3, 4]. We hypothesized that heparin might also be exposed to the nonspecific effects of hydrolytic enzymes. We have chosen proteolytic enzyme preparations such as Protease C, papain and chymotrypsin, as well as the enzyme preparation celoviridin — an industrial enzyme preparation of hydrolases based on the Trichoderma viride strain. Celloviridin G20X contains cellulases, xylonases, β-glucanases and hemicellulases, an acidic protease, etc. The drug is active in the pH range from 3 to 6 at temperatures of 30-55 ° C and is used in veterinary medicine as a feed additive. The drug "Protease C" is a mixture of exoproteinases. The composition of the drug includes: serine proteinase I, serine proteinase II, neutral proteinase, arboxypeptidase, aminopeptidase. The drug is active in the pH range from 5 to 10.5 at temperatures of 30-50 ° C and is a medical substance based on the Acremonium chrysogenum strain, intended for the manufacture on its basis of drugs used in various fields of medicine, as well as in the food industry. Papain is a thiol cysteine endoprotease from subclass KF 3.4.22, which has a cistern in the active center of the SH group. By the nature of the enzymatic action, it is called "plant pepsin." But unlike pepsin, papain is active not only in acidic, but also in neutral and alkaline media (pH range 3-12, optimum pH 5). It retains activity over a wide temperature range. Papain has a wide specificity and remains active in a wide temperature range. To exhibit maximum activity during its use, preliminary activation with mild reducing agents is necessary, for example, the addition of 5 mM L-cysteine and 2 mM sodium ethylene diamine tetraacetate. The pathway of the papain-catalyzed reaction is similar to that for chymotrypsin, but in the case of papain, a thioacyl enzyme is formed as an intermediate. Papain has less specificity than chymotrypsin.
Папаин используется в иммобилизованном состоянии для гидролиза хитозана с целью получения олигомеров [5]. Химотрипсин кристаллический - ферментный препарат протеолитического действия, получаемый из поджелудочной железы крупного рогатого скота. В некоторых случаях химотрипсин производит более глубокий гидролиз белка, чем трипсин. Более стоек трипсин, и медленнее инактивируется. Молекулярная масса от 21600 до 27000 Да, рН оптимум 7,0-9,0, температурный оптимум 50°С, pI - 8,1-8,2.Papain is used in an immobilized state for the hydrolysis of chitosan in order to obtain oligomers [5]. Crystalline chymotrypsin is a proteolytic enzyme preparation obtained from the pancreas of cattle. In some cases, chymotrypsin produces deeper protein hydrolysis than trypsin. Trypsin is more resistant, and slower inactivation. Molecular mass from 21600 to 27000 Yes, pH optimum 7.0-9.0, temperature optimum 50 ° C, pI 8.1-8.2.
Наиболее близким по технической сущности является способ получения НМГ путем частичной деполимеризации α-гликозидных связей гепарина с помощью гепариназы. Используемый в этом процессе фермент продуцируется Flavobacterium heparinum [6, 7]. Получение НМГ ферментативным путем, минимально затрагивающим структуру молекулы.The closest in technical essence is the method of obtaining NMH by partial depolymerization of heparin α-glycosidic bonds using heparinase. The enzyme used in this process is produced by Flavobacterium heparinum [6, 7]. Obtaining LMWH by enzymatic means minimally affecting the structure of the molecule.
Нами предложен способ получения низкомолекулярного гепарина с помощью ферментативной деполимеризации, характеризующийся тем, что папаин, химотрипсин или комплексы гидролаз, содержащиеся в препаратах «протезы С» и целловиридина, иммобилизуют на силохроме или на поливиниловом спирте, и при ведении ферментативной деполимнризации иммобилизованные ферменты перемешивают с раствором гепарина при 45-50°С 1,5-3 ч, отделяют иммобилизованный препарат центрифугированием, промывают 0,5 М раствором поваренной соли и водой, присоединяют к супернатанту и обессоливают на колонке с сефадексом и лиофильно высушивают. В случае использования иммобилизованного папаина раствор гепарина в ацетатном буфере рН 6,0 перемешивали с иммобилизованным ферментом при температуре 45°С в течение 1,5 часов. Иммобилизованный фермент отделяли либо на стеклянном пористом фильтре, либо с помощью центрифуги, промывали 0,5 М NaCl и водой. Промывки присоединяли к супернатанту и обессоливали на колонке с сефадексом G-10. Высушивали лиофильно. С выходом около 70-80% получали гепарины с молекулярной массой на 40-65% ниже, чем у исходного гепарина.We have proposed a method for producing low molecular weight heparin by enzymatic depolymerization, characterized in that papain, chymotrypsin or complexes of hydrolases contained in the prosthetics C and celloviridine preparations are immobilized on silochrome or polyvinyl alcohol, and enzymatic depolimization is mixed with the enzyme heparin at 45-50 ° C for 1.5-3 hours, the immobilized preparation is separated by centrifugation, washed with 0.5 M sodium chloride solution and water, attached to the supernatant and desalted on a Sephadex and lyophilized. In the case of using immobilized papain, a solution of heparin in acetate buffer pH 6.0 was mixed with the immobilized enzyme at a temperature of 45 ° C for 1.5 hours. The immobilized enzyme was separated either on a glass porous filter or using a centrifuge, washed with 0.5 M NaCl and water. Washings were attached to the supernatant and desalted on a Sephadex G-10 column. Freeze-dried. With a yield of about 70-80%, heparins were obtained with a molecular weight of 40-65% lower than that of the starting heparin.
В случае использования иммобилизованного химотрипсина раствор гепарина в ацетоном буфере рН 6,0 перемешивали с иммобилизованным ферментом при температуре 45°С в течение 3 часов. Иммобилизованный фермент отделяли либо на стеклянном пористом фильтре, либо с помощью центрифуги, промывали 0,5 М NaCl и водой. Промывки присоединяли к супернатанту и обессоливали на колонке с сефадексом G-10. Высушивали лиофильно. С выходом около 70-80% получали гепарины с молекулярной массой на 30-35% ниже, чем у исходного гепарина.In the case of using immobilized chymotrypsin, a solution of heparin in acetone buffer pH 6.0 was mixed with the immobilized enzyme at a temperature of 45 ° C for 3 hours. The immobilized enzyme was separated either on a glass porous filter or using a centrifuge, washed with 0.5 M NaCl and water. Washings were attached to the supernatant and desalted on a Sephadex G-10 column. Freeze-dried. With a yield of about 70-80%, heparins with a molecular weight of 30-35% lower than the starting heparin were obtained.
В случае иммобилизованного препарата «Протеаза С» раствор гепарина в фосфатном буфере рН 8,0 перемешивали с иммобилизованным ферментом при температуре 50°С в течение 3 часов. Иммобилизованный фермент отделяли либо на стеклянном пористом фильтре, либо с помощью центрифуги, промывали 0,5 М NaCl и водой. Промывки присоединяли к супернатанту и обессоливали на колонке с сефадексом G-10. Высушивали лиофильно. С выходом около 70-80% получали гепарины с молекулярной массой в 4 раза ниже, чем у исходного гепарина.In the case of the immobilized preparation "Protease C", a solution of heparin in phosphate buffer pH 8.0 was mixed with the immobilized enzyme at a temperature of 50 ° C for 3 hours. The immobilized enzyme was separated either on a glass porous filter or using a centrifuge, washed with 0.5 M NaCl and water. Washings were attached to the supernatant and desalted on a Sephadex G-10 column. Freeze-dried. With a yield of about 70-80%, heparins were obtained with a molecular weight 4 times lower than that of the original heparin.
В случае использования иммобилизованного целловиридина раствор гепарина в ацетатном буфере рН 4,5 перемешивали с иммобилизованным ферментом при температуре 50°С в течение 3 часов. Иммобилизованный фермент отделяли либо на стеклянном пористом фильтре, либо с помощью центрифуги, промывали 0,5 М NaCl и водой. Промывки присоединяли к супернатанту и обессоливали на колонке с сефадексом G-10. Высушивали лиофильно. С выходом около 70-80% получали гепарины с молекулярной массой на 40-60% ниже, чем у исходного гепарина.In the case of using immobilized celloviridine, a solution of heparin in acetate buffer pH 4.5 was mixed with the immobilized enzyme at a temperature of 50 ° C for 3 hours. The immobilized enzyme was separated either on a glass porous filter or using a centrifuge, washed with 0.5 M NaCl and water. Washings were attached to the supernatant and desalted on a Sephadex G-10 column. Freeze-dried. With a yield of about 70-80%, heparins were obtained with a molecular weight of 40-60% lower than that of the starting heparin.
Иммобилизованные ферменты папаин, химотрипсин, препараты «протеазы С» и целловиридина с целью деполимеризации гепарина использованы нами впервые. При этом установлено, что анти Xa-активность целевого продукта составляет 160-290 ед./мг, что соответствует удельной активности такого препарата НМГ как фраксипарин (160-280 ед./мг).The immobilized enzymes papain, chymotrypsin, preparations of “protease C” and celloviridine for the purpose of heparin depolymerization were used for the first time. It was found that the anti-Xa activity of the target product is 160-290 units / mg, which corresponds to the specific activity of such an LMWH preparation as fraxiparin (160-280 units / mg).
Иммобилизацию папаина, химотрипсина, целловиридина и препарата «протеазы С» на силохроме осуществляли, используя глутаровый альдегид.The immobilization of papain, chymotrypsin, celloviridine and the preparation “protease C” on silochrome was carried out using glutaraldehyde.
К 1 г аминосилохрома добавляли 8 мл 12,5% раствора глутарового альдегида в 0,1 М натрий фосфатном буфере, рН 7,2. Перемешивали в течение 30 мин при комнатной температуре. Затем сорбент отмывали от избытка глутарового альдегида водой и 0.1 М натрий фосфатным буфером, рН 7,2, и добавляли раствор фермента (10-15 мл) с концентрацией 1 мг/мл в этом же буфере, перемешивали в течение 3 ч при комнатной температуре и оставляли при охлаждении 4°С еще на 16 ч. Промывали на стеклянном пористом фильтре водой (200 мл), 1М NaCl (200 мл) и вновь водой. Количество иммобилизованного белка определяли по разности его содержания в исходном растворе фермента и в промывных растворах. Иммобилизованные ферменты хранили в холодильнике в воде. В случае папаина исходный раствор фермента готовили в 0,1 М натрий фосфатном буфере, рН 7,2, содержащем 5 мМ L-цистерна и 2 мМ ЭДТА.To 1 g of aminosilochrom was added 8 ml of a 12.5% solution of glutaraldehyde in 0.1 M sodium phosphate buffer, pH 7.2. Stirred for 30 min at room temperature. Then the sorbent was washed from excess glutaraldehyde with water and 0.1 M sodium phosphate buffer, pH 7.2, and an enzyme solution (10-15 ml) was added at a concentration of 1 mg / ml in the same buffer, stirred for 3 h at room temperature and left under cooling at 4 ° C for another 16 hours. Washed on a glass porous filter with water (200 ml), 1M NaCl (200 ml) and again with water. The amount of immobilized protein was determined by the difference in its content in the initial enzyme solution and in the wash solutions. Immobilized enzymes were stored in a refrigerator in water. In the case of papain, an enzyme stock solution was prepared in 0.1 M sodium phosphate buffer, pH 7.2, containing 5 mM L-tank and 2 mM EDTA.
Иммобилизацию папаина, химотрипсина, целловиридина и препарата «протеазы С» на органическом сорбенте поливиниловом спирте, содержащем альдегидные группы (150-200 мкмоль/г сырого сорбента) осуществляли по следующей методике: к 4 г «сырого» (отжатого на стеклянном пористом фильтре) сорбента добавляли 55 мл раствора фермента в 0,1 М фосфатном буфере с рН 7,1 с концентрацией белка 0 75 мг/мл перемешивали в течение 3 ч при комнатной температуре и оставляли при охлаждении 4°С еще на 16 ч. Промывали на стеклянном пористом фильтре водой (200 мл), 1М NaCl (200 мл) и вновь водой. Количество иммобилизованного белка определяли по разности его содержания в исходном растворе фермента и в промывных растворах. Блокирование непрореагировавших альдегидных групп на сорбенте после ковалентного связывания ферментом осуществляли обработкой 0,1 М Трис-HCl буфером с рН 7,5 при перемешивании в течение 2 часовThe immobilization of papain, chymotrypsin, celloviridine and the “protease C” preparation on an organic sorbent polyvinyl alcohol containing aldehyde groups (150-200 μmol / g crude sorbent) was carried out according to the following procedure: to 4 g of raw (squeezed out on a glass porous filter) sorbent 55 ml of a solution of the enzyme in 0.1 M phosphate buffer with a pH of 7.1 with a protein concentration of 0 75 mg / ml was added, stirred for 3 hours at room temperature and left to cool at 4 ° C for another 16 hours. Washed on a glass porous filter water (200 ml), 1M NaCl (200 ml) and vn Bb water. The amount of immobilized protein was determined by the difference in its content in the initial enzyme solution and in the wash solutions. Blocking of unreacted aldehyde groups on the sorbent after covalent binding by the enzyme was carried out by treating with 0.1 M Tris-HCl buffer with a pH of 7.5 with stirring for 2 hours
Иммобилизованные ферменты хранили в холодильнике в воде.Immobilized enzymes were stored in a refrigerator in water.
Пример 1. К 6 мл 1% раствора гепарина (мукозный свиной, молекулярная масса 7,5 кДа) в 0,05 М ацетатном буфере рН 4,5 добавляли 25 мг иммобилизованного на силохроме папаина (содержание белка 8,5 мг/г). Весовое отношение фермента к навеске гепарина 1:1000. Суспензию перемешивали при 45°С в течение 1,5 часов. Иммобилизованный препарат отделяли центрифугированием, промывали 0,5 М NaCl и водой. Промывки присоединяли к супернатанту и обессоливали на колонке с сефадексом G-10 (2,5×42 см), элюент вода, скорость элюции 80 мл/ч, высушивали лиофильно. Получали 42 мг (70% от исходного) с молекулярной массой 4,7 кДа.Example 1. To 6 ml of a 1% solution of heparin (porcine mucosa, molecular weight 7.5 kDa) in 0.05 M acetate buffer pH 4.5 was added 25 mg of papain immobilized on silochrome (protein content 8.5 mg / g). The weight ratio of the enzyme to the sample of heparin is 1: 1000. The suspension was stirred at 45 ° C for 1.5 hours. The immobilized preparation was separated by centrifugation, washed with 0.5 M NaCl and water. Washings were attached to the supernatant and desalted on a Sephadex G-10 column (2.5 × 42 cm), eluent water, elution rate 80 ml / h, freeze-dried. Received 42 mg (70% of the original) with a molecular weight of 4.7 kDa.
Пример 2. К 6 мл 1% раствора гепарина (из крупного рогатого скота, молекулярная масса 13,8 кДа) в 0,05 М ацетатном буфере рН 4,5 добавляли 0,055 г иммобилизованного на силохроме папаина (содержание белка 11,8 мг/г). Весовое отношение фермента к навеске гепарина 1:100. Суспензию перемешивали при 45°С в течение 3 часов. Иммобилизованный препарат отделяли центрифугированием, промывали 0,5 М NaCl и водой. Промывки присоединяли к супернатанту и обессоливали на колонке с сефадексом G-10 (2,5×42 см), элюент вода, скорость элюции 80 мл/ч, высушивали лиофильно. Получали 49,7 мг (82,8% от исходного) с молекулярной массой 5,8 кДа.Example 2. To 6 ml of a 1% solution of heparin (from cattle, a molecular weight of 13.8 kDa) in 0.05 M acetate buffer pH 4.5 was added 0.055 g of papain immobilized on silochrome (protein content 11.8 mg / g ) The weight ratio of the enzyme to the sample of heparin is 1: 100. The suspension was stirred at 45 ° C for 3 hours. The immobilized preparation was separated by centrifugation, washed with 0.5 M NaCl and water. Washings were attached to the supernatant and desalted on a Sephadex G-10 column (2.5 × 42 cm), eluent water, elution rate 80 ml / h, freeze-dried. Received 49.7 mg (82.8% of the original) with a molecular weight of 5.8 kDa.
Пример 3. К 6 мл 1% раствора гепарина (из крупного рогатого скота, молекулярная масса 13,8 кДа) в 0,05 М ацетатном буфере рН 4,5 добавляли 0,18 г иммобилизованного на ПВС папаина (содержание белка 3,3 мг/г). Весовое отношение фермента к навеске гепарина 1:50. Суспензию перемешивали при 45°С в течение 3 часов. Иммобилизованный препарат отделяли центрифугированием, промывали 0,5 М NaCl и водой. Промывки присоединяли к супернатанту и обессоливали на колонке с сефадексом G-10 (2,5×42 см), элюент вода, скорость элюции 80 мл/ч, высушивали лиофильно. Получали 50 мг (83% от исходного) с молекулярной массой 6,1 кДа.Example 3. To 6 ml of a 1% solution of heparin (from cattle, molecular weight 13.8 kDa) in 0.05 M acetate buffer pH 4.5 was added 0.18 g of papain immobilized on PVA (protein content 3.3 mg / g). The weight ratio of the enzyme to the heparin sample is 1:50. The suspension was stirred at 45 ° C for 3 hours. The immobilized preparation was separated by centrifugation, washed with 0.5 M NaCl and water. Washings were attached to the supernatant and desalted on a Sephadex G-10 column (2.5 × 42 cm), eluent water, elution rate 80 ml / h, freeze-dried. Received 50 mg (83% of the original) with a molecular weight of 6.1 kDa.
Пример 4. К 6 мл 1% раствора гепарина (из крупного рогатого скота, молекулярная масса 13,8 кДа) в 0,05 М фосфатном буфере рН 8,0 добавляли 0,15 г иммобилизованного на ПВС препарата «Протеазы С» (содержание белка 8,0 мг/г). Весовое отношение фермента к навеске гепарина 1:50. Суспензию перемешивали при 50°С в течение 3 часов. Иммобилизованный препарат отделяли центрифугированием, промывали 0,5 М NaCl и водой. Промывки присоединяли к супернатанту и обессоливали на колонке с сефадексом G-10 (2,5×42 см), элюент вода, скорость элюции 80 мл/ч, высушивали лиофильно. Получали 247 мг (82% от исходного) с молекулярной массой 3,4 кДа.Example 4. To 6 ml of a 1% solution of heparin (from cattle, molecular weight 13.8 kDa) in 0.05 M phosphate buffer pH 8.0, 0.15 g of Protease C immobilized on PVA was added (protein content 8.0 mg / g). The weight ratio of the enzyme to the heparin sample is 1:50. The suspension was stirred at 50 ° C for 3 hours. The immobilized preparation was separated by centrifugation, washed with 0.5 M NaCl and water. Washings were attached to the supernatant and desalted on a Sephadex G-10 column (2.5 × 42 cm), eluent water, elution rate 80 ml / h, freeze-dried. Received 247 mg (82% of the original) with a molecular weight of 3.4 kDa.
Пример 5. К 6 мл 1% раствора гепарина (из крупного рогатого скота, молекулярная масса 13,8 кДа) в 0,05 М фосфатном буфере рН 6,0 добавляли 0,67 г иммобилизованного на силохроме препарата «Протеазы С» (содержание белка 0,9 мг/г). Весовое отношение фермента к навеске гепарина 1:100. Суспензию перемешивали при 50°С в течение 3 часов. Иммобилизованный препарат отделяли центрифугированием, промывали 0,5 М NaCl и водой. Промывки присоединяли к супернатанту и обессоливали на колонке с сефадексом G-10 (2,5×42 см), элюент вода, скорость элюции 80 мл/ч, высушивали лиофильно. Получали 46 мг (77% от исходного) с молекулярной массой 4 кДа.Example 5. To 6 ml of a 1% solution of heparin (from cattle, molecular weight 13.8 kDa) in 0.05 M phosphate buffer pH 6.0, 0.67 g of Protease C immobilized on silochrome was added (protein content 0.9 mg / g). The weight ratio of the enzyme to the sample of heparin is 1: 100. The suspension was stirred at 50 ° C for 3 hours. The immobilized preparation was separated by centrifugation, washed with 0.5 M NaCl and water. Washings were attached to the supernatant and desalted on a Sephadex G-10 column (2.5 × 42 cm), eluent water, elution rate 80 ml / h, freeze-dried. Received 46 mg (77% of the original) with a molecular weight of 4 kDa.
Пример 6. К 6 мл 1% раствора гепарина (из крупного рогатого скота, молекулярная масса 13,8 кДа) в 0,05 М ацетатном буфере рН 4,5 добавляли 0,15 г иммобилизованного на ПВС препарата целловиридин (содержание белка 9,4 мг/г). Весовое отношение фермента к навеске гепарина 1:50. Суспензию перемешивали при 50°С в течение 3 часов. Иммобилизованный препарат отделяли центрифугированием, промывали 0,5 М NaCl и водой. Промывки присоединяли к супернатанту и обессоливали на колонке с сефадексом G-10 (2,5×42 см), элюент вода, скорость элюции 80 мл/ч, высушивали лиофильно. Получали 52 мг (87% от исходного) с молекулярной массой 5,8 кДа.Example 6. To 6 ml of a 1% solution of heparin (from cattle, a molecular weight of 13.8 kDa) in 0.05 M acetate buffer pH 4.5, 0.15 g of PVA immobilized celloviridine was added (protein content 9.4 mg / g). The weight ratio of the enzyme to the heparin sample is 1:50. The suspension was stirred at 50 ° C for 3 hours. The immobilized preparation was separated by centrifugation, washed with 0.5 M NaCl and water. Washings were attached to the supernatant and desalted on a Sephadex G-10 column (2.5 × 42 cm), eluent water, elution rate 80 ml / h, freeze-dried. Received 52 mg (87% of the original) with a molecular weight of 5.8 kDa.
Пример 7. К 6 мл 1% раствора гепарина (из крупного рогатого скота, молекулярная масса 13,8 кДа) в 0,05 М ацетатном буфере рН 4,5 добавляли 0,065 г иммобилизованного на силохроме препарата целловиридин (содержание белка 9,3 мг/г). Весовое отношение фермента к навеске гепарина 1:100. Суспензию перемешивали при 50°С в течение 3 часов. Иммобилизованный препарат отделяли центрифугированием, промывали 0,5 М NaCl и водой. Промывки присоединяли к супернатанту и обессоливали на колонке с сефадексом G-10 (2,5×42 см), элюент вода, скорость элюции 80 мл/ч, высушивали лиофильно. Получали 46,8 мг (78% от исходного) с молекулярной массой 6 кДа.Example 7. To 6 ml of a 1% solution of heparin (from cattle, a molecular weight of 13.8 kDa) in 0.05 M acetate buffer, pH 4.5, 0.065 g of celloviridin immobilized on silochrome was added (protein content 9.3 mg / d). The weight ratio of the enzyme to the sample of heparin is 1: 100. The suspension was stirred at 50 ° C for 3 hours. The immobilized preparation was separated by centrifugation, washed with 0.5 M NaCl and water. Washings were attached to the supernatant and desalted on a Sephadex G-10 column (2.5 × 42 cm), eluent water, elution rate 80 ml / h, freeze-dried. Received 46.8 mg (78% of the original) with a molecular weight of 6 kDa.
Пример 8. К 6 мл 1% раствора гепарина (мукозный свиной, молекулярная масса 75 кДа) в 0,05 М ацетатном буфере рН 4,5 добавляли 25 мг иммобилизованного на силохроме химотрипсина (содержание белка 4,9 мг/г). Весовое отношение фермента к навеске гепарина 200. Суспензию перемешивают при 45°С в течение 3 часов. Иммобилизованный препарат отделяли центрифугированием, промывали 0,5 М NaCl и водой. Промывки присоединяли к супернатанту и обессоливали на колонке с сефадексом G-10 (2,5×42 см), элюент вода, скорость элюции 80 мл/ч, высушивали лиофильно. Получали 42 мг (70% от исходного) с молекулярной массой 5,0 кДа.Example 8. To 6 ml of a 1% solution of heparin (porcine mucosa, molecular weight 75 kDa) in 0.05 M acetate buffer pH 4.5 was added 25 mg of chymotrypsin immobilized on silochrome (protein content 4.9 mg / g). The weight ratio of the enzyme to the heparin sample 200. The suspension is stirred at 45 ° C for 3 hours. The immobilized preparation was separated by centrifugation, washed with 0.5 M NaCl and water. Washings were attached to the supernatant and desalted on a Sephadex G-10 column (2.5 × 42 cm), eluent water, elution rate 80 ml / h, freeze-dried. Received 42 mg (70% of the original) with a molecular weight of 5.0 kDa.
Источники информацииInformation sources
1. Linhardt R, Loganathan В, Al-Hakim A et al., J. Med. Chem., 33(6), 1639-1645, 1990.1. Linhardt R, Loganathan B, Al-Hakim A et al., J. Med. Chem., 33 (6), 1639-1645, 1990.
2. Linhardt R, Grant F, Cooney С et al., J. Biol. Chem., 257, 7310-7313, 1982.2. Linhardt R, Grant F, Cooney C et al., J. Biol. Chem., 257, 7310-7313, 1982.
3. Muzzarelli R.A.A., Chitin Handbook, Eds. Muzzatelli R.A.A., Peter M.G. European Chitin Society, Atec, Grottammare, Italy, 153-163, 1997.3. Muzzarelli R.A.A., Chitin Handbook, Eds. Muzzatelli R.A.A., Peter M.G. European Chitin Society, Atec, Grottammare, Italy, 153-163, 1997.
4. Pantaleone D. Yalpani M., Scollas M., Carbohydrates and Carbohydrate Polymers, Analysis, Biotechnology, Modification, Antiviral, Biomedical and Other Aplications, Ed, Yalpani M. Shrewsbury (USA): ALT Press, 44-51, 1993.4. Pantaleone D. Yalpani M., Scollas M., Carbohydrates and Carbohydrate Polymers, Analysis, Biotechnology, Modification, Antiviral, Biomedical and Other Aplications, Ed, Yalpani M. Shrewsbury (USA): ALT Press, 44-51, 1993.
5. Hong Lin, Haiying Wang, Changhu Xue, Mei Ye, Enzyme Microbial Technology, 31, 588-592, 2002.5. Hong Lin, Haiying Wang, Changhu Xue, Mei Ye, Enzyme Microbial Technology, 31, 588-592, 2002.
6. Linhardt R, Grant F, Cooney С et al., J. Biol. Chem., 257, 7310-7313, 1982.6. Linhardt R, Grant F, Cooney C et al., J. Biol. Chem., 257, 7310-7313, 1982.
7. ЕР 0244235 b1, 04.11.1987.7. EP 0244235 b1, 11/04/1987.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2005105423/15A RU2295538C2 (en) | 2005-03-01 | 2005-03-01 | Method for preparing heparins of low molecular mass |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2005105423/15A RU2295538C2 (en) | 2005-03-01 | 2005-03-01 | Method for preparing heparins of low molecular mass |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2005105423A RU2005105423A (en) | 2006-08-10 |
RU2295538C2 true RU2295538C2 (en) | 2007-03-20 |
Family
ID=37059177
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2005105423/15A RU2295538C2 (en) | 2005-03-01 | 2005-03-01 | Method for preparing heparins of low molecular mass |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2295538C2 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2512768C1 (en) * | 2012-12-18 | 2014-04-10 | Федеральное бюджетное учреждение "Государственный институт кровезаменителей и медицинских препаратов (ФБУ "ГИКиМП") | Method of obtaining low-molecular heparin |
RU2670767C1 (en) * | 2017-12-26 | 2018-10-25 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "МИРЭА - Российский технологический университет" (РТУ МИРЭА) | Method for producing low molecular weight heparin |
RU2725545C1 (en) * | 2020-01-30 | 2020-07-02 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "МИРЭА-Российский технологический университет" | Method of producing low-molecular heparin |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2007140231A2 (en) | 2006-05-25 | 2007-12-06 | Momenta Pharmaceutical, Inc. | Low molecular weight heparin composition and uses thereof |
BRPI0713123A2 (en) * | 2006-05-25 | 2012-04-10 | Momenta Pharmaceutical Inc | composition of low molecular weight heparin and its use |
CN103232558B (en) * | 2013-05-02 | 2015-04-22 | 山东辰中生物制药有限公司 | Preparation method of high-quality low-molecular weight dalteparin sodium |
-
2005
- 2005-03-01 RU RU2005105423/15A patent/RU2295538C2/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
LINHARDT R. et all «Differential anticoagulant activity of heparin fragments prepared using microbial heparinase». J. Biol. Chem., 1982 Jul 10; 257 (13):7310-7313. * |
LINHARDT R. et all «New methodologies in heparin structure analysis and the generation of LMW heparins», Adv. Exp. Med. Biol., 1992; 313: P.37-47. * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2512768C1 (en) * | 2012-12-18 | 2014-04-10 | Федеральное бюджетное учреждение "Государственный институт кровезаменителей и медицинских препаратов (ФБУ "ГИКиМП") | Method of obtaining low-molecular heparin |
RU2670767C1 (en) * | 2017-12-26 | 2018-10-25 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "МИРЭА - Российский технологический университет" (РТУ МИРЭА) | Method for producing low molecular weight heparin |
RU2670767C9 (en) * | 2017-12-26 | 2018-11-26 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "МИРЭА - Российский технологический университет" (РТУ МИРЭА) | Method for producing low molecular weight heparin |
RU2725545C1 (en) * | 2020-01-30 | 2020-07-02 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "МИРЭА-Российский технологический университет" | Method of producing low-molecular heparin |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2005105423A (en) | 2006-08-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN105452479B (en) | Reversible heparin molecules | |
RU2295538C2 (en) | Method for preparing heparins of low molecular mass | |
Ernst et al. | Expression in Escherichia coli, purification and characterization of heparinase I from Flavobacterium heparinum | |
Sinha et al. | Recent progress in chitosanase production of monomer-free chitooligosaccharides: bioprocess strategies and future applications | |
Brunnee et al. | Mast cell derived heparin activates the contact system: a link to kinin generation in allergic reactions | |
Sitanggang et al. | Aspects of glucosamine production using microorganisms | |
EP2007817A2 (en) | Water soluble beta-glucan, glucosamine, and n-acetylglucosamine compositions and methods for making the same | |
US5198355A (en) | Purification of glycosaminoglycan degrading enzymes with a sulfated polysaccharide | |
JPH07501684A (en) | Anticoagulants and their preparation methods | |
Linhardt et al. | CS lyases: structure, activity, and applications in analysis and the treatment of diseases | |
EP0307158B1 (en) | Process for the preparation of branched fructooligosaccharides | |
KR20210126019A (en) | Engineered Aryl Sulfate-Dependent Enzymes | |
JP3202365B2 (en) | Method for separating oligomannuronic acid by degree of polymerization | |
RU2396282C1 (en) | Method for preparing heparin with low molecular weight and anticoagulant activity | |
Struszczyk | Chitin and chitosan. Part III. Some aspects of biodegradation and bioactivity | |
CN110684211B (en) | Method for preparing cross-linked dextran gel resistant to hydrolysis by alpha-glucosidase | |
Manzoni et al. | Production of K5 polysaccharides of different molecular weight by Escherichia coli | |
KR20100138440A (en) | Fucoidanase and method of preparing the same | |
KR20040071127A (en) | Method for preparing heparin from mast cell cultures | |
ARAKI et al. | A Pathway of Polygalactosamine Formation in Aspergillus parasiticus: Enzymatic Deacetylation of N‐Acetylated Polygalactosamine | |
AU661762B2 (en) | Method for producing carbohydrates | |
RU2248801C2 (en) | Method for preparing low-molecular heparins | |
CN101074437A (en) | Reptilase I-type enzyme products and its production | |
RU2377993C2 (en) | Method for making low-molecular heparin | |
JP4282267B2 (en) | Sulfated fucobiosylchondroitin sulfate derivative |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20080302 |
|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20110302 |
|
NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20120510 |
|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20160302 |