RU2233673C1 - Mixed vaccine for immunoprophylaxis of whooping cough, diphtheria, tetanus and viral hepatitis b and d - Google Patents

Mixed vaccine for immunoprophylaxis of whooping cough, diphtheria, tetanus and viral hepatitis b and d Download PDF

Info

Publication number
RU2233673C1
RU2233673C1 RU2003108791/13A RU2003108791A RU2233673C1 RU 2233673 C1 RU2233673 C1 RU 2233673C1 RU 2003108791/13 A RU2003108791/13 A RU 2003108791/13A RU 2003108791 A RU2003108791 A RU 2003108791A RU 2233673 C1 RU2233673 C1 RU 2233673C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
hbsag
hepatitis
diphtheria
tetanus
ayw
Prior art date
Application number
RU2003108791/13A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2003108791A (en
Inventor
В.Н. Борисова (RU)
В.Н. Борисова
М.В. Буданов (RU)
М.В. Буданов
И.М. Яковлева (RU)
И.М. Яковлева
В.А. Мельников (RU)
В.А. Мельников
Original Assignee
Закрытое акционерное общество научно-производственная компания "Комбиотех"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Закрытое акционерное общество научно-производственная компания "Комбиотех" filed Critical Закрытое акционерное общество научно-производственная компания "Комбиотех"
Priority to RU2003108791/13A priority Critical patent/RU2233673C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2233673C1 publication Critical patent/RU2233673C1/en
Publication of RU2003108791A publication Critical patent/RU2003108791A/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology, medicine, vaccines.
SUBSTANCE: invention relates to a new mixed vaccine. New mixed vaccine comprises the following components: hepatitis B virus surface antigen (HBsAg/ayw) prepared by culturing the yeast strain Pichia angusta VKM Y-2924 D and/or hepatitis B virus surface antigen (HBsAg/adw) prepared by culturing the yeast strain H. polymorpha VKPM Y-2412 taken in the amount 5-10 mcg; whooping cough microorganisms, 6.0-10 billion; diphtheria anatoxin, 7.5-15 Lf; tetanus anatoxin, 5-10 EC; aluminum hydroxide (Al3+) gel, 0.3-0.5 mg; merthiolate, 35-50 mcg, and 0.9% NaCl, up to 0.5 ml. Hepatitis B virus antigens (HBsAg/ayw) and (HBsAg/adw) are taken in the ratio = 1:1. The new mixed vaccine is high-immune, nontoxic preparation with broad spectrum of effect that provides expanding assortment of agents designated for immunoprophylaxis against pathogens of some diseases of viral and bacterial etiology.
EFFECT: valuable medicinal properties of mixed vaccine.
2 cl, 3 tbl, 10 ex

Description

Изобретение относится к биотехнологии, а именно, к разработке новых ассоциированных вакцин, содержащих в одном препарате несколько антигенов, что обеспечивает возможность проведения одновременно иммунизации против возбудителей нескольких заболеваний.The invention relates to biotechnology, namely, to the development of new associated vaccines containing several antigens in a single preparation, which makes it possible to simultaneously immunize against several pathogens.

Развитие вакцинологии и прививочного дела привело к существенному возрастанию количества прививок, получаемых каждым, нуждающемся в том, пациентом.The development of vaccinology and vaccination has led to a significant increase in the number of vaccinations received by each patient in need.

При одновременном введении различных вакцин не решаются проблемы сокращения количества инъекций и уменьшения кумулятивного токсического воздействия на организм различных ингредиентов вакцины (сорбента, консерванта и др.), остаются актуальными вопросы транспортировки и хранения большого количества термолабильных препаратов, а также наличия всех показанных для единовременного применения вакцин. Поэтому приоритетным направлением развития современной иммунобиологической промышленности остается программа создания ассоциированных препаратов.With the simultaneous administration of various vaccines, the problems of reducing the number of injections and reducing the cumulative toxic effects on the body of various vaccine ingredients (sorbent, preservative, etc.) are not solved; the issues of transportation and storage of a large number of thermolabile preparations, as well as the availability of all vaccines indicated for a single use, remain relevant . Therefore, the program for creating associated drugs remains a priority in the development of the modern immunobiological industry.

Известна комбинированная вакцина против дифтерии - столбняка - коклюша - гепатита В.Known combination vaccine against diphtheria - tetanus - pertussis - hepatitis B.

Одна 0,5 мл доза содержит в качестве активных ингредиентов:One 0.5 ml dose contains as active ingredients:

Д-токсоид - 7,5 Lf; С - токсоид - 3,25 Lf; Кц - антиген - 15; HBsAg - 10 мкг протеина.D-toxoid - 7.5 Lf; C - toxoid - 3.25 Lf; Kc - antigen - 15; HBsAg - 10 μg of protein.

Поверхностный антиген вируса гепатита В представляет собой любые известные антигены поверхностного антигена вируса гепатита В или их фрагменты, проявляющие антигенность поверхностного антигена гепатита В (в патенте даны ссылки на известные антигены).Hepatitis B virus surface antigen is any known hepatitis B virus surface antigen antigens or fragments thereof exhibiting antigenicity of hepatitis B surface antigen (the patent refers to known antigens).

Все антигены, кроме поверхностного антигена гепатита В, адсорбируются на гидроокиси алюминия. Поверхностный антиген гепатита В адсорбируют на фосфате алюминия.All antigens, except hepatitis B surface antigen, are adsorbed onto aluminum hydroxide. Hepatitis B surface antigen is adsorbed onto aluminum phosphate.

При необходимости в вакцине используют антисептик, например, мертиолят 1:20000 до 1:10000 или 2-феноксиэтанол от 3 до 6 мг/кл.If necessary, an antiseptic is used in the vaccine, for example, merthiolate 1: 20,000 to 1: 10,000 or 2-phenoxyethanol from 3 to 6 mg / cell.

В состав вакцин входит изотонический соляной раствор (RU, патент №2160120, А 61 К 39/295, 39/29, публ. 2000 г.).The composition of the vaccines includes isotonic saline (RU, patent No. 2160120, A 61 K 39/295, 39/29, publ. 2000).

Известна также комбинированная вакцина для иммунопрофилактики коклюша, дифтерии, столбняка и гепатита В и Д.A combination vaccine is also known for the immunization of pertussis, diphtheria, tetanus and hepatitis B and D.

Вакцина имеет следующий состав:The vaccine has the following composition:

Поверхностный антиген вируса гепатита В (HBsAg), полученный культивированием рекомбинантного штамма S. cerevisiae ВКПМ Y2203 5-10 мкг HBsAgHepatitis B virus surface antigen (HBsAg) obtained by culturing a recombinant strain of S. cerevisiae VKPM Y2203 5-10 μg HBsAg

Анатоксин дифтерийный очищенный концентрированный 10-20 LfDiphtheria purified toxoid concentrated toxoid 10-20 Lf

Анатоксин столбнячный очищенный концентрированный 5-10 ЕСThe tetanus toxoid purified concentrated 5-10 EC

Убитые формалином коклюшные микробы 10-15 ОЕPertussis microbes killed by formalin 10-15 OE

Мертиолят 0,01±0,002%Mertiolate 0.01 ± 0.002%

Гель алюминия гидроксида 0,5-1,2 мг в пересчете на алюминийGel of aluminum hydroxide 0.5-1.2 mg in terms of aluminum

Фосфатно-солевой буфер (50 мМ Na-фосфатный буфер, рН 6,8-0,13М NaCl) До 1 млPhosphate-buffered saline (50 mM Na-phosphate buffer, pH 6.8-0.13 M NaCl) Up to 1 ml

RU, Патент №2130778, 1998, А 61 К 39/29.RU, Patent No. 2130778, 1998, A 61 K 39/29.

Задачей изобретения является расширение арсенала средств, предназначенных для иммунопрофилактики вирусного гепатита В и Д, столбняка, дифтерии и коклюша.The objective of the invention is to expand the arsenal of funds intended for the immunoprophylaxis of viral hepatitis B and D, tetanus, diphtheria and pertussis.

Поставленная задача решена путем конструирования новой высокоиммуногенной комбинированной вакцины, в которой в качестве антигена вируса гепатита В (HBsAg) содержится новый антиген вируса гепатита В (HBsAg) серотипа adw, полученный культивированием штамма дрожжей Hansenula Polymorpha, VKPM - Y-2412, антиген вируса гепатита В серотипа ayw, полученный культивированием штамма дрожжей Pichia angusta (Hansenula Polymorpha) VKM - Y-2924D или смесь указанных антигенов в равных количествах (соотношение 1:1).The problem was solved by constructing a new highly immunogenic combination vaccine in which, as an antigen of hepatitis B virus (HBsAg), contains a new antigen of hepatitis B virus (HBsAg) of serotype adw, obtained by culturing the yeast strain Hansenula Polymorpha, VKPM - Y-2412, hepatitis B virus antigen ayw serotype obtained by culturing a strain of the yeast Pichia angusta (Hansenula Polymorpha) VKM - Y-2924D or a mixture of these antigens in equal amounts (1: 1 ratio).

В связи с введением с 2003 г. новой классификации Hansenula Polymorpha в настоящее время обозначается как Pichia angusta.In connection with the introduction in 2003 of a new classification, Hansenula Polymorpha is now designated as Pichia angusta.

Количество антигена или смеси антигенов вируса гепатита В составе комбинированной вакцины составляет 5-10 мкг HBsAg в 0,5 мл раствора, являющегося прививочной дозой препарата.The amount of antigen or mixture of hepatitis virus antigens In the combination vaccine is 5-10 μg HBsAg in 0.5 ml of a solution, which is a vaccination dose of the drug.

Кроме того вакцина содержит:In addition, the vaccine contains:

Убитые формальдегидом коклюшные микробы 6,0-10 млрдPertussis microbes killed by formaldehyde 6.0-10 billion

Дифтерийный анатоксин 7,5-15 LfDiphtheria toxoid 7.5-15 Lf

Столбнячный анатоксин 5-10 ЕСTetanus toxoid 5-10 EU

Гель алюминия гидроксида (Al3+) 0,3-0,5 мгAluminum hydroxide gel (Al 3+ ) 0.3-0.5 mg

Мертиолят (консервант) 35-50 мкгMerthiolate (preservative) 35-50 mcg

0,9% NaCl До 0,5 мл0.9% NaCl Up to 0.5 ml

В отличие от известной вакцины согласно изобретению в сконструированную вакцину введен новый антиген вируса гепатита В серотипов ayw и/или adw и изменено соотношение активных ингредиентов из-за проявляющегося потенциирующего эффекта, обусловленного влиянием нового антигена на иммунологическую активность других активных компонентов полученной вакцины. Кроме того, значительно уменьшено количество растворителя.In contrast to the known vaccine according to the invention, a new hepatitis B virus antigen of ayw and / or adw serotypes is introduced into the designed vaccine and the ratio of active ingredients is changed due to the potentiating effect due to the effect of the new antigen on the immunological activity of other active components of the obtained vaccine. In addition, the amount of solvent is significantly reduced.

При разработке новой вакцины требовалось соединить несколько антигенов (один из них новый) в одном инъекционном препарате таким образом, чтобы новая комбинация компонентов, взятых в определенных количествах, не снижала безопасности и иммуногенности вновь созданного иммунобиологического препарата, а также его эпидемиологической эффективности.When developing a new vaccine, it was required to combine several antigens (one of them is new) in one injection drug so that a new combination of components taken in certain quantities does not reduce the safety and immunogenicity of the newly created immunobiological preparation, as well as its epidemiological effectiveness.

Проведенные исследования показали, что созданный препарат обладает широкими возможностями использования (расширен спектр воздействия) при высокой иммуногенной активности и нетоксичности, низкой реактогенности.Studies have shown that the created drug has wide potential for use (expanded spectrum of exposure) with high immunogenic activity and non-toxicity, low reactogenicity.

Полученная согласно изобретению вакцина, содержащая антиген вируса гепатита В двух различных серотипов, является вакциной направленного действия против тех возбудителей, которые наиболее широко распространены на территории России и в странах ближнего зарубежья.The vaccine obtained according to the invention, containing hepatitis B virus antigen of two different serotypes, is a directed vaccine against those pathogens that are most widespread in Russia and in neighboring countries.

При этом следует отметить, что новый комбинированный препарат является эффективным и при иммунопрофилактике вирусного гепатита Д, поскольку вирус гепатита Д не может участвовать в развитии гепатитной инфекции без одновременной репликации вируса гепатита В, и возможно предохранить от дельта - инфекции вакцинацией против вирусного гепатита В в результате образования антител к HBsAg (анти HBs).It should be noted that the new combination drug is also effective in the immunoprophylaxis of viral hepatitis D, since the hepatitis D virus cannot participate in the development of hepatitis B infection without the simultaneous replication of the hepatitis B virus, and it is possible to protect against delta infection by vaccination against viral hepatitis B as a result the formation of antibodies to HBsAg (anti HBs).

Для выделения новых антигенов вируса гепатита, содержащихся в вакцине, используют новые дрожжевые продуценты. Дрожжи Pichia angusta (Hansenula Polymorpha) являются предпочтительными по сравнению с S. cerevisiae, поскольку позволяют добиваться более высоких уровней синтеза антигена при более простых способах получения культур высокой плотности.New yeast producers are used to isolate new hepatitis virus antigens contained in the vaccine. Yeast Pichia angusta (Hansenula Polymorpha) is preferred over S. cerevisiae because it allows higher levels of antigen synthesis to be achieved with simpler methods for producing high density cultures.

Штаммы дрожжей Pichia angusta (Hansenula Polymorpha), являющиеся продуцентами поверхностного антигена вируса гепатита В серотипов ау и ad, являются новыми.The strains of the yeast Pichia angusta (Hansenula Polymorpha), which are producers of the hepatitis B virus surface antigen of serotypes ay and ad, are new.

Выделенные антигены впервые используют в составе комбинированной вакцины.Isolated antigens are first used as part of a combination vaccine.

Способ получения новых штаммов - продуцентов и выделение антигенов вируса гепатита В серотипов ayw и adw:A method of obtaining new strains - producers and the selection of hepatitis B virus antigens of serotypes ayw and adw:

! все рутинные генно-инженерные операции осуществляют согласно стандартным методикам и инструкциям компаний - производителей ферментов и наборов для манипуляций с ДНК in vitro. Для ПЦ во всех случаях использовали полимеразу Vent (NEB). Синтез олигонуклеотидов производился ЗАО “Синтол” г. Москва. В работе для получения антигена серотипа ayw использовали следующие олигонуклеотиды:! All routine genetic engineering operations are carried out in accordance with standard procedures and instructions of companies producing enzymes and in vitro DNA manipulation kits. For PCs, Vent polymerase (NEB) was used in all cases. Synthesis of oligonucleotides was carried out by Syntol CJSC in Moscow. The following oligonucleotides were used to obtain the ayw serotype antigen:

Figure 00000001
Figure 00000001

Figure 00000002
Figure 00000002

Figure 00000003
Figure 00000003

Пример 1. Получение фрагмента ДНК, кодирующего HBsAg/ayw (фрагмент А). Реакционную смесь, содержащую олигонуклеотиды lu и 8L по 1 мкМ, олигонуклеотиды со 2u по 8u; с 1L по 7L по 10 пМ, ThermoPol буфер (10 mM KCl, 20 mM tris-HCl pH 8.8, 10 mМ (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4, 0,1% Triton Х-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 с, при 50°С 30 с, при 72°С 90 с. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 730 пар оснований. Соответствие выделенного фрагмента нужному размеру определяют также путем электрофореза в 1% агарозном геле, сравнивая его подвижность с подвижностью полос маркеров молекулярного веса.Example 1. Obtaining a DNA fragment encoding HBsAg / ayw (fragment A). The reaction mixture containing 1 μM oligonucleotides lu and 8L, oligonucleotides 2u to 8u; 1L to 7L, 10 pM, ThermoPol buffer (10 mM KCl, 20 mM tris-HCl pH 8.8, 10 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 2 mM MgSO 4 , 0.1% Triton X-100, 250 uM dNTP ) and 5 units of activity of Vent polymerase are incubated for 30 cycles of temperature change. Each cycle includes incubation at 95 ° C for 30 s, at 50 ° C 30 s, at 72 ° C 90 s. After this, the reaction products are separated electrophoretically in a 1% agarose gel and a fragment of 730 base pairs is isolated. The correspondence of the selected fragment to the desired size is also determined by electrophoresis in 1% agarose gel, comparing its mobility with the mobility of the molecular weight marker bands.

Пример 2. Получение фрагмента геномной ДНК Pichia angusta, содержащего промотор гена МОХ (фрагмент Б).Example 2. Obtaining a fragment of genomic DNA of Pichia angusta containing the MOX gene promoter (fragment B).

Суспендируют 2-3 мкг клеток штамма Pichia angusta (Hansenula Polymorpha) BKM 4-2559, получен из почвы СС4 38-22-2 Институт биохимии и физиологии микроорганизмов РАН, в 0,1 мл 0,25% раствора додецилсульфата натрия и инкубируют на кипящей водяной бане в течение 5 мин. Клетки осаждают центрифугированием при 10000 g 5 мин, 1 мкл полученного супернатанта добавляют к 25 мкл смеси, содержащей олигонуклеотиды moxU5 и moxL3 по 1 мкМ, ThermoPol буфер (10 mM KCl, 20 mM tris-HCl рН 8,8, 10 mM (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы. Реакционную смесь инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 с, при 50°С 30 с, при 72°С 90 с. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 850 пар оснований. Соответствие выделенного фрагмента нужному размеру определяют также путем электрофореза в 1% агарозном геле, сравнивая его подвижность с подвижностью полос маркеров молекулярного веса.Suspend 2-3 μg of cells of the strain Pichia angusta (Hansenula Polymorpha) BKM 4-2559, obtained from soil CC4 38-22-2 Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms RAS, in 0.1 ml of 0.25% sodium dodecyl sulfate solution and incubated in boiling water bath for 5 minutes Cells are pelleted by centrifugation at 10,000 g for 5 min, 1 μl of the obtained supernatant is added to 25 μl of a mixture containing moxU5 and moxL3 oligonucleotides 1 μM each, ThermoPol buffer (10 mM KCl, 20 mM tris-HCl pH 8.8, 10 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 2 mM MgSO 4 , 0.1% Triton X-100, 250 uM dNTP) and 5 units of activity of Vent polymerase. The reaction mixture is incubated for 30 cycles of temperature change. Each cycle includes incubation at 95 ° C for 30 s, at 50 ° C 30 s, at 72 ° C 90 s. After this, the reaction products are separated electrophoretically in a 1% agarose gel and a fragment of 850 base pairs is isolated. The correspondence of the selected fragment to the desired size is also determined by electrophoresis in 1% agarose gel, comparing its mobility with the mobility of the molecular weight marker bands.

Пример 3. Получение фрагмента геномной ДНК Pichia angusta, содержащего часть гена TRP 3 (фрагмент В).Example 3. Obtaining a Pichia angusta genomic DNA fragment containing a portion of the TRP 3 gene (fragment B).

Суспендируют 2-3 мкг клеток штамма Н. polymorpha BKM 4-2559 (Pichia angusta) в 0,1 мл 0,25% раствора додецилсульфата натрия и инкубируют на кипящей водяной бане в течение 5 мин. Клетки осаждают центрифугированием при 10000 g 5 мин, 1 мкл полученного супернатанта добавляют к смеси, содержащей олигонуклеотиды trpU5 и trpL3 по 1 мкМ, ThermoPol буфер (10 mM KCl, 20 mМ tris-HCl pH 8,8, 10 mМ (NH4)2SO4, 2 mМ MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы. Реакционную смесь инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 с, при 50°С 30 с, при 72°С 120 с, при 50°С 30 с, при 72°С 120 с. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 1360 пар оснований. Соответствие выделенного фрагмента нужному размеру определяют также путем электрофореза в 1% агарозном геле, сравнивая его подвижность с подвижностью полос маркеров молекулярного веса.2-3 μg of cells of H. polymorpha BKM 4-2559 strain (Pichia angusta) are suspended in 0.1 ml of a 0.25% sodium dodecyl sulfate solution and incubated in a boiling water bath for 5 minutes. Cells are pelleted by centrifugation at 10,000 g for 5 min, 1 μl of the obtained supernatant is added to a mixture containing 1 μM trpU5 and trpL3 oligonucleotides, ThermoPol buffer (10 mM KCl, 20 mM tris-HCl pH 8.8, 10 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 2 mM MgSO 4 , 0.1% Triton X-100, 250 uM dNTP) and 5 units of Vent polymerase activity. The reaction mixture is incubated for 30 cycles of temperature change. Each cycle includes incubation at 95 ° C for 30 s, at 50 ° C 30 s, at 72 ° C 120 s, at 50 ° C 30 s, at 72 ° C 120 s. After this, the reaction products are separated electrophoretically in a 1% agarose gel and a fragment of 1360 base pairs is isolated. The correspondence of the selected fragment to the desired size is also determined by electrophoresis in 1% agarose gel, comparing its mobility with the mobility of the molecular weight marker bands.

Пример 4. Получение фрагмента ДНК Pichia angusta, содержащего последовательность, кодирующую HBsAg/ayw, слитую с промотором МОХ и геном TRP 3 (фрагмент Г).Example 4. Obtaining a DNA fragment of Pichia angusta containing the sequence encoding HBsAg / ayw, fused with the MOX promoter and the TRP 3 gene (fragment D).

Реакционную смесь (0,05 мл), содержащую олигонуклеотиды moxU5 и trpL3 по 1 мкМ, фрагменты А, Б и В по 1 пг, ThermoPol буфер (10 mM KCl, 20 mM tris-HCl pH 8,8, 10 mM (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 с, при 50°С 30 с, при 72°С 3 мин. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 2,9 тысяч пар оснований. Соответствие выделенного фрагмента нужному размеру определяют также путем электрофореза в 1% агарозном геле, сравнивая его подвижность с подвижностью полос маркеров молекулярного веса.The reaction mixture (0.05 ml) containing 1 μM moxU5 and trpL3 oligonucleotides, 1 pg fragments A, B and C, ThermoPol buffer (10 mM KCl, 20 mM tris-HCl pH 8.8, 10 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 2 mM MgSO 4 , 0.1% Triton X-100, 250 uM dNTP) and 5 units of Vent polymerase activity are incubated for 30 cycles of temperature change. Each cycle includes incubation at 95 ° C for 30 s, at 50 ° C for 30 s, at 72 ° C for 3 minutes. After this, the reaction products are separated electrophoretically in a 1% agarose gel and a fragment of 2.9 thousand base pairs is isolated. The correspondence of the selected fragment to the desired size is also determined by electrophoresis in 1% agarose gel, comparing its mobility with the mobility of the molecular weight marker bands.

Пример 5. Интеграция последовательности, кодирующей HBsAg/ayw, в геном Pichia angusta.Example 5. Integration of the sequence encoding HBsAg / ayw in the Pichia angusta genome.

Штамм Pichia angusta (Hansenula Polymorpha) DLT (Agaphonov et al., 2002; коллекция штаммов лаборатории молекулярной генетики РКН ПК МЗ РФ) выращивают в течение 15-20 ч в среде YNB-D, содержащей триптофан 20 мг/л, при 37°С в условиях интенсивной аэрации. 0,5 мл культуры добавляют к 30 мл такой же среды и инкубируют в тех же условиях в течение 4 ч. Клетки собирают центрифугированием при 3000g 5 мин и суспендируют в 15 мл буфера Т (10 mМ tris-HCl pH 7,4; 100 mМ CH3COOLi; 0,5 mМ EDTA). После инкубации в течение 30 мин при 30°С клетки вновь осаждают и суспендируют в 200 мкл буфера Т. К 0,05 мл суспензии добавляют 1 мкг фрагмента Г, перемешивают, добавляют 120 мкл 70% раствора ПЭГ 4000, вновь перемешивают и инкубируют 1 ч при 30°С.The strain Pichia angusta (Hansenula Polymorpha) DLT (Agaphonov et al., 2002; a collection of strains of the laboratory of molecular genetics of the RKN SC of the Ministry of Health of the Russian Federation) is grown for 15-20 h in YNB-D medium containing tryptophan 20 mg / l at 37 ° C in conditions of intensive aeration. 0.5 ml of culture was added to 30 ml of the same medium and incubated under the same conditions for 4 hours. Cells were collected by centrifugation at 3000g for 5 min and suspended in 15 ml of T buffer (10 mM tris-HCl pH 7.4; 100 mM CH 3 COOLi; 0.5 mM EDTA). After an incubation of 30 minutes at 30 ° C, the cells are pelleted again and suspended in 200 μl of buffer T. To 0.05 ml of suspension, add 1 μg of fragment G, mix, add 120 μl of 70% PEG 4000 solution, mix again and incubate for 1 h at 30 ° C.

Трансформационную смесь инкубируют при 45°С 15 мин, охлаждают до комнатной температуры и высевают на чашки Петри со средой, содержащей 50 мг/мл лейцина. Выросшие колонии трансформантов проверяют на способность расти на среде, содержащей метанол в качестве единственного источника углерода. Отбирают клоны, не способные расти на такой среде, и проверяют их на способность синтезировать HBsAg/ayw. Полученный штамм дрожжей Pichia angusta является продуцентом поверхностного антигена вируса гепатита В (HBsAg/ayw). Штамм имеет регистрационный номер VKM Y-2924D, 25.02.2003 и депонирован в Институте биохимии и физиологии микроорганизмов РАН им. Г.К.Скрябина. Справка о депонировании штамма прилагается.The transformation mixture is incubated at 45 ° C for 15 minutes, cooled to room temperature and plated on Petri dishes with medium containing 50 mg / ml leucine. The grown colonies of transformants are tested for their ability to grow on a medium containing methanol as the sole carbon source. Clones that cannot grow on this medium are selected and tested for their ability to synthesize HBsAg / ayw. The resulting strain of Pichia angusta yeast is a producer of hepatitis B virus surface antigen (HBsAg / ayw). The strain has a registration number VKM Y-2924D, 02/25/2003 and deposited at the Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms RAS named after G.K.Skryabin. Certificate of deposit of the strain is attached.

Пример 6. Анализ способности штамма синтезировать HBsAg/ayw.Example 6. Analysis of the ability of the strain to synthesize HBsAg / ayw.

Тестируемый штамм засевают в среду YPD (1% дрожжевого экстракта, 2% пептона и 2% глюкозы) и инкубируют при 37°С в течение 15-20 ч в условиях высокой аэрации. Полученную культуру разводят в пять раз средой YPM (1% дрожжевого экстракта, 2% пептона и 2% метанола) и инкубируют в тех же условиях в течение 30-50 ч. Клетки из 0,5 мл культуры собирают центрифугированием, суспендируют в 0,2 мл дистиллированной воды, добавляют 0,2 мл 0,2 М NaOH и инкубируют на кипящей водяной бане 8 мин. Суспензию центрифугируют 10 мин при 10000 g, после чего супернатант анализируют методом электрофореза и иммуноблоттинга с использованием антител к HBsAg/ayw. В качестве стандарта используют очищенный белок HBsAg/ayw. В дорожках, соответствующих штаммам, которые синтезируют HBsAg/ayw, выявляется полоса на уровне 24-27 кДа, такая же, как и в случае очищенного белка.The test strain is seeded in YPD medium (1% yeast extract, 2% peptone and 2% glucose) and incubated at 37 ° C for 15-20 hours under high aeration conditions. The resulting culture was diluted five times with YPM medium (1% yeast extract, 2% peptone and 2% methanol) and incubated under the same conditions for 30-50 hours. Cells from 0.5 ml of the culture were collected by centrifugation, suspended in 0.2 ml of distilled water, add 0.2 ml of 0.2 M NaOH and incubate in a boiling water bath for 8 minutes. The suspension is centrifuged for 10 min at 10,000 g, after which the supernatant is analyzed by electrophoresis and immunoblotting using antibodies to HBsAg / ayw. As a standard, purified HBsAg / ayw protein is used. In lanes corresponding to strains that synthesize HBsAg / ayw, a band at 24-27 kDa is detected, the same as in the case of purified protein.

Пример 7. Определение последовательности гена HBsAg/ayw в геноме дрожжей.Example 7. Determination of the sequence of the HBsAg / ayw gene in the yeast genome.

Суспендируют 2-3 мкг клеток анализируемого штамма в 0,1 мл 0,25% раствора додецилсульфата натрия и инкубируют на кипящей водяной бане в течение 5 мин. Клетки осаждают центрифугированием при 10000 g 5 мин, 1 мкл полученного супернатанта добавляют к смеси, содержащей олигонуклеотиды МОХ и TRP по 1 мкМ, ThermoPol буфер (10 mM KCl, 20 mМ tris-HCl рН 8,8, 10 mM (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы. Реакционную смесь инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 с, при 50°С 30 с, при 72°С 2 мин. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 800 пар оснований. Фрагмент секвенируют с использованием праймеров МОХ и TRP. Совпадение результатов секвенирования с исходной последовательностью показывает отсутствие мутаций в интегрированном в геном дрожжей гене HBsAg/ayw.2-3 μg of the cells of the analyzed strain are suspended in 0.1 ml of a 0.25% sodium dodecyl sulfate solution and incubated in a boiling water bath for 5 minutes. Cells are pelleted by centrifugation at 10,000 g for 5 min, 1 μl of the obtained supernatant is added to a mixture containing 1 μM MOX and TRP oligonucleotides, ThermoPol buffer (10 mM KCl, 20 mM tris-HCl pH 8.8, 10 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 2 mM MgSO 4 , 0.1% Triton X-100, 250 uM dNTP) and 5 units of activity of Vent polymerase. The reaction mixture is incubated for 30 cycles of temperature change. Each cycle includes incubation at 95 ° C for 30 s, at 50 ° C for 30 s, at 72 ° C for 2 minutes. After this, the reaction products are separated electrophoretically in a 1% agarose gel and a fragment of 800 base pairs is isolated. The fragment is sequenced using primers MOX and TRP. The coincidence of the sequencing results with the original sequence shows the absence of mutations in the HBsAg / ayw gene integrated into the yeast genome.

Пример 8. Выделение HBsAg(ayw) из клеток Pichia angustaExample 8. Isolation of HBsAg (ayw) from Pichia angusta cells

После ферментации исходного штамма дрожжей Pichia angusta HBsAg выделяют согласно общепринятой методике по следующей схеме. Клетки из культуральной жидкости осаждают центрифугированием при 4000 g на центрифуге Beckman. Осажденную биомассу ресуспендируют до концентрации 250 г влажных клеток на 1 л в буфере экстракции PBS рН 6,8 с добавлением EDTA, PMSF и Tween-20. Далее клетки разрушают в мельнице Dyno-Mill типа KDL, используя стеклянные шары диаметром 0,5-0,7 мм. Основную массу нецелевых белков из полученного гомогенизата осаждают добавлением полиэтиленгликоля (PEG) до концентрации 4,5%. Осажденные белки отделяют центрифугированием. Полученный супернатант фильтруют на ультрафильтрах (500 кДа) Pellicon. При этом отделяются белки с мол. массой меньше 500 кДа, а также удаляется PEG и раствор HBs антигена переводится в буфер PBS рН 6.7. Одновременно происходит концентрированно раствора, что существенно для следующей стадии абсорбции на стекло. Посадку HBsAg на макропористое стекло (МПС) осуществляют в колонках системы StreamLine, разработанной фирмой Pharmacia (Sweden). Для удаления неспецифически связанных белков колонку промывают тем же буфером PBS. Антиген элюируют карбонатным буфером (КБ) рН 9,5. Элюат концентрируют ультрафильтрацией и разделяют при помощи ультрацентрифугирования на зональном роторе (Beckman) в градиенте глицерин/сахароза. Полученные фракции анализируют на содержание HBsAg, используя РОПГА набор, и фракции, содержащие антиген, объединяют и очищают гельфильтрацией на сорбенте Toyopearl HW-65 (ToyoSoda Corp., Japan). Чистоту полученного таким образом HBs антигена определяют методом SDS-PAGE. Если чистота продукта недостаточна (<95%), производят дополнительную очистку при помощи ионообменной хроматографии на сорбенте TSK-DEAE (ToyoSoda Corp., Japan). Выход антигена 25-30 мг с 1 л культуральной жидкости.After fermentation of the parent strain of Pichia angusta yeast, HBsAg is isolated according to the conventional method according to the following scheme. Cells from the culture fluid are pelleted by centrifugation at 4000 g in a Beckman centrifuge. The precipitated biomass is resuspended to a concentration of 250 g of wet cells per 1 L in PBS extraction buffer pH 6.8 with the addition of EDTA, PMSF and Tween-20. Next, the cells are destroyed in a Dyno-Mill KDL mill using glass balls with a diameter of 0.5-0.7 mm. Most of the non-target proteins from the resulting homogenizate are precipitated by the addition of polyethylene glycol (PEG) to a concentration of 4.5%. The precipitated proteins are separated by centrifugation. The resulting supernatant was filtered on Pellicon ultrafilters (500 kDa). In this case, proteins are separated from the pier. weighing less than 500 kDa, PEG is also removed and the HBs antigen solution is transferred to PBS buffer pH 6.7. At the same time, a concentrated solution occurs, which is essential for the next stage of absorption onto the glass. Planting of HBsAg on macroporous glass (MPS) is carried out in columns of the StreamLine system developed by Pharmacia (Sweden). To remove non-specifically bound proteins, the column is washed with the same PBS buffer. The antigen is eluted with carbonate buffer (KB) pH 9.5. The eluate is concentrated by ultrafiltration and separated by ultracentrifugation on a zonal rotor (Beckman) in a glycerol / sucrose gradient. The obtained fractions were analyzed for HBsAg content using a ROPHA kit, and the fractions containing antigen were combined and purified by gel filtration on a Toyopearl HW-65 sorbent (ToyoSoda Corp., Japan). The purity of the thus obtained HBs antigen is determined by SDS-PAGE. If the purity of the product is insufficient (<95%), additional purification is carried out using ion exchange chromatography on a TSK-DEAE sorbent (ToyoSoda Corp., Japan). The output of antigen 25-30 mg with 1 liter of culture fluid.

Полученный раствор HBsAg (ayw) анализируют рядом методов:The resulting solution of HBsAg (ayw) is analyzed by a number of methods:

1. Антигенную активность измеряют наборами РОПГА (реакция обратной пассивной гемагглютинации эритроцитов) по методике производителя (НПО “Диагностические Системы”, Нижний Новгород) с использованием в качестве стандарта отраслевого стандартного образца активности HBsAg (ОСО 42-28-153-88), выпускаемого ГИСК им. Л.А.Тарасевича.1. Antigenic activity is measured by ROPGA sets (reverse passive hemagglutination test of red blood cells) according to the manufacturer’s methodology (NPO Diagnostic Systems, Nizhny Novgorod) using the industry standard HBsAg activity standard (OSO 42-28-153-88) manufactured by GISK them. L.A. Tarasevich.

2. Чистота рекомбинантного HBsAg определяется электрофорезом в полиакриламидном геле в восстанавливающих условиях (SDS-PAGE) с окрашиванием серебром и Coomassie Brilliant Blue R-250. Чистота выделенного антигена не <95%.2. The purity of recombinant HBsAg is determined by polyacrylamide gel electrophoresis under reducing conditions (SDS-PAGE) stained with silver and Coomassie Brilliant Blue R-250. The purity of the isolated antigen is not <95%.

3. Иммуноспецифичность антигена определяют методом иммуноблотинга. Первичные антитела для этой цели получали иммунизацией кролей рекомбинантным HBsAg (производства Комбиотех), восстановленным в присутствии 2% SDS и 5% меркаптоэтанола. Иммунными антисыворотками окрашивали иммуноблот с последующей визуализацией при помощи специфических антител к иммуноглобулинам кролей, конъюгированных с пероксидазой хрена, по методике улучшенной хемилюминесценции (ECL) (Amersham, UK). Рекомбинантный HBs антиген (ayw) представлен в виде полосы мономера 24-27 кДа и слабых полос димера и тримера.3. The immunospecificity of the antigen is determined by immunoblotting. Primary antibodies for this purpose were obtained by immunizing rabbits with recombinant HBsAg (manufactured by Combiotech) reconstituted in the presence of 2% SDS and 5% mercaptoethanol. Immunoblot was stained with immune antisera, followed by visualization with specific antibodies to rabbit immunoglobulins conjugated to horseradish peroxidase according to the improved chemiluminescence (ECL) technique (Amersham, UK). Recombinant HBs antigen (ayw) is presented as a 24-27 kDa monomer band and weak dimer and trimer bands.

Получение штамма дрожжей Н. polymorpha VKPM Y - 2412 (депонирован в ГНИИ Генетики. Справка о депонировании штамма прилагается) - продуцента поверхностного антигена вируса гепатита В (HBsAg/adw), проводят аналогично примерам 1-5 с той лишь разницей, что в работе используют следующие олигонуклеотиды:Obtaining a yeast strain N. polymorpha VKPM Y - 2412 (deposited at the State Research Institute of Genetics. A certificate of the deposit of the strain is attached), a producer of the hepatitis B virus surface antigen (HBsAg / adw), is carried out similarly to examples 1-5 with the only difference being that they use the following oligonucleotides:

Figure 00000004
Figure 00000004

Figure 00000005
Figure 00000005

Figure 00000006
Figure 00000006

Выделение HBsAg/adw осуществляют аналогично примеру 8. Анализ выделенного HBsAg/adw проводят методами, описанными для антигена HBsAg/ayw.Isolation of HBsAg / adw is carried out analogously to example 8. Analysis of the isolated HBsAg / adw is carried out by the methods described for the HBsAg / ayw antigen.

Пример 9. Анализ способности штамма синтезировать HBsAg/adw.Example 9. Analysis of the ability of the strain to synthesize HBsAg / adw.

Тестируемый штамм засевают в среду YPD (1% дрожжевого экстракта, 2% пептона и 2% глюкозы) и инкубируют при 37°С в течение 15-20 ч в условиях высокой аэрации. Полученную культуру разводят в пять раз средой YPM (1% дрожжевого экстракта, 2% пептона и 2% метанола) и инкубируют в тех же условиях в течение 30-50 ч. Клетки из 0,5 мл культуры собирают центрифугированием, суспендируют в 0,2 мл дистиллированной воды, добавляют 0,2 мл 0,2 М NaOH и инкубируют 3-4 мин. Затем клетки осаждают, ресуспендируют в сэмплбуфере и инкубируют на кипящей водяной бане 8 мин. Суспензию центрифугируют 10 мин при 10000 g, после чего супернатант анализируют методом иммуноблоттинга с использованием антител к HBsAg/adw. В качестве стандарта используют очищенный белок HBsAg/adw.The test strain is seeded in YPD medium (1% yeast extract, 2% peptone and 2% glucose) and incubated at 37 ° C for 15-20 hours under high aeration conditions. The resulting culture was diluted five times with YPM medium (1% yeast extract, 2% peptone and 2% methanol) and incubated under the same conditions for 30-50 hours. Cells from 0.5 ml of the culture were collected by centrifugation, suspended in 0.2 ml of distilled water, add 0.2 ml of 0.2 M NaOH and incubate for 3-4 minutes. The cells are then precipitated, resuspended in a sample buffer and incubated in a boiling water bath for 8 minutes. The suspension is centrifuged for 10 min at 10,000 g, after which the supernatant is analyzed by immunoblotting using antibodies to HBsAg / adw. As a standard, purified HBsAg / adw protein is used.

Пример 10. Определение последовательности гена HBsAg/adw в геноме дрожжей.Example 10. Sequence determination of the HBsAg / adw gene in the yeast genome.

Суспендируют 2-3 мкг клеток анализируемого штамма в 0,1 мл 0,25% раствора додецилсульфата натрия и инкубируют на кипящей водяной бане в течение 5 мин. Клетки осаждают центрифугированием при 10000 g 5 мин, 1 мкл полученного супернатанта добавляют к смеси, содержащей олигонуклеотиды МОХ и TRP по 1 мкМ, ThermoPol буфер (10 mM KCl, 20 mМ tris-HCl рН 8,8, 10 mM (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы. Реакционную смесь инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 с, при 50°С 30 с, при 72°С 2 мин. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 800 пар оснований. Фрагмент секвенируют с использованием праймеров МОХ и TRP и определяют отсутствие мутаций путем сравнения результатов с исходной последовательностью.2-3 μg of the cells of the analyzed strain are suspended in 0.1 ml of a 0.25% sodium dodecyl sulfate solution and incubated in a boiling water bath for 5 minutes. Cells are pelleted by centrifugation at 10,000 g for 5 min, 1 μl of the obtained supernatant is added to a mixture containing 1 μM MOX and TRP oligonucleotides, ThermoPol buffer (10 mM KCl, 20 mM tris-HCl pH 8.8, 10 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 2 mM MgSO 4 , 0.1% Triton X-100, 250 uM dNTP) and 5 units of activity of Vent polymerase. The reaction mixture is incubated for 30 cycles of temperature change. Each cycle includes incubation at 95 ° C for 30 s, at 50 ° C for 30 s, at 72 ° C for 2 minutes. After this, the reaction products are separated electrophoretically in a 1% agarose gel and a fragment of 800 base pairs is isolated. The fragment is sequenced using primers MOX and TRP and determine the absence of mutations by comparing the results with the original sequence.

Полученные штаммы имеют видовые названия: Hansenula polymorpha и Pichia angusta. Наименование штаммов VKPM Y - 2412 (HBsAg/adw) и VKM Y-2924D (HBsAg/ayw).The resulting strains have specific names: Hansenula polymorpha and Pichia angusta. The name of the strains VKPM Y - 2412 (HBsAg / adw) and VKM Y-2924D (HBsAg / ayw).

Культурально-морфологические особенности штаммов:Cultural and morphological features of the strains:

клетки округлой формы, небольшие по размеру;rounded cells, small in size;

на агаризованной среде YPD образуют крупные круглые колонии с выраженной выпуклой серединой.on agar medium YPD form large round colonies with a pronounced convex middle.

Активность штаммов - не менее 30 мг/л культуральной жидкости.The activity of the strains is not less than 30 mg / l of culture fluid.

Хранение при - 70°С в виде суспензии клеток в стерильном (30-50)%-ном растворе глицерина.Storage at - 70 ° C in the form of a suspension of cells in a sterile (30-50)% glycerol solution.

Генетические особенности:Genetic features:

ауксотроф по лейцину, фаги у дрожжей не обнаружены.auxotroph on leucine, no phages in yeast.

Штаммы не являются зоопатогенными или фитопатогенными.Strains are not zoopathogenic or phytopathogenic.

Способ определения активности: в осветленном гомогенизате клеток методом иммуноферментного анализа.The method for determining the activity: in the clarified cell homogenizate by enzyme immunoassay.

Способ, условия и состав сред для размножения штаммов: инкубирование прокачиванием при 30°С в питательной среде состава: 2% пептона, 1% дрожжевого экстракта, 2% глюкозы.Method, conditions and composition of media for the propagation of strains: incubation by pumping at 30 ° C in a nutrient medium composition: 2% peptone, 1% yeast extract, 2% glucose.

Условия и состав среды для ферментации: прокачивание при 29±1°С и рН 5,0-5,5 в среде, содержащей до 10-15% глицерина и соли.!Conditions and composition of the fermentation medium: pumping at 29 ± 1 ° С and pH 5.0-5.5 in a medium containing up to 10-15% glycerol and salt.!

Выделенные антигены вируса гепатита В серотипов ayw и adw используют для создания комбинированных вакцин в качестве активных компонентов.Isolated hepatitis B virus antigens of serotypes ayw and adw are used to create combination vaccines as active components.

Полученные согласно изобретению вакцины могут быть представлены в нескольких вариантах:The vaccines obtained according to the invention can be presented in several variants:

1. В составе комбинированной вакцины в качестве антигена вируса гепатита В содержится антиген серотипа ayw, полученный культивированием штамма дрожжей Pichia angusta VKM Y-2924D.1. The combination vaccine contains the ayw serotype antigen obtained by culturing the Pichia angusta VKM Y-2924D yeast strain as a hepatitis B virus antigen.

2. В составе комбинированной вакцины в качестве антигена вируса гепатита В содержится антиген серотипа adw, полученный культивированием штамма дрожжей Н. Polymorpha VKPM Y-2412.2. The combination vaccine contains the hepatitis B virus antigen as the adw serotype antigen obtained by culturing the N. Polymorpha VKPM Y-2412 yeast strain.

3. В составе комбинированной вакцины в качестве антигена вируса гепатита В содержится смесь антигенов серотипов ayw и adw, взятых в равных количествах (соотношение 1:1).3. The combination vaccine as a hepatitis B virus antigen contains a mixture of antigens of serotypes ayw and adw, taken in equal quantities (1: 1 ratio).

Все остальные активные компоненты вакцины являются известными отечественными антигенами.All other active components of the vaccine are known domestic antigens.

Новая комбинированная вакцина представляет собой комбинацию ассоциированных на геле алюминия гидроксида поверхностного антигена вируса гепатита В и смеси убитых формальдегидом коклюшных микробов 1 фазы и очищенных от балластных белков дифтерийных и столбнячных анатоксинов.The new combination vaccine is a combination of hepatitis B virus surface antigen associated with aluminum hydroxide gel and a mixture of pertussis microbes killed by formaldehyde phase 1 microbes and purified from ballast proteins of diphtheria and tetanus toxoids.

Способ получения комбинированной вакцины заключается в обычном смешении компонентов состава, при этом одинаково хорошие результаты могут быть получены при осуществлении способа в различных вариантах:A method of obtaining a combination vaccine consists in the usual mixing of the components of the composition, while equally good results can be obtained by implementing the method in various ways:

1. Сорбируют компоненты коклюшно-дифтерийно-столбнячной вакцины (АКДС) на геле алюминия, взятом примерно в половинном его количестве, отдельно проводят сорбцию антигена вируса гепатита В (HBsAg) одного серотипа или смеси антигенов 2-х серотипов на другой части геля алюминия, после чего сорбированные антигены смешивают и добавляют консервант и фармацевтически приемлемый растворитель.1. Sorb the components of the pertussis-diphtheria-tetanus vaccine (DTP) on aluminum gel, taken in about half of its quantity, separately carry out the sorption of hepatitis B virus antigen (HBsAg) of one serotype or a mixture of antigens of 2 serotypes on another part of the aluminum gel, after wherein the sorbed antigens are mixed and a preservative and a pharmaceutically acceptable solvent are added.

2. АКДС сорбируют на геле алюминия, беря все его количество, указанное в формуле, после чего к сорбированному АКДС добавляют антиген гепатита В или смесь антигенов 2-х серотипов и далее как в 1 варианте.2. DTP is sorbed on an aluminum gel, taking all its amount indicated in the formula, after which hepatitis B antigen or a mixture of antigens of 2 serotypes is added to the sorbed DTP, and then as in the 1st embodiment.

3. Смешивают АКДС с HBsAg одного серотипа или со смесью антигенов ayw и adw и затем сорбируют их на геле алюминия, далее как в 1 варианте.3. Mix DTP with HBsAg of the same serotype or with a mixture of ayw and adw antigens and then sorb them on aluminum gel, as in the 1st embodiment.

4. HBsAg или смесь антигенов ayw и adw сорбируют на геле гидроксида алюминия, затем добавляют АКДС и остальные компоненты как в первом варианте.4. HBsAg or a mixture of ayw and adw antigens are sorbed on an aluminum hydroxide gel, then AKDS and other components are added as in the first embodiment.

Проверку полноты сорбции дифтерийного анатоксина осуществляют по реакции флокуляции, столбнячного компонента - по реакции антитоксин связывания, ИФА - для гепатитного компонента.The completeness of sorption of diphtheria toxoid is checked by the flocculation reaction, the tetanus component by the antitoxin binding reaction, ELISA for the hepatitis component.

Далее в исследованиях по определению иммуногенной активности использовали следующие конкретные составы:Further, in studies to determine immunogenic activity, the following specific formulations were used:

Конкретные примеры комбинированных вакцин, полученных согласно изобретению:Specific examples of combination vaccines obtained according to the invention:

1. Комбинированная вакцина для иммунопрофилактики вирусного гепатита В и Д, коклюша, дифтерии и столбняка содержит:1. The combined vaccine for the immunoprophylaxis of viral hepatitis B and D, whooping cough, diphtheria and tetanus contains:

Поверхностный антиген вирусаVirus surface antigen

гепатита В (HBsAg/ayw),hepatitis B (HBsAg / ayw),

полученный культивированиемcultured

штамма дрожжей Pichia angustaPichia angusta yeast strain

VKM Y-2924D 5 мкгVKM Y-2924D 5 mcg

Убитые формальдегидом коклюшные микробы 6,0 млрдFormaldehyde-killed pertussis microbes 6.0 billion

Дифтерийный анатоксин 7,5 LfDiphtheria toxoid 7.5 Lf

Столбнячный анатоксин 5 ЕСEU tetanus toxoid 5

Гель алюминия гидроксида (А13+) 0,5 мгGel aluminum hydroxide (A1 3+ ) 0.5 mg

Мертиолят (консервант) 50 мкгMerthiolate (preservative) 50 mcg

0,9% NaCl До 0,5 мл0.9% NaCl Up to 0.5 ml

0,5 мл препарата является одной прививочной дозой0.5 ml of the drug is one vaccination dose

2. Комбинированная вакцина для иммунопрофилактики вирусного гепатита В и Д, коклюша, дифтерии и столбняка содержит:2. The combined vaccine for the immunoprophylaxis of viral hepatitis B and D, whooping cough, diphtheria and tetanus contains:

Поверхностный антиген вируса гепатита В (HBsAg/adw), полученный культивированием штамма дрожжей Н. Polymorpha VKPM Y-2412 5 мкгHepatitis B virus surface antigen (HBsAg / adw) obtained by culturing a yeast strain of N. Polymorpha VKPM Y-2412 5 μg

Убитые формальдегидом коклюшные микробы 10 млрдPertussis microbes killed by formaldehyde 10 billion

Дифтерийный анатоксин 15 LfDiphtheria toxoid 15 Lf

Столбнячный анатоксин 10 ЕСEU tetanus toxoid 10

Гель алюминия гидроксида (Al3+) 0,5 мгGel aluminum hydroxide (Al 3+ ) 0.5 mg

Мертиолят (консервант) 40 мкгMerthiolate (preservative) 40 mcg

0,9% NaCl До 0,5 мл0.9% NaCl Up to 0.5 ml

3. Комбинированная вакцина для иммунопрофилактики вирусного гепатита В и Д, коклюша, дифтерии и столбняка содержит:3. The combined vaccine for the immunization of viral hepatitis B and D, whooping cough, diphtheria and tetanus contains:

Поверхностный антиген вируса гепатита В (HBsAg/ayw), полученный культивированием штамма дрожжей Pichia angusta VKM Y-2924D 2,5 мкгHepatitis B virus surface antigen (HBsAg / ayw) obtained by culturing a 2.5 μg strain of Pichia angusta VKM Y-2924D yeast

Поверхностный антиген вируса гепатита В (HBsAg/adw), полученный культивированием штамма дрожжей Н. Polymorpha VKPM Y-2412 2,5 мкгHepatitis B virus surface antigen (HBsAg / adw) obtained by cultivating the yeast strain N. Polymorpha VKPM Y-2412 2.5 μg

Убитые формальдегидом коклюшные микробы 8 млрдPertussis microbes killed by formaldehyde 8 billion

Дифтерийный анатоксин 10 LfDiphtheria toxoid 10 Lf

Столбнячный анатоксин 8 ЕСEU tetanus toxoid 8

Гель алюминия гидроксида (А13+) 0,3 мгAluminum hydroxide gel (A1 3+ ) 0.3 mg

Мертиолят (консервант) 35 мкгMerthiolate (preservative) 35 mcg

0,9% NaCl До 0,5 мл0.9% NaCl Up to 0.5 ml

Изучение иммуногенной активности новой комбинированной вакцины осуществлялось на детском контингенте, при этом проводилась сравнительная оценка иммуногенной активности нового препарата, АКДС-вакцины и вакцины гепатита В при их одновременном введении в разные участки тела у детей первого года жизни.The immunogenic activity of the new combination vaccine was studied on a children's contingent, and a comparative assessment was made of the immunogenic activity of the new drug, DTP vaccine and hepatitis B vaccine when they were simultaneously administered to different parts of the body in children of the first year of life.

В исследование было включено 93 ребенка в возрасте до 1 года.The study included 93 children under the age of 1 year.

1 группа была иммунизирована новой вакциной трехкратно в 3, 4 и 5 месяцев;Group 1 was immunized with the new vaccine three times at 3, 4 and 5 months;

2 группа получила одновременную вакцинацию в разные участки тела АКДС - вакциной и вакциной гепатита В, трехкратно в 3, 4 и 5 месяцев;Group 2 received simultaneous vaccination in different parts of the body with DTP - vaccine and hepatitis B vaccine, three times at 3, 4 and 5 months;

3 группа была иммунизирована АКДС - вакциной, трехкратно в 3, 4 и 5 месяцев.Group 3 was immunized with DTP vaccine three times at 3, 4 and 5 months.

Иммунизации подлежали здоровые дети, не имеющие противопоказаний к прививке АКДС и гепатитной В вакцинами, при отсутствии переболевших гепатитами в семье и отсутствии в анамнезе прививок против гепатита В.Subject to immunization were healthy children who did not have contraindications for vaccination with DTP and hepatitis B vaccines, in the absence of hepatitis cases in the family and in the absence of a history of vaccinations against hepatitis B.

В качестве референс - препаратов были использованы АКДС-вакцина производства ГУП “Иммунопрепарат” (г. Уфа) серии №254-4 и 251-1 и вакцина гепатита В рекомбинантная дрожжевая жидкая по ФС 42-3438-97 серии 110 и 113 (10 мкг, детская доза).As reference preparations, we used the DTP vaccine manufactured by the State Unitary Enterprise Immunopreparat (Ufa), series No. 254-4 and 251-1 and the hepatitis B vaccine, recombinant yeast liquid according to FS 42-3438-97, series 110 and 113 (10 μg , children's dose).

Иммунизацию проводили в соответствии с положениями Инструкции по применению препаратов: вакцины в дозе 0,5 мл вводили внутримышечно в верхний наружный квадрант ягодицы или в передне-наружную область бедра.Immunization was carried out in accordance with the provisions of the Instructions for the use of drugs: vaccines in a dose of 0.5 ml were administered intramuscularly in the upper outer quadrant of the buttock or in the anterior-outer thigh.

Для определения иммуногенности используемых вакцин через 30-45 дней после завершенного курса вакцинации у детей была взята кровь из вены в количестве 2,0-5,0 см3.To determine the immunogenicity of the vaccines used, 30-45 days after the completion of the vaccination course in children, blood was taken from a vein in an amount of 2.0-5.0 cm 3 .

Полученные сыворотки были заморожены и хранились до исследования при температуре минус 30°С.The obtained serum was frozen and stored until the study at a temperature of minus 30 ° C.

Уровень антител к вирусу ГВ (HBsAg), к дифтерийному и столбнячному анатоксинам определяли с помощью ИФА с использованием ИФТС для выявления дифтерийных и столбнячных антител производства НПО “Биомед” (г. Пермь); анти-HBs антител - ИФТС “Monolisa” производства фирмы Biorat (Франция). Уровни антител к коклюшному компоненту определяли в реакции агглютинации со стандартным коклюшным диагностикумом производства ЗАО “Биомед” (г. Москва).The level of antibodies to HBV virus (HBsAg), to diphtheria and tetanus toxoids was determined using ELISA using IFTS to detect diphtheria and tetanus antibodies produced by NPO Biomed (Perm); anti-HBs antibodies - IFTS "Monolisa" manufactured by Biorat (France). The levels of antibodies to the pertussis component were determined in an agglutination reaction with a standard pertussis diagnosticum produced by Biomed CJSC (Moscow).

Статистический анализ результатов исследования проведен с использованием методов описательной статистики. Достоверность различий между группами оценивали с помощью параметрических критериев. Помимо этого применяли методы дисперсионного анализа. В работе использовали электронные таблицы Excel для Windows (Microsoft), а также пакет статистических программ “DIASTA” (МГУ, Россия), являющийся версией пакета “STADIA”.Statistical analysis of the results of the study was carried out using descriptive statistics methods. The significance of differences between the groups was evaluated using parametric criteria. In addition, dispersion analysis methods were used. We used Excel spreadsheets for Windows (Microsoft), as well as the DIASTA statistical software package (Moscow State University, Russia), which is a version of the STADIA package.

Данные оценки иммунного ответа показали, что новая вакцина индуцировала иммунитет ко всем четырем компонентам вакцины. Через один месяц после завершения курса вакцинации 100% детей во всех исследованных группах имели титры антител против дифтерии и столбняка, в значительной степени превышающие защитные (0,03 МЕ/мл для дифтерии и 0,01 МЕ/мл для столбняка).Evaluation of the immune response showed that the new vaccine induced immunity to all four components of the vaccine. One month after completion of the vaccination course, 100% of the children in all the studied groups had antibody titers against diphtheria and tetanus, significantly exceeding the protective titers (0.03 IU / ml for diphtheria and 0.01 IU / ml for tetanus).

Как показали результаты статистической обработки данных иммуноферментного анализа при доверительном интервале измерения (95%), различия величины средней геометрической титра (СГТ) дифтерийных и столбнячных антител между I новой вакциной и III (АКДС), II (АКДС+ВГВ) и III группами не существенны (р>0,05). В то время как между I и II группами различия величины СГТ оказались существенны (р<0,05). В I группе СГТ дифтерийных и столбнячных антител в 1,65 и 1,6 раза соответственно больше, чем во II группе (табл. 1).As shown by the results of statistical processing of enzyme-linked immunosorbent assay data with a confidence interval of measurement (95%), the differences in the geometric mean titer (GHT) of diphtheria and tetanus antibodies between the I new vaccine and III (DTP), II (DTP + HBV) and III groups are not significant (p> 0.05). While between groups I and II, the differences in the values of CHT turned out to be significant (p <0.05). In group I, the GHS of diphtheria and tetanus antibodies is 1.65 and 1.6 times, respectively, more than in group II (Table 1).

Результаты оценки иммунного ответа на коклюшный компонент комбинированных вакцин по данным реакции агглютинации приведены в табл. 2. В I группе наблюдения только 4 ребенка из 36 (11,11%) имели титры антител ниже (<1:80). В то время как во II группе титры антител ниже 1:80 имели 9 человек из 32 (28,13%), а в III группе - 5 из 25 (20%). Различия величины СГТ между I и II, I и III, II и III группами не существенны (р>0,05) (табл. 2).The results of the evaluation of the immune response to the pertussis component of combination vaccines according to the agglutination reaction are given in table. 2. In the observation group I, only 4 children out of 36 (11.11%) had antibody titers lower (<1:80). While in group II, antibody titers below 1:80 had 9 out of 32 people (28.13%), and in group III - 5 out of 25 (20%). Differences in the value of GHG between I and II, I and III, II and III groups are not significant (p> 0.05) (Table 2).

Структура иммунного ответа на гепатитный компонент приведена в табл. 3. Как видно, через месяц после завершения цикла вакцинации 100% детей в первой группе имели уровень анти-HBs значительно выше защитного (>10 МЕ/л). При этом 50% детей имели титры анти - HBs в диапазоне 100-1000 МЕ/л. Во второй группе 5 детей (15,62%) не дали иммунного ответа и процент сероконверсии по группе составил 84,38%. Между тем, различия величины СГТ анти-HBs между I и II группами не существенны (р>0,05). Следует отметить, что суммарная доза HBsAg, веденного в составе новой вакцины, составила 15 мкг, а при одновременном введении АКДС-вакцины и вакцины гепатита В - 30 мкг.The structure of the immune response to the hepatitis component is given in table. 3. As can be seen, one month after the completion of the vaccination cycle, 100% of the children in the first group had an anti-HBs level significantly higher than the protective level (> 10 IU / L). Moreover, 50% of children had anti-HBs titers in the range of 100-1000 IU / L. In the second group, 5 children (15.62%) did not give an immune response and the percentage of seroconversion in the group was 84.38%. Meanwhile, the differences in the value of the CGT of anti-HBs between groups I and II are not significant (p> 0.05). It should be noted that the total dose of HBsAg administered as part of the new vaccine was 15 mcg, and with the simultaneous administration of DTP vaccine and hepatitis B vaccine, 30 mcg.

Таким образом можно констатировать следующее:Thus, we can state the following:

1. Новая комбинированная вакцина стимулирует иммунный ответ на все четыре входящих в ее состав компонента. После завершения первичного курса вакцинации 100% детей имели защитные титры антител против дифтерии, столбняка и гепатита В.1. The new combination vaccine stimulates the immune response to all four of its constituent components. After completing the initial course of vaccination, 100% of children had protective titers of antibodies against diphtheria, tetanus and hepatitis B.

2. Титры антител против коклюша, равные или превышающие защитные (1:160), имели свыше 70% вакцинированных детей. При этом аналогичный показатель в группах сравнения составлял не более 60%.2. Anti-pertussis antibody titers equal to or greater than protective (1: 160) had over 70% of vaccinated children. Moreover, a similar indicator in the comparison groups was not more than 60%.

Figure 00000007
Figure 00000008
Figure 00000009
Figure 00000007
Figure 00000008
Figure 00000009

Claims (2)

1. Комбинированная вакцина для иммунопрофилактики коклюша, дифтерии, столбняка и вирусного гепатита В и Д, содержащая коклюшные микробы, антигены дифтерии, столбняка, вирусного гепатита В (HBsAg), гель алюминия гидроксида, мертиолят и растворитель, отличающаяся тем, что в качестве антигена вируса гепатита В вакцина содержит HBsAg/ayw, полученный культивированием штамма дрожжей Pichia angusta VKM Y-2924D и/или HBsAg/adw, полученный культивированием штамма дрожжей Hansenula Polymorpha VKPM Y-2412, а в качестве растворителя 0,9%-ный раствор натрия хлорида при следующих количествах компонентов:1. A combined vaccine for the prevention of pertussis, diphtheria, tetanus and viral hepatitis B and D, containing pertussis, microbes, diphtheria antigens, tetanus, viral hepatitis B (HBsAg), aluminum hydroxide gel, merthiolate and a solvent, characterized in that as a virus antigen The hepatitis B vaccine contains HBsAg / ayw obtained by cultivating the yeast strain Pichia angusta VKM Y-2924D and / or HBsAg / adw obtained by cultivating the yeast strain Hansenula Polymorpha VKPM Y-2412, and as a solvent 0.9% sodium chloride solution with following quantities components: Поверхностный антиген вирусаVirus surface antigen гепатита В (HBsAg/ayw), полученныйhepatitis B (HBsAg / ayw) obtained культивированием штамма дрожжейculturing a yeast strain Pichia angusta VKM Y-2924D, и/илиPichia angusta VKM Y-2924D, and / or поверхностный антиген вирусаvirus surface antigen гепатита В (HBsAg/adw), полученныйhepatitis B (HBsAg / adw) obtained культивированием штамма дрожжейculturing a yeast strain Н. Polymorpha VKPM Y-2412 5-10 мкг HBsAgH. Polymorpha VKPM Y-2412 5-10 μg HBsAg Убитые формальдегидомKilled with formaldehyde коклюшные микробы 6,0-10 млрдpertussis microbes 6.0-10 billion Дифтерийный анатоксин 7,5-15 LfDiphtheria toxoid 7.5-15 Lf Столбнячный анатоксин 5-10 ЕСTetanus toxoid 5-10 EU Гель алюминия гидроксида (Аl3+) 0,3-0,5 мгGel of aluminum hydroxide (Al 3+ ) 0.3-0.5 mg Мертиолят (консервант) 35-50 мкгMerthiolate (preservative) 35-50 mcg 0,9%-ный Раствор хлорида натрия До 0,5 мл0.9% Sodium Chloride Solution Up to 0.5 ml 2. Комбинированная вакцина для иммунопрофилактики коклюша, дифтерии, столбняка и вирусного гепатита В по п.1, отличающаяся тем, что поверхностные антигены вируса гепатита В (HbsAg/ayw) и (HBsAg/adw) содержатся в соотношении 1:1.2. The combined vaccine for the prevention of pertussis, diphtheria, tetanus and viral hepatitis B according to claim 1, characterized in that the surface antigens of hepatitis B virus (HbsAg / ayw) and (HBsAg / adw) are contained in a ratio of 1: 1.
RU2003108791/13A 2003-03-31 2003-03-31 Mixed vaccine for immunoprophylaxis of whooping cough, diphtheria, tetanus and viral hepatitis b and d RU2233673C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2003108791/13A RU2233673C1 (en) 2003-03-31 2003-03-31 Mixed vaccine for immunoprophylaxis of whooping cough, diphtheria, tetanus and viral hepatitis b and d

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2003108791/13A RU2233673C1 (en) 2003-03-31 2003-03-31 Mixed vaccine for immunoprophylaxis of whooping cough, diphtheria, tetanus and viral hepatitis b and d

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2233673C1 true RU2233673C1 (en) 2004-08-10
RU2003108791A RU2003108791A (en) 2004-10-27

Family

ID=33414214

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2003108791/13A RU2233673C1 (en) 2003-03-31 2003-03-31 Mixed vaccine for immunoprophylaxis of whooping cough, diphtheria, tetanus and viral hepatitis b and d

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2233673C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2005023297A1 (en) * 2003-08-29 2005-03-17 Rhein Biotech Gesellschaft für neue Biotechnologische Prozesse und Produkte mbH Composition for the prophylaxis/treatment of hbv infections and hbv-mediated diseases

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2005023297A1 (en) * 2003-08-29 2005-03-17 Rhein Biotech Gesellschaft für neue Biotechnologische Prozesse und Produkte mbH Composition for the prophylaxis/treatment of hbv infections and hbv-mediated diseases

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4790987A (en) Viral glycoprotein subunit vaccine
US6210685B1 (en) Antigenic preparations and isolation of such preparations
JPH085804B2 (en) Hepatitis A and B mixed adjuvant vaccine
PT97159B (en) A process for the preparation of a hepatitis B surface antigen or a fragrance thereof and a method for the preparation of a vaccine
GB2217600A (en) Vaccine preparation
US4816253A (en) Novel mutant strain of Listeria monocytogenes and its use in production of IgM antibodies and as an immunotherapeutic agent
CN103992988B (en) A kind of monoclonal antibody of the anti-canine distemper disease viral N proteins of hybridoma cell strain and generation thereof
EP0008969B1 (en) Vaccine and method of making
Brown et al. Antibody responses to recombinant and plasma derived hepatitis B vaccines.
US4567041A (en) Mutant strain of Listeria monocytogenes and its use in production of IgM antibodies and as an immunotherapeutic agent
Brown et al. Human foamy virus: further characterization, seroepidemiology, and relationship to chimpanzee foamy viruses
WO2021206638A1 (en) Vaccine and/or antibody for viral infection
KR100401423B1 (en) A Manufacturing Method of Combined Vaccine
EP0016755A1 (en) Neisseria gonorrhoeae vaccine
CN103724413B (en) Trichina paramyosin B cell antigen epi-position 8A1 and application thereof
JP2999480B2 (en) Methods for obtaining protective antigens against pertussis infection and toxic processes
CN102167735A (en) Recombinant antigen protein of S.japonicum SjTollip and preparation method and application thereof
RU2233673C1 (en) Mixed vaccine for immunoprophylaxis of whooping cough, diphtheria, tetanus and viral hepatitis b and d
JP2911603B2 (en) A novel attenuated Pseudomonas aeruginosa strain
CN116763911A (en) Subunit vaccine containing mycobacterium tuberculosis latent secretion antigen HspX
RU2233672C1 (en) Mixed vaccine for immunoprophylaxis of viral hepatitis b and d, tetanus and diphtheria
EP4190799A1 (en) Amino acid sequence derived from sars-cov-2 and use thereof
US5183658A (en) Hantaan virus strain ROK84/105 and vaccine therefor
CN106749551A (en) A kind of method that antibody is produced with multi-epitope peptide fragment combined antigen stimulating immune system
RU2238105C1 (en) Recombinant vaccine for preventing viral hepatitis b (variants)