RU2191829C2 - Способ оценки эффективности дезинфектантов и антисептиков - Google Patents

Способ оценки эффективности дезинфектантов и антисептиков Download PDF

Info

Publication number
RU2191829C2
RU2191829C2 RU2000117652A RU2000117652A RU2191829C2 RU 2191829 C2 RU2191829 C2 RU 2191829C2 RU 2000117652 A RU2000117652 A RU 2000117652A RU 2000117652 A RU2000117652 A RU 2000117652A RU 2191829 C2 RU2191829 C2 RU 2191829C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
disinfectant
antiseptic
effectiveness
cylinder
disinfectants
Prior art date
Application number
RU2000117652A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2000117652A (ru
Inventor
Г.Е. Афиногенов
М.В. Краснова
А.А. Доморад
Original Assignee
Российский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Р.Р.Вредена
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Российский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Р.Р.Вредена filed Critical Российский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии им. Р.Р.Вредена
Priority to RU2000117652A priority Critical patent/RU2191829C2/ru
Publication of RU2000117652A publication Critical patent/RU2000117652A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2191829C2 publication Critical patent/RU2191829C2/ru

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к микробиологии. В способе используют цилиндры, установленные на плотную питательную среду, содержащую естественный нейтрализатор. Вносят в цилиндры исследуемый препарат и инокулюм. Экспозицию проводят 5 мин. Затем прибавляют искусственный нейтрализатор. После чего оценивают эффективность препаратов. Способ менее трудоемок и позволяет снизить расход компонентов, 2 табл.

Description

Изобретение относится к области медицины, в частности к микробиологии.
Известен качественный способ определения чувствительности (устойчивости) бактерий к дезинфектантам [1], при котором взвесями бактерий с плотностью 2х109 КОЕ/мл контаминируют штифты штампа-репликатора и высушивают их в асептических условиях на воздухе при комнатной температуре. Затем осуществляют дезинфекцию штифтов в лунках штампа-репликатора, в которые внесен тестируемый раствор дезинфектанта. После 10-минутной экспозиции в дезинфектанте штифты переносят в лунки штампа-репликатора, заполненные нейтрализатором, соответствующим тестируемому дезинфектанту, и выдерживают в нем 10 мин. Контроль обеспечивается использованием стерильной дистиллированной воды вместо дезинфектанта. По истечении времени экспозиции опытные и контрольные репликаторы извлекают из нейтрализатора и осуществляют посев-реплику на среду АГВ или другую бактериологическую среду на чашках Петри. Инкубируют 48 ч при 37oС и учитывают наличие или отсутствие роста бактерий в зонах посевов-отпечатков, считая культуру устойчивой к тест-раствору дезинфектанта при наличии роста в зонах.
Наиболее близким техническим решением, выбранным в качестве прототипа, является количественный способ [2], при котором 8,0 мл тестируемого раствора смешивают с 1,0 мл микробной тест-суспензией плотностью 108 КОЕ/мл и 1,0 мл воды; активность препарата определяют для экспозиции 5 мин ±10 с, а также для двух дополнительных экспозиций в пределах 1-60 мин. Непосредственно перед окончанием очередной экспозиции зараженный раствор перемешивают, отбирают 1,0 мл микста и переносят в пробирку, содержащую 8,0 мл нейтрализатора и 1,0 мл воды; вновь перемешивают и оставляют на 5 мин для инактивации, после чего делают десятикратное разведение и производят высев из смеси с нейтрализатором и из разведения - по 1,0 мл на чашки CSA (казеин-соевый агар), методом смешивания с расплавленным агаром или методом распределения по твердой среде; инкубируют при 36-37oС в течение 42-48 ч, затем подсчитывают колонии на чашках и определяют количество микроорганизмов, выживших после воздействия дезинфектанта или антисептика; при этом КОЕ не менее 300 считают удовлетворяющим требованиям.
Однако известный способ достаточно трудоемок для выполнения скрининговых испытаний дезинфектантов и антисептиков, осуществляется в два этапа, предусматривает дополнительное титрование микста. При выполнении данного теста неизбежен значительный расход нейтрализующей смеси и ее компонентов. Кроме того, практика применения методов оценки дезинфекционных средств и антисептиков показывает, что необходимо обеспечить выполнение требования не только искусственной нейтрализации активного вещества, но и предусмотреть факт дополнительной естественной нейтрализации с целью приближения исследования к практическим условиям использования дезинфектантов и антисептиков, когда в качестве естественных нейтрализаторов выступают органические загрязнения или субстраты.
В предлагаемом способе авторы стремились упростить технику исполнения теста, приблизить условия испытания к условиям практического использования, а также снизить расход компонентов искусственной нейтрализующей смеси.
Сущность настоящего способа состоит в том, что используют цилиндры из инертного материала (дюраль или иной материал, не влияющий каким-либо образом на результат испытания) для создания временного микрорезервуара непосредственно на поверхности плотной питательной среды с добавлением естественного нейтрализатора (например, крови) и вносят в цилиндры раствор дезинфектанта (или антисептика) и инокулюм, для приготовления которого используют референс или госпитальные штаммы микроорганизмов. По истечении необходимого периода взаимодействия часть микста удаляют, а оставшееся количество дезинфектанта или антисептика инактивируется искусственным концентрированным нейтрализатором, после чего удаляют цилиндр, а содержавшаяся в нем жидкость распределяется по поверхности агара при помощи стерильного шпателя. Эффективность действия дезинфектанта или антисептика оценивается по коэффициенту редукции (Кред), указывающему на порядок снижения микробного числа в результате обработки инокулюма дезинфектантом или антисептиком, выражаемому в log10, который исчисляют после подсчета колоний, выросших на чашках по окончании периода инкубации и сравнения с контролем. При этом Кред, требуемый для дезинфектантов, составляет 5,0 и более; для антисептиков - от 1,0 до 5,0 [3].
Таким образом, предлагаемый способ отличается от известного использованием цилиндров в качестве микрорезервуаров; использованием плотной питательной среды с добавлением естественного нейтрализатора (например, крови) в качестве подложки под цилиндр и обеспечением учета фактора взаимодействия дезинфектанта или антисептика с органическим субстратом уже с момента внесения в цилиндр (приближение к практическим условиям использования). Снижение расхода нейтрализующей смеси достигается приготовлением концентрированной композиции, при этом концентрация увеличивается в 10 раз по сравнению с нейтрализаторами в известных способах, и использованием только 0,2 мл концентрата при сохранении пропорций для обеспечения полной нейтрализации дезинфектанта или антисептика. Упрощение способа достигается сокращением количества манипуляций и переводом двухэтапного процесса - в одноэтапный.
Эти отличия позволяют сделать вывод о соответствии заявляемого способа критерию "новизна". Признаки, отличающие заявляемое решение от прототипа, не выявлены в других методах при изучении данной и смежных областей медицины и, следовательно, обеспечивают заявляемому решению соответствие критерию "существенные отличия".
Пример 1. Предлагаемый способ оценки эффективности дезинфектантов и антисептиков реализуется следующим образом. В день испытания дезинфектанта или антисептика готовят его раствор на дистиллированной стерильной воде согласно инструкциям к средству. Инокулюм приготовляют, суспендируя в физиологическом растворе колонии тест штамма, снятые с агара, контролируя плотность суспензии по стандарту мутности 0,5 McFarland 1,5х108 КОЕ/мл).
На поверхность 5% Кровяного агара в центр чашки Петри устанавливают подготовленные стерильные цилиндры из дюраля (или иного инертного материала, не влияющего каким-либо образом на результат исследования) с внутренней емкостью около 2,0 см3. Высота цилиндра должна обеспечивать возможность закрытия чашки Петри крышкой на период взаимодействия дезинфектанта или антисептика с инокулюмом, а также на период нейтрализации. В установленные цилиндры вносят последовательно раствор дезинфектанта (или антисептика) в количестве 0,9 мл и инокулюм, в количестве 0,1 мл. Время контакта обусловливается инструкцией к препарату. По истечении периода экспозиции из цилиндра стерильной пипеткой отбирают 0,7 мл микста и сливают в обеззараживающий раствор, а к оставшимся 0,3 мл микста добавляют 0,2 мл концентрированной нейтрализующей смеси и оставляют для инактивации на 5 мин. При этом используют нейтрализующую смесь следующего состава:
Твин 80 - 3,0 г
Цистеин - 0,1 г
Гистидин - 0,1 г
Сапонин - 3,0 г
Буфер М/15 - 10,0 мл
Стерилизация - 121oС 15 мин
По окончании указанного времени при помощи стерильного пинцета удаляют цилиндр и помещают его в раствор для обеззараживания, а жидкость, излившуюся из цилиндра, распределяют по поверхности агара при помощи стерильного шпателя. Для статистической достоверности на один образец препарата следует брать не менее трех чашек с цилиндром. Для контроля выполняют все, как описано выше, но вместо дезинфектанта используют стерильную дистиллированную воду.
Чашки, засеянным описанным способом, помещают в термостат и инкубируют в течение 48 ч при температуре 35oС. Эффективность действия дезинфектанта или антисептика оценивают путем подсчета колоний (КОЕ), выросших на чашках в течение периода инкубации. Полученные результаты подсчета КОЕ (N) сравнивают с таковыми в контроле (N0) и исчисляют коэффициент снижения микробного числа, или редукции (Кред), преобразуя разность в log10, в соответствии с формулой:
Кред=LgN0 - LgN (1).
При этом требуемый Кред для дезинфектантов составляет 5,0 и более; для антисептиков - от 1,0 до 5,0 [3].
Результаты испытаний некоторых препаратов приведены в табл. 1.
При использовании в известных способах нейтрализующей смеси аналогичного состава, но обычной концентрации (Твин 80 3%, сапонин 3%, гистидин 0,1%, цистеин 0,1%) на исследование 10 образцов в отношении одной тест-культуры расходуется 80,0 мл нейтрализующей смеси, а в предлагаемом способе при удовлетворении тем же требованиям статистики - 6,0 мл концентрированной, что соответствует 60,0 мл обычной нейтрализующей смеси и составляет 75%.
ПРИМЕР 2. Для подтверждения влияния на результат присутствия в питательной среде органического субстрата, в данном случае, крови, провели параллельные испытания с использованием мясопептонного агара (МПА) без добавления крови и с использованием кровяного 5% агара (КА). Результаты испытания (табл. 2) показывают, что в среднем коэффициенты редукции, полученные в первом случае, выше, чем во втором (р>0,05). Часть дезинфектанта или антисептика связывается с органическим субстратом (конкретно - с кровью) и активность антимикробного вещества несколько снижается аналогично тому, как это происходит в реальных условиях, что и отразилось на снижении значений Кред при использовании 5% КА, по сравнению с вариантом использования МПА, где такого связывания не происходит из-за отсутствия сравнимых количеств органического субстрата. Использование КА нивелирует разницу между лабораторными испытаниями и условиями реального использования.
Эффективность предлагаемого способа по сравнению с существующими обеспечивается следующими преимуществами.
1. Тестирование осуществляется в один этап, при этом снижается трудоемкость процесса исследования.
2. Использование 5% КА служит более реальной оценке эффективности, вследствие частичного связывания дезинфектанта или антисептика кровью во время экспозиции с инокулюмом и после распределения по поверхности агара подобно тому, как это происходит на практике.
3. Использование цилиндров в качестве микрорезервуаров и концентрированного нейтрализатора в количестве 0,2 мл позволяет снизить расход компонентов нейтрализующей смеси на 25%.
Источники информации
1. Гудкова Е. И. , Красильников А.П. Методика определения и показатели чувствительности (устойчивости) бактерий к дезинфектантам.//Клин. лаб. диагн. - 1994, 6, 48-50.
2. European Standart CEN/TC 216/HWG, N 46, E.C.7, Dec. 1992, Brussels.
3. Petri A. Antiseptische Wundbehandlung mit Polihexamid unter erschwerter hyginische Bеdingungen. Inauguraldissertation zur Erlagung den D.M. - Mainz. - 1994. - S. 83.

Claims (1)

  1. Способ оценки эффективности дезинфектантов и антисептиков, включающий сравнение количеств колониеобразующих единиц микроорганизмов до и после воздействия на инокулюм дезинфектанта или антисептика, отличающийся тем, что воздействие на инокулюм дезинфектанта или антисептика проводят в цилиндре, помещенном на поверхность плотной питательной среды, содержащей естественный нейтрализатор, по истечении периода необходимой экспозиции в цилиндр вносят концентрированный искусственный нейтрализатор, через 5 мин цилиндр удаляют и исследуемую смесь распределяют по поверхности плотной питательной среды с последующей оценкой результатов.
RU2000117652A 2000-07-04 2000-07-04 Способ оценки эффективности дезинфектантов и антисептиков RU2191829C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2000117652A RU2191829C2 (ru) 2000-07-04 2000-07-04 Способ оценки эффективности дезинфектантов и антисептиков

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2000117652A RU2191829C2 (ru) 2000-07-04 2000-07-04 Способ оценки эффективности дезинфектантов и антисептиков

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2000117652A RU2000117652A (ru) 2002-08-27
RU2191829C2 true RU2191829C2 (ru) 2002-10-27

Family

ID=20237321

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2000117652A RU2191829C2 (ru) 2000-07-04 2000-07-04 Способ оценки эффективности дезинфектантов и антисептиков

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2191829C2 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111748601A (zh) * 2020-07-02 2020-10-09 林弘毅 一种杀菌产品有效作用时间与杀菌效力的检测方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
European Standard CEN/TC 216/HWG № 46, Е.С.7, Dec, 1992, Brussels. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111748601A (zh) * 2020-07-02 2020-10-09 林弘毅 一种杀菌产品有效作用时间与杀菌效力的检测方法
CN111748601B (zh) * 2020-07-02 2024-02-23 林弘毅 一种杀菌产品有效作用时间与杀菌效力的检测方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Shen et al. Experimental and theoretical investigation of multispecies oral biofilm resistance to chlorhexidine treatment
McBain In vitro biofilm models: an overview
Gilbert et al. Cytopathogenic effect of Trichomonas vaginalis on human vaginal epithelial cells cultured in vitro
Villegas et al. Establishment and culture of human skin fibroblasts
US5928889A (en) Protocol for simulated natural biofilm formation
Podbielski et al. Growth inhibitory activity of gutta-percha points containing root canal medications on common endodontic bacterial pathogens as determined by an optimized quantitative in vitro assay
KR20080081891A (ko) 바이오필름 감염에 대한 항생제 선택용 플레이트
Kessy et al. A microbiological and serological study of leptospirosis among pigs in the Morogoro municipality, Tanzania
RU2378363C1 (ru) Способ определения чувствительности микроорганизмов к дезинфицирующему средству (варианты)
Kita et al. A mouse model for the study of gonococcal genital infection
Collins Kinetics of the tuberculocidal response by alkaline glutaraldehyde in solution and on an inert surface
US7011957B2 (en) Isolation and cultivation of microorganisms from natural environments and drug discovery based thereon
CA2461915C (en) Isolation and cultivation of microorganisms from natural environments and drug discovery based thereon
RU2191829C2 (ru) Способ оценки эффективности дезинфектантов и антисептиков
Dall et al. The dissolvable bead: a novel in vitro biofilm model for evaluating antimicrobial resistance
Berthold et al. Cultivation Methods of spirochetes from Borrelia burgdorferi sensu lato complex and relapsing fever Borrelia
CA2229059A1 (en) A method for determining the antimicrobial agent sensitivity of a nonparaffinophilic microorganism and an associated apparatus
JP3590019B2 (ja) カビ付着防止剤及び脱臭剤、並びにそれを用いたカビ付着防止方法及び脱臭方法
Prabhakar et al. Virulence for guinea pigs of tubercle bacilli isolated from the sputum of participants in the BCG trial, Chingleput District, South India
WO2021038038A1 (en) Multi-cell culture device and kit
Introini et al. Histoculture and infection with HIV of functional human lymphoid tissue on Gelfoam®
RU2337360C1 (ru) Способ определения бактериостатических свойств антител к факторам вирулентности burkholderia pseudomallei
Álamos-Musre et al. Use of human Fallopian tube organ in culture (FTOC) and primary fallopian tube epithelial cells (FTEC) to study the biology of neisseria gonorrhoeae infection
RU2265656C1 (ru) Питательная среда для выявления ureaplasma urealyticum и способ диагностики урогенитальных уреаплазмозов
Mielcarek et al. Antibacterial Activity Evaluation of ZnO, CuO, and TiO2 Nanoparticles in Solution and Thin Films