RU2281327C2 - STRAIN OF HYBRID CULTURING Rattus norvegicus 122H9 CELLS WHICH IS PRODUCER OF CROSS-REACTIVE NEUTRALIZING MONOCLONAL ANTIBODIES AGAINST PATHOGENIC FOR HUMAN ORTHOPOXVIRUSES - Google Patents

STRAIN OF HYBRID CULTURING Rattus norvegicus 122H9 CELLS WHICH IS PRODUCER OF CROSS-REACTIVE NEUTRALIZING MONOCLONAL ANTIBODIES AGAINST PATHOGENIC FOR HUMAN ORTHOPOXVIRUSES Download PDF

Info

Publication number
RU2281327C2
RU2281327C2 RU2004126520/13A RU2004126520A RU2281327C2 RU 2281327 C2 RU2281327 C2 RU 2281327C2 RU 2004126520/13 A RU2004126520/13 A RU 2004126520/13A RU 2004126520 A RU2004126520 A RU 2004126520A RU 2281327 C2 RU2281327 C2 RU 2281327C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strain
cells
rattus norvegicus
hybrid
monoclonal antibodies
Prior art date
Application number
RU2004126520/13A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2004126520A (en
Inventor
Марина Александровна Васильева (RU)
Марина Александровна Васильева
Евгений Федорович Беланов (RU)
Евгений Федорович Беланов
Евгений Евгеньевич Коновалов (RU)
Евгений Евгеньевич Коновалов
Иван Алексеевич Разумов (RU)
Иван Алексеевич Разумов
Валерий Борисович Локтев (RU)
Валерий Борисович Локтев
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" filed Critical Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека"
Priority to RU2004126520/13A priority Critical patent/RU2281327C2/en
Publication of RU2004126520A publication Critical patent/RU2004126520A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2281327C2 publication Critical patent/RU2281327C2/en

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology and virology.
SUBSTANCE: strain of hybrid culturing Rattus norvegicus 122H9 cells is disclosed. Said strain is obtained by fusion of rat myeloma cells 210RC.Y3-Ag1.2.3 with rat spleen cells LOU, immunized with purified ectromelia virus of K-1 strain. Said strain is producer of cross-reactive neutralizing monoclonal antibodies against pathogenic for human orthopoxviruses.
EFFECT: vaccines for prophylaxis and therapy of diseases associated with pathogenic for human orthopoxviruses.
2 tbl, 5 ex

Description

Изобретение относится к биотехнологии и вирусологии и касается получения нового штамма гибридных клеток Rattus norvegicus - продуцента перекрестно-реактивных нейтрализующих моноклональных антител (МКА) против ортопоксвирусов. МКА могут найти применение в медицине, иммунологии и биотехнологии с целью разработки и усовершенствования средств вакцинопрофилактики и терапии заболеваний, вызываемых ортопоксвирусами, патогенными для человека, - это вирусы натуральной оспы (ВНО), оспы обезьян (ВОО), осповакцины (ВОВ) и оспы коров (ВОК).The invention relates to biotechnology and virology and relates to the production of a new strain of hybrid cells Rattus norvegicus, a producer of cross-reactive neutralizing monoclonal antibodies (MCAs) against orthopoxviruses. MCAs can be used in medicine, immunology and biotechnology with the aim of developing and improving vaccine prevention and therapy for diseases caused by orthopoxviruses pathogenic for humans, such as variola virus (VNO), smallpox monkeys (SBI), smallpox vaccines (WWII) and smallpox cows (Wok).

Известны зарубежные коллекции мышиных моноклональных антител (МКА) к ортопоксвирусам [1-5], продуцируемые штаммами гибридных клеток животного Mus musculus.Foreign collections of murine monoclonal antibodies (MABs) to orthopoxviruses [1-5], produced by strains of hybrid cells of the animal Mus musculus, are known.

Однако аналоги штаммов гибридных клеток животного Rattus norvegicus - продуцентов моноклональных антител к ортопоксвирусам неизвестны.However, analogues of strains of hybrid cells of the animal Rattus norvegicus, producers of monoclonal antibodies to orthopoxviruses, are unknown.

Техническим результатом заявляемого изобретения является получение штамма гибридных клеток Rattus norvegicus 122H9, секретирующих МКА, которые обладают перекрестной реактивностью с ВЭ, ВОВ, ВОК и ВНО и нейтрализующей активностью против ВОК и вируса натуральной оспы. Указанный технический результат достигается слиянием клеток крысиной миеломы 210RC.Y3-Ag1.2-3. с клетками селезенки крысы LOU, иммунизированной очищенным вирусом эктромелии (штамм К-1), который был получен в результате культивирования и очистки вируса.The technical result of the claimed invention is to obtain a strain of hybrid cells Rattus norvegicus 122H9, secreting MCAs that have cross-reactivity with CE, BOB, wok and VNO and neutralizing activity against wok and variola virus. The specified technical result is achieved by fusion of rat myeloma cells 210RC.Y3-Ag1.2-3. with rat spleen cells LOU immunized with purified ectromelia virus (strain K-1), which was obtained by culturing and purifying the virus.

Заявляемый штамм гибридных клеток Rattus norvegicus 122H9 получен в Государственном научном центре вирусологии и биотехнологии «Вектор» (ГНЦ ВБ "Вектор") Минздрава Российской Федерации и депонирован в НИИ клеточных культур ГНЦ ВБ "ВЕКТОР" под №НИИМБ-281. Авторское название гибридомной клеточной линии - 122Н9.The inventive strain of hybrid cells Rattus norvegicus 122H9 obtained at the State scientific center of virology and biotechnology "Vector" (SSC WB "Vector") of the Ministry of Health of the Russian Federation and deposited in the Research Institute of cell cultures SSC WB "VECTOR" under No. NIIMB-281. The copyright name of the hybridoma cell line is 122H9.

Штамм Rattus norvegicus 122H9 характеризуется следующими признаками:The strain of Rattus norvegicus 122H9 is characterized by the following features:

Родословная штамма. Штамм гибридных культивируемых клеток получен путем слияния клеток крысиной миеломы 210RC.Y3-Ag1.2.3. (Y-3) с клетками селезенки крыс LOU, иммунизированных очищенным препаратом вируса эктромелии. В качестве сливающего агента использовали 50% раствор полиэтиленгликоля фирмы Sigma с молекулярным весом 2000. Штамм выращивали на селективной среде ГАТ, затем трижды клонировали методом предельных разведений, используя в качестве клеток-кормилок перитонеальные макрофаги крыс LOU. Выход позитивных клонов в последнем клонировании составил 100%.The pedigree of the strain. The hybrid cultured cell strain was obtained by fusion of rat myeloma 210RC.Y3-Ag1.2.3 cells. (Y-3) with LOU rat spleen cells immunized with a purified ectromelia virus preparation. A 50% solution of Sigma polyethylene glycol with a molecular weight of 2000 was used as a merging agent. The strain was grown on GAT selective medium, then it was cloned three times using the limiting dilution method using rat peritoneal macrophages as LOU cells. The yield of positive clones in the last cloning was 100%.

Число пассажей к моменту депонирования - -12 пассажей. The number of passages at the time of deposit is -12 passages.

Маркерные признаки и методы их оценки. Штамм секретирует крысиные иммуноглобулины, специфически взаимодействующие с ВЭ. Анализ крысиных иммуноглобулинов проводят методом иммуноферментного анализа, используя в качестве антигена 200 нг очищенного ВЭ. Взаимодействие МКА с ВЭ выявляют с помощью конъюгата антител против крысиных IgG, меченных пероксидазой хрена.Marker signs and methods for their assessment. The strain secretes rat immunoglobulins that specifically interact with EB. Analysis of rat immunoglobulins is carried out by enzyme-linked immunosorbent assay using 200 ng of purified EB as an antigen. The interaction of MCA with VE is detected using a conjugate of antibodies against rat IgG labeled with horseradish peroxidase.

Контаминация бактериями и грибами не обнаружена.Contamination by bacteria and fungi was not detected.

Морфологические признаки. Культура состоит из крупных округлых клеток, сходных по морфологии и размерам с исходной родительской миеломой Y-3. Овальное ядро расположено эксцентрично и занимает значительную часть цитоплазмы.Morphological signs. The culture consists of large rounded cells, similar in morphology and size to the original parent Y-3 myeloma. The oval core is located eccentrically and occupies a significant part of the cytoplasm.

Культуральные свойства. Среда для культивирования - среда Игла MEM в модификации Дульбекко, содержащая увеличенные количества аргинина до 200 мг/л, фолиевой кислоты до 12 мг/л, аспарагина до 36 мг/л, а также 0,05 мМ 2-меркаптоэтанола и 20 мМ HEPES. Содержание фетальной сыворотки в ростовой среде - 10%. В среду также добавляют 80 мкг/мл сульфата гентамицина. Гибридома 122H9 растет в виде монослойно-суспензионной культуры. Посевная доза 100-200 тыс.клеток в миллилитре, кратность рассева - 1:5-1:6 через 3-4 дня.Cultural properties. The culture medium is Dulbecco's MEM Needle medium containing increased amounts of arginine up to 200 mg / l, folic acid up to 12 mg / l, asparagine up to 36 mg / l, as well as 0.05 mM 2-mercaptoethanol and 20 mM HEPES. The content of fetal serum in the growth medium is 10%. 80 μg / ml gentamicin sulfate is also added to the medium. Hybridoma 122H9 grows as a monolayer suspension culture. A sowing dose of 100-200 thousand cells per milliliter, the sowing rate is 1: 5-1: 6 after 3-4 days.

Культивирование гибридомы в организме животного. Самок крыс Lou (ГНЦ ВБ "Вектор") сенсибилизируют внутрибрюшинным введением 5 мл вазелинового масла или пристана. Через 2-4 недели животным вводят 10 млн гибридных клеток. Асцитическая опухоль формируется через 10-12 дней. От одного животного можно получить 20-50 мл асцитической жидкости. Гибридома прививается в 100% случаев.The cultivation of hybridomas in the body of the animal. Female rats Lou (SSC VB "Vector") are sensitized by intraperitoneal administration of 5 ml of paraffin oil or pristan. After 2-4 weeks, 10 million hybrid cells are injected into the animals. Ascitic tumor forms in 10-12 days. From one animal, 20-50 ml of ascitic fluid can be obtained. Hybridoma is vaccinated in 100% of cases.

Характеристика полезного продукта. Типирование гибридомных иммуноглобулинов проведено методом иммунодиффузии по Оухтерлони. МКА относятся к классу IgG. Они специфически взаимодействуют с белком 12,8 кДа (ген 214L) вируса эктромелии в реакции иммуноблоттинга. Титр МКА в асците составляет не менее 1:2200000 в ИФА с ВЭ. Стабильная продукция МКА сохраняется на протяжении не менее 10 пассажей in vitro. Из одного миллилитра асцитической жидкости можно получить 5-7 мг очищенных моноклональных антител. Штамм стабильно продуцирует МКА на протяжении одного месяца непрерывного перевивания в культуре.The characteristic of a useful product. Typing of hybridoma immunoglobulins was carried out by Ouchterloni immunodiffusion method. MCAs belong to the class of IgG. They specifically interact with the 12.8 kDa protein (214L gene) of ectromelia virus in an immunoblot reaction. The titer of MCA in ascites is at least 1: 2200000 in ELISA with VE. Stable MCA production is maintained for at least 10 passages in vitro. From one milliliter of ascitic fluid, 5-7 mg of purified monoclonal antibodies can be obtained. The strain stably produces MCA for one month of continuous inoculation in culture.

Криоконсервирование. Среда для замораживания: среда ДМЕМ(М) - 50%, фетальная сыворотка - 40%, диметилсульфоксид - 10%. Клеточную суспензию в объеме 0,5-1 мл переносят в пластиковые криопробирки и помещают в пенопластовый контейнер с толщиной стенок 1-1,5 см. Контейнер вносят в пары жидкого азота. Через сутки пробирки переносят в жидкий азот. Размораживание проводят, опуская пробирки в воду с температурой 37-41°С. Клетки разводят в 5 мл среды ДМЕМ(М) и центрифугируют при 1000 об/мин. Осадок ресуспендируют в ростовой среде и переносят в культуральные флаконы в концентрации 200-300 тысяч клеток в миллилитре. Жизнеспособность после размораживания составляет 60-80% (окраска 0,25% трипановым синим).Cryopreservation. Freezing medium: DMEM (M) medium - 50%, fetal serum - 40%, dimethyl sulfoxide - 10%. A cell suspension in a volume of 0.5-1 ml is transferred into plastic cryovials and placed in a foam container with a wall thickness of 1-1.5 cm. The container is introduced into a pair of liquid nitrogen. After a day, the tubes are transferred to liquid nitrogen. Defrosting is carried out by lowering the tubes into water at a temperature of 37-41 ° C. Cells are diluted in 5 ml of DMEM (M) medium and centrifuged at 1000 rpm. The precipitate is resuspended in a growth medium and transferred to culture bottles at a concentration of 200-300 thousand cells per milliliter. The viability after thawing is 60-80% (staining with 0.25% trypan blue).

Методика получения заявляемого штамма The method of obtaining the inventive strain

Штамм гибридных клеток Rattus norvegicus 122H9 получают следующим образом.The strain of hybrid cells Rattus norvegicus 122H9 receive as follows.

Самок крыс LOU, массой 180-200 г (виварий ГНЦВБ «Вектор») иммунизируют по схеме, которая приведена ниже в таблице 1.Female rats LOU, weighing 180-200 g (vivarium GNTSVB "Vector") are immunized according to the scheme that is shown below in table 1.

Для слияния используют 150 млн селезеночных клеток и 50 млн клеток Y3. Смесь клеток центрифугируют, супернатант тщательно удаляют и к клеточному осадку добавляют 0,4 мл 50% раствора полиэтиленгликоля (ПЭГ) с молекулярной массой 2000. Смесь центрифугируют 15 мин при 600g. После 3-5 мин паузы слой ПЭГ медленно разбавляют раствором версена, после чего осадок ресуспендируют и суспензию центрифугируют. Клетки распределяют в пять культуральных 96-луночных микроплат по 100 мкл в лунку. Селекцию гибридных клеток проводят в среде НАТ, состоящей из питательной среды ДМЕМ(М), в которую добавлены 15% фетальной сыворотки коров, 0,1 мМ гипоксантина, 0,04 мМ тимидина и 0,01мМ аминоптерина.150 million spleen cells and 50 million Y3 cells are used for fusion. The mixture of cells is centrifuged, the supernatant is thoroughly removed and 0.4 ml of a 50% solution of polyethylene glycol (PEG) with a molecular weight of 2000 is added to the cell pellet. The mixture is centrifuged for 15 minutes at 600g. After 3-5 min of pause, the PEG layer is slowly diluted with a versene solution, after which the precipitate is resuspended and the suspension is centrifuged. Cells are dispensed into five 96-well culture plates at 100 μl per well. Selection of hybrid cells is carried out in a NAT medium consisting of DMEM (M) nutrient medium, to which 15% fetal bovine serum, 0.1 mM hypoxanthine, 0.04 mM thymidine and 0.01 mM aminopterin are added.

Таблица 1
Схема иммунизации
Table 1
Immunization schedule
ДниDays Раствор для разведения антигенаAntigen Dilution Solution Доза антигена (мкг/крысу)Dose of antigen (mcg / rat) Область инъекцииInjection area 00 Полный адьювант ФрейндаFreund's complete adjuvant 7,57.5 ВнутрибрюшинноIntraperitoneally 77 Неполный адьювант ФрейндаIncomplete Freund's Adjuvant 7,57.5 ВнутрибрюшинноIntraperitoneally 1010 Физиологический растворSaline 7575 ВнутривенноIntravenously 11eleven Физиологический растворSaline 7575 ВнутривенноIntravenously 14fourteen ГибридизацияHybridization (Забор селезенки)(Spleen Fence)

Отбор специфических гибридов проводят методом иммуноферментного анализа (ИФА), используя в качестве антигена 200 нг очищенного вируса эктромелии. Места неспецифического связывания насыщают 0,5% раствором казеина (ICN). Затем в лунки переносят по 100 мкл культуральной среды исследуемых гибридом и инкубируют 45 мин (при 37°С). После инкубации лунки промывают 3-5 раз физиологическим раствором, содержащим 0,05% твин-20 (Sigma). В планшеты вносят по 100 мкл антивидового конъюгата (иммуноглобулины кролика против иммуноглобулинов крысы, меченные пероксидазой хрена) и выдерживают 45 мин при 37°С. Затем планшеты промывают и проводят ферментативную реакцию окрашивания. Результаты анализа определяют на спектрофотометре MULTISCAN при длине волны 492 нм.Specific hybrids are selected by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), using 200 ng of purified ectromelia virus as antigen. Non-specific binding sites are saturated with a 0.5% casein solution (ICN). Then, 100 μl of the culture medium of the studied hybridomas are transferred to the wells and incubated for 45 min (at 37 ° C). After incubation, the wells are washed 3-5 times with saline containing 0.05% tween-20 (Sigma). 100 μl of antispecific conjugate (rabbit immunoglobulins against rat immunoglobulins labeled with horseradish peroxidase) were added to the tablets and incubated for 45 min at 37 ° C. Then the tablets are washed and an enzymatic staining reaction is carried out. The analysis results are determined on a MULTISCAN spectrophotometer at a wavelength of 492 nm.

Гибридный штамм 122Н9 дважды клонируют методом предельных разведений, переводят в массовую культуру и замораживают в жидком азоте. The 122H9 hybrid strain was cloned twice by limiting dilution, transferred to mass culture and frozen in liquid nitrogen.

Приведенные ниже примеры подробно раскрывают сущность изобретения.The following examples detail the essence of the invention.

Пример 1. Культивирование штамма гибридных клеток Rattus norvegicus 122H9, секретирующего МКА против ортопоксвирусов, в организме крыс LOU. Example 1. Cultivation of a strain of hybrid cells Rattus norvegicus 122H9, secreting MCA against orthopoxviruses in rats LOU.

Культивируемые клетки 122H9, находящиеся в логарифмической фазе роста, стерильно центрифугируют 5-10 мин при 1000 об/мин на центрифуге ОПН-3. Надосадок удаляют, а осадок суспензируют в стерильном растворе Эрла или Хенкса. Предварительно крысам LOU (ГНЦВБ "Вектор"), весом 180-200 г, не менее чем за 10 дней до прививки гибридомных клеток вводят внутрибрюшинно по 5 мл вазелинового масла или пристана. Суспензию культивируемых клеток штамма-продуцента 122H9, приготовленную, как описано выше, прививают животным внутрибрюшинно, 10 млн клеток в 1-3 мл среды без сыворотки или раствора Эрла. Через 10-14 дней после прививки гибридомных клеток образуется 15-30 мл асцитической жидкости, которая используется для получения препаратов моноклональных антител.The cultured 122H9 cells in the logarithmic growth phase are centrifuged sterile for 5-10 minutes at 1000 rpm in an OPN-3 centrifuge. The supernatant is removed and the precipitate is suspended in a sterile Earl or Hanks solution. Preliminarily, rats LOU (GNTSVB "Vector"), weighing 180-200 g, at least 10 days before vaccination of hybridoma cells, are injected intraperitoneally with 5 ml of paraffin oil or pristan. A suspension of cultured cells of producer strain 122H9, prepared as described above, is inoculated intraperitoneally with animals, 10 million cells in 1-3 ml of medium without serum or Earle's solution. 10-14 days after vaccination of hybridoma cells, 15-30 ml of ascitic fluid is formed, which is used to obtain monoclonal antibody preparations.

Пример 2. Выделение очищенных моноклональных антител, продуцируемых штаммом гибридных клеток Rattus norvegicus 122H9, из асцитической жидкости. Example 2. The selection of purified monoclonal antibodies produced by a strain of hybrid cells Rattus norvegicus 122H9, from ascites fluid.

Один объем асцитической жидкости, содержащей МКА, разводят 4 объемами 0,6М ацетатного буфера (0,04М лимонной кислоты, 0,2М натрия ацетата), рН 4,0 и доводят рН до 4,5 с помощью 0,1N раствора едкого натра. К разведенному образцу добавляют по каплям, с постоянным перемешиванием, каприловую кислоту из расчета 25 мкл на 1 мл раствора и инкубируют 30 мин при +4°С. Затем центрифугируют 30 мин при 8000g и осадок удаляют, а надосадок смешивают с 10-кратным фосфатно-солевым буфером (ФСБ) и устанавливают рН 7,4 раствором 1,0 N едкого натра. Равный объем (V:V) насыщенного раствора сульфата аммония добавляют к этому раствору, встряхивают и выдерживают ночь при 4°С или 30 мин при 20-25°С. Центрифугируют 15 мин при 5000 g.One volume of ascitic fluid containing MCA is diluted with 4 volumes of 0.6 M acetate buffer (0.04 M citric acid, 0.2 M sodium acetate), pH 4.0, and adjusted to pH 4.5 with 0.1 N sodium hydroxide solution. Caprylic acid is added dropwise to the diluted sample, with constant stirring, at the rate of 25 μl per 1 ml of solution and incubated for 30 min at + 4 ° C. Then it is centrifuged for 30 min at 8000 g and the precipitate is removed, and the supernatant is mixed with 10-fold phosphate-buffered saline (PBS) and the pH is adjusted to 7.4 with a solution of 1.0 N sodium hydroxide. An equal volume (V: V) of a saturated solution of ammonium sulfate is added to this solution, shaken and incubated overnight at 4 ° C or 30 min at 20-25 ° C. Centrifuge for 15 min at 5000 g.

Надосадок сливают, а осадок ресуспендируют в ФСБ, рН 7,4. Остатки сульфата аммония удаляют путем диализа против 50-100 объемов ФСБ, рН 7,4.The supernatant is drained and the precipitate is resuspended in PBS, pH 7.4. Residues of ammonium sulfate are removed by dialysis against 50-100 volumes of FSB, pH 7.4.

Пример 3. Определение методом ИФА перекрестного взаимодействия МКА, продуцируемых штаммом Rattus norvegicus 122H9, с ортопоксвирусами.Example 3. Determination by ELISA of the cross-interaction of MAB produced by the Rattus norvegicus 122H9 strain with orthopoxviruses.

ИФА проводился на полистироловых планшетах; антиген (очищенный вирус) сорбировали в ФСБ, рН 7,4, в объеме 100 мкл/лунку. Места неспецифического связывания насыщали 45 минут при 37°С 0,5% раствором казеина в буфере ТСБ-Твин (0.145 М хлористого натрия, 20 mM Трис-HCl, 5 mM PMSF (Sigma), 0.1% Tween-20 (Serva), pH 7.4). В планшеты вносили МКА (45 минут при 37°С) и связывание МКА с антигеном выявляли меченными пероксидазой антителами против иммуноглобулинов крысы. Далее добавляли хромоген, 0,1% О-фенилендиамин, в цитратно-фосфатном буфере (0.2 М лимонной кислоты, 0.5 М Na2HPO3, рН 5.0) с 0.03% перекиси водорода. Останавливали реакцию добавлением 100 мкл на лунку 1N HCl и измеряли оптическую плотность образцов на спектрофотометре "Multiscan" (Финляндия) с использованием светофильтра с максимумом пропускания 492 нм. В качестве отрицательного и положительного контроля использовали соответственно гомологичные неиммунную (нормальную) и гипериммунную сыворотки.ELISA was carried out on polystyrene tablets; the antigen (purified virus) was sorbed in FSB, pH 7.4, in a volume of 100 μl / well. Non-specific binding sites were saturated for 45 minutes at 37 ° C with a 0.5% casein solution in TSB-Tween buffer (0.145 M sodium chloride, 20 mM Tris-HCl, 5 mM PMSF (Sigma), 0.1% Tween-20 (Serva), pH 7.4). MABs were added to the plates (45 minutes at 37 ° C) and binding of MABs to the antigen was detected with peroxidase-labeled antibodies against rat immunoglobulins. Next, a chromogen, 0.1% O-phenylenediamine, was added in citrate-phosphate buffer (0.2 M citric acid, 0.5 M Na 2 HPO 3 , pH 5.0) with 0.03% hydrogen peroxide. The reaction was stopped by adding 100 μl per well of 1N HCl and the optical density of the samples was measured on a Multiscan spectrophotometer (Finland) using a light filter with a maximum transmission of 492 nm. As a negative and positive control, homologous non-immune (normal) and hyperimmune serums were used, respectively.

Пример 4. Выявление в иммуноблоте взаимодействия МКА, продуцируемых штаммом-продуцентом Rattus norvegicus 122H9, с белком 12,8 кДа (ген 214L) вируса эктромелии, штамм К-1.Example 4. Detection in the immunoblot of the interaction of MCAs produced by the producer strain Rattus norvegicus 122H9 with a 12.8 kDa protein (gene 214L) of ectromelia virus, strain K-1.

Вирусные белки после 12% ПААГ-электрофореза были перенесены на нитроцеллюлозную мембрану (Millipore, США). Места неспецифического связывания насыщали 0,5% раствором казеина в буфере ТСБ-Твин (0.145 М хлористого натрия, 20 mM Трис-HCl, 5 mM PMSF (Sigma), 0.1% Tween-20 (Serva), pH 7.4) 2 часа при 37°С. Затем отдельные полоски мембраны инкубировали с моноклональными антителами 4 часа при 20-22°С. Специфическое связывание антител, взаимодействующих с вирусными белками, выявляли с помощью конъюгата антител против IgG крысы, меченных пероксидазой хрена. В качестве отрицательного контроля использовали Y3-асцитическую жидкость в разведении 1/5000, в качестве положительного контроля сыворотку к ВЭ в разведении 1/5000 от крыс, используемых для получения гибридом. Результаты представлены на чертеже, касающиеся выявления методом иммуноблота белков ВЭ (К-1), взаимодействующих с антителами иммунной сыворотки против ортопоксвирусов и МКА 122Н9. Где цифрами представлены следующие обозначения:Viral proteins after 12% PAAG electrophoresis were transferred to the nitrocellulose membrane (Millipore, USA). Non-specific binding sites were saturated with a 0.5% casein solution in TSB-Tween buffer (0.145 M sodium chloride, 20 mM Tris-HCl, 5 mM PMSF (Sigma), 0.1% Tween-20 (Serva), pH 7.4) 2 hours at 37 ° C. Then, individual membrane strips were incubated with monoclonal antibodies for 4 hours at 20-22 ° C. The specific binding of antibodies interacting with viral proteins was detected using a conjugate of anti-rat IgG antibodies labeled with horseradish peroxidase. As a negative control, Y3 ascitic fluid in 1/5000 dilution was used, as a positive control, serum to VE in 1/5000 dilution from rats used to obtain hybridomas was used. The results are presented in the drawing, concerning the identification by the method of immunoblot protein VE (K-1), interacting with antibodies of the immune serum against orthopoxviruses and MKA 122N9. Where the numbers represent the following notation:

1 - антисыворотка крысы к ВЭ (К-1) (1/5000), нередуцирующие условия;1 - rat antiserum to VE (K-1) (1/5000), non-reducing conditions;

2 - антисыворотка крысы к ВЭ (К-1) (1/5000), редуцирующие условия;2 - rat antiserum to VE (K-1) (1/5000), reducing conditions;

3 - МКА 122Н9(1/5000), нередуцирующие условия;3 - MKA 122N9 (1/5000), non-reducing conditions;

4 - МКА 122Н9(1/5000), редуцирующие условия;4 - MKA 122N9 (1/5000), reducing conditions;

5 - асцитическая жидкость крысиной миеломы Y3(1/5000);5 - ascitic fluid of rat myeloma Y3 (1/5000);

6 - нормальная сыворотка мыши (1/5000).6 - normal mouse serum (1/5000).

В скобках указаны разведения используемых препаратов. Справа указано местоположение маркерных белков 10, 20, 30, 40, 50, 60,70 кДа, слева обозначены белки вируса эктромелии.Dilutions of the preparations used are indicated in parentheses. The location of marker proteins 10, 20, 30, 40, 50, 60.70 kDa is indicated on the right, and the proteins of the ectromelia virus are indicated on the left.

Пример 5. Изучение нейтрализующей активности МКА 122Н9 на культуре клеток Vero При постановке реакции нейтрализации (РН) использовали вирусы осповакцины (штамм ЛИВП) и натуральной оспы (штамм Индия За). Работа с вирусом натуральной оспы проводилась в условиях максимальной защиты (BSL-4) с использованием защитных костюмов с положительным давлением в сотрудничающем центре ВОЗ, Кольцово. Новосибирской области. Характер проводимых работ с вирусом натуральной оспы предварительно был одобрен ВОЗ. Инфекционность вируса определяли методом бляшек на культуре клеток Vero. Вируснейтрализующую активность МКА определяли в монослое культуры клеток Vero, в 96-луночных планшетах, используя асцитическую жидкость или очищенные МКА. Серийные двукратные разведения МКА в поддерживающей среде (50 мкл) вносили в лунку планшета, содержащую 100 мкл поддерживающей среды, после чего вносили 1000 БОЕ инфекционного вируса в объеме 50 мкл. Начальное разведение МКА в лунке составляло 1:40-1:50 для ВОВ и 1:400-1:500 для ВНО. Планшеты инкубировали в течение 3-х суток в СО2-инкубаторе при 37°С с ВОВ и при 35°С с вирусом натуральной оспы. После этого клетки прокрашивали 0,1% раствором кристаллического фиолетового с 10% формалина и количество бляшек учитывали визуально. О наличии нейтрализации судили по отсутствию или снижению количества бляшек. В качестве положительного контроля использовали моноклональное антитело J2D5, любезно предоставленное Ichihashi Y [4], в качестве отрицательного - асцитическую жидкость NSO миеломы. Результаты показаны в таблице 2. Как видно из представленных данных, МКА 122Н9, секретируемые штаммом-продуцентом Rattus norvegicus НИИМБ-281, ингибировали размножение ВОВ и ВНО в культуре клеток Vero.Example 5. The study of the neutralizing activity of MCA 122H9 in a Vero cell culture. The neutralization reaction (PH) was used for vaccinia viruses (strain LIVP) and smallpox (strain India Za). Working with smallpox virus was carried out under conditions of maximum protection (BSL-4) using protective suits with positive pressure in a WHO collaborating center, Koltsovo. Novosibirsk region. The nature of the work with variola virus was previously approved by WHO. Virus infectivity was determined by plaque on a Vero cell culture. Virus neutralizing activity of MAB was determined in a monolayer of Vero cell culture, in 96-well plates, using ascitic fluid or purified MAB. Serial two-fold dilutions of the MCA in the support medium (50 μl) were added to the well of the plate containing 100 μl of the supporting medium, after which 1000 PFU of the infectious virus were added in a volume of 50 μl. The initial dilution of the MCA in the hole was 1: 40-1: 50 for WWII and 1: 400-1: 500 for VNO. The plates were incubated for 3 days in a CO 2 incubator at 37 ° C with BOB and at 35 ° C with smallpox virus. After this, the cells were stained with 0.1% crystalline violet solution with 10% formalin and the number of plaques was taken into account visually. The presence of neutralization was judged by the absence or decrease in the number of plaques. J2D5 monoclonal antibody, kindly provided by Ichihashi Y [4], was used as a positive control, and ascites NSO myeloma was used as a negative control. The results are shown in Table 2. As can be seen from the data presented, MAB 122H9 secreted by the producer strain Rattus norvegicus NIIMB-281 inhibited the reproduction of BOB and VNO in Vero cell culture.

Таблица 2
Определение нейтрализующей активности МКА 122Н9
table 2
Determination of the neutralizing activity of MKA 122H9
МКАICA Белок-мишень (кДа)Target Protein (kDa) Вирус-иммуногенImmunogen virus Титр МКА в РН (обр. величины)*.The titer of the MCA in the PH (arr. Values) *. ВОВWWII ВНОUPO 100%one hundred% ≥50%≥50% ≥50%≥50% 122Н9122H9 12,812.8 ВЭRenewable energy 50fifty 1200012000 500500 * - в % указано подавление бляшкообразования.* - in%, suppression of plaque formation is indicated.

Вышеприведенные свойства штамма гибридных клеток Rattus norvegicus 122Н9 позволяют заключить, что впервые на основе крысиной миеломы получена гибридома Rattus norvegicus 122H9 - продуцент перекрестно-реактивных нейтрализующих МКА к белкам ортопоксвирусов. Штамм гибридных клеток обеспечивает получение крысиных иммуноглобулинов IgG класса в количестве 7,5 мг очищенных антител из миллилитра асцитической жидкости. Использование для получения моноклональных антител гибридомы крысиного происхождения имеет свои преимущества перед мышиными гибридомами в объеме продуцируемой асцитической жидкости. Известно, что выход асцитической жидкости от одной мыши составляет от 3 до 5 мл. Использование штамма гибридных клеток Rattus norvegicus 122H9 позволяет получать 15-30 мл асцитической жидкости от одного животного. Очищенные МКА 122H9 специфично реагировали в ИФА с вирусом эктромелии (титр МКА составлял 1:2200000) и выявляли в иммуноблоте белок 12,8 кДа ВЭ, штамм К-1, (ген 214L). полученные МКА проявляли также перекрестную реактивность в ИФА с вирусами осповакцины, оспы коров и натуральной оспы. Кроме того, как показали результаты реакции нейтрализации, МКА 122H9 обладали вируснейтрализующей активностью против ВОВ и ВНО (штамм Индия За), наиболее патогенного представителя ортопоксвирусов. Вышеуказанные свойства штамма Rattus norvegicus 122H9 отличают его от всех описанных ранее гибридом, продуцирующих МКА к белкам ортопоксвирусов.The above properties of the Rattus norvegicus 122H9 hybrid cell strain allow us to conclude that for the first time on the basis of rat myeloma, the Rattus norvegicus 122H9 hybridoma, a producer of cross-reactive neutralizing MABs to orthopoxvirus proteins, was obtained. The strain of hybrid cells provides the production of rat IgG class immunoglobulins in the amount of 7.5 mg of purified antibodies from a milliliter of ascitic fluid. The use of rat-derived hybridomas to obtain monoclonal antibodies has its advantages over murine hybridomas in the amount of ascitic fluid produced. It is known that the yield of ascitic fluid from one mouse is from 3 to 5 ml. Using a strain of hybrid cells Rattus norvegicus 122H9 allows you to receive 15-30 ml of ascitic fluid from one animal. Purified MAB 122H9 specifically reacted in ELISA with ectromelia virus (MKA titer was 1: 2200000) and 12.8 kDa VE protein, strain K-1, (gene 214L) was detected in the immunoblot. the obtained MCAs also showed cross-reactivity in ELISA with vaccinia, cowpox and smallpox viruses. In addition, as shown by the results of the neutralization reaction, MKA 122H9 had a virus-neutralizing activity against BOB and VNO (strain India Za), the most pathogenic representative of orthopoxviruses. The above properties of the strain Rattus norvegicus 122H9 distinguish it from all previously described hybridomas producing MAB to proteins of orthopoxviruses.

Источники информацииInformation sources

1. Baker O.R., Bray M., Huggins J.W.//Antiviral. Research - 2003 - Vol.53 - P.13-23.1. Baker O.R., Bray M., Huggins J.W. // Antiviral. Research - 2003 - Vol. 53 - P.13-23.

2. Czemy C.P., Johann S., Holzle L., Meyer H. //Virology - 1994 - Vol.200, N2 - P.764-77.2. Czemy C.P., Johann S., Holzle L., Meyer H. // Virology - 1994 - Vol.200, N2 - P.764-77.

3. Dallo S, Rodriguez JF, Esteban M.A //Virology - 1987. - Vol.159, №2 - P.423-32.3. Dallo S, Rodriguez JF, Esteban M.A. // Virology - 1987. - Vol.159, No. 2 - P.423-32.

4. Ichihashi Y., Oie M. //Virology - 1988. - Vol.163, №1 - P.133-44.4. Ichihashi Y., Oie M. // Virology - 1988. - Vol.163, No. 1 - P.133-44.

5. Hooper J.W., Schmaljohn A.I., Schmaljohn C.S.//Prophylactic and therapeutic monoclonal antibodies. - Patent Number: 6, 451, 309 В2 (US)., Sep. 17, 2002.5. Hooper J.W., Schmaljohn A.I., Schmaljohn C.S. // Prophylactic and therapeutic monoclonal antibodies. - Patent Number: 6, 451, 309 B2 (US)., Sep. 17, 2002.

6. Meyer H, Osterrieder N, Czemy CP. // Virology - 1994 - Vol.200, №2 - P.778-83.6. Meyer H, Osterrieder N, Czemy CP. // Virology - 1994 - Vol.200, No. 2 - P.778-83.

Claims (1)

Штамм гибридных клеток Rattus norvegicus 122H9, депонированный в НИИ клеточных культур ГНЦ ВБ "Вектор" под №НИИМБ-281, используемый для получения перекрестно-реактивных нейтрализующих моноклональных антител против ортопоксвирусов, патогенных для человека.The strain of hybrid cells Rattus norvegicus 122H9, deposited in the Research Institute of cell cultures of the SSC VB "Vector" under No. NIIMB-281, used to obtain cross-reactive neutralizing monoclonal antibodies against orthopoxviruses, pathogenic for humans.
RU2004126520/13A 2004-09-01 2004-09-01 STRAIN OF HYBRID CULTURING Rattus norvegicus 122H9 CELLS WHICH IS PRODUCER OF CROSS-REACTIVE NEUTRALIZING MONOCLONAL ANTIBODIES AGAINST PATHOGENIC FOR HUMAN ORTHOPOXVIRUSES RU2281327C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2004126520/13A RU2281327C2 (en) 2004-09-01 2004-09-01 STRAIN OF HYBRID CULTURING Rattus norvegicus 122H9 CELLS WHICH IS PRODUCER OF CROSS-REACTIVE NEUTRALIZING MONOCLONAL ANTIBODIES AGAINST PATHOGENIC FOR HUMAN ORTHOPOXVIRUSES

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2004126520/13A RU2281327C2 (en) 2004-09-01 2004-09-01 STRAIN OF HYBRID CULTURING Rattus norvegicus 122H9 CELLS WHICH IS PRODUCER OF CROSS-REACTIVE NEUTRALIZING MONOCLONAL ANTIBODIES AGAINST PATHOGENIC FOR HUMAN ORTHOPOXVIRUSES

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2004126520A RU2004126520A (en) 2006-02-10
RU2281327C2 true RU2281327C2 (en) 2006-08-10

Family

ID=36049760

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2004126520/13A RU2281327C2 (en) 2004-09-01 2004-09-01 STRAIN OF HYBRID CULTURING Rattus norvegicus 122H9 CELLS WHICH IS PRODUCER OF CROSS-REACTIVE NEUTRALIZING MONOCLONAL ANTIBODIES AGAINST PATHOGENIC FOR HUMAN ORTHOPOXVIRUSES

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2281327C2 (en)

Also Published As

Publication number Publication date
RU2004126520A (en) 2006-02-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2018139611A (en) Human cytomegalovirus neutralizing antibodies and use thereof
US4594325A (en) High fusion frequency fusible lymphoblastoid cell line
Halk et al. Production of monoclonal antibodies against three ilarviruses and alfalfa mosaic virus and their use in serotyping
JPH03236794A (en) Preparation of human monoclonal antibody
MX2011000542A (en) Human cytomegalovirus neutralising antibodies and use thereof.
NO782081L (en) PROCEDURE FOR PREPARING ANTIBODIES
SE460907B (en) HUMAN MYEL CELL LINE, COMPOSITION CONTAINING SUCH CELLS, AND PROCEDURE FOR CELL LINE PREPARATION
RU2281327C2 (en) STRAIN OF HYBRID CULTURING Rattus norvegicus 122H9 CELLS WHICH IS PRODUCER OF CROSS-REACTIVE NEUTRALIZING MONOCLONAL ANTIBODIES AGAINST PATHOGENIC FOR HUMAN ORTHOPOXVIRUSES
CN102181402B (en) Monoclonal antibody of high-pathogenicity porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus and preparation method thereof
CN101481724A (en) Preparation and use of antibacterial peptide PMAP-23 monoclonal antibody
RU2265658C2 (en) Strain of hybrid cells of animal mus musculus l, 9e2, used in preparing monoclonal antibody to west nile virus protein e of strain wnv/leiv-vig99-27889
CN106754742A (en) The hybridoma cell strain of microcapsule algae toxin resistant antibody and its secreted monoclonal antibody
RU2395575C1 (en) STRAIN OF HYBRID ANIMAL CELLS Mus musculus L - PRODUCER OF MONOCLONAL ANTIBODIES FOR EXPOSING VP40 PROTEIN OF MARBURG VIRUS, (Popp STRAIN) (VERSIONS), MONOCLONAL ANTIBODY PRODUCED BY SAID STRAIN (VERSIONS) AND SET FOR "SANDWICH" FORMAT IMMUNOENZYMOMETRIC SYSTEM FOR EXPOSING VP40 MATRIX PROTEIN OF MARBURG VIRUS (Popp STRAIN)
SU1742325A1 (en) Strain of hybridous cultured mammalian cells mus musculis l - a producer of monoclonal antibodies to choleric enterotoxin of eltor biotype
Boyer et al. Characterization and large production of human monoclonal antibodies against the HIV-1 envelope
RU2535982C1 (en) Strain of cultivated hybrid animal cells mus musculus l cchfv vd-1-producer of monoclonal antibody 4g4/b6 to virus of crimean-congo hemorrhagic fever (cchf)
RU2771288C1 (en) STRAIN OF HYBRID ANIMAL CELLS MUS MUSCULUS 2E1B5 - PRODUCER OF A MONOCLONAL ANTIBODY AGAINST THE RECEPROT-BINDING DOMAIN OF PROTEIN S OF THE SARS-CoV-2 VIRUS
RU2393219C1 (en) Strain of hybrid animal cells mus musculus l5f10-producer of monoclonal antibodies used for detecting pp65 protein of human cytomegalovirus
RU1801117C (en) Method of monoclonal antibody preparation to monoclonal antibody to the protein of human lymphocyte t4, culturing cell of hybridoma jti -if3 - a producer of monoclonal antibody to monoclonal antibody to the protein of human lymphocyte t4, culturing cell of hybridoma jti -if3-e5 - a producer of monoclonal antibody to monoclonal
RU2092554C1 (en) Strain of the hybrid cultured animal cell mus musculus l - a producer of monoclonal antibody raised to aujeszky's disease virus, strain uniiev-18b
RU1791453C (en) Strain of hybridous cultured cells mus musculus l used for preparation of monoclonal antibodies to membrane-bound and soluble forms of human h-antigen
RU2004589C1 (en) Strain of hybrid cultured cells mus musculus - a producer of monoclonal antibodies used for ibaraki disease diagnosis
Schots et al. Production of monoclonal antibodies
RU2257414C1 (en) Strain of mammalian hybrid cell c3/s-3e5 of mus musculus l. producing monoclonal antibody to bernet's coxiellas
RU2143488C1 (en) Strain of hybrid cultured cells of animal mus musculus l for preparing monoclonal antibodies raised to protein 105 kda of excretory-secretory antigen of human hepatic trematode opisthorchis felineus

Legal Events

Date Code Title Description
PD4A Correction of name of patent owner
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20140902