RU2287342C1 - METHOD FOR OBTAINING IMMUNOGENIC Trichinella spiralis ANTIGEN - Google Patents

METHOD FOR OBTAINING IMMUNOGENIC Trichinella spiralis ANTIGEN Download PDF

Info

Publication number
RU2287342C1
RU2287342C1 RU2005105086/13A RU2005105086A RU2287342C1 RU 2287342 C1 RU2287342 C1 RU 2287342C1 RU 2005105086/13 A RU2005105086/13 A RU 2005105086/13A RU 2005105086 A RU2005105086 A RU 2005105086A RU 2287342 C1 RU2287342 C1 RU 2287342C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
larvae
trichinella
antigen
protein product
cultivation
Prior art date
Application number
RU2005105086/13A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2005105086A (en
Inventor
Ирина Михайловна Одоевска (RU)
Ирина Михайловна Одоевская
Ольга Петровна Курносова (RU)
Ольга Петровна Курносова
Александр Витальевич Успенский (RU)
Александр Витальевич Успенский
Original Assignee
Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии имени К.И. Скрябина (ВИГИС)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии имени К.И. Скрябина (ВИГИС) filed Critical Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии имени К.И. Скрябина (ВИГИС)
Priority to RU2005105086/13A priority Critical patent/RU2287342C1/en
Publication of RU2005105086A publication Critical patent/RU2005105086A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2287342C1 publication Critical patent/RU2287342C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

FIELD: veterinary medicine.
SUBSTANCE: the present innovation deals with infecting laboratory animals, separating muscular tissue to carry out its proteolysis in artificial gastric juice, isolating invasion larvae and their cultivation in artificial nutritive medium, separating protein product followed by its purification and immunochemical screening. Moreover, proteolysis of muscular tissue of a laboratory animal in artificial gastric juice should be carried out at 38.5-39.0° C. Isolated invasion larvae of Trichinella should be washed out 5-7-fold with a sterile physiological solution which should be supplemented with antibiotics of different spectrum of action. Cultivation of invasion larvae should be fulfilled for 3-5 d at 38.5° C. After isolating protein product due to carrying out its dialysis and concentration it is necessary to isolate an excretory-secretory antigen. Trichinella larvae remained after separation of protein product should be reduced, the obtained homogenate should be extracted and centrifuged. Out of somatic extract due to its fractionating upon a column with sephadex G-100 one should additionally obtain fractionated somatic antigen being of high specificity.
EFFECT: higher efficiency.
5 ex

Description

Изобретение относится к ветеринарной медицине, в частности к иммуннодиагностике и иммунопрофилактике опасного антропозооноза (трихинеллеза). Может быть использовано для прижизненной серодиагностики данного заболевания у человека и животных и в качестве основного компонента для изготовления вакцинного препарата.The invention relates to veterinary medicine, in particular to immunodiagnosis and immunoprophylaxis of dangerous anthropozoonosis (trichinosis). It can be used for in vivo serodiagnosis of this disease in humans and animals and as a main component for the manufacture of a vaccine preparation.

Ежегодно в Российской Федерации регистрируется до 700 случаев заболевания этим опасным гельминтозом людей, причем в 40% они носят групповой характер. Стационарно неблагополучными по трихинеллезу в настоящее время остаются регионы Северного Кавказа, Восточной Сибири, Дальнего Востока, Кировской Области. Учитывая широкий круг восприимчивых животных и многообразие их трофических связей, передача возбудителя осуществляется на нескольких уровнях с вовлечением в циркуляцию как насекомых-трупоедов, так и мелких млекопитающих, плотоядных, всеядных животных и крупных хищников. Существует потенциальная эпизоотическая связь между природным и синантропным биоценозами, что при повышенном интересе к охоте с собаками соответствующих пород может привести к распространению трихинеллеза, поскольку в процессе охоты собаки постоянно контактируют с дикими животными. Поэтому необходимо регулярно обследовать домашних плотоядных животных после пребывания в природных очагах трихинеллеза. Одним из наиболее достоверных способов прижизненного выявления этого тканевого гельминтоза является серодиагностика, основывающаяся на определении наличия специфических антител в крови при их взаимодействии с антигенами трихинелл в ИФР.Annually in the Russian Federation up to 700 cases of the disease with this dangerous helminthiasis of people are recorded, and in 40% they are of a group nature. Currently, regions of the North Caucasus, Eastern Siberia, the Far East, and the Kirov Region remain permanently dysfunctional for trichinosis. Given the wide range of susceptible animals and the diversity of their trophic connections, the transmission of the pathogen is carried out at several levels with the involvement of circulatory insects and small mammals, carnivores, omnivores and large predators. There is a potential epizootic relationship between natural and synanthropic biocenoses, which, with an increased interest in hunting with dogs of the corresponding breeds, can lead to the spread of trichinosis, since in the process of hunting dogs are constantly in contact with wild animals. Therefore, it is necessary to regularly examine domestic carnivores after staying in the natural foci of trichinosis. One of the most reliable methods for intravital detection of this tissue helminthiasis is serodiagnosis, based on the determination of the presence of specific antibodies in the blood during their interaction with Trichinella antigens in IGF.

Проблема профилактики и иммунодиагностики этого социально опасного тканевого гельминтозооноза является приоритетной задачей гельминтологической науки и практики, в связи с чем способы получения, исследование антигенов трихинелл имеют большую научную и практическую ценность. Этими вопросами занимаются зарубежные исследователи. Н.R.Gamble (3, 4) получал экскреторно-секреторные продукты личинок трихинелл методом культивирования в питательной среде ДМЕМ с добавлением глутамина и антибиотиков (пенициллина, стрептомицина, гентамицина). Tyrcekova L. с соавторами (9) для аналогичных целей использовали среду RPMI-1640. Все авторы проводили работу в строго стерильных условиях с использованием СО2-инкубатора с 5-10%-ным содержанием углекислоты, при температуре 37°С, сроки культивирования личинок варьировали от 18 до 48 ч. В экскреторно-секреторных продуктах исследователями выявлено 5 белков молекулярным весом от 43 - до 63 кДа.The problem of prevention and immunodiagnostics of this socially dangerous tissue helminthiasis is a priority task of helminthological science and practice, and therefore the methods for producing and researching Trichinella antigens are of great scientific and practical value. Foreign researchers are involved in these issues. H.R. Gamble (3, 4) received the excretory-secretory products of Trichinella larvae by cultivation in a DMEM nutrient medium supplemented with glutamine and antibiotics (penicillin, streptomycin, gentamicin). Tyrcekova L. et al. (9) used RPMI-1640 medium for similar purposes. All authors carried out work under strictly sterile conditions using a CO 2 incubator with a 5-10% carbon dioxide content, at a temperature of 37 ° C, the larval cultivation time varied from 18 to 48 hours. In the excretory-secretory products, the researchers revealed 5 molecular proteins weighing from 43 - to 63 kDa.

Наиболее информативным методом иммунохимического исследования антигенов в настоящее время признан Western Blot анализ. Tyrcekova L. с соавторами (9) провели иммуноблотинг антигенов трихинелл с гипериммунными кроличьими сыворотками и установили наличие 6-ти иммуногенных белков молекулярным весом от 43 - до 70 кДа. Эти данные сопоставимы с результатами Ко и Fan, 1996 (6).The most informative method of immunochemical study of antigens is currently recognized Western Blot analysis. Tyrcekova L. et al. (9) carried out immunoblotting of Trichinella antigens with hyperimmune rabbit sera and established the presence of 6 immunogenic proteins with a molecular weight of 43 to 70 kDa. These data are comparable with the results of Ko and Fan, 1996 (6).

Western Blot анализ антигенов трихинелл проводил Ariaga et al (2), он идентифицировал пять главных белков с молекулярным весом 43-63 кДа, его данные совпадают с Tyrcekova L. (9), и по мнению автора, содержат основные антигенные эпитопы связывания антител и продуцируются гельминтом в течение всей инвазии.Western Blot analysis of Trichinella antigens was performed by Ariaga et al (2), he identified five major proteins with a molecular weight of 43-63 kDa, his data coincide with Tyrcekova L. (9), and according to the author, they contain the main antigenic epitopes of antibody binding and are produced helminth throughout the invasion.

Специфический антиген является главной составной частью иммунопрепарата, способствующего развитию гуморально-клеточных механизмов направленного действия, блокирующих жизненно важные функции паразита и обеспечивающих развитие иммунитета к последующему заражению.A specific antigen is the main component of an immunopreparation that promotes the development of humoral-cellular mechanisms of directed action, which block the vital functions of the parasite and ensure the development of immunity to subsequent infection.

Ценность изобретения заключается в оптимизации наработки препаративных количеств основных, так называемых "мажорных" антигенов трихинелл, предлагаются современные методы мониторинга за качеством произведенного продукта.The value of the invention is to optimize the production of preparative amounts of the main, so-called "major" Trichinella antigens, modern methods of monitoring the quality of the produced product are proposed.

Цель изобретения состоит в получении биотехнологическим путем основного компонента - иммуногенных антигенов Т.spiralis для прижизненной серодиагностики и вакциннопрофилактики этого опасного антропозооноза.The purpose of the invention is to obtain, in a biotechnological way, the main component - immunogenic T. Spiralis antigens for intravital serodiagnosis and vaccine prophylaxis of this dangerous anthropozoonosis.

Сущность изобретения состоит в разработке способа получения иммуногенных протеинов трихинелл, являющихся основным компонентом иммуноферментного диагностикума и вакцины.The essence of the invention consists in the development of a method for producing immunogenic Trichinella proteins, which are the main component of an enzyme-linked immunosorbent assay and vaccine.

Наиболее близким прототипом изобретения являются работы Gamble et all, 1984, 1985 (3, 4), Клименко В.В. 1987 г. (1).The closest prototype of the invention are the work of Gamble et all, 1984, 1985 (3, 4), Klimenko V.V. 1987 (1).

Недостатками прототипов можно считать сложный, длительный и более дорогой процесс фракционирования и очистки антигенов, иное сочетание используемых антибиотиков, непродолжительный срок культивирования личинок в искусственных питательных средах, даже при наличии дорогостоящего оборудования (СО2-инкубатор, стерильный бокс). У предшествующих авторов нет указаний на то, что целесообразно использовать прошедшие культивирование инвазионные личинки, значительно увеличившиеся в размерах за счет потребления питательных веществ из среды ДМЕМ, для получения полного соматического экстракта и фракционированного антигена. Также считаем не рациональным проводить процесс протеолиза в ИЖЗ при указанной предыдущими авторами температуре, более физиологичной для данного паразита является предложенная нами.The disadvantages of the prototypes can be considered a complex, lengthy and more expensive process of fractionation and purification of antigens, a different combination of antibiotics used, a short period of cultivation of larvae in artificial nutrient media, even in the presence of expensive equipment (CO 2 incubator, sterile box). Previous authors have no indication that it is advisable to use cultured invasive larvae that have significantly increased in size due to the consumption of nutrients from the DMEM medium to obtain a complete somatic extract and fractionated antigen. We also consider it not rational to carry out the process of proteolysis in IHL at the temperature indicated by previous authors, more physiological for this parasite is proposed by us.

Наша работа отличается тем, что:Our work is characterized in that:

1. Предлагается более оптимальный режим переваривания мышечной ткани инвазированных трихинеллами животных в искусственном желудочном соке.1. A more optimal mode of digestion of muscle tissue of animals invaded by Trichinella in artificial gastric juice is proposed.

2. Использовано более рациональное применение антибиотиков для уничтожения сопутствующей микрофлоры.2. Used a more rational use of antibiotics to destroy concomitant microflora.

3. Упрощен и удешевлен процесс биологического культивирования инвазионных личинок, т.к. не требует обязательного наличия CO2 инкубатора, стерильного бокса.3. Simplified and cheapened the process of biological cultivation of invasive larvae, because does not require the presence of a CO 2 incubator, sterile box.

4. За счет увеличения концентрации глутамина в среде ДМЕМ увеличен срок продуцирования живыми личинками экскреторно-секреторных протеинов до 5 суток.4. Due to an increase in the concentration of glutamine in the DMEM medium, the period of production of excretory-secretory proteins by living larvae was increased to 5 days.

5. Методами иммуноблота и ИФР доказана возможность использования белков-антигенов из биомассы личинок, оставшихся после культивирования в среде ДМЕМ, для получения соматических экстрактов, фракционирования, гипериммунизации животных с целью получения сывороток высокого титра.5. The methods of immunoblot and IGF have proved the possibility of using protein antigens from the biomass of larvae remaining after cultivation in DMEM medium to obtain somatic extracts, fractionation, and hyperimmunization of animals in order to obtain high titer sera.

6. Разработаны оптимальные недорогие биохимические методы (и впервые применены) фракционирования протеинов трихинелл с использованием сорбента Sephadex-G100.6. Optimal inexpensive biochemical methods have been developed (and first applied) for the fractionation of Trichinella proteins using the Sephadex-G100 sorbent.

7. Предлагается комплекс экономичных методов очистки, концентрирования, иммуннохимического анализа антигенного материала.7. A complex of economical methods of purification, concentration, immunochemical analysis of antigenic material is proposed.

8. Проведенными опытами показана высокая иммунногенность получаемых антигенов, их высокая чувствительность и специфичность в ИФР.8. The experiments showed a high immunogenicity of the obtained antigens, their high sensitivity and specificity in IGF.

Способ включает следующие этапы:The method includes the following steps:

1. Получение инвазионного материала личинок трихинелл.1. Obtaining invasive material of Trichinella larvae.

2. Биологическое культивирование личинок, получение экскреторно-секреторных продуктов.2. Biological cultivation of larvae, obtaining excretory-secretory products.

3. Получение полного соматического экстракта, фракционированного антигена.3. Obtaining a complete somatic extract, fractionated antigen.

4. Анализ диагностических свойств соматического фракционированного и экскреторно-секреторных антигенов личинок Т.spiralis.4. Analysis of the diagnostic properties of somatic fractionated and excretory-secretory antigens of T. spiralis larvae.

5. Иммунохимический анализ полученных белков-антигенов.5. Immunochemical analysis of the obtained protein antigens.

6. Изучение протективных свойств экскреторно-секреторных продуктов трихинелл.6. The study of the protective properties of excretory-secretory products of Trichinella.

Предварительную подготовку лабораторной посуды, инструментов и их стерилизацию проводили по общепринятым методикам из руководств "Биотехнология клеток животных" под ред. Спиер Р.Е. (1989). Непосредственно для культивирования личинок трихинелл применялись стерильные одноразовые чашки Петри (пр-ва "Ленполимер"), а для проведения ИФР - иммунологические планшеты отечественного производства или фирмы Costar (США). Биологическое культивирование проводили в искусственной питательной среде ДМЕМ с обязательным добавлением глутамина.Preliminary preparation of laboratory glassware, instruments and their sterilization was carried out according to generally accepted methods from the guidelines "Animal Cell Biotechnology", ed. Spier R.E. (1989). Directly for the cultivation of Trichinella larvae, sterile disposable Petri dishes were used (produced by Lenpolymer), and immunological plates of domestic manufacture or Costar (USA) were used for IGF. Biological cultivation was carried out in an artificial nutrient medium DMEM with the mandatory addition of glutamine.

1. Получение инвазионных личинок трихинелл1. Obtaining invasive larvae of Trichinella

Белых беспородных крыс заражают перорально личинками Т.spiralis в дозе 10 л/г живого веса. Через 1,5-2 месяца животных убивают методом цервикальной дислокации, снимают шкуру, удаляют внутренние органы и тушки переваривают в искусственном желудочном соке, изменив температурный режим по сравнению с общепринятой методикой. Переваривание мышечных тканей для высвобождения личинок трихинелл более целесообразно проводить не при 37°С, а при 38,5°-39,0°С, поскольку это нормальная температура тела плотоядных животных, основных хозяев данного гельминта. Полученных личинок трихинелл многократно отмывают стерильным физиологическим раствором с добавлением антибиотиков, состав которых определяют таким образом, чтобы на сопутствующие микроорганизмы и плесневые грибы воздействовало сразу несколько угнетающих агентов: β-лактамные антибиотики оказывают бактерицидное действие на микроорганизмы, находящиеся в фазе роста, ингибируя биосинтез их клеточной стенки; тетрациклинового ряда - подавляют биосинтез белка на уровне рибосом; на плесневые грибы, аспергиллы, грибы рода Candida угнетающе действует дисперсия леворина. В связи с этим в отмывающий физиологический раствор добавляют 5 мкг/мл ампициллина, 6 мкг/мл гентамицина, 50 ЕД/мл леворина, 2 мкг/мл доксициклина и промывают им 5-7 раз инвазионные личинки трихинелл.Outbred white rats are orally infected with T. spiralis larvae at a dose of 10 l / g live weight. After 1.5-2 months, the animals are killed by the method of cervical dislocation, skinned, internal organs are removed and the carcasses are digested in artificial gastric juice, changing the temperature regime in comparison with the conventional method. Digestion of muscle tissue to release Trichinella larvae is more appropriate not at 37 ° C, but at 38.5 ° -39.0 ° C, since this is the normal body temperature of carnivores, the main hosts of this helminth. The obtained Trichinella larvae are repeatedly washed with sterile saline with the addition of antibiotics, the composition of which is determined in such a way that several inhibitory agents act on concomitant microorganisms and mold fungi: β-lactam antibiotics have a bactericidal effect on microorganisms in the growth phase, inhibiting their cellular biosynthesis walls; tetracycline series - inhibit protein biosynthesis at the level of ribosomes; on fungi, aspergillus, fungi of the genus Candida, the dispersion of levorin is depressing. In this regard, 5 μg / ml of ampicillin, 6 μg / ml of gentamicin, 50 IU / ml of levorin, 2 μg / ml of doxycycline are added to the washing physiological solution and the invasive trichinella larvae are washed with it 5-7 times.

2. Биологическое культивирование инвазионных личинок2. Biological cultivation of invasive larvae

Для получения экскреторно-секреторных продуктов личинок трихинелл дальнейшую работу проводят в условиях бокса. Личинки трихинелл культивируют в чашках Петри в питательной среде ДМЕМ с добавлением L-глутамина (40 мкл/мл) и антибиотиков (гентамицина 2 мкл/мл и ампициллина 5 мкл/мл). Плотность посева 5 тыс.л/мл.To obtain excretory-secretory products of Trichinella larvae, further work is carried out in boxing conditions. Trichinella larvae are cultured in Petri dishes in DMEM nutrient medium supplemented with L-glutamine (40 μl / ml) and antibiotics (gentamicin 2 μl / ml and ampicillin 5 μl / ml). Sowing density 5 thousand liters / ml.

Белковые продукты личинок трихинелл получают, значительно упростив метод Gamble H.R. (1): без применения СО2-инкубатора, фиксированного уровня (10%) содержания углекислоты и (70%) влажности; в обычном термостате при 38,5°С. Белковые продукты отбирают один раз в 24 часа в течение 3-5 суток, после каждого отбора экскреторно-секреторных продуктов первоначальный объем восполняют добавлением новой порции питательной среды с L-глутамином. Жизнеспособность личинок трихинелл ежедневно оценивают под микроскопом, при обнаружении более 30% мертвых культивирование прекращают, а биомассу трихинелл используют для получения соматического экстракта и фракционированного антигена.The protein products of Trichinella larvae are obtained by significantly simplifying the Gamble HR method (1): without using a CO 2 incubator, a fixed level (10%) of carbon dioxide and (70%) moisture; in a conventional thermostat at 38.5 ° C. Protein products are taken once every 24 hours for 3-5 days, after each selection of excretory-secretory products, the initial volume is replenished by adding a new portion of the nutrient medium with L-glutamine. The viability of Trichinella larvae is daily evaluated under a microscope, if more than 30% of dead are detected, cultivation is stopped, and Trichinella biomass is used to obtain a somatic extract and fractionated antigen.

Полученные экскреторно-секреторные продукты по разным срокам культивирования подвергают диализу в течение 48 ч против дистиллированной воды с добавлением физиологического раствора (NaCl 1:10) при температуре 4°С со сменой буфера каждые 6-8 часов. После диализа антиген концентрируют против ПЭГ-6000, концентрацию белка определяют на спектрофотометре при длине волны 280 нм, после чего пропускают через бактериальную мембрану с диаметром пор 0,22-0,24 мкм. Сохраняют экскреторно-секреторный антиген при -18°С или в кельвинаторе при -70°С.The obtained excretory-secretory products for different cultivation periods are dialyzed for 48 hours against distilled water with the addition of physiological saline (NaCl 1:10) at a temperature of 4 ° C with a buffer change every 6-8 hours. After dialysis, the antigen is concentrated against PEG-6000, the protein concentration is determined on a spectrophotometer at a wavelength of 280 nm, after which it is passed through a bacterial membrane with a pore diameter of 0.22-0.24 microns. The excretory-secretory antigen is stored at -18 ° C or in a kelvinator at -70 ° C.

3. Получение фракционированного антигена трихинелл3. Obtaining fractionated Trichinella antigen

Для получения фракционированного соматического антигена трихинелл, оставшихся после биотехнологического культивирования, многократно отмывают физиологическим раствором, и затем личинки измельчают механическим способом с периодическим замораживанием и оттаиванием. Полученный гомогенат экстрагируют в течение 18 ч при 4°С с добавлением физиологического раствора на магнитной мешалке. После центрифугирования при 12000 g в течение 20 мин, супернатант отбирают и полученный соматический экстракт диализуют против забуференного физиологического раствора (1:10) в течение 48 ч при температуре 4°С. После диализа протеины концентрируют против ПЭГ-6000, концентрацию белка определяют при длине волны 280 нм.To obtain fractionated somatic antigen, trichinella remaining after biotechnological cultivation is washed repeatedly with physiological saline, and then the larvae are crushed mechanically with periodic freezing and thawing. The resulting homogenate was extracted for 18 h at 4 ° C with the addition of physiological saline on a magnetic stirrer. After centrifugation at 12000 g for 20 minutes, the supernatant was collected and the resulting somatic extract was dialyzed against buffered saline (1:10) for 48 hours at 4 ° C. After dialysis, the proteins are concentrated against PEG-6000, the protein concentration is determined at a wavelength of 280 nm.

Полный соматический экстракт в объеме 5 мл фракционируют на колонке с сефадексом G-100, диаметром 2,5 см, длиной 80 см, отбирают 2 белковую фракцию. Концентрацию белка определяют по методу Бредфорд (см. чертеж).A complete somatic extract in a volume of 5 ml was fractionated on a Sephadex G-100 column, 2.5 cm in diameter, 80 cm in length, 2 protein fractions were selected. The protein concentration is determined by the method of Bradford (see drawing).

4. Анализ чувствительности и специфичности полученных антигенов ИФМ4. Analysis of the sensitivity and specificity of the obtained IFM antigens

Активность и специфичность экскреторно-секреторных протеинов и антигенов второй белковой фракции Т.spiralis определяют в реакции ELISA по общепринятой методике (5).The activity and specificity of excretory-secretory proteins and antigens of the second protein fraction of T. spiralis is determined in the ELISA reaction according to the generally accepted method (5).

Гипериммунные поливалентные трихинеллезные сыворотки получают с помощью иммунизации кроликов по ранее разработанной методике полным соматическим антигеном в суммарной дозе 4,5 мг. Максимальный титр антител устанавливают в предварительной реакции ELISA, полученные антигены используют в концентрации 1 мкг на лунку.Hyperimmune polyvalent trichinosis serums are obtained by immunization of rabbits according to a previously developed technique with a complete somatic antigen in a total dose of 4.5 mg. The maximum titer of antibodies is set in the preliminary ELISA, the resulting antigens are used at a concentration of 1 μg per well.

Примеры конкретного исполнения:Examples of specific performance:

Пример №1Example No. 1

В этом эксперименте проводили исследование диагностической эффективности в ИФР соматического фракционированного и экскреторно-секреторного антигенов T.spiralis с сыворотками крови лабораторных животных. В опыте использовались сыворотки крови от кроликов; экспериментально зараженных трихинеллезом в дозе 10 лич/г живого веса; вакцинированных антигенами тканевых гельминтов, а также спонтанно зараженных паразитарными болезнями. Результаты, представленные в таблице №1, свидетельствуют, что чувствительность и специфичность как фракционированного соматического, так и экскреторно-секреторного антигенов с сыворотками крови лабораторных животных составили 100%.In this experiment, diagnostic efficacy in the IGF of somatic fractionated and excretory-secretory T.spiralis antigens with blood serum of laboratory animals was studied. In the experiment, serum from rabbits was used; experimentally infected with trichinosis at a dose of 10 lich / g live weight; tissue helminths vaccinated with antigens, as well as spontaneously infected with parasitic diseases. The results presented in table No. 1 indicate that the sensitivity and specificity of both fractionated somatic and excretory-secretory antigens with blood serum of laboratory animals amounted to 100%.

Пример №2.Example No. 2.

В этом опыте определяли диагностическую эффективность ИФР с соматическим фракционированным и экскреторно-секреторным антигенами Т.spiralis с сыворотками крови спонтанно зараженных свиней их неблагополучных по трихинеллезу хозяйств и экспериментально зараженных трихинеллезом свиней (банк сывороток ВИГИС). Результаты представлены в таблице №2. По результатам ИФР установлено, что чувствительность теста с сыворотками крови свиней при использовании фракционированного антигена составила 96,4%, а экскреторно-секреторного - 93,5%; специфичность обоих антигенов составила 84%.In this experiment, the diagnostic efficacy of IGF was determined with somatic fractionated and excretory-secretory antigens of T.spiralis with blood serum of spontaneously infected pigs from their trichinosis-poor households and experimentally infected pig trichinosis (VIGIS serum bank). The results are presented in table No. 2. According to the results of IGF, the sensitivity of the test with the blood serum of pigs using fractionated antigen was 96.4%, and excretory-secretory - 93.5%; the specificity of both antigens was 84%.

Пример №3.Example No. 3.

В этом эксперименте проводился сравнительный анализ диагностической эффективности антигенов 2 белковой фракции трихинелл в ELISA и Western blot. Сыворотки людей и свиней с подтвержденным диагнозом на трихинеллез в обеих реакциях были положительными, а из 42 сывороток из неблагополучного по трихинеллезу хозяйства в реакции ELISA было зафиксировано 10 положительных результатов; Western blot анализ выявил 2 положительные сыворотки из 10-и, прореагировавших в ELISA. На основании полученных данных можно заключить, что Western blot анализ можно использовать не только для уточнения диагноза, но и для непосредственной диагностики данного заболевания. Данные представлены в таблице №3.In this experiment, a comparative analysis of the diagnostic effectiveness of antigens 2 of the Trichinella protein fraction in ELISA and Western blot was performed. Serums of humans and pigs with a confirmed diagnosis of trichinosis in both reactions were positive, and out of 42 sera from a trichinosis-poor farm, 10 positive results were recorded in an ELISA; Western blot analysis revealed 2 out of 10 positive sera that reacted in ELISA. Based on the data obtained, it can be concluded that Western blot analysis can be used not only to clarify the diagnosis, but also for the direct diagnosis of this disease. The data are presented in table No. 3.

5. Иммунохимический анализ антигенов трихинелл.5. Immunochemical analysis of Trichinella antigens.

Проведенный градиентный электрофорез (концентрация полиакриламида от 6 до 18%) с последующей компьютерной обработкой данных показал, что во всех белковых продуктах трихинелл присутствуют пептиды с молекулярной массой 30, 43, 52-57, 64-69 кДа, причем мажорными протеинами как во фракционированном соматическом, так и в секреторно-экскреторном на всех сроках инкубации, являются антигены с молекулярной массой 43 и 53-57 кДа. Данные сопоставимы с результатами исследований зарубежных авторов (10).Conducted gradient electrophoresis (polyacrylamide concentration from 6 to 18%) followed by computer data processing showed that all Trichinella protein products contain peptides with a molecular weight of 30, 43, 52-57, 64-69 kDa, with major proteins as in fractionated somatic , and in secretory-excretory at all periods of incubation, are antigens with a molecular weight of 43 and 53-57 kDa. The data are comparable with the results of studies by foreign authors (10).

Белковые продукты разделяют с помощью денатурирующего электрофореза в 12%-ном разделяющем и 4%-ном концентрирующем ПААГе, используя Bio-RAD mini protean Slab Cell. На лунку наносят по 20 мкл образца и разделение осуществляют при 240 V в течение 50 мин. Белки переносят из геля на фильтр электрофоретически, используя нитроцеллюлозные фильтры (Schleicher-Schuell, Германия) с диаметром пор 0,24 мкм. Перенос осуществляют в самодельной камере для полусухого переноса в течение 2 часов в условиях комнатной температуры при силе тока 80 мА. При этом контакт "сэндвича" из геля и нитроцеллюлозы с пластинчатыми графитовыми электродами обеспечивается за счет прокладок из фильтровальной бумаги, смоченных в буферах.Protein products were separated by denaturing electrophoresis in 12% separation and 4% concentration PAGE using a Bio-RAD mini protean Slab Cell. 20 μl of sample is applied per well and separation is carried out at 240 V for 50 minutes. Proteins are transferred from the gel to the filter electrophoretically using nitrocellulose filters (Schleicher-Schuell, Germany) with a pore diameter of 0.24 μm. The transfer is carried out in a makeshift semi-dry transfer chamber for 2 hours at room temperature at a current of 80 mA. In this case, the contact of the "sandwich" of the gel and nitrocellulose with lamellar graphite electrodes is ensured by gaskets of filter paper soaked in buffers.

По окончании переноса часть геля отрезают и окрашивают для определения количественного переноса белков, фильтр используют для иммунного окрашивания с помощью поливалентных сывороток. Перед этим нитроцеллюлозную мембрану инкубируют 1 ч при 37°С 2%-ным обезжиренным сухим молоком (фирмы Sigma США), в 0,05%-ном Твине-20. После отмывки фосфатно-солевым буфером (PBS), мембрану инкубируют с гипериммунной сывороткой в разведении 1:100 в течение 1 ч, по окончании инкубации фильтр отмывают PBS от избытка антител и затем инкубируют с вторичными антителами (антикроличьими IgG в разведении 1:12000) и снова отмывают от избытка вторичных антител PBS. Отмытый фильтр погружают на 30 мин в 0,05%-ный раствор 4-хлор-1-нафтола в PBS, содержащий 0,06% перекиси водорода. После развития окраски, реакцию останавливают, промывая фильтр водой. Фильтр высушивают и для предотвращения выцветания хранят в темноте. По результатам Western blot анализа у экскреторно-секреторного и фракционированного соматического антигенов присутствуют мажорные полосы с молекулярной массой в диапазоне 43-, 50-55 кДа. Полученные результаты сопоставимы с данными зарубежных авторов (5).At the end of the transfer, part of the gel is cut off and stained to determine the quantitative transfer of proteins, the filter is used for immune staining using polyvalent serums. Before this, the nitrocellulose membrane was incubated for 1 h at 37 ° C with 2% skimmed milk powder (Sigma USA), in 0.05% Tween-20. After washing with phosphate-buffered saline (PBS), the membrane is incubated with hyperimmune serum at a dilution of 1: 100 for 1 h, at the end of the incubation, the filter is washed with PBS from excess antibodies and then incubated with secondary antibodies (anti-rabbit IgG at a dilution of 1: 12000) and again wash off excess PBS secondary antibodies. The washed filter is immersed for 30 min in a 0.05% solution of 4-chloro-1-naphthol in PBS containing 0.06% hydrogen peroxide. After color development, the reaction is stopped by washing the filter with water. The filter is dried and stored in the dark to prevent fading. According to the results of Western blot analysis, excretory-secretory and fractionated somatic antigens contain major bands with a molecular weight in the range of 43-, 50-55 kDa. The results obtained are comparable with the data of foreign authors (5).

6. Протективные свойства иммунопрепарата на основе экскреторно-секреторных антигенов трихинелл.6. Protective properties of an immunopreparation based on Trichinella excretory-secretory antigens.

Пример №4.Example No. 4.

Исследования проводили на 44 белых беспородных мышах весом 18-20 г, разделенных на 3 группы:Studies were performed on 44 white mongrel mice weighing 18-20 g, divided into 3 groups:

первая группа была иммунизирована подкожно двукратно с интервалом 14 дней препаратом, состоящим из экскреторно-секреторного антигена (30 мкг белка в 0,125 мл по объему) и равного количества полного адъюванта Фрейнда (0,125 мл);the first group was immunized subcutaneously twice with an interval of 14 days with a preparation consisting of an excretory-secretory antigen (30 μg of protein in 0.125 ml by volume) and an equal amount of Freund's complete adjuvant (0.125 ml);

вторая группа мышей была иммунизирована подкожно одним адъювантом Фрейнда в той же дозе двукратно с интервалом в 14 дней;the second group of mice was immunized subcutaneously with Freund's adjuvant alone in the same dose twice with an interval of 14 days;

третьей группе был введен двукратно подкожно стерильный физраствор по той же схеме.the third group was injected twice subcutaneously with sterile saline according to the same scheme.

По истечении 14 дней после последней иммунизации было проведено заражение всех трех групп мышей инвазионными личинками трихинелл в дозе 100 личинок на одно животное. Учет результатов опыта через 60 дней после заражения представлен в таблице №4. У первой группы животных, иммунизированных Э/С АГ + ПАФ, количество личинок в 1 г мышечной ткани после переваривания в ИЖС составило в среднем по группе 75,2 личинки; у животных 2-й группы (ПАФ + физ. р-р) этот же показатель составил 1622 л/г. В контрольной группе (физ. р-р) интенсивность инвазии составила 2109,3 л/г. Приведенные расчеты, как видно из таблицы, показывают, что уровень защиты при экспериментальном заражении T.spiralis мышей, вакцинированных данным препаратом, составил 96,4% (((2109,3-75,2):2109,3)×100%=96,4%), что значительно превосходит протективный эффект, полученный зарубежными авторами (8).After 14 days after the last immunization, all three groups of mice were infected with Trichinella invasive larvae at a dose of 100 larvae per animal. Accounting for the results of the experiment 60 days after infection is presented in table No. 4. In the first group of animals immunized with E / C AG + PAF, the number of larvae in 1 g of muscle tissue after digestion in IHL was on average 75.2 larvae in the group; in animals of the 2nd group (PAF + physical solution), the same indicator was 1622 l / g. In the control group (physical solution), the invasion intensity was 2109.3 l / g. The above calculations, as can be seen from the table, show that the level of protection during experimental infection of T. spiralis in mice vaccinated with this drug was 96.4% (((2109.3-75.2): 2109.3) × 100% = 96.4%), which significantly exceeds the protective effect obtained by foreign authors (8).

7. Изучение протективных свойств препарата на основе экскреторно-секреторных антигенов трихинелл на кроликах. 8.7. The study of the protective properties of the drug based on excretory-secretory antigens of Trichinella in rabbits. 8.

Пример №5.Example No. 5.

Исследования проводили на 16 молодых кроликах породы "Советская Шиншилла", разделенных на две равноценные группы - опытную и контрольную. Опытная группа животных была двукратно (с интервалом в 10 дней) подкожно иммунизирована препаратом, состоящим из равных объемов (по 0,25 мл) полного адъюванта Фрейнда и экскреторно-секреторного антигена (доза по белку 250 мкг).The studies were carried out on 16 young rabbits of the breed "Soviet Chinchilla", divided into two equivalent groups - experimental and control. The experimental group of animals was twice (with an interval of 10 days) subcutaneously immunized with a preparation consisting of equal volumes (0.25 ml) of Freund's complete adjuvant and excretory-secretory antigen (protein dose of 250 μg).

Контрольная группа кроликов была инъецирована в те же сроки стерильным физраствором. По истечении 14 дней после последней иммунизации обе группы заразили инвазионными личинками трихинелл в дозе 4 тысячи на одно животное.The control group of rabbits was injected at the same time with sterile saline. After 14 days after the last immunization, both groups were infected with invasive larvae of Trichinella at a dose of 4 thousand per animal.

Убой экспериментальных животных провели через 60 дней после заражения трихинеллами. С тушек кроликов отделили всю мышечную ткань и измельчили на электромясорубке (каждую по отдельности), тщательно перемешали и провели протеолиз трех аликвот (по 50 г) фарша от каждой тушки в искусственном желудочном соке. Результаты опыта представлены в таблице №5. Показатель среднего количества личинок в 1 г мышечной ткани по всей группе вакцинированных Э/С АГ трихинелл кроликов составил 38,8; в то время, как в контрольной группе этот показатель составил 1390,6 л/г. Приведенные расчеты показывают, что уровень защиты при экспериментальном заражении T.spiralis кроликов, двукратно вакцинированных данным препаратом, составил 97,2% (((1390,6-38,8):1390,6)×100%=97,2%).Slaughter of experimental animals was carried out 60 days after infection with Trichinella. All muscle tissue was separated from the carcasses of rabbits and ground in an electric meat grinder (each separately), thoroughly mixed and proteolysis of three aliquots (50 g) of minced meat from each carcass in artificial gastric juice was performed. The results of the experiment are presented in table No. 5. The indicator of the average number of larvae in 1 g of muscle tissue over the whole group of rabbit Trichinella vaccinated with E / C AG was 38.8; while in the control group this indicator was 1390.6 l / g. The above calculations show that the level of protection during experimental infection of T.spiralis in rabbits twice vaccinated with this drug was 97.2% (((1390.6-38.8): 1390.6) × 100% = 97.2%) .

Проведенные опыты показали высокую иммуногенность препарата на основе экскреторно-секреторного антигена трихинелл с ПАФ при двукратном подкожном введении лабораторным животным, эффект защиты составил 96-97%.The experiments showed a high immunogenicity of the drug based on the Trichinella excretory-secretory antigen with PAF when administered twice subcutaneously to laboratory animals, the protection effect was 96-97%.

Проведенный иммунохимический анализ полностью характеризует основные иммуногенные антигены трихинелл на молекулярном уровне, а ИФМ показывает их высокую специфичность и чувствительность в серологических реакциях с сыворотками крови, как нескольких видов животных, так и зараженных трихинеллезом людей.The immunochemical analysis fully characterizes the main immunogenic Trichinella antigens at the molecular level, and the IFM shows their high specificity and sensitivity in serological reactions with blood serum of both several animal species and people infected with trichinosis.

Источники информации.Information sources.

1. Клименко В.В., Белозеров С.Н. Бюл. Всес. ин-та гельминтол. - 1986. - вып.44 - С.31-38.1. Klimenko V.V., Belozerov S.N. Bull. All Institute of helminthol. - 1986. - issue 44 - S.31-38.

2. Arriaga С., Muniz E., Morilla A., Ortega-Pierres G. Trichinella spiralis: Recognition of muscle larva antigens during experimental infection of swains and its potential use in diagnosis. Exp. Parasit. 1989. 69:363-372.2. Arriaga C., Muniz E., Morilla A., Ortega-Pierres G. Trichinella spiralis: Recognition of muscle larva antigens during experimental infection of swains and its potential use in diagnosis. Exp. Parasit. 1989. 69: 363-372.

3. Gamble H.R. Trichinella spiralis: Immunization of Mice Using Monoclonal Antibody Affinity-Isolated Antigens. Exp. Parasitology 59, 398-404, 1985.3. Gamble H.R. Trichinella spiralis: Immunization of Mice Using Monoclonal Antibody Affinity-Isolated Antigens. Exp. Parasitology 59, 398-404, 1985.

4. Gamble H.R., Graham С.E. Monoclonal antibody-purified antigen for the immunodiagnosis of swine trichinosis. Vet. Res., 45, 67-74, 1984.4. Gamble H.R., Graham C.E. Monoclonal antibody-purified antigen for the immunodiagnosis of swine trichinosis. Vet. Res., 45, 67-74, 1984.

5. Helene Y., Shakir A. Development and Evaluation of a Western Blot Kit for Diagnosis of Human Trichinellosis (PubMed), 2003.5. Helene Y., Shakir A. Development and Evaluation of a Western Blot Kit for Diagnosis of Human Trichinellosis (PubMed), 2003.

6. Ко, О.С., Fan L. Heat shock respons to Trichinella spiralis and T.pseudospiralis. Parasitology 1996, 112:89-95.6. Co., O.S., Fan L. Heat shock respons to Trichinella spiralis and T. pseudospiralis. Parasitology 1996, 112: 89-95.

7. Parkhouse R.M., Philip M., Ogilvie В.М. Characterization of surface antigens of Trichinella spiralis infective larvae. Parasite Immunol., 1981, 3:339-352.7. Parkhouse R.M., Philip M., Ogilvie V.M. Characterization of surface antigens of Trichinella spiralis infective larvae. Parasite Immunol., 1981, 3: 339-352.

9. Silberstein D.S., Despommier D.D. Antigens from Trichinella spiralis that induce a protective response in the mouse. J. of Immunology, 132, 898-904, 1984.9. Silberstein D.S., Despommier D.D. Antigens from Trichinella spiralis that induce a protective response in the mouse. J. of Immunology, 132, 898-904, 1984.

9. Tyrcekova L., Borovkova О. Immunochemical analysis of larval antigens of Trichinella spiralis and T.pseudospiralis. Helmintologia, 34, 4:241-243, 1997.9. Tyrcekova L., Borovkova O. Immunochemical analysis of larval antigens of Trichinella spiralis and T. pseudospiralis. Helmintologia, 34, 4: 241-243, 1997.

10. Wu Z., Nagano I. A panel of antigens of muscle larvae of Trichinilla spiralis and T.pseudospiralis as revealed by two-dimensional western blot and immunoelectron microscopy. Parasitology, 118 (Pt 6): 118, 1999.10. Wu Z., Nagano I. A panel of antigens of muscle larvae of Trichinilla spiralis and T. pseudospiralis as revealed by two-dimensional western blot and immunoelectron microscopy. Parasitology, 118 (Pt 6): 118, 1999.

Таблица №1.
Исследование диагностической эффективности в ИФР соматического фракционированного и экскреторно-секреторного антигенов Т.spiralis с сыворотками крови лабораторных животных.
Table number 1.
Investigation of diagnostic efficacy in IGF of somatic fractionated and excretory-secretory antigens of T.spiralis with blood serum of laboratory animals.
Сыворотки крови кроликовRabbit blood serum Кол-во животных в группеThe number of animals in the group Результаты ИФРIGF Results фракционированный соматический антигенfractionated somatic antigen экскреторно-секреторный антигенexcretory secretory antigen положит.will put. отриц.neg. чувствит.feels. специф.spec. положит.will put. отриц.neg. чувствит.feels. специф.spec. Экспериментально зараженные трихинеллезомExperimentally infected with trichinosis 88 88 -- 100%one hundred% 100%one hundred% 88 -- 100%one hundred% 100%one hundred% Гипериммунизиров. экстрактом личинок Т.spiralisHyperimmunization. extract of T.spiralis larvae 55 55 -- 55 -- Иммунизирован. экскрет/секрет. АГ Т.spiralis + ПАФImmunized. excret / secret. AG T.spiralis + PAF 99 99 -- 99 -- Гипериммунизиров. экстрактом Е.multilocularis (из протосколексов)Hyperimmunization. E. multilocularis extract (from protoscolexes) 22 -- 22 -- 22 Иммунизирован. Аг Е.multilocularis + ПАФ с послед. заражением Е.multilocularisImmunized. Ag E.multilocularis + PAF with sequ. infection with E. multilocularis 1212 -- 1212 -- 1212 спонтанно зараженные пассалурисамиspontaneously infected with passaluris 22 -- 22 -- 22 Экспериментально зараженные культурой криптоспоридийExperimentally infected cryptosporidium culture 1212 -- 1212 -- 1212 Спонтанно зараженные цистицеркозом пизиформнымSpontaneously infected with pisiform cysticercosis 33 -- 33 -- 33 Здоровые кроликиHealthy rabbits 55 -- 55 -- 55

Figure 00000001
Figure 00000001

Таблица №3.
Сравнительный анализ диагностической эффективности антигенов 2-й белковой фракции трихинелл в реакциях ELISA и Western blot
Table No. 3.
Comparative analysis of the diagnostic effectiveness of antigens of the 2nd protein fraction of Trichinella in the reactions of ELISA and Western blot
Сыворотки кровиBlood serum количествоquantity Результаты ELISAELISA Results Результаты Western blotWestern blot results положительныеpositive отрицательныеnegative Проверены в Western blotTested in Western blot положительныеpositive отрицательныеnegative Сыворотки людей с подтвержд. диагнозомSerums of people with confirmation. the diagnosis 33 33 -- 33 33 00 Сыворотки свиней с подтвержденным трихинеллезомConfirmed Trichinosis Serum Pigs 1616 1616 -- 1616 1616 -- Сыворотки свиней из неблагополучного по трихинеллезу хозяйстваPorcine sera from a trichinosis-poor farm 4242 1010 3232 1010 22 88

Таблица №4.
Изучение протективных свойств экскреторно-секреторных антигенов трихинелл в опыте на белых беспородных мышах
Table No. 4.
Study of the protective properties of Trichinella excretory-secretory antigens in an experiment on outbred mice
№ группыGroup number Кол-во мышей в группеThe number of mice in the group Иммунизирующее средствоImmunizing agent Иммунизация доза мкг белкаImmunization Dose μg Protein Кратность иммунизацииThe frequency of immunization Интервал между иммунизациями (дни)The interval between immunizations (days) Доза заражения (кол-во личинок)Dose of infection (number of larvae) Среднее кол-во личинок в 1 г мышечной ткани после перев в ИЖСThe average number of larvae in 1 g of muscle tissue after transfers to IZHS Усредненный показатель в целом по группе(личинки)The average indicator for the whole group (larvae) 1one 22 33 1one 30thirty Э/С АГ Т.spiralis + ПАФ (1:1)E / S AG T.spiralis + PAF (1: 1) 30thirty 22 14fourteen 100one hundred 89,589.5 64,764.7 71,371.3 75,275,2 22 1212 ПАФ + физ. р-рPAF + physical. rr -- 22 14fourteen 100one hundred 15761576 18201820 14701470 16221622 33 20twenty Стерильн. физ. р-рSterile physical rr -- 22 14fourteen 100one hundred 20382038 23012301 19891989 2109,32109.3

Таблица №5.
Изучение протективных свойств экскреторно-секреторных антигенов трихинелл в опыте на молодых кроликах породы "Советская Шиншилла".
Table No. 5.
Study of the protective properties of Trichinella excretory-secretory antigens in an experiment on young rabbits of the breed "Soviet Chinchilla".
№ группыGroup number Иммунирующее средствоImmunizing agent Иммунизирующая доза по белкуProtein Immunizing Dose Кратн. иммунизацииMultiple immunization Интервал между иммунизациямиImmunization Interval Доза заражения (кол-во личинок)Dose of infection (number of larvae) Среднее количество личинок в 1 грамме мышечной тканиThe average number of larvae per 1 gram of muscle tissue Усредненный показатель по группеGroup average 1one 22 33 4four 55 66 77 1one Э/С АГ + ПАФ (1:1)E / S AG + PAF (1: 1) 175175 22 14fourteen 40004000 25,425,4 111111 67,867.8 7,97.9 0,60.6 26,326.3 46,846.8 38,838.8 22 Стерильн. физ. р-рSterile physical rr -- 22 14fourteen 40004000 1433,71433.7 1021,31021.3 1717,01717.0 13901390

Claims (1)

Способ получения иммуногенного антигена Trichinella spiralis, включающий заражение лабораторных животных, отделение мышечной ткани и проведение ее протеолиза в искусственном желудочном соке, выделение инвазионных личинок и их культивирование в искусственной питательной среде, отделение белкового продукта, его очистку и иммунохимический скрининг, отличающийся тем, что протеолиз мышечной ткани лабораторного животного в искусственном желудочном соке проводят при температуре 38,5-39,0°С, выделенные инвазионные личинки трихинелл 5-7-кратно отмывают стерильным физиологическим раствором, в который добавляют антибиотики с различным спектром действия, после чего осуществляют культивирование инвазионных личинок в течение 3-5 суток при температуре 38,5°С, и после отделения белкового продукта путем проведения его диализа и концентрирования выделяют экскреторно-секреторный антиген, а оставшиеся после отделения белкового продукта личинки трихинелл измельчают, полученный гомогенат экстрагируют, центрифугируют и из соматического экстракта путем фракционирования его на колонке с сефадексом G-100 дополнительно получают фракционированный соматический антиген.A method of producing an immunogenic antigen of Trichinella spiralis, including infection of laboratory animals, separation of muscle tissue and its proteolysis in artificial gastric juice, isolation of invasive larvae and their cultivation in an artificial nutrient medium, separation of the protein product, its purification and immunochemical screening, characterized in that proteolysis muscle tissue of a laboratory animal in artificial gastric juice is carried out at a temperature of 38.5-39.0 ° C, isolated invasive larvae of Trichinella are washed 5-7 times with a physiological saline solution, to which antibiotics with a different spectrum of action are added, after which cultivation of invasive larvae is carried out for 3-5 days at a temperature of 38.5 ° C, and after separation of the protein product by means of its dialysis and concentration, an excretory-secretory antigen is isolated, and the trichinella larvae remaining after separation of the protein product are crushed, the resulting homogenate is extracted, centrifuged from the somatic extract by fractionating it on a Sephadexo column m G-100 additionally receive fractionated somatic antigen.
RU2005105086/13A 2005-02-25 2005-02-25 METHOD FOR OBTAINING IMMUNOGENIC Trichinella spiralis ANTIGEN RU2287342C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2005105086/13A RU2287342C1 (en) 2005-02-25 2005-02-25 METHOD FOR OBTAINING IMMUNOGENIC Trichinella spiralis ANTIGEN

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2005105086/13A RU2287342C1 (en) 2005-02-25 2005-02-25 METHOD FOR OBTAINING IMMUNOGENIC Trichinella spiralis ANTIGEN

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2005105086A RU2005105086A (en) 2006-08-10
RU2287342C1 true RU2287342C1 (en) 2006-11-20

Family

ID=37059054

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2005105086/13A RU2287342C1 (en) 2005-02-25 2005-02-25 METHOD FOR OBTAINING IMMUNOGENIC Trichinella spiralis ANTIGEN

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2287342C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2671632C1 (en) * 2017-07-25 2018-11-06 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" Application of protein extract as antiproliferative and cytotoxic agent

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
GAMBLE H.R., Trichinella spiralis: Recognition of muscle larva antigens during experimental infection of swains and its potential use in diagnosis, Exp.Parasitology, 1989, 69, 363-372. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2671632C1 (en) * 2017-07-25 2018-11-06 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" Application of protein extract as antiproliferative and cytotoxic agent

Also Published As

Publication number Publication date
RU2005105086A (en) 2006-08-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gómez-Morales et al. A distinctive Western blot pattern to recognize Trichinella infections in humans and pigs
EP1987357B8 (en) Polypeptides recognized by anti-trichinella antibodies, and uses thereof
Matsumoto et al. Primary alveolar echinococcosis: course of larval development and antibody responses in intermediate host rodents with different genetic backgrounds after oral infection with eggs of Echinococcus multilocularis
Yang et al. Identification and characterization of a full-length cDNA encoding paramyosin of Trichinella spiralis
Bernardes et al. Sm16, a Schistosoma mansoni immunomodulatory protein, fails to elicit a protective immune response and does not have an essential role in parasite survival in the definitive host
RU2287342C1 (en) METHOD FOR OBTAINING IMMUNOGENIC Trichinella spiralis ANTIGEN
Skelly et al. The humoral immune response of sheep to antigens from larvae of the sheep blowfly (Lucilia cuprina)
Tsutsui et al. Serum GlcNAc-binding IgM of fugu (Takifugu rubripes) suppresses the growth of fish pathogenic bacteria: A novel function of teleost antibody
Shamim et al. Peptides isolation from crude somatic antigens of Haemonchus contortus through SDS-PAGE
Wang et al. Evaluation of protective immune responses induced by recombinant TrxLp and ENO2 proteins against Toxoplasma gondii infection in BALB/c mice
US5344645A (en) Immunogens derived from pathogen-free tick species or cell lines, and tick vaccines derived therefrom
RU2525688C2 (en) METHOD FOR PRODUCING PURIFIED SOMATIC ANTIGEN OF Dirofilaria immitis
Li et al. Cloning and characterization of a novel gene encoding 16 kDa protein (Ac16) from Angiostrongylus cantonensis
US9783583B2 (en) Antigenic polypeptides of Trichinella and uses thereof
Hendawy et al. Immunological evaluation of the diagnostic values of Cephalopina titillator different larval antigens in camels from Egypt
Osei Evaluation of Galectin Gene Expression During the Periparturient Period and After Modulation in St. Croix Sheep
Bernardes et al. Sm16, A Immunomodulatory Protein, Fails to Elicit a Protective Immune Response and Does Not Have an Essential Role in Parasite Survival in the Definitive Host.
Yazdi et al. Extraction and biological evaluation of external membrane vesicles of Brucella abortus as a candidate for brucellosis vaccine
Rumokoy et al. Application of Thoracic Immunogen of Musca domestica on Immunoglobulin-G Level of Goats Detected Through a Single Radial Immuno-Diffusion Test
Bernardes et al. A Schistosoma mansoni Immunomodulatory Protein, Fails to Elicit a Protective Immune Response and Does Not Have an Essential Role in Parasite Survival in the Definitive Host
Graf Immune evasion proteins from helminth parasites
Asim Shamim et al. Peptides isolation from crude somatic antigens of Haemonchus contortus through SDS-PAGE.
RU2199340C1 (en) Method for obtaining protective extracellular brucella antigen capable to provoke chronic forms of brucellosis
Bernardes et al. Research Article Sm16, A Schistosoma mansoni Immunomodulatory Protein, Fails to Elicit a Protective Immune Response and Does Not Have an Essential Role in Parasite Survival in the Definitive Host
Cheney et al. Serological differentiation of microsporidia with special reference to Trachipleistophora hominis

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20080226