RU2223777C2 - Method for prophylaxis and treatment of experimental chronic pancreatitis and hepatitis - Google Patents

Method for prophylaxis and treatment of experimental chronic pancreatitis and hepatitis Download PDF

Info

Publication number
RU2223777C2
RU2223777C2 RU2002110735/14A RU2002110735A RU2223777C2 RU 2223777 C2 RU2223777 C2 RU 2223777C2 RU 2002110735/14 A RU2002110735/14 A RU 2002110735/14A RU 2002110735 A RU2002110735 A RU 2002110735A RU 2223777 C2 RU2223777 C2 RU 2223777C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
treatment
herb
hepatitis
grass
infusion
Prior art date
Application number
RU2002110735/14A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2002110735A (en
Inventor
Х.М. Насыров
Т.И. Плеханова
К.А. Пупыкина
Ч.А. Петрова
Ф.А. Каюмов
Original Assignee
Петрова Чулпан Азифовна
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Петрова Чулпан Азифовна filed Critical Петрова Чулпан Азифовна
Priority to RU2002110735/14A priority Critical patent/RU2223777C2/en
Publication of RU2002110735A publication Critical patent/RU2002110735A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2223777C2 publication Critical patent/RU2223777C2/en

Links

Images

Abstract

FIELD: medicine, experimental pharmacology, phytotherapy. SUBSTANCE: for prophylaxis and treatment of indicated diseases method involves administration of species infusion in the concentration 1:10. Infusion comprises the following components: big burdock roots, swampy cudweed herb, marsh-mallow roots, glabrous licorice roots, common oak bark, medicinal sweet clove herb, common motherwort herb, knot-grass herb, purple coneflower herb, colt's foot leaves, walnut leaves taken in the ratio = 2:1:2:2:2:2:1:1:1:2: 1, respectively. Infusion is given in the dose 0.3 ml per 100 g of body mass of laboratory animal for 10 days. Invention is directed for the enhanced effectiveness in prophylaxis and treatment of chronic pancreatitis and hepatitis developing simultaneously. EFFECT: enhanced effectiveness of method. 16 dwg, 3 ex

Description

Предлагаемая группа изобретений относится к медицине, а именно к экспериментальной и клинической фармакологии и может быть использована для профилактики и лечения хронического панкреатита и гепатита в эксперименте и для одновременного моделирования хронического панкреатита и гепатита. The proposed group of inventions relates to medicine, namely to experimental and clinical pharmacology and can be used for the prevention and treatment of chronic pancreatitis and hepatitis in the experiment and for the simultaneous modeling of chronic pancreatitis and hepatitis.

Задача, решаемая группой изобретений, - получение способа профилактики и лечения хронического панкреатита и гепатита, которые, как показывает практика, часто развиваются параллельно. Для разработки такого способа было осуществлено второе изобретение, направленное на создание одновременной модели хронического панкреатита и гепатита. The problem solved by the group of inventions is to obtain a method for the prevention and treatment of chronic pancreatitis and hepatitis, which, as practice shows, often develop in parallel. To develop such a method, the second invention was carried out, aimed at creating a simultaneous model of chronic pancreatitis and hepatitis.

Таким образом, заявленная группа изобретений связана единым изобретательским замыслом. Thus, the claimed group of inventions is associated with a single inventive concept.

Авторами в научно-медицинской и патентной литературе не было найдено сведений о профилактике и лечении хронического панкреатита и гепатита одновременно, но известны и были найдены некоторые способы лечения указанных заболеваний по отдельности, в то же время о профилактике не было найдено никакой информации. The authors in the medical and patent literature did not find information on the prevention and treatment of chronic pancreatitis and hepatitis at the same time, but some methods for treating these diseases separately were known and found, while no information was found on prevention.

Известен способ лечения хронического панкреатита с помощью сбора лекарственных растений: трава полыни горькой, цветы ромашки аптечной, трава зверобоя продырявленного, трава сушеницы болотной, лист мяты перечной, корни девясила высокого, взятых в соотношении 1,5:2:2:2:1,5:2. /Ногаллер А.М., Николаева В. Г., Алексеев В.Ф. // Фитотерапия заболеваний органов пищеварения. Рязань, 1987, с.86-89/. There is a method of treating chronic pancreatitis using the collection of medicinal plants: bitter wormwood grass, pharmacy chamomile flowers, perforated St. John's wort grass, swamp grass, peppermint leaf, elecampane roots, taken in a ratio of 1.5: 2: 2: 2: 1, 5: 2. / Nogaller A.M., Nikolaeva V.G., Alekseev V.F. // Herbal medicine for diseases of the digestive system. Ryazan, 1987, p. 86-89 /.

Известен способ лечения токсических и вирусных гепатитов с помощью гепатопротектора растительного происхождения - силибора /Скакун П.П. и соавт. // Фармация. - 1987. - 6. - с. 13-17/; сбора "Гепафит"/ Патент 2128515 от 10.04.99/. A known method of treating toxic and viral hepatitis using hepatoprotector of plant origin - Silibora / Skakun P.P. et al. // Pharmacy. - 1987. - 6. - p. 13-17 /; collection "Hepafit" / Patent 2128515 from 04/10/99 /.

Авторами в научно-медицинской и патентной литературе не обнаружено сведений об одновременной модели хронического панкреатита и гепатита, при этом известно, что при поражении поджелудочной железы поражается также печень и, наоборот, что часто наблюдается в клинике. Известны лишь способы моделирования хронического панкреатита и гепатита по отдельности. The authors in the medical and patent literature did not find information about the simultaneous model of chronic pancreatitis and hepatitis, while it is known that when the pancreas is affected, the liver is also affected and, conversely, that is often observed in the clinic. Only methods for modeling chronic pancreatitis and hepatitis separately are known.

Для моделирования хронического панкреатита известен метод хирургического вмешательства, при этом в проток поджелудочной железы вводится трипсин /Патологическая физиология // под редакцией Адо А.Д., Новицкого В.В. Томск: Изд-во Томского ун-та, 1994, с.371/. To simulate chronic pancreatitis, the method of surgical intervention is known, while trypsin / Pathological physiology is introduced into the pancreatic duct // edited by Ado A.D., Novitsky V.V. Tomsk: Publishing house of Tomsk University, 1994, p. 371 /.

Для моделирования хронического гепатита использовались различные химические вещества: четыреххлористый углерод /Николаев С.М. // Растительные лекарственные препараты при повреждении гепатобилиарной системы. - Новосибирск, 1992 г., с.70/; тетрациклин /Бараклая А.И., Прохорова А.М. // Антибиотики. - 1967. 8 - с.708-711/. For the modeling of chronic hepatitis, various chemicals were used: carbon tetrachloride / Nikolaev S.M. // Herbal medicines for damage to the hepatobiliary system. - Novosibirsk, 1992, p. 70 /; tetracycline / Baraclay A.I., Prokhorova A.M. // Antibiotics. - 1967.8 - p.708-711 /.

Технический результат - профилактика и лечение одновременного хронического панкреатита и гепатита. The technical result is the prevention and treatment of simultaneous chronic pancreatitis and hepatitis.

Способ иллюстрируется следующими фигурами:
Фиг.1. Обширная зона некроза печени после интоксикации совтолом. Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, об.10, ок.40.
The method is illustrated by the following figures:
Figure 1. An extensive zone of liver necrosis after intoxication with sovtol. Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, vol. 10, approx. 40.

Фиг. 2. Деструктивные процессы экзокринной части поджелудочной железы после интоксикации совтолом. Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, об.10, ок.40. FIG. 2. Destructive processes of the exocrine part of the pancreas after intoxication with sovtol. Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, vol. 10, approx. 40.

Фиг. 3. Зона центральной вены зоны печени контрольной группы животных (здоровых). Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, об.10, ок.40. FIG. 3. The zone of the central vein of the liver zone of the control group of animals (healthy). Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, vol. 10, approx. 40.

Фиг. 4. Эндокринная и экзокринная части поджелудочной железы контрольной группы животных (здоровых). Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, об.10, ок.40. FIG. 4. The endocrine and exocrine parts of the pancreas of the control group of animals (healthy). Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, vol. 10, approx. 40.

Фиг. 5. Мелкокапельные жировые включения в гепатоцитах при интоксикации совтолом и последующем лечении предлагаемым сбором. Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, об.10, ок.40. FIG. 5. Small droplet fat inclusions in hepatocytes during intoxication with sovtol and subsequent treatment with the proposed collection. Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, vol. 10, approx. 40.

Фиг. 6. Экзокринная часть поджелудочной железы при интоксикации совтолом и последующем лечении предлагаемым сбором. Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, об.10, ок.40. FIG. 6. The exocrine part of the pancreas during intoxication with sovtol and subsequent treatment with the proposed collection. Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, vol. 10, approx. 40.

Фиг. 7. Уменьшение жировых вакуолей в центральной части дольки печени после интоксикации совтолом, когда до интоксикации с профилактической целью вводили предлагаемый сбор. Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, об.10, ок. 40. FIG. 7. Reduction of fat vacuoles in the central part of the liver lobule after intoxication with sovtol, when the proposed collection was introduced before intoxication for prophylactic purposes. Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, vol. 10, approx. 40.

Фиг. 8. Слабо выраженные деструктивные изменения поджелудочной железы после интоксикации совтолом, когда до интоксикации с профилактической целью вводился предлагаемый сбор. Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, об.10, ок.90. FIG. 8. Weakly expressed destructive changes in the pancreas after intoxication with sovtol, when the proposed collection was introduced before intoxication for prophylactic purposes. Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, vol. 10, approx. 90.

Фиг.9. Диффузная жировая дистрофия в зоне триады печени при интоксикации совтолом и последующем лечении панкреатином. Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, об.10, ок.20. Fig.9. Diffuse fatty degeneration in the zone of the liver triad during intoxication with sovtol and subsequent treatment with pancreatin. Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, vol. 10, approx. 20.

Фиг. 10. Деструктивные процессы экзокринной части поджелудочной железы при интоксикации совтолом и последующем лечении панкреатином. Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, об.10, ок.40. FIG. 10. Destructive processes of the exocrine part of the pancreas during intoxication with sovtol and subsequent treatment with pancreatin. Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, vol. 10, approx. 40.

Предлагаемый способ профилактики и лечения осуществляют следующим образом: крысам вводят в концентрации 1:10 настой сбора, содержащего корни алтея лекарственного, солодки голой, лопуха большого, траву сушеницы топяной, донника лекарственного, пустырника обыкновенного, горца птичьего, эхинацеи пурпурной, кору дуба обыкновенного, листья мать-и-мачехи, грецкого ореха, взятых в соотношении 2:2:2:1:2:1:1:1:2:2:1. Настой вводят внутрижелудочно в дозе 0,3 мл на 100 г массы тела в течение 10 дней. The proposed method of prevention and treatment is as follows: rats are injected at a concentration of 1:10 infusion of the collection containing the roots of the marshmallow medicinal, licorice, burdock big, grass dried cinnamon, sweet clover, motherwort, birdwort, Echinacea purpurea, bark of ordinary oak, leaves of coltsfoot, walnut, taken in a ratio of 2: 2: 2: 1: 2: 1: 1: 1: 2: 2: 1. The infusion is administered intragastrically at a dose of 0.3 ml per 100 g of body weight for 10 days.

В эксперименте участвовало 5 групп по 10 животных. The experiment involved 5 groups of 10 animals.

Первой группе крыс 10 дней с профилактической целью вводили внутрижелудочно настой сбора в дозе 0,3 мл на 100 г массы тела. Настой сбора готовили в концентрации 1:10 в соответствии с требованиями ГФ XI. The first group of rats was injected intragastrically with a collection dose of 0.3 ml per 100 g of body weight for 10 days as a prophylactic. The collection infusion was prepared at a concentration of 1:10 in accordance with the requirements of Global Fund XI.

Вторая группа находилась на обычной диете вивария. The second group was on a regular vivarium diet.

После 10 дней обе группы начали получать "совтол", состоящий из смеси полихлорированных бифенилов и трихлорбензола. Совтол разводили до 5% концентрации в оливковом масле и вводили внутрижелудочно в дозе 0,12 мл на 100 г массы тела животного в течение 12 дней. After 10 days, both groups began to receive "Sovtol", consisting of a mixture of polychlorinated biphenyls and trichlorobenzene. Sovtol was diluted to 5% concentration in olive oil and was administered intragastrically at a dose of 0.12 ml per 100 g of animal body weight for 12 days.

После интоксикации всех крыс забили декапитацией под легким эфирным наркозом, извлекли поджелудочную железу и печень, которые фиксировали в 10% формалине и залили в парафин для проведения гистологического анализа. After intoxication, all rats were killed by decapitation under mild ether anesthesia, the pancreas and liver were removed, which were fixed in 10% formalin and embedded in paraffin for histological analysis.

Способ иллюстрируется фиг.7 и 8. The method is illustrated in Fig.7 and 8.

Остальным трем группам по 10 крыс в каждой вводили 5% раствор совтола в оливковом масле в дозе 0,12 мл на 100 г массы животного в течение 12 дней. В процессе эксперимента наблюдали гибель 17 животных от отравления (42,5%). The remaining three groups of 10 rats each were administered a 5% solution of sovtol in olive oil at a dose of 0.12 ml per 100 g of animal weight for 12 days. During the experiment, the death of 17 animals from poisoning was observed (42.5%).

Через 12 дней оставшихся в живых животных одной группы забили декапитацией под легким эфирным наркозом. Из остальных животных сформировали 2 группы по 5-6 крыс в каждой для последующего лечения. After 12 days, the surviving animals of one group were killed by decapitation under mild ether anesthesia. Of the remaining animals, 2 groups of 5-6 rats were formed in each for subsequent treatment.

Первую группу лечили введением панкреатина в дозе 0,4 мл на 100 г массы тела животного. The first group was treated with the introduction of pancreatin in a dose of 0.4 ml per 100 g of animal body weight.

Вторую группу лечили введением предлагаемого сбора в дозе 0,3 мл на 100 г массы тела животного. The second group was treated by introducing the proposed collection at a dose of 0.3 ml per 100 g of animal body weight.

Лечение продолжали в течение 10 дней. The treatment was continued for 10 days.

В процессе лечения смертей не наблюдали, после окончания лечения животных забили декапитацией под легким эфирным наркозом. Поджелудочную железу и печень фиксировали в 10% формалина и заливали в парафин для дальнейшего гистологического исследования. No deaths were observed during treatment; after the treatment was completed, the animals were killed by decapitation under light ether anesthesia. The pancreas and liver were fixed in 10% formalin and embedded in paraffin for further histological examination.

Способ иллюстрируется следующими фигурами: интоксикация совтолом - 1, 2; лечение панкреатином (группа сравнения) - 9, 10; лечение сбором - 5, 6; здоровые - 3, 4. The method is illustrated by the following figures: intoxication sovtol - 1, 2; Pancreatin treatment (comparison group) - 9, 10; collection treatment - 5, 6; healthy - 3, 4.

Технический результат предлагаемого изобретения - одновременное моделирование хронического панкреатита и гепатита. Способ иллюстрируется следующими фигурами:
Фиг.11. Дистрофия и некроз гепатоцитов с образованием жиробелкового детрита при интоксикации совтолом. Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, ок. 10, об.40.
The technical result of the invention is the simultaneous modeling of chronic pancreatitis and hepatitis. The method is illustrated by the following figures:
11. Dystrophy and necrosis of hepatocytes with the formation of fat-protein detritus during intoxication with sovtol. Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, approx. 10, vol. 40.

Фиг.12. Жировая дистрофия печени при интоксикации совтолом. Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, ок.10, об.40. Fig. 12. Fatty degeneration of the liver with intoxication with sovtol. Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, approx. 10, vol. 40.

Фиг. 13. При интоксикации совтолом вокруг плотного панкреатического островка ацинусы увеличиваются и окрашиваются оксифильно, их сероциты заполнены секреторными гранулами. Остальные концевые отделы уплотнены и лишены зимогенных и гомогенных зон. Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, ок.10, об. 40. FIG. 13. During intoxication with sovtol around a dense pancreatic islet, the acini increase and become oxyphilic, their serocytes are filled with secretory granules. The remaining end sections are densified and devoid of zymogenic and homogeneous zones. Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, approx. 10, vol. 40.

Фиг. 14. Деструкция секреторных отделов поджелудочной железы при интоксикации совтолом. Концевые отделы уменьшены в размерах. Ациноциты лишены зимогенной и гомогенной зон, границы клеток не определяются. Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, ок.10, об.40. FIG. 14. The destruction of the secretory departments of the pancreas during intoxication with sovtol. End sections are reduced in size. Acinocytes are deprived of zymogenic and homogeneous zones, cell boundaries are not determined. Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, approx. 10, vol. 40.

Фиг.15. Эндокринная и экзокринная части поджелудочной железы контрольной группы животных (здоровых). Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, об.10, ок.40. Fig.15. The endocrine and exocrine parts of the pancreas of the control group of animals (healthy). Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, vol. 10, approx. 40.

Фиг. 16. Зона центральной вены печени контрольной группы животных (здоровых). Окраска гематоксилин-эозин. Микрофото, об.10, ок.40. FIG. 16. The zone of the central vein of the liver of the control group of animals (healthy). Hematoxylin-eosin stain. Microphoto, vol. 10, approx. 40.

Предлагаемый способ осуществляется следующим образом. The proposed method is as follows.

Крысам вводят 5% раствор "совтола", представляющего собой смесь полихлорированных бифенилов и трихлорбензола /Тутельян В.А. и соавт., 1983 г./ в оливковом масле в дозе 0,12 мл на 100 г массы животного однократно, внутрижелудочно с помощью зонда в течение 12 дней. Оптимальный режим введения установлен экспериментальным путем. Rats were injected with a 5% solution of Sovtol, which is a mixture of polychlorinated biphenyls and trichlorobenzene / Tutelyan V.A. et al., 1983 / in olive oil at a dose of 0.12 ml per 100 g of animal mass once, intragastrically with a probe for 12 days. The optimal mode of administration was established experimentally.

После интоксикации наблюдали яркую картину отравления: животные имели нездоровый вид, были пассивны, все потеряли от первоначальной массы от 10 до 30%, из 40 животных наблюдали гибель 17 животных, что составляет 42,5%. After intoxication, a vivid picture of poisoning was observed: the animals had an unhealthy appearance, were passive, all lost from the original mass from 10 to 30%, out of 40 animals, 17 animals died, which is 42.5%.

После опыта оставшихся в живых крыс забивали декапитацией под легким эфирным наркозом. Для гистологического изучения поджелудочную железу и печень фиксировали в 10% формалине и заливали в парафин. Срезы толщиной в 7 мкм окрашивали гематоксилин-эозином. After the experiment, the surviving rats were killed by decapitation under light ether anesthesia. For histological examination, the pancreas and liver were fixed in 10% formalin and embedded in paraffin. Sections 7 μm thick were stained with hematoxylin-eosin.

Как показали наши опыты, у экспериментальных животных после интоксикации совтолом развились токсический некроз и жировой гепатит. As our experiments showed, in experimental animals, after intoxication with sovtol, toxic necrosis and fatty hepatitis developed.

В поджелудочной железе наблюдали хронический панкреатит, выражающийся в виде деструктивных процессов отдельных или групп ацинусов, а также островкового аппарата. In the pancreas, chronic pancreatitis was observed, expressed in the form of destructive processes of individual or groups of acini, as well as the islet apparatus.

Пример 1. Example 1

Одной крысе массой 250 г с профилактической целью вводили настой сбора в концентрации 1: 10, приготовленный в соответствии с требованиями ГФ XI один раз в день в течение 10 дней. После профилактики вводили 5% раствор совтола в оливковом масле в дозе 0,12 мл на 100 г массы тела животного в течение 12 дней. По окончании срока крысу забили декапитацией под легким эфирным наркозом, поджелудочную железу и печень фиксировали в 10% формалине и залили в парафин для гистологического исследования. One rat weighing 250 g was injected as a prophylactic with a collection infusion at a concentration of 1: 10, prepared in accordance with the requirements of GF XI once a day for 10 days. After prophylaxis, a 5% solution of Sovtol in olive oil was administered at a dose of 0.12 ml per 100 g of animal body weight for 12 days. At the end of the term, the rat was killed by decapitation under light ether anesthesia, the pancreas and liver were fixed in 10% formalin and embedded in paraffin for histological examination.

Как видно из предлагаемых фигур (7, 8), по сравнению с контролем (см. пример 3) у крыс, получавших с профилактической целью сбор, отмечено более легкое течение, менее выражена симптоматика и тяжесть заболеваний. Также отмечено отсутствие смертей в процессе интоксикации. As can be seen from the proposed figures (7, 8), in comparison with the control (see example 3), in rats receiving prophylactic collection, a milder course was noted, the symptoms and severity of the diseases were less pronounced. The absence of deaths during intoxication was also noted.

Пример 2. Example 2

Двум здоровым крысам вводили 5% раствор совтола в оливковом масле в течение 12 дней. После одну крысу забили декапитацией под легким эфирным наркозом. Two healthy rats were injected with a 5% solution of Sovtol in olive oil for 12 days. After one rat was killed by decapitation under mild ether anesthesia.

Оставшуюся крысу лечили в течение 10 дней настоем сбора. По окончании лечения крысу забили декапитацией под легким эфирным наркозом. Поджелудочную железу и печень всех крыс фиксировали в 10% формалине и залили в парафин для гистологического исследования. Результаты на следующих фигурах: лечение - 5, 6; интоксикация - 1, 2; здоровые - 3, 4. The remaining rat was treated for 10 days with infusion collection. At the end of treatment, the rat was killed by decapitation under light ether anesthesia. The pancreas and liver of all rats were fixed in 10% formalin and embedded in paraffin for histological examination. The results in the following figures: treatment - 5, 6; intoxication - 1, 2; healthy - 3, 4.

Пример 3. Example 3

Здоровой крысе массой 250 г вводили 5% раствор совтола в оливковом масле в дозе 0,12 мл на 100 г массы тела животного. Режим введения: однократно с помощью зонда 12 дней. После интоксикации крысу забили декапитацией под легким эфирным наркозом. Поджелудочную железу и печень фиксировали в 10% формалине и залили в парафин. После провели гистологическое исследование этих органов. A healthy rat weighing 250 g was injected with a 5% solution of Sovtol in olive oil at a dose of 0.12 ml per 100 g of animal body weight. Administration: once with a probe for 12 days. After intoxication, the rat was killed by decapitation under mild ether anesthesia. The pancreas and liver were fixed in 10% formalin and embedded in paraffin. After conducted a histological examination of these organs.

Способ иллюстрируется следующими фигурами: интоксикация - 11, 12, 13, 14; здоровые - 15, 16. The method is illustrated by the following figures: intoxication - 11, 12, 13, 14; healthy - 15, 16.

Claims (1)

Способ профилактики и лечения хронического панкреатита и гепатита в эксперименте, характеризующийся тем, что вводят настой сбора в концентрации 1:10, содержащего корни лопуха большого, траву сушеницы топяной, корни алтея лекарственного, солодки голой, кору дуба обыкновенного, траву донника лекарственного, траву пустырника обыкновенного, траву горца птичьего, траву эхинацеи пурпурной, листья мать-и-мачехи, листья грецкого ореха, взятых в соотношении 2:1:2:2:2:2:1:1:1:2:1, при этом его вводят в дозе 0,3 мл на 100 г массы тела лабораторного животного в течение 10 дней.A method for the prevention and treatment of chronic pancreatitis and hepatitis in an experiment, characterized in that the infusion is collected at a concentration of 1:10, containing roots of burdock, grass of dried cinnamon, medicinal marshmallow roots, naked licorice, common oak bark, medicinal sweet clover grass, motherwort grass ordinary, grass of the mountaineer bird, grass of Echinacea purpurea, leaves of coltsfoot, leaves of walnut taken in a ratio of 2: 1: 2: 2: 2: 2: 1: 1: 1: 2: 1, while it is introduced at a dose of 0.3 ml per 100 g of body weight of a laboratory animal during of 10 days.
RU2002110735/14A 2002-04-22 2002-04-22 Method for prophylaxis and treatment of experimental chronic pancreatitis and hepatitis RU2223777C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002110735/14A RU2223777C2 (en) 2002-04-22 2002-04-22 Method for prophylaxis and treatment of experimental chronic pancreatitis and hepatitis

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002110735/14A RU2223777C2 (en) 2002-04-22 2002-04-22 Method for prophylaxis and treatment of experimental chronic pancreatitis and hepatitis

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2002110735A RU2002110735A (en) 2003-12-10
RU2223777C2 true RU2223777C2 (en) 2004-02-20

Family

ID=32172606

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2002110735/14A RU2223777C2 (en) 2002-04-22 2002-04-22 Method for prophylaxis and treatment of experimental chronic pancreatitis and hepatitis

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2223777C2 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
НОГАЛЛЕР А.М. и др. Фитотерапия заболеваний органов пищеварения. - Рязань, 1987, с.86-89. НИКОЛАЕВ С.М. Растительные лекарственные препараты при повреждении гепатобилиарной системы. - Новосибирск, 1992, с.70. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Peiris et al. Evaluation of aqueous leaf extract of Cardiospermum halicacabum (L.) on fertility of male rats
Nandy et al. Acute and sub-acute toxicity studies of methanolic leaves extract of Pterospermum acerifolium (L.) Willd in rodents.
Taghizadeh et al. Sub-chronic oral toxicity of Cuminum cyminum L.’s essential oil in female Wistar rats
Kowacz et al. Propolis-induced exclusion of colloids: Possible new mechanism of biological action
Murugan et al. Safety evaluation of standardized extract of curcuma longa (NR-INF-02): a 90-day subchronic oral toxicity study in rats
Khandia et al. Evaluation of the ameliorative effects of Phyllanthus niruri on the deleterious insecticide imidacloprid in the vital organs of chicken embryos
Koontongkaew et al. Safety evaluation of Zingiber cassumunar Roxb. rhizome extract: acute and chronic toxicity studies in rats
Binitha et al. Hepatoprotective effect of Lobelia alsinoides Lam. in Wistar rats
Aigbe et al. Evaluation of the toxicity potential of acute and sub-acute exposure to the aqueous root extract of Aristolochia ringens Vahl.(Aristolochiaceae)
Taghavi et al. Outcome of Capparisspinosa fruit extracts treatment on liver, kidney, pancreas and stomach tissues in normal and diabetic rats
Wattanathorn et al. Neurotoxicity of Coscinium fenestratum stem, a medicinal plant used in traditional medicine
Sarker et al. In-vitro and in-vivo pharmacological activities with phytochemical evaluation of methanolic extract of Microcos paniculata stem barks
RU2223777C2 (en) Method for prophylaxis and treatment of experimental chronic pancreatitis and hepatitis
Nwawuba et al. Ameliorative effect of aqueous seed extract of delonix regia on hyperglycemia, liver function and lipid profile levels in Streptozotocin induced Diabetic Male wistar rats
Elijah et al. Paracetamol-induced liver damage and effect of prosopis africana seeds extract on liver marker enzymes of wistar albino rats
Reddy et al. Acute toxicological studies of leaf extracts of Morus indica L. in rats
Fannami et al. Adansonia digitata L. fruit shell extract alleviates lead-induced neurotoxicity in mice via modulation of oxidative stress and a possible chelating activity
RU2271041C2 (en) Method for simultaneous modeling of chronic pancreatitis and hepatitis
Asaad et al. Toxicity of Cadmium Chloride on White Rats Liver and the Protective Role of Brassica Nigra Seed Extract
Shauli et al. Acute toxicity and 28-day oral administration of euclea natalensis extract in Swiss albino mice
Al-Amin Sarker et al. In-Vitro and In-Vivo Pharmacological Activities with Phytochemical Evaluation of Methanolic Extract of Microcos paniculata Stem Barks
Bukhbayar et al. The protective effect of traditional medicine tagtaggunsel on carbon tetrachloride induced chronic liver cirrhosis in a rat model
Manu et al. Ethanolic Extract of syzygium cumini causes toxic effects on ethanol-induced liver and kidney damage in albino Wistar rats: A biochemical and histological study
Jayakanthi et al. The protective potential effects of Atropa acuminata on acetaminophen induced hepatotoxicity and oxidative stress in male albino rats
Ramya et al. Short-term toxicity profile of ethanol extract of Solanum erianthum leaf in rats

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20040423