RU2254145C1 - Wound coat based on collagen-chitosan complex - Google Patents

Wound coat based on collagen-chitosan complex Download PDF

Info

Publication number
RU2254145C1
RU2254145C1 RU2003130390/15A RU2003130390A RU2254145C1 RU 2254145 C1 RU2254145 C1 RU 2254145C1 RU 2003130390/15 A RU2003130390/15 A RU 2003130390/15A RU 2003130390 A RU2003130390 A RU 2003130390A RU 2254145 C1 RU2254145 C1 RU 2254145C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
chitosan
collagen
wound
skin
cells
Prior art date
Application number
RU2003130390/15A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2003130390A (en
Inventor
И.Н. Большаков (RU)
И.Н. Большаков
Н.С. Горбунов (RU)
Н.С. Горбунов
Е.С. Шамова (RU)
Е.С. Шамова
А.В. Еремеев (RU)
А.В. Еремеев
А.Г. Сизых (RU)
А.Г. Сизых
Е.В. Сурков (RU)
Е.В. Сурков
С.М. Насибов (RU)
С.М. Насибов
В.П. Малый (RU)
В.П. Малый
Н.А. Сетков (RU)
Н.А. Сетков
Original Assignee
"Красноярская государственная медицинская академия Министерства здравоохранения Российской Федерации" (ГОУ ВПО КРАСГМА МИНЗДРАВА РОССИИ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by "Красноярская государственная медицинская академия Министерства здравоохранения Российской Федерации" (ГОУ ВПО КРАСГМА МИНЗДРАВА РОССИИ) filed Critical "Красноярская государственная медицинская академия Министерства здравоохранения Российской Федерации" (ГОУ ВПО КРАСГМА МИНЗДРАВА РОССИИ)
Priority to RU2003130390/15A priority Critical patent/RU2254145C1/en
Publication of RU2003130390A publication Critical patent/RU2003130390A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2254145C1 publication Critical patent/RU2254145C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Abstract

FIELD: medicine, in particular experimental and clinical surgery and transplantation methods.
SUBSTANCE: claimed wound coat in form of sponge, gel, colloid solution, film contains chitosan with deacetylation ratio of 0.95-0.99 and molecular weight of 10-1000 kDa in form of chitosan ascorbate containing (in 1 g of dry chitosan): ascorbic acid 1.8 g; as well as chondroitinsulfuric acid 500-100 mg; hyaluronic acid 10-100 mg; heparin 2.5-5 mg, and serum cattle growth factor 11-220 mum. Wound of present invention is useful in reduction of skin wound defects.
EFFECT: more effective method for reduction of skin wound defects.
2 tbl, 1 ex, 1 dwg

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной и клинической хирургии, трансплантологии, и может быть использовано для восстановления полнослойных кожных дефектов различной площади в качестве искусственной матрицы дермально-эпидермального эквивалента кожи.The invention relates to medicine, namely to experimental and clinical surgery, transplantology, and can be used to restore full-layer skin defects of various sizes as an artificial matrix of the dermal-epidermal skin equivalent.

Известны способы лечения плоских гранулирующих вялотекущих неинфицированных и инфицированных ран в стадии регенерации, ожогов II и IIIa степеней, трофических язв, пролежней, временного закрытия ожоговых ран IIIб степени после хирургической обработки с целью их подготовки к аутодермопластике, донорских участков, а также ногтевого ложа после удаления ногтей, пораженных онихомикозом, с помощью раневых покрытий на основе хитозана и коллагена, таких как «Коллахит» (RU 2108114 (13) С1; А 61 L 15/28. Бюл. №10, 10.04,98), на основе альгината натрия (Чумаков А.А., Комнова З.Д.// Журнал «Стоматология». - 1984. - №4, с.28; Чумаков А.А., Дмитриева Л.А., Комнова З.Д. и др.// Журнал «Стоматология». - 1985. - №5, с.6-9) с включенными в них различными антисептическими, анестезирующими, противомикробными, стимулирующими препаратами. Известные раневые покрытия обладают хорошим ранозаживляющим эффектом, при комбинации их с антисептическими препаратами, например фурагином, диоксидином, хлоргексидином или анестетиками, например анилокаином, тримеклином или шиконином. Эти известные раневые покрытия относятся к медицинским материалам на основе природных полисахаридов, содержащих интерполимерный полиэлектролитный комплекс катионного или амфотерного линейного полисахарида с анионным линейньм полисахаридом, химически сшитый полифункциональными альдегидами или эпоксисоединениями, который обладает гемостатическим и репаративным действием. Медицинский материал может быть композицией для создания различных типов перевязочных средств (повязок, раневых покрытий, перевязочных пакетов, тампонов) в форме гелей, пленок, губок, коллоидных растворов, которые дополнительно могут содержать составы для лечения ран, ожогов, лекарственные средства, дерматологические композиции, растительные экстракты, а также служить основой для косметических масок и накладок для компрессов.Known methods for treating flat granulating sluggish, uninfected and infected wounds in the regeneration stage, burns of the II and IIIa degrees, trophic ulcers, pressure sores, temporary closure of burn wounds of the III degree after surgical treatment in order to prepare them for autodermoplasty, donor sites, and also the nail bed after removal nails affected by onychomycosis using wound dressings based on chitosan and collagen, such as Collachite (RU 2108114 (13) C1; A 61 L 15/28. Bull. No. 10, 04/10/98), based on sodium alginate ( Chumakov A.A., Komnov and Z.D.// Journal "Dentistry." - 1984. - No. 4, p. 28; Chumakov A.A., Dmitrieva L.A., Komnova Z.D. and others. // Journal "Dentistry". - 1985. - No. 5, pp. 6-9) with various antiseptic, anesthetizing, antimicrobial, stimulating drugs included in them. Known wound dressings have a good wound healing effect when combined with antiseptic drugs, such as furagin, dioxidine, chlorhexidine or anesthetics, such as anilokain, trimeklin or shikonin. These well-known wound dressings relate to medical materials based on natural polysaccharides containing an interpolymer polyelectrolyte complex of a cationic or amphoteric linear polysaccharide with an anionic linear polysaccharide chemically cross-linked by polyfunctional aldehydes or epoxy compounds, which has a hemostatic and reparative effect. Medical material can be a composition for creating various types of dressings (dressings, wound dressings, dressing bags, tampons) in the form of gels, films, sponges, colloidal solutions, which may additionally contain compositions for treating wounds, burns, drugs, dermatological compositions, plant extracts, as well as serve as the basis for cosmetic masks and pads for compresses.

Однако при использовании этих раневых покрытий жизнеспособность и пролиферативная активность клеток фибропластического ряда в стендовых опытах и в ране невысока, что отражается на качественных и количественных характеристиках новообразованной соединительной ткани, которые не соответствуют строению нормальной здоровой кожи. Следовательно, эти известные полиэлектролитные композиции не могут быть использованы в качестве искусственной матрицы дермально-эпидермального эквивалента кожи. Введение фибробластов животных в эти конструкции в стендовых исследованиях показывает, что интенсивность синтетических процессов в ядрах клеток недостаточно высокая. Это означает, что предлагаемая для клеток полиэлектролитная подложка не создает достаточно благоприятные условия для их размножения и дифференцировки. Благоприятные условия жизнедеятельности фибробластов как источников коллагена - волокнистой основы соединительной ткани - при восстановлении раневого дефекта являются причиной формирования правильной архитектоники околорубцовой и рубцовой зон репарации. Введение известных коллаген-хитозановых конструкций в раневые дефекты сокращает сроки их заживления, однако не приводит к строго ориентированной волокнистой структуре соединительной ткани, полному восстановлению сосудистой архитектоники в глубоких слоях дермы, формированию полного объема молодой грануляционной ткани, полноценной эпителизации.However, when using these wound dressings, the vitality and proliferative activity of the fibroplastic cells in the bench experiments and in the wound is low, which affects the qualitative and quantitative characteristics of the newly formed connective tissue, which do not correspond to the structure of normal healthy skin. Therefore, these known polyelectrolyte compositions cannot be used as an artificial matrix of the dermal-epidermal skin equivalent. The introduction of animal fibroblasts into these structures in bench studies shows that the intensity of synthetic processes in the nuclei of cells is not high enough. This means that the polyelectrolyte substrate proposed for cells does not create sufficiently favorable conditions for their reproduction and differentiation. Favorable living conditions of fibroblasts as sources of collagen - the fibrous base of connective tissue - during the restoration of a wound defect are the reason for the formation of the correct architectonics of the pericardial and scar repair zones. The introduction of known collagen-chitosan structures into wound defects shortens the healing time, however, does not lead to a strictly oriented fibrous structure of the connective tissue, the complete restoration of vascular architectonics in the deep layers of the dermis, the formation of the full volume of young granulation tissue, and full epithelization.

Цель изобретения - улучшить качественные и количественные характеристики восстанавливаемых раневых дефектов кожи рубцовой и околорубцовой зон, близкой к нормальной здоровой.The purpose of the invention is to improve the qualitative and quantitative characteristics of the restored wound skin defects of the cicatricial and pericubic zones, close to normal healthy.

Цель достигают за счет того, что хитозановая составляющая содержит хитозан со степенью деацетилирования 0,95-0,99 и молекулярной массой от 100 до 1000 кДа в виде аскорбата хитозана при содержании аскорбиновой кислоты 1,8 г/г сухого хитозана, а также хондроитинсерную кислоту 5-100 мг/г сухого хитозана, гиалуроновую кислоту 10-100 мг/г сухого хитозана, гепарин 2,5-5 мг/г сухого хитозана и сывороточный фактор роста крупного рогатого скота 11-220 мкг/г сухого хитозана.The goal is achieved due to the fact that the chitosan component contains chitosan with a degree of deacetylation of 0.95-0.99 and a molecular weight of 100 to 1000 kDa in the form of chitosan ascorbate with an ascorbic acid content of 1.8 g / g dry chitosan, as well as chondroitin acid 5-100 mg / g dry chitosan, hyaluronic acid 10-100 mg / g dry chitosan, heparin 2.5-5 mg / g dry chitosan and serum cattle growth factor 11-220 μg / g dry chitosan.

Для доказательств роли аскорбиновой кислоты в пролиферативных потенциях кожных клеток - фибробластов были использованы пленки и губки «Коллахит», содержащие КоллахитП - коллаген-хитозановая пленка; коллахит-ФА(п) - пленка с фурагином калия и анестетиком анилокаином; Коллахит-Ш(п) - пленка с антисептиком шиконином; Коллахит-ФА - губка с фурагином калия и анестетиком анилокаином; Коллахит-Ш - губка с антисептиком шиконином; Коллахит Ас(п) - пленка с присутствием ацетата хитозана; Коллахит Аск(п) - пленка с присутствием аскорбата хитозана; Коллахит Ac - губка с присутствием ацетата хитозана; Коллахит Аск - губка с присутствием аскорбата хитозана. В качестве плацебо для клеток использована стеклянная подложка.To prove the role of ascorbic acid in the proliferative potentials of skin cells - fibroblasts, “Collachite” films and sponges containing CollachiteP — collagen-chitosan film; collahite-FA (p) - a film with potassium furagin and anilestic anilokain; Collahit-Sh (p) - film with antiseptic shikonin; Collahit-FA - a sponge with potassium furagin and anilestic anilokain; Collahit-Sh - sponge with antiseptic shikonin; Collachite Ac (p) - a film with the presence of chitosan acetate; Collahite Ask (p) - a film with the presence of chitosan ascorbate; Collachite Ac - sponge with the presence of chitosan acetate; Collahite Ask - a sponge with the presence of chitosan ascorbate. A glass substrate was used as a placebo for the cells.

В исследовании в качестве тест-объекта использовались клетки первичной культуры фибробластов мыши, обладающих свойствами нормальных нетрансформированных клеток. В связи с тем, что важнейшим показателем жизнеспособности клеток является их матричная активность, при оценке цитотоксичности коллаген-хитозановых композиций анализировали динамику синтеза ДНК, характеризующую пролиферацию клеток. Известно, что матричные процессы наиболее интенсивно протекают в клетках, стимулированных к пролиферации из состояния покоя, такие клетки наиболее чувствительны к повреждающим воздействиям цитотоксических факторов. Клетки культивировали на среде Игла, модифицированной Дульбекко (DMEM) с добавлением 10% эмбриональной телячьей сыворотки (ЭТС), 1,0 мМ L-глютамина, 10 мМ HEPES буфера и добавлением антибиотиков (пенициллин, 100 ед/мл, стрептомицин, 100 мкг/мл, или канамицин сульфат, 100 мкг/мл) (Flow Lab, Mc Clean, VA, USA или BDSL, UK) (полная среда) в гумидной атмосфере с 4-5% СО2, при 37°С. Пассирование клеток проводили с помощью 0,25% раствора трипсина, разбавленного 0,02% раствором Версена (1:1). Между пассажами производили одноразовую смену питательной среды на свежую. Культуру покоящихся клеток получали на среде с добавлением 10% сыворотки. Через 24-48 ч после посева клеток среду удаляли, клетки трижды промывали теплым (37°С) раствором Хенкса и помещали в среду с 0,2% или 0,5% ЭТС. Срок инкубации клеток в среде с низким содержанием сыворотки в течение 3 суток считался достаточным для получения покоящихся клеток (за 24 ч инкубации 3H-тимидин включало 3-7% клеток). Стимуляцию клеточной пролиферации проводили путем смены среды на свежую, содержащую 10% ЭТС и 3H-тимидин или 3H-уридин (3,7 кБк/флакон).In the study, cells of the primary culture of mouse fibroblasts with the properties of normal non-transformed cells were used as a test object. Due to the fact that the most important indicator of cell viability is their matrix activity, when assessing the cytotoxicity of collagen-chitosan compositions, the dynamics of DNA synthesis characterizing cell proliferation was analyzed. It is known that matrix processes occur most intensively in cells stimulated to proliferate from a resting state; such cells are most sensitive to the damaging effects of cytotoxic factors. Cells were cultured on Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) supplemented with 10% fetal calf serum (ETS), 1.0 mM L-glutamine, 10 mM HEPES buffer and antibiotics (penicillin, 100 units / ml, streptomycin, 100 μg / ml, or kanamycin sulfate, 100 μg / ml) (Flow Lab, Mc Clean, VA, USA or BDSL, UK) (complete medium) in a humid atmosphere with 4-5% CO 2 , at 37 ° C. Cells were passaged using a 0.25% trypsin solution diluted with a 0.02% Versen solution (1: 1). Between the passages made a one-time change of the nutrient medium to fresh. A culture of resting cells was obtained on medium supplemented with 10% serum. After 24-48 hours after plating, the medium was removed, the cells were washed three times with warm (37 ° C) Hanks solution and placed in a medium with 0.2% or 0.5% ETS. A period of incubation of cells in a medium with a low serum content for 3 days was considered sufficient to obtain resting cells (after 24 hours of incubation 3 H-thymidine included 3-7% of the cells). Stimulation of cell proliferation was carried out by changing the medium to fresh one containing 10% ETS and 3 H-thymidine or 3 H-uridine (3.7 kBq / vial).

Получали пленки из биополимеров или пористые пластины (губки), используя лиофильную технологию. Образцы пленок и губок стерилизовались радиационным способом, нарезались равными фрагментами размерами 3×10 см и помещались во флаконы Кареля, в которые потом наслаивалась суспензия клеток. Клетки культивировали сутки в полной среде ДМЕМ, затем переводили в состояние пролиферативного покоя, в котором удерживали трое суток. После чего меняли на среду с 10% ЭТС, содержащую 3H-тимидин (3,7 кБк/мл). Клетки культивировали в течение 0-16 часов, после чего снимали с подложки раствором Версена, наносили на фильтры GF, последовательно промывали фосфатным буфером, ТХУ, этанолом. Включившуюся радиоактивность просчитывали в толуольном сцинтилляторе на счетчике «Бета-1».Films from biopolymers or porous plates (sponges) were obtained using lyophilic technology. Samples of films and sponges were sterilized by the radiation method, cut into equal fragments 3 × 10 cm in size and placed in Karel vials, into which a cell suspension was then layered. Cells were cultured for a day in a complete DMEM medium, then transferred to a state of proliferative dormancy, in which they were held for three days. Then it was changed to a medium with 10% ETS containing 3 H-thymidine (3.7 kBq / ml). Cells were cultured for 0-16 hours, after which they were removed from the substrate with Versen's solution, applied to GF filters, washed successively with phosphate buffer, TCA, ethanol. The included radioactivity was calculated in a toluene scintillator on a Beta-1 counter.

Изучение динамики синтеза ДНК (см. рис.1; примечание: обозначения 0-16 - часы культивирования клеток фибробластов) при стимуляции покоящихся клеток линии NIH3T3, культивируемых на Коллахите, показало, что большинство исследуемых полимерных композиций не подавляли пролиферативную активность клеток. Анализ активности и синтеза ДНК в фибробластах установил, что только на композициях «Коллахит ФА» в виде губчатых пластин и пленок не происходило значительного увеличения включения 3H-тимидина. Наиболее ярко выраженный эффект на пролиферативную активность клеток проявляла композиция с хитозаном-аскорбатом. Культивирование клеток на пленке коллахита через 16 часов инкубации приводило к достоверному увеличению пролиферативной активности культуры фибробластов и соответствовало 7215 имп/мин, на пленке коллахита с включением антисептика фурагина и анестетика анилокаина 1257 имп/мин, на пленке коллахита с включением антисептика шиконина (продукт из морских бурых водорослей) 7154 имп/мин, на пленке коллахита-ацетата 7567 имп/мин, на пленке коллахита-аскорбата 9105 имп/мин (Рис.1). Исследование пролиферативной активности фибробластов на губчатом материале коллахита выявило стимулирующий эффект при включении в коллаген-хитозановую композицию аскорбиновой кислоты. Пролиферативная активность клеток соответствовала 8900 имп/мин по сравнению с пролиферацией на стекле 6900 имп/мин, что составило 29% прироста. Таким образом, включение в гель хитозана аскорбиновой кислоты и последующее получение коллаген-хитозанового комплекса по известной технологии приводит к получению губки или пленки, способной создавать благоприятные условия жизнедеятельности клеток фибропластического ряда.A study of the dynamics of DNA synthesis (see Fig. 1; note: designations 0-16 are the hours of cultivation of fibroblast cells) upon stimulation of resting NIH3T3 cells cultured on Collachite showed that most of the studied polymer compositions did not inhibit cell proliferative activity. An analysis of the activity and DNA synthesis in fibroblasts found that only on the Collachite FA compositions in the form of spongy plates and films did not a significant increase in 3 H-thymidine incorporation occur. The most pronounced effect on the proliferative activity of cells was shown by the composition with chitosan-ascorbate. The cultivation of cells on a collachite film after 16 hours of incubation led to a significant increase in the proliferative activity of the fibroblast culture and corresponded to 7215 imp / min, on a collachite film with an antiseptic furagin and anesthetic anilokain 1257 imp / min, on a collachite film with an antiseptic shikonin (a product from marine brown algae) 7154 imp / min, on the film of collachite acetate 7567 imp / min, on the film of collachite-ascorbate 9105 imp / min (Fig. 1). The study of the proliferative activity of fibroblasts on the spongy material of collachite revealed a stimulating effect when ascorbic acid is included in the collagen-chitosan composition. The proliferative activity of the cells corresponded to 8900 cpm / min compared with the proliferation on glass of 6900 cpm / min, which amounted to 29% increase. Thus, the inclusion of ascorbic acid in a chitosan gel and the subsequent production of a collagen-chitosan complex by known technology results in a sponge or film capable of creating favorable conditions for the life of fibroplastic cells.

В целях доказательтства роли молекулярной массы хитозана, присутствия в Коллахите мукополисахаридов, сывороточного фактора роста крупного рогатого скота были исследованы 7 видов губки Коллахит, состоящих из 1% бычьего коллагена (9 частей), 2% аскорбата хитозана молекулярной массы 100 и 1000 кДа (степень деацетилирования 0,95 и 0,99 соответственно)(1 часть), с включением в них хондроитинсульфата (ХС) (5-100 мг/г сухого хитозана), гиалуроновой кислоты (ГК) (10-100 мг/г сухого хитозана), гепарина (Г) (1-2,5 мг/г сухого хитозана) и сывороточного фактора роста (СФР) (11 и 220 мкг/г сухого хитозана). Коллаген-хитозановая губка была изготовлена согласно ТУ 9393-003-26252986-2000 с последующей холодной вакуумной лиофилизацией, гамма-стерилизацией. Полученные образцы губок были исследованы в качестве подложек в первичной культуре пролиферирующих фибробластов мыши.In order to prove the role of the molecular weight of chitosan, the presence of mucopolysaccharides in collachite, and the serum growth factor of cattle, 7 species of Collachite sponge consisting of 1% bovine collagen (9 parts), 2% chitosan ascorbate with a molecular weight of 100 and 1000 kDa (degree of deacetylation) were studied 0.95 and 0.99, respectively) (1 part), including chondroitin sulfate (CS) (5-100 mg / g dry chitosan), hyaluronic acid (HA) (10-100 mg / g dry chitosan), heparin (D) (1-2.5 mg / g dry chitosan) and serum growth factor (SFR) (11 and 220 μg / g dry chitosan). Collagen-chitosan sponge was made according to TU 9393-003-26252986-2000 with subsequent cold vacuum lyophilization, gamma sterilization. The obtained sponge samples were investigated as substrates in the primary culture of proliferating mouse fibroblasts.

Первичную культуру фибробластов мыши пассировали во флаконах Кареля (культивировали) в среде ДМЕМ, содержащей глутамин, канамицин 100 мкг/мл, 10% ЭТС в течение 3 суток. Затем клетки трижды отмывали чистой средой от сыворотки и помещали в среду с 0,2% ЭТС (эмбриональная телячья сыворотка). В этой среде клетки находились 3 суток (переводились в состояние пролиферативного покоя для синхронизации культуры). После этого клетки снимали с флаконов раствором Версена и высевались во флаконы в среду с 10% ЭТС, содержащей радиоактивный предшественник ДНК - 3Н-тимидин (объемная активность 3,7 кБк/мл) (стимулировали пролиферацию), в которые помещали исследуемые образцы. В этих условиях клетки культивировали 16 часов, после чего отмывали фосфатным буфером от среды, 5% ТХУ и фиксировали спиртом. Включившуюся радиоактивность подсчитывали в толуольном сцинтилляторе на сетчике Бета-1 (Рис.2. Включение 3H-тимидина в первичной культуре пролиферирующих фибробластов мыши, культивируемых на различных субстратах в течение 16 часов; варианты 1-6. Примечание: образцы: ХС, ГК, Г и СФР рассчитаны на 100 мл 2% геля аскорбата хитозана:The primary mouse fibroblast culture was passaged in Karel vials (cultured) in DMEM medium containing glutamine, kanamycin 100 μg / ml, 10% ETS for 3 days. Then the cells were washed three times with pure medium from serum and placed in medium with 0.2% ETS (fetal calf serum). The cells were in this environment for 3 days (transferred to a state of proliferative dormancy to synchronize the culture). After that, the cells were removed from the vials with Versen's solution and plated in vials on 10% ETS medium containing the radioactive DNA precursor 3 H-thymidine (volume activity 3.7 kBq / ml) (stimulated proliferation) into which the test samples were placed. Under these conditions, the cells were cultured for 16 hours, after which they were washed with phosphate buffer from the medium, 5% TCA and fixed with alcohol. The included radioactivity was counted in a toluene scintillator on a Beta-1 reticulum (Fig. 2. Inclusion of 3 H-thymidine in the primary culture of proliferating mouse fibroblasts cultured on various substrates for 16 hours; options 1-6. Note: samples: cholesterol, hepatitis A, G and SFR are calculated on 100 ml of 2% chitosan ascorbate gel:

1 - хитозан СД 0,95, MM 100 кДа +10 мг хондроитинсульфат, 200 мг гиалуроновая кислота, 22 мкг СФР,1 - chitosan SD 0.95, MM 100 kDa + 10 mg chondroitin sulfate, 200 mg hyaluronic acid, 22 μg SFR,

2 - хитозан СД 0,95, MM 100 кДа +10 мг хондроитинсульфат, 200 мг гиалуроновая кислота,2 - chitosan SD 0.95, MM 100 kDa + 10 mg chondroitin sulfate, 200 mg hyaluronic acid,

3 - хитозан СД 0,95, MM 100 кДа +10 мг хондроитинсульфат, 200 мг гиалуроновая кислота,3 - chitosan SD 0.95, MM 100 kDa + 10 mg chondroitin sulfate, 200 mg hyaluronic acid,

4 - хитозан СД 0,99, MM 1000 кДа +10 мг хондроитинсульфат, 200 мг гиалуроновая кислота,4 - chitosan SD 0.99, MM 1000 kDa + 10 mg chondroitin sulfate, 200 mg hyaluronic acid,

5 - хитозан СД 0,99, MM 1000 кДа +200 мг хондроитинсульфат, 20 мг гиалуроновая кислота,5 - chitosan SD 0.99, MM 1000 kDa +200 mg chondroitin sulfate, 20 mg hyaluronic acid,

6 - хитозан СД 0,99, MM 1000 кДа +200 мг хондроитинсульфат, 20 мг гиалуроновая кислота, 5 мг гепарин, 22-440 мкг СФР).6 - chitosan DM 0.99, MM 1000 kDa +200 mg chondroitin sulfate, 20 mg hyaluronic acid, 5 mg heparin, 22-440 μg SFR).

Таким образом, результаты исследований указывают на то, что молекулярная масса хитозана 100 и 1000 кДа, а также изменение степени деацетилирования (СД) полимера на несколько единиц (от 0,95 до 0,99) практически не влияли на уровень пролиферативной активности фибробластов. Включение в Коллахит СФР в образцах 1 и 6 приводило к росту пролиферации клеток в 1,6-2 раза. Присутствие гепарина в 6 образце увеличивало уровень пролиферации клеток на 32% по сравнению с образцом 1. Увеличение концентрации СФР с 22 до 440 мкг/100 мл 2% геля хитозана достоверно не изменяло величину синтеза ДНК. Таким образом, присутствие в Коллахите аскорбиновой, хондроитинсерной, гиалуроновой кислот, гепарина, а также сывороточного фактора роста создает благоприятные условия для пролиферации клеток фибропластического ряда, максимально стимулируя в ядрах синтез ДНК.Thus, the results of the studies indicate that the molecular mass of chitosan 100 and 1000 kDa, as well as a change in the degree of deacetylation (DM) of the polymer by several units (from 0.95 to 0.99) practically did not affect the level of fibroblast proliferative activity. The inclusion of CFR in Collachite in samples 1 and 6 led to an increase in cell proliferation by 1.6–2 times. The presence of heparin in sample 6 increased cell proliferation by 32% compared to sample 1. An increase in the concentration of SFR from 22 to 440 μg / 100 ml of a 2% chitosan gel did not significantly change the amount of DNA synthesis. Thus, the presence of ascorbic, chondroitinsulfuric, hyaluronic acids, heparin, as well as serum growth factor in Collachite creates favorable conditions for the proliferation of fibroplastic cells, maximally stimulating DNA synthesis in the nuclei.

Восстановление полнослойных плоскостных дефектов кожи и их качественная и количественная характеристика были изучены с использованием коллахитовых губок, содержащих аскорбиновую, хондроитинсерную, гиалуроновую кислоты, гепарин и сывороточный фактор роста крупного рогатого скота. The restoration of full-layer planar skin defects and their qualitative and quantitative characteristics were studied using collachite sponges containing ascorbic, chondroitinseric, hyaluronic acid, heparin and serum cattle growth factor.

Способ осуществляют следующим образом. На белых крысах популяции Wistar (животные были разделены на 4 серии по 5 особей в каждой) массой 200 г наносились в межлопаточной области полнослойные плоскостные дефекты кожи с подкожным соединительнотканным комплексом площадью 400 мм2 с соблюдением правил асептики. После остановки кровотечения из раны последняя закрывалась одним из вариантов коллаген-хитозановой губки. Контрольная группа животных получала на раневую поверхность сухую марлевую повязку. Контроль репарации кожи осуществлялся на 26-е сутки с помощью анализа парафиновых срезов двух участков кожи: околорубцового и рубцового, окрашенных гематоксилином Эрлиха и эозином, пикрофуксином по Ван Гизон в модификации Н.М. Dodds (1985) (коллагеновые волокна и фибробласты), резорцином и фуксином по Вейгерту с тонированием световым зеленым по А.П.Сорокину (1964) (эластические волокна), импрегнацией азотнокисльм серебром по Карупу (ретикулярные волокна).The method is as follows. On white rats of the Wistar population (animals were divided into 4 series of 5 animals each) weighing 200 g were applied in the interscapular region, full-layer planar skin defects with a subcutaneous connective tissue complex of 400 mm 2 in compliance with aseptic rules. After stopping bleeding from the wound, the latter was closed by one of the variants of collagen-chitosan sponge. The control group of animals received a dry gauze dressing on the wound surface. Skin repair was monitored on the 26th day by analyzing paraffin sections of two skin areas: pericarp and scar, stained with Ehrlich hematoxylin and eosin, van Gieson picrofuxin modified by N.M. Dodds (1985) (collagen fibers and fibroblasts), resorcinol and fuchsin according to Weigert with tinting light green according to A.P. Sorokin (1964) (elastic fibers), impregnation with nitric acid silver according to Karup (reticular fibers).

Морфологический анализ показал, что в околорубцовой зоне при применении раневого покрытия «Коллахит» с включенными мукополисахаридами и сывороточным фактором роста полностью восстанавливается подкожный соединительнотканный комплекс к 26-му послеоперационному дню. Данная композиция приводит к образованию соединительной ткани, в объеме равному нормальному ее содержанию, а также восстанавливает объем сосудов, превышающий показатели группы животных, леченных раневым покрытием «Коллахит». В сосочковом слое собственно кожи полностью восстанавливается объем коллагеновых волокон, а ретикулярные волокна имеют диаметр, соответствующий аналогичному слою интактной кожи. При этом отмечается отсутствие клеточно-воспалительной реакции в околорубцовой зоне сосочкового слоя. В сетчатом слое дермы регистрируются более толстые ретикулярные волокна, чем в группе, где применяли раневое покрытие «Коллахит», что указывает на их зрелость в момент отпадения первичного струпа. Волокнистые элементы всех слоев представленной зоны имеют направление, схожее со строением интактной кожи.Morphological analysis showed that in the pericubic zone, when applying the Collachite wound dressing with included mucopolysaccharides and serum growth factor, the subcutaneous connective tissue complex is completely restored by the 26th postoperative day. This composition leads to the formation of connective tissue, in a volume equal to its normal content, and also restores the volume of blood vessels that exceeds the performance of the group of animals treated with wound cover "Collachite." In the papillary layer of the skin itself, the volume of collagen fibers is completely restored, and the reticular fibers have a diameter corresponding to a similar layer of intact skin. In this case, there is a lack of cell-inflammatory reaction in the pericardial zone of the papillary layer. In the reticular layer of the dermis, thicker reticular fibers are recorded than in the group where the Collachite wound cover was applied, which indicates their maturity at the time the primary scab falls off. The fibrous elements of all layers of the presented zone have a direction similar to the structure of intact skin.

В зоне рубца при использовании коллаген-хитозановой конструкции с добавлением мукополисахаридов и фактора роста полностью восстанавливается объем кровеносных сосудов, и их показатели превосходят данные, где применяли для заживления раневого дефекта покрытие «Коллахит». Лучшая васкуляризация способствует более раннему закрытию раневого дефекта с образованием зрелой соединительной ткани, близкой к строению нормальной кожи. Также в этой группе отмечается образование сосочкового слоя в зоне рубца к 26 суткам послеоперационного периода с наличием зрелых ретикулярных и коллагеновых волокон и отсутствием воспалительной реакции. Сетчатый слой рассматриваемой зоны толщиной, соответствующей нормальному строению аналогичного участка кожи, имеет больший объем ретикулярных и коллагеновых волокон, причем количество последних соответствует интактной коже. Клеточно-воспалительная реакция в группе крыс, где использовали раневое покрытие «Коллахит», с включенными компонентами соединительной ткани не выражена, чем в рубцовой зоне при лечении раневой композицией «Коллахит». При этом во всех слоях отмечается более плотная укладка волокнистых элементов, а ход волокон строго ориентирован поперечно оси тела и перпендикулярно друг другу.In the scar zone, when using the collagen-chitosan construct with the addition of mucopolysaccharides and growth factor, the volume of blood vessels is completely restored, and their indicators exceed the data where “Collachite” coating was used to heal a wound defect. Better vascularization promotes earlier closure of the wound defect with the formation of mature connective tissue, close to the structure of normal skin. Also in this group, the formation of the papillary layer in the scar zone by 26 days of the postoperative period with the presence of mature reticular and collagen fibers and the absence of an inflammatory reaction is noted. The mesh layer of the zone in question with a thickness corresponding to the normal structure of a similar skin area has a larger volume of reticular and collagen fibers, and the number of the latter corresponds to intact skin. The cell-inflammatory reaction in the group of rats where the Collachite wound cover was used, with connective tissue components included, was not expressed than in the scar zone during treatment with the Collachite wound composition. Moreover, in all layers a denser packing of the fibrous elements is noted, and the fiber path is strictly oriented transversely to the body axis and perpendicular to each other.

В контрольной группе животных, лечение ран которых осуществлялось наложением сухой марлевой повязки, морфологическая картина новообразовавшейся соединительной ткани характеризуется отсутствием подкожного соединительнотканного комплекса, недостаточньм развитием кровеносных сосудов в околорубцовой зоне и зоне рубца, присутствием в малом количестве тонких ретикулярных волокон и толстых коллагеновых волокон в обоих исследуемых участках. Причем волокнистые структуры к 26-м суткам послеоперационного периода не имеют четкой направленности, характерной для соединительной ткани кожного покрова. При этом как в околорубцовой, так и в рубцовой зонах к моменту заживления кожного дефекта регистрируется яркая картина клеточно-воспалительной реакции.In the control group of animals, the treatment of wounds of which was carried out by applying a dry gauze dressing, the morphological picture of the newly formed connective tissue is characterized by the absence of subcutaneous connective tissue complex, insufficient development of blood vessels in the pericardial and scar areas, and the presence of a small number of thin reticular fibers and thick collagen fibers in both studied plots. Moreover, fibrous structures by the 26th day of the postoperative period do not have a clear focus characteristic of the connective tissue of the skin. In this case, both in the pericardial and in the cicatricial zones, by the time the skin defect heals, a vivid picture of the cell-inflammatory reaction is recorded.

Пример. Белым крысам популяции Wistar (каждая группа составляла 5 животных) массой 200 г под нейролептанальгезией (кетамин+дроперидол) наносились в межлопаточной области полнослойные плоскостные дефекты кожи с подкожным соединительнотканным комплексом площадью 400 мм2 с соблюдением правил асептики. После остановки кровотечения из раны последнюю закрывали одним из вариантов коллаген-хитозановой губки. Контрольная группа животных получала на раневую поверхность сухую марлевую повязку. Распределение животных по сериям представлено в таблице 1.Example. Populations of white rats Wistar (each group was 5 animals) of 200 g under neuroleptic analgesia (ketamine + droperidol) deposited in the interscapular region polnosloynye planar defects of the skin with subcutaneous connective complex area of 400 mm 2 under aseptic conditions. After stopping bleeding from the wound, the latter was closed with one of the variants of collagen-chitosan sponge. The control group of animals received a dry gauze dressing on the wound surface. The distribution of animals in series is presented in table 1.

Таблица 1
Структурная схема серийного распределения экспериментального материала
Table 1
Block diagram of the serial distribution of experimental material
Группы исследованияStudy groups Состав раневого покрытияThe composition of the wound cover Кол-во животныхNumber of animals Контроль 1Control 1 Интактные животные.Intact animals. 55 Контроль 2Control 2 Сухая марлевая повязка.Dry gauze dressing. 55 Контроль 3Control 3 Коллаген-хитозановый комплекс «Коллахит»Collagen-chitosan complex “Collachite” 55 Опыт 4Experience 4 «Коллахито+Г+ХС+ГК+СФР"Collahito + G + HS + GK + SFR 55

Контроль репарации кожи осуществлялся на 26-е сутки с помощью анализа парафиновых срезов кожных лоскутов вместе с подкожным соединительнотканным комплексом. В ходе исследования образцов кожи было выделено два гистологических ее участка (околорубцовый, на расстоянии 250 мкм по обе стороны от рубца, и собственно рубец), отличающихся по строению друг от друга и от интактной кожи, окрашенных гематоксилином Эрлиха и эозином, пикрофуксином по Ван Гизон в модификации Н.М.Dodds (1985) (коллагеновые волокона и фибробласты), резорцином и фуксином по Вейгерту с тонированием световьм зеленьм по А.П.Сорокину (1964) (эластические волокна), импрегнацией азотнокисльм серебром по Карупу (ретикулярные волокна). Результаты исследования представлены в таблице 2.Skin repair was monitored on the 26th day by analyzing paraffin sections of skin flaps along with the subcutaneous connective tissue complex. In the course of the study of skin samples, two histological sections of it were identified (perineal, at a distance of 250 μm on both sides of the scar, and the scar itself), differing in structure from each other and from intact skin, stained with Erlich hematoxylin and eosin, picrofuchsin according to Van Gieson as modified by N.M. Dodds (1985) (collagen fibers and fibroblasts), resorcinol and fuchsin according to Weigert with tinted light greens according to A.P. Sorokin (1964) (elastic fibers), impregnation of nitric acid with silver according to Karup (reticular fibers). The results of the study are presented in table 2.

Figure 00000002
Figure 00000002

Figure 00000003
Figure 00000003

Таким образом, на 26-е сутки заживления раневого дефекта формирование качественной, близкой к нормальной здоровой, за счет правильной архитектоники волокнистых структур и межуточного матрикса, соединительной ткани, происходит за счет создания для клеток фибропластического ряда благоприятных условий жизнедеятельности на коллаген-хитозановой подложке, с добавлением мукополисахаридов и сывороточного фактора роста. Это подтверждается тем, что соединительная ткань в околорубцовой зоне в полной мере соответствует нормальному строению кожного покрова как в поверхностном, так и в глубоком ее слоях (на фиг. 1 изображен сосочковый и сетчатый слои околорубцовой кожи крыс. А: интактная кожа; В: околорубцовая зона на 26-е сутки послеоперационного периода при применении коллаген-хитозановой губки, содержащей Г+ХС+ГК+Г+СФР. Увел. 10×15. Окр. гематоксилином и эозином).Thus, on the 26th day of healing of a wound defect, the formation of a qualitative, close to normal healthy, due to the correct architectonics of the fibrous structures and the interstitial matrix, connective tissue, occurs due to the creation of favorable fibroplastic cells living conditions on a collagen-chitosan substrate, with the addition of mucopolysaccharides and serum growth factor. This is confirmed by the fact that the connective tissue in the pericardial zone fully corresponds to the normal structure of the skin cover both in the superficial and deep layers (Fig. 1 shows the papillary and reticular layers of the peritoneal skin of rats. A: intact skin; B: pericardial zone on the 26th day of the postoperative period when using collagen-chitosan sponge containing G + XC + HA + G + SFR. Enlarged 10 × 15. Surroundings with hematoxylin and eosin).

Качественные и количественные характеристики коллагеновых волокон исследуемых слоев в околорубцовой зоне к моменту заживления ран не имеют отличий от интактной кожи (на фиг. 2 изображены коллагеновые волокна сетчатого слоя кожи крыс. А: кожа интактных животных; В: околорубцовая зона кожи крыс на 26-е сутки послеоперационного периода при применении коллаген-хитозановой губки, содержащей ХС+ГК+Г+СФР. Увел. 10×15. Окр. пикрофуксином и гематоксилином по Ван-Гизону).The qualitative and quantitative characteristics of the collagen fibers of the studied layers in the pericubic zone by the time of wound healing do not differ from intact skin (Fig. 2 shows the collagen fibers of the reticular layer of rat skin. A: skin of intact animals; B: circumarbic area of rat skin on the 26th day of the postoperative period when using a collagen-chitosan sponge containing cholesterol + HC + G + G + SFR. Increased 10 × 15. Surroundings with picrofuxin and hematoxylin according to Van Gieson).

Ретикулярные волокна по своим морфологическим параметрам в околорубцовой зоне схожи с нормальной здоровой кожей в группе, где использовали раневое покрытие «Коллахит» с присоединенными мукополисахаридами и фактором роста (на фиг. 3 изображены ретикулярные волокна сетчатого слоя кожи крыс. А: кожа интактных животных; В: околорубцовая зона кожи крыс на 26-е сутки послеоперационного периода при применении коллаген-хитозановой губки, содержащей ХС+ГК+Г+СФР. Увел. 10×15. Окр. азотнокислым серебром по Карупу).Reticular fibers in their morphological parameters in the pericubic zone are similar to normal healthy skin in the group where the Collachite wound dressing with attached mucopolysaccharides and growth factor was used (Fig. 3 shows the reticular fibers of the reticular layer of rat skin. A: skin of intact animals; B : near-hepatic zone of the skin of rats on the 26th day of the postoperative period when applying a collagen-chitosan sponge containing cholesterol + HC + G + G + SFR. Enlarged 10 × 15. Surrounding with nitric silver according to Karup).

Применение коллаген-хитозановой конструкции с содержанием мукополисахаридов и сывороточного фактора роста приводит к образованию сосочкового слоя на 26-е сутки заживления в отличие от других групп эксперимента. Полное восстановление кровеносных сосудов в зоне рубца приводит к раннему созреванию коллагеновых и ретикулярных волокон как в сосочковом, так и в сетчатом слоях дермы (на фиг. 4 изображены коллагеновые (А) и ретикулярные (В) волокна зоны рубца кожи крыс на 26-е сутки послеоперационного периода при применении коллаген-хитозановой губки, содержащей ХС+ГК+Г+СФР. Увел. 10×15. Окр. пикрофуксином и гематоксилином по Ван-Гизону; В- окр. азотнокислым серебром по Карупу).The use of a collagen-chitosan construct containing mucopolysaccharides and serum growth factor leads to the formation of a papillary layer on the 26th day of healing, in contrast to other groups of the experiment. Complete restoration of blood vessels in the scar area leads to the early maturation of collagen and reticular fibers in both the papillary and reticular layers of the dermis (Fig. 4 shows the collagen (A) and reticular (B) fibers of the rat skin scar zone on the 26th day of the postoperative period when using a collagen-chitosan sponge containing cholesterol + HC + G + G + SFR. Enlarged 10 × 15. Surroundings with picrofuxin and hematoxylin according to Van Gieson; B-surroundings with silver nitrate according to Karup).

Claims (1)

Раневое покрытие на основе коллаген-хитозанового комплекса для восстановления дефектов кожи в виде губки, геля, коллоидного раствора, пленки, отличающееся тем, что хитозановая составляющая содержит хитозан со степенью деацетилирования 0,95-0,99 и молекулярной массой 100-1000 kDa в виде аскорбата хитозана при содержании аскорбиновой кислоты 1,8 г/г сухого хитозана, а также хондроитинсерную кислоту - 5-100 мг/г сухого хитозана, гиалуроновую кислоту - 10-100 мг/г сухого хитозана, гепарин - 2,5-5 мг/г сухого хитозана и сывороточный фактор роста крупного рогатого скота - 11-220 мкг/г сухого хитозана.A wound coating based on a collagen-chitosan complex for repairing skin defects in the form of a sponge, gel, colloidal solution, film, characterized in that the chitosan component contains chitosan with a degree of deacetylation of 0.95-0.99 and a molecular weight of 100-1000 kDa in the form chitosan ascorbate with an ascorbic acid content of 1.8 g / g dry chitosan, as well as chondroitin acid - 5-100 mg / g dry chitosan, hyaluronic acid - 10-100 mg / g dry chitosan, heparin - 2.5-5 mg / g dry chitosan and serum horn growth factor about cattle - 11-220 mcg / g dry chitosan.
RU2003130390/15A 2003-10-14 2003-10-14 Wound coat based on collagen-chitosan complex RU2254145C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2003130390/15A RU2254145C1 (en) 2003-10-14 2003-10-14 Wound coat based on collagen-chitosan complex

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2003130390/15A RU2254145C1 (en) 2003-10-14 2003-10-14 Wound coat based on collagen-chitosan complex

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2003130390A RU2003130390A (en) 2005-04-10
RU2254145C1 true RU2254145C1 (en) 2005-06-20

Family

ID=35611389

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2003130390/15A RU2254145C1 (en) 2003-10-14 2003-10-14 Wound coat based on collagen-chitosan complex

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2254145C1 (en)

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011129719A2 (en) 2010-04-12 2011-10-20 Государственное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Красноярский Государственный Медицинский Университет Имени Профессора В. Ф. Воино-Ясенецкого Министерства Здравоохранения И Социального Развития Российской Федерации" Method for preparation of a cardiomyocyte matrix
WO2011142691A2 (en) 2010-04-06 2011-11-17 ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ "КРАСНОЯРСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ МЕДИЦИНСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ ПРОФЕССОРА В. Ф. ВОИНО-ЯСЕНЕЦКОГд МИНИСТЕРСТВА ЗДРАВООХРАНЕНИЯ И СОЦИАЛЬНОГО РАЗВИТИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ" Method for producing a neural matrix
RU2467767C1 (en) * 2011-05-10 2012-11-27 Эдуард Валентинович Фрончек Composition for wound treatment and products on its basis
CN103599558A (en) * 2013-07-16 2014-02-26 汪贤宗 Rapid hemostatic dressing and preparation method thereof
WO2017122216A1 (en) * 2016-01-14 2017-07-20 Amnivor Medicare Private Limited A process for extraction of collagen from fish scale and polyelectrolyte based bioactive super-absorbent materials
RU2710224C1 (en) * 2019-04-08 2019-12-25 Микулинская Елена Борисовна Haemostatic sponge based on mucopolysaccharides
RU2722744C1 (en) * 2019-03-26 2020-06-03 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр реабилитации и курортологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ НМИЦ РК Минздрава России) Organ-specific bioplastic material based on soluble form of stabilized extracellular matrix

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
КАЛИНИНА Т.Н. и др. Перевязочные средства на основе хитозана. II междунар. конф. "Современные подходы к разработке эффективных перевязочных средств, шовных материалов и полимерных имплантатов". - М., 1995, с. 123-124. *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011142691A2 (en) 2010-04-06 2011-11-17 ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ "КРАСНОЯРСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ МЕДИЦИНСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ ПРОФЕССОРА В. Ф. ВОИНО-ЯСЕНЕЦКОГд МИНИСТЕРСТВА ЗДРАВООХРАНЕНИЯ И СОЦИАЛЬНОГО РАЗВИТИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ" Method for producing a neural matrix
WO2011129719A2 (en) 2010-04-12 2011-10-20 Государственное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Красноярский Государственный Медицинский Университет Имени Профессора В. Ф. Воино-Ясенецкого Министерства Здравоохранения И Социального Развития Российской Федерации" Method for preparation of a cardiomyocyte matrix
RU2467767C1 (en) * 2011-05-10 2012-11-27 Эдуард Валентинович Фрончек Composition for wound treatment and products on its basis
CN103599558A (en) * 2013-07-16 2014-02-26 汪贤宗 Rapid hemostatic dressing and preparation method thereof
WO2017122216A1 (en) * 2016-01-14 2017-07-20 Amnivor Medicare Private Limited A process for extraction of collagen from fish scale and polyelectrolyte based bioactive super-absorbent materials
RU2722744C1 (en) * 2019-03-26 2020-06-03 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр реабилитации и курортологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ НМИЦ РК Минздрава России) Organ-specific bioplastic material based on soluble form of stabilized extracellular matrix
RU2710224C1 (en) * 2019-04-08 2019-12-25 Микулинская Елена Борисовна Haemostatic sponge based on mucopolysaccharides

Also Published As

Publication number Publication date
RU2003130390A (en) 2005-04-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Mir et al. Synthetic polymeric biomaterials for wound healing: a review
Kaur et al. Biomaterials-based regenerative strategies for skin tissue wound healing
Loh et al. Development of a bacterial cellulose-based hydrogel cell carrier containing keratinocytes and fibroblasts for full-thickness wound healing
US9089417B2 (en) Surgical device for skin therapy or testing
Kondo et al. Development of a wound dressing composed of hyaluronic acid and collagen sponge with epidermal growth factor
JP2834155B2 (en) Collagen flake body
ES2934158T3 (en) Bioactive collagen biomaterials and methods for their manufacture
ES2955029T3 (en) Wound healing medication
Yanagibayashi et al. Novel hydrocolloid-sheet as wound dressing to stimulate healing-impaired wound healing in diabetic db/db mice
JP2000511512A (en) Novel pharmaceuticals containing gelatin crosslinked with oxidized polysaccharide
Dill et al. Biological dermal templates with native collagen scaffolds provide guiding ridges for invading cells and may promote structured dermal wound healing
Yar et al. Deoxy-sugar releasing biodegradable hydrogels promote angiogenesis and stimulate wound healing
US20220040378A1 (en) Wound care treatment and methods of making and using same
CN110638836A (en) Application of water-soluble pearl powder in promoting wound healing
Arasteh et al. Efficient wound healing using a synthetic nanofibrous bilayer skin substitute in murine model
Ramakrishnan et al. Silk fibroin-based bioengineered scaffold for enabling hemostasis and skin regeneration of critical-size full-thickness heat-induced burn wounds
RU2254145C1 (en) Wound coat based on collagen-chitosan complex
Chen et al. The role of gel wound dressings loaded with stem cells in the treatment of diabetic foot ulcers
Tsai et al. Chitosan-microencapsulated rhEGF in promoting wound healing
Shibata et al. Development of new wound dressing composed of spongy collagen sheet containing dibutyryl cyclic AMP
Singh et al. Natural polymer-based thin film strategies for skin regeneration in lieu of regenerative dentistry
Fan et al. SB216763-loaded multifunctional copper-doped bioglass 3D printed scaffold promotes wound healing and functional skin regeneration
Azimi Lamouty et al. Fabrication of cell-laden AME-loaded collagen-based hydrogel promotes fibroblast proliferation and wound healing in vitro
CN111450312A (en) Hydrogel dressing capable of effectively promoting wound repair and regeneration and preparation method and application thereof
RU2372922C1 (en) Therapy of deep burn of skin

Legal Events

Date Code Title Description
QB4A Licence on use of patent

Effective date: 20070329

QB4A Licence on use of patent

Effective date: 20090317

PC41 Official registration of the transfer of exclusive right

Effective date: 20141128

MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20181015