RU2180474C1 - Method for presowing treatment of crop seeds for synchronizing cell division in root meristem - Google Patents

Method for presowing treatment of crop seeds for synchronizing cell division in root meristem Download PDF

Info

Publication number
RU2180474C1
RU2180474C1 RU2000125463A RU2000125463A RU2180474C1 RU 2180474 C1 RU2180474 C1 RU 2180474C1 RU 2000125463 A RU2000125463 A RU 2000125463A RU 2000125463 A RU2000125463 A RU 2000125463A RU 2180474 C1 RU2180474 C1 RU 2180474C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
seeds
cell division
hours
treatment
cells
Prior art date
Application number
RU2000125463A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Е.Э. Нефедьева
В.Н. Хрянин
Н.Г. Грозенко
М.А. Розен
Original Assignee
Городской центр технического творчества
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Городской центр технического творчества filed Critical Городской центр технического творчества
Priority to RU2000125463A priority Critical patent/RU2180474C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2180474C1 publication Critical patent/RU2180474C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

FIELD: agriculture and plant cultivation; selective and genetic studies for producing valuable mutants of farming plant. SUBSTANCE: physical method used for acting on biological objects such as seeds involves their exposure to shock waves in water medium at temperature of 2 C and production of pulses of 155-554 N•cm-20 followed by dipping seeds in water at given temperature for 12 h. EFFECT: enhanced efficiency of cell division synchronization; elongated phases of mitotic cycle required for studies. 4 dwg, 2 tbl, 1 ex

Description

Изобретение относится к сельскому хозяйству и растениеводству, а именно к физическим методам воздействия на биологические объекты, в частности на семена, и может быть использовано в селекционно-генетической работе, направленной, например, на получение ценных мутантов сельскохозяйственных растений. The invention relates to agriculture and crop production, in particular to physical methods of influencing biological objects, in particular seeds, and can be used in selection and genetic work aimed, for example, to obtain valuable mutants of agricultural plants.

Клетки на разных фазах митотического цикла проявляют неодинаковую чувствительность к мутагенам. Синхронизируя клетки меристемы к чувствительным фазам клеточного цикла и изменяя продолжительность фаз митоза, можно повысить чувствительность клеток к мутагенам, т.е. способствовать увеличению частоты и спектра индуцированных мутаций, что важно для проведения селекционно-генетических работ. Cells at different phases of the mitotic cycle exhibit unequal sensitivity to mutagens. By synchronizing the meristem cells to the sensitive phases of the cell cycle and changing the duration of the phases of mitosis, it is possible to increase the sensitivity of cells to mutagens, i.e. contribute to an increase in the frequency and spectrum of induced mutations, which is important for selection and genetic work.

Известен способ обработки семян сельскохозяйственных культур, при котором семена помещают в воду и создают ударную волну с давлением фронта 5...40 МПа за счет детонации взрывчатого вещества [1]. Величина давления и время его действия регулируются массой взрывчатого вещества и расстоянием между ним и поверхностью семян. Применение предлагаемого способа позволяет осуществить обработку семян при условии их объемного сжатия в течение короткого промежутка времени, не разрушая семена как биологические объекты. Указанный способ приводит к повышению урожайности сельскохозяйственных культур. Данное воздействие оказывает стимулирующее влияние на рост растения, однако состояние покоя в меристеме после ударно-волновой обработки является непродолжительным. A known method of processing seeds of agricultural crops, in which the seeds are placed in water and create a shock wave with a front pressure of 5 ... 40 MPa due to detonation of the explosive [1]. The magnitude of the pressure and its duration are regulated by the mass of the explosive and the distance between it and the surface of the seeds. The application of the proposed method allows the processing of seeds under the condition of volumetric compression for a short period of time without destroying the seeds as biological objects. The specified method leads to increased crop yields. This effect has a stimulating effect on the growth of the plant, however, the resting state in the meristem after the shock-wave treatment is short-lived.

Известным методом физического воздействия для синхронизации клеточных делений в зародышевой меристеме зерновых культур также является способ обработки семян электромагнитным полем частотой 59,0-62,6 ГГц при плотности потока мощности 100-300 мкВт•см-2 в непрерывном режиме в течение 10-30 мин [2] . Недостатки указанного способа заключаются в относительно невысокой эффективности синхронизации делений (не более 1,5...2,0 раз) и невозможности воздействия на отдельные фазы митотического цикла.A well-known physical impact method for synchronizing cell divisions in the germinal meristem of cereals is also a method of treating seeds with an electromagnetic field with a frequency of 59.0-62.6 GHz at a power flux density of 100-300 μW • cm -2 in a continuous mode for 10-30 minutes [2]. The disadvantages of this method are the relatively low efficiency of synchronization of divisions (no more than 1.5 ... 2.0 times) and the impossibility of affecting individual phases of the mitotic cycle.

Известны также способы синхронизации митозов в меристеме ячменя, состоящие в воздействии 5-аминоурацила (5-АУ) [3], или 5-АУ и колхицина [4] на проростки или замоченные семена с последующей экспозицией объектов в воде при 2oС в течение 12 ч. Указанные вещества могут вызывать отдаленные последствия в генетическом аппарате растений. Данные способы трудоемкие, многостадийные, длительные. Они требуют применения дорогостоящих реактивов и приводят к травмированию при высеве проростков, находящихся в состоянии активного прорастания. Вместе с тем эффект синхронизации при данном способе обработки меньше, чем в предыдущем.There are also known methods for synchronizing mitoses in the barley meristem, consisting in the action of 5-aminouracil (5-AC) [3], or 5-AC and colchicine [4] on seedlings or soaked seeds, followed by exposure of objects in water at 2 o С for 12 hours. These substances can cause long-term effects in the genetic apparatus of plants. These methods are laborious, multi-stage, long. They require the use of expensive reagents and lead to injury when sowing seedlings in a state of active germination. However, the synchronization effect with this processing method is less than in the previous one.

Целью изобретения является увеличение эффекта синхронизации клеточных делений и продления отдельных фаз митотического цикла для проведения селекционно-генетических работ. The aim of the invention is to increase the effect of synchronization of cell divisions and prolongation of individual phases of the mitotic cycle for conducting genetic selection work.

Поставленная цель достигается тем, что сухие семена обрабатывают ударной волной в водной среде при 2oС с созданием импульсов 155...554 H•c•м-2 с последующим их замачиванием в воде при данной температуре в течение 12 часов. Величина импульса регулируется массой взрывчатого вещества и расстоянием между ним и поверхностью семян. Последействие обработки сохраняется в течение 30 дней.This goal is achieved by the fact that dry seeds are treated with a shock wave in an aqueous medium at 2 o With the creation of pulses 155 ... 554 H • s • m -2 followed by their soaking in water at a given temperature for 12 hours. The momentum is controlled by the mass of the explosive and the distance between it and the surface of the seeds. The aftereffect of treatment lasts for 30 days.

Сравнение известных решений с заявленным показало, что его отличительным признаком является выдерживание семян при 2oС в течение 12 ч после ударно-волновой обработки с целью усиления стрессовой реакции и состояния покоя для повышения эффективности синхронизации делений клеток в меристемах и продления отдельных фаз митотического цикла. Проведение ударно-волновой обработки в воде при 2oС необходимо для обеспечения стрессовой ситуации в момент прохождения ударной волны. Непродолжительное замачивание при ударно-волновой обработке допускает высушивание семян и их последующее хранение без изменения всхожести. Длительный период последействия является существенным преимуществом заявляемого способа, так как увеличивает время для выбора оптимальных сроков посева и (или) последующего воздействия мутагена на семена.A comparison of the known solutions with the claimed one showed that it is characterized by keeping the seeds at 2 ° C for 12 hours after the shock wave treatment in order to enhance the stress response and the dormancy state in order to increase the efficiency of synchronization of cell divisions in the meristems and to prolong individual phases of the mitotic cycle. Carrying out shock wave treatment in water at 2 o C is necessary to ensure a stressful situation at the time of passage of the shock wave. Short soaking during shock wave treatment allows drying of seeds and their subsequent storage without changing germination. A long period of aftereffect is a significant advantage of the proposed method, since it increases the time for choosing the optimal timing of sowing and (or) the subsequent exposure of the mutagen to the seeds.

Пример. Сухие семена сельскохозяйственных культур (гречиха) подвергали ударно-волновой обработке в воде при 2oС. Величину создаваемого импульса изменяли в диапазоне от 100...800 Н•c•м-2. Величину удельного импульса (J, Н•с•м-2) рассчитывали по формуле [5] J =P•Θ, где Р - давление на фронте ударной волны, МПа; Θ характеристическое время, определяющее интенсивность падения давления в данной точке с течением времени.Example. Dry seeds of agricultural crops (buckwheat) were subjected to shock wave treatment in water at 2 o C. The value of the generated pulse was changed in the range from 100 ... 800 N • s • m -2 . The specific impulse value (J, N • s • m -2 ) was calculated by the formula [5] J = P • Θ, where P is the pressure at the front of the shock wave, MPa; Θ the characteristic time that determines the intensity of the pressure drop at a given point over time.

Figure 00000001
,
где Q - масса заряда взрывчатого вещества, кг;
R - расстояние от центра взрыва до поверхности семян, м.
Figure 00000001
,
where Q is the mass of the explosive charge, kg;
R is the distance from the center of the explosion to the surface of the seeds, m

Figure 00000002

После ударно-волновой обработки семена выдерживали в воде при 2oС в течение 12 ч, что соответствует оптимальным режимам, приводимым в работах [3, 4]. В дальнейшем семена высушивали на воздухе при комнатной температуре до тех пор, пока их масса не станет постоянной.
Figure 00000002

After the shock wave treatment, the seeds were kept in water at 2 ° С for 12 h, which corresponds to the optimal conditions given in [3, 4]. Subsequently, the seeds were dried in air at room temperature until their mass became constant.

После высушивания отбирали зрелые, выполненные плоды и проращивали их при 25oС во влажной атмосфере. Корни проростков, начиная с возраста 48 ч, фиксировали в уксусной кислоте с этанолом (1:4) в течение 12 ч с интервалом 2 ч. Материал окрашивали в ацетоорсеине. Давленые препараты просматривали при 600-кратном (об. 40х, ок. 15х) увеличении и определяли митотический и фазовый индексы (МИ, ФИ) апикальных корневых меристем. Поскольку были обнаружены значительные изменения среднего МИ, для определения синхронности митозов использовали относительное увеличение максимального МИ по сравнению со средним в каждом варианте опыта и соотносили результаты, полученные на опытных растениях, с контролем.After drying, mature, matured fruits were selected and germinated at 25 ° C. in a humid atmosphere. The roots of seedlings, starting from the age of 48 h, were fixed in acetic acid with ethanol (1: 4) for 12 h with an interval of 2 h. The material was stained in aceto-oresin. Squeezed preparations were examined at 600-fold (vol. 40 x , approx. 15 x ) magnification and mitotic and phase indices (MI, PH) of apical root meristems were determined. Since significant changes in the average MI were detected, to determine the synchronism of mitoses, a relative increase in the maximum MI was used compared with the average in each experiment and the results obtained in the experimental plants were compared with the control.

Изменение МИ проростков гречихи в динамике приведены в табл. 1, где отражены данные для импульсов, равных 155...554 H•c•м-2. Импульсы от 100 до 155 Н•с•м-2 не повлияли на клеточные деления, и МИ не отличались от контрольных результатов. Импульсы свыше 554 Н•с•м-2 оказались губительными для зародышей семени.The change in MI of buckwheat seedlings in dynamics is given in table. 1, where data for pulses equal to 155 ... 554 H • s • m -2 are reflected. Pulses from 100 to 155 N • s • m -2 did not affect cell division, and MI did not differ from the control results. Impulses above 554 N • s • m -2 were fatal to seed embryos.

Результаты, приведенные в табл. 1, показывают, что колебания МИ контрольных проростков гречихи были незначительными. Максимальное значение достигалось в 50 ч и составляло

Figure 00000003
, а среднее -
Figure 00000004
. Относительное увеличение максимального МИ равнялось 1,20. При J=155 Н•с•м-2 среднее значение МИ составило
Figure 00000005
. Максимальное значение МИ в 52 ч составляло
Figure 00000006
. Его относительное увеличение по сравнению со средним в данном варианте опыта составило 1,77, то есть синхронность делений превысила контроль на 47,5%. При J=401 Н•с•м-2 среднее значение МИ составляло
Figure 00000007
. Максимальное значение МИ возросло до
Figure 00000008
через 50 ч. Относительное увеличение МИ соответствовало 3,30, что указывало на увеличение синхронности клеточных делений в 2,8 раза по сравнению с контролем. При воздействии J=554 Н•с•м-2 среднее значение МИ уменьшилось до
Figure 00000009
, что было на 31% ниже контроля. Максимальное значение МИ соответствовало 88,1%, его относительное увеличение составило 1,57. Синхронность митозов возросла на 30,8% относительно контроля.The results are shown in table. 1 show that the MI fluctuations of the control buckwheat seedlings were insignificant. The maximum value was reached at 50 h and amounted to
Figure 00000003
and average
Figure 00000004
. The relative increase in maximum MI was 1.20. At J = 155 N • s • m -2 the average MI value was
Figure 00000005
. The maximum MI value at 52 hours was
Figure 00000006
. Its relative increase compared with the average in this experiment was 1.77, that is, the synchronization of divisions exceeded the control by 47.5%. At J = 401 N • s • m -2 the average MI value was
Figure 00000007
. The maximum value of MI increased to
Figure 00000008
after 50 h. A relative increase in MI corresponded to 3.30, which indicated a 2.8-fold increase in the synchronism of cell divisions compared to the control. When exposed to J = 554 N • s • m -2, the average MI decreased to
Figure 00000009
, which was 31% below control. The maximum MI value corresponded to 88.1%, its relative increase was 1.57. The mitosis synchronism increased by 30.8% relative to the control.

Отмечены колебания фазовых индексов (фиг. 1,а). У 48-50-часовых контрольных проростков более

Figure 00000010
клеток находились на стадии профазы, а у 52-56-часовых проростков начали преобладать клетки на стадии мета- и анафазы. Их количество превышало
Figure 00000011
от общего числа клеток. Количество телофазных клеток начинало увеличиваться у 54-56-часовых проростков и достигло максимума у 58-часовых проростков. Максимум МИ соответствовал 50-52-часовым проросткам, когда или преобладали профазные клетки (
Figure 00000012
), или количество клеток в стадии про-, мета-, анафазы было приблизительно одинаково (соответственно 257, 285,
Figure 00000013
), а в стадии анафазы - несколько ниже,
Figure 00000014
(фиг. 1,а).Marked fluctuations in phase indices (Fig. 1, a). In 48-50-hour control seedlings more
Figure 00000010
cells were at the prophase stage, and in 52-56-hour-old seedlings, cells at the meta- and anaphase stages began to predominate. Their number exceeded
Figure 00000011
of the total number of cells. The number of telophase cells began to increase in 54-56-hour-old seedlings and reached a maximum in 58-hour-old seedlings. The maximum MI corresponded to 50-52-hour seedlings when prophase cells prevailed (
Figure 00000012
), or the number of cells in the pro-, meta-, anaphase stage was approximately the same (respectively 257, 285,
Figure 00000013
), and in the anaphase stage - somewhat lower,
Figure 00000014
(Fig. 1, a).

После обработки при J=155 Н•с•м-2 амплитуда колебаний ФИ (рис.1,б) была более значительной, чем в контроле. Отмечено существенное увеличение числа анафазных клеток (до

Figure 00000015
) у 54-часовых проростков, указывающее на задержку большинства клеток на данной стадии. Эти нарушения были временными, так как уже через 56 часов отмечался максимум телофазных клеток (
Figure 00000016
). Максимум МИ соответствовал прохождению метафазы и особенно анафазы большинством клеток, что также указывало на изменение в смене фаз митоза.After treatment at J = 155 N • s • m -2, the amplitude of the FI oscillations (Fig. 1, b) was more significant than in the control. A significant increase in the number of anaphase cells (up to
Figure 00000015
) in 54-hour seedlings, indicating a delay of most cells at this stage. These disorders were temporary, since already after 56 hours there was a maximum of telophase cells (
Figure 00000016
) The maximum MI corresponded to the passage of metaphase and especially anaphase by most cells, which also indicated a change in the phase change of mitosis.

Обработка J=401 Н•с•м-2 способствовала наиболее значительным изменениям ФИ (фиг. 1,в). Увеличилось количество клеток, находящихся на стадии профазы (48 часов -

Figure 00000017
, 50 часов -
Figure 00000018
) и анафазы (52 часа -
Figure 00000019
, 54 часа -
Figure 00000020
). Первые телофазы появились только через 52 часа, тогда как в контроле они присутствовали постоянно.Processing J = 401 N • s • m -2 contributed to the most significant changes in FI (Fig. 1, c). The number of cells at the prophase stage increased (48 hours -
Figure 00000017
50 hours -
Figure 00000018
) and anaphase (52 hours -
Figure 00000019
54 hours
Figure 00000020
) The first telophases appeared only after 52 hours, while in the control they were constantly present.

Под действием J=554 Н•с•м-2 амплитуда колебаний ФИ также превышала контроль (фиг. 1, г). Характерно увеличение количества метафазных клеток до

Figure 00000021
через 52 и 54 часа и анафазных клеток до
Figure 00000022
через 54 часа. Количество профазных клеток 48 часов в опыте соответствовало контролю (
Figure 00000023
и
Figure 00000024
соответственно). Первые телофазы появились только через 54 часа, а через 56 часов составляли уже
Figure 00000025
.Under the action of J = 554 N • s • m -2, the amplitude of the FI oscillations also exceeded the control (Fig. 1, d). Characteristic increase in the number of metaphase cells to
Figure 00000021
after 52 and 54 hours and anaphase cells to
Figure 00000022
after 54 hours. The number of prophase cells 48 hours in the experiment corresponded to the control (
Figure 00000023
and
Figure 00000024
respectively). The first telophases appeared only after 54 hours, and after 56 hours they were already
Figure 00000025
.

При анализе аномалий делений анафазно-телофазным методом во всех вариантах опыта аберраций хромосом (мосты и фрагменты) не было обнаружено. Таким образом, предварительная обработка оказывает влияние на прохождение митотического цикла, но не вызывает повреждений хромосом, то есть сама не вызывает мутагенного эффекта и может быть использована для синхронизации клеточных делений. When analyzing anomalies of divisions by the anaphase-telophase method in all variants of the experiment, chromosome aberrations (bridges and fragments) were not found. Thus, pre-treatment affects the passage of the mitotic cycle, but does not cause damage to the chromosomes, that is, it itself does not cause a mutagenic effect and can be used to synchronize cell divisions.

В специальных экспериментах исследовалось последействие обработки. Семена обрабатывали по описанной методике, 3 партии семян хранили в течение 1, 30 и 40 суток, проращивали и определяли МИ в возрасте 48-58 часов. Данные приведены в табл. 2. Видно, что последействие обработки сохраняется при хранении семян до 30 суток. In special experiments, the aftereffect of the treatment was investigated. Seeds were processed according to the described method, 3 batches of seeds were stored for 1, 30 and 40 days, germinated and determined MI at the age of 48-58 hours. The data are given in table. 2. It is seen that the aftereffect of the treatment is stored during storage of seeds up to 30 days.

Как следует из табл. 2, при хранении семян в течение 1 суток после обработки обнаруживается максимальный эффект синхронизации (в 1,47...2,75 раз). При хранении в течение 30 суток эффективность воздействия практически не изменяется. При хранении в течение 40 суток эффект синхронизации митозов снижается и составляет 9-98%. As follows from the table. 2, when storing seeds for 1 day after treatment, the maximum synchronization effect is detected (1.47 ... 2.75 times). When stored for 30 days, the effectiveness of the effect remains virtually unchanged. When stored for 40 days, the effect of mitosis synchronization is reduced and amounts to 9-98%.

Источники информации
1. Патент РФ 2083073 Способ предпосевной обработки семян сельскохозяйственных культур. Атрощенко Э.С., Хрянин В.Н и др.
Sources of information
1. RF patent 2083073 A method for pre-sowing seed treatment of agricultural crops. Atroshchenko E.S., Khryanin V.N. et al.

2. А. С. 1692408 "Способ предпосевной обработки семян для синхронизации клеточных делений в зародышевой меристеме зерновых культур. Н.Г. Шестопалова, Л.Г. Головина и др. 2. A. S. 1692408 "Method for pre-sowing seed treatment for synchronization of cell divisions in the germinal meristem of grain crops. N.G. Shestopalova, L.G. Golovina and others.

3. Бендрорайтите Л.П. Цитология и генетика, 1978, т.12, 3 - С.195-199. 3. Bendroraitite L.P. Cytology and Genetics, 1978, v. 12, 3 - S.195-199.

4. Артемьева В.В. Автореферат диссертации на соискание уч. степени кан. биол. наук. Л., 1987, 22 с. 4. Artemyeva V.V. Abstract of dissertation for the competition can degree biol. sciences. L., 1987, 22 p.

5. Пихтовников Р.В., Завьялова В.И. Штамповка листового металла взрывом. М.: Машиностроение, 1964. - С.42-43. 5. Pikhtovnikov R.V., Zavyalova V.I. Stamping sheet metal by explosion. M.: Mechanical Engineering, 1964. - S. 42-43.

Claims (1)

Способ предпосевной обработки семян сельскохозяйственных культур для синхронизации клеточных делений в корневой меристеме, включающий однократное воздействие на семена ударной волной в водной среде, отличающийся тем, что ударную обработку семян проводят в воде при 2oС с созданием импульсов 155. . . 554 Н•с•м-2 с последующим замачиванием семян в воде при данной температуре в течение 12 ч.A method of presowing treatment of seeds of agricultural crops to synchronize cell divisions in the root meristem, including a single exposure to seeds by a shock wave in an aqueous medium, characterized in that the shock treatment of seeds is carried out in water at 2 ° C. with the creation of pulses 155.. . 554 N • s • m -2 followed by soaking the seeds in water at this temperature for 12 hours
RU2000125463A 2000-10-09 2000-10-09 Method for presowing treatment of crop seeds for synchronizing cell division in root meristem RU2180474C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2000125463A RU2180474C1 (en) 2000-10-09 2000-10-09 Method for presowing treatment of crop seeds for synchronizing cell division in root meristem

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2000125463A RU2180474C1 (en) 2000-10-09 2000-10-09 Method for presowing treatment of crop seeds for synchronizing cell division in root meristem

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2180474C1 true RU2180474C1 (en) 2002-03-20

Family

ID=20240804

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2000125463A RU2180474C1 (en) 2000-10-09 2000-10-09 Method for presowing treatment of crop seeds for synchronizing cell division in root meristem

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2180474C1 (en)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
MD641Z (en) * 2012-10-26 2014-01-31 ИНСТИТУТ ЭЛЕКТРОННОЙ ИНЖЕНЕРИИ И НАНОТЕХНОЛОГИЙ "D. Ghitu" АНМ Process for presowing treatment of seeds
MD663Z (en) * 2012-12-24 2014-03-31 ИНСТИТУТ ЭЛЕКТРОННОЙ ИНЖЕНЕРИИ И НАНОТЕХНОЛОГИЙ "D. Ghitu" АНМ Process for treating plants and seeds
CN114831022A (en) * 2022-04-27 2022-08-02 广西壮族自治区林业科学研究院 Method for exploring mutagenic effect of colchicine on myrtle

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
БЕНДРОРАЙТИТЕ Л.П. Цитология и генетика. - 1978, т.12, № 3, с.195-199. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
MD641Z (en) * 2012-10-26 2014-01-31 ИНСТИТУТ ЭЛЕКТРОННОЙ ИНЖЕНЕРИИ И НАНОТЕХНОЛОГИЙ "D. Ghitu" АНМ Process for presowing treatment of seeds
MD663Z (en) * 2012-12-24 2014-03-31 ИНСТИТУТ ЭЛЕКТРОННОЙ ИНЖЕНЕРИИ И НАНОТЕХНОЛОГИЙ "D. Ghitu" АНМ Process for treating plants and seeds
CN114831022A (en) * 2022-04-27 2022-08-02 广西壮族自治区林业科学研究院 Method for exploring mutagenic effect of colchicine on myrtle

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ghassemi-Golezani et al. Effects of hydro-priming duration on seedling vigour and grain yield of pinto bean (Phaseolus vulgaris L.) cultivars
Butler The effect of light intensity on stem and leaf growth in broad bean seedlings
Isenberg et al. Hormone and histological differences between normal and maleic hydrazide treated onions stored over winter
RU2180474C1 (en) Method for presowing treatment of crop seeds for synchronizing cell division in root meristem
Ajirloo et al. Effect of priming methods on emergence and seedling growth of maize (Zea mayze L.)
Van Oostveldt et al. Effect of light on nucleic-acid synthesis and polyploidy level in elongating epicotyl cells of Pisum sativum
Finch-Savage et al. Nuclear Replication Activity During Seed Development, Dormancy Breakage and Germination in Three Tree Species: Norway Maple (Acer platanoidesL.), Sycamore (Acer pseudoplatanusL.) and Cherry (Prunus aviumL.)
Frazee et al. Differential growth of corn, soybean, and seven dicotyledonous weed seedlings
Baluška et al. Relationships Between the Content of Basic Nuclear Proteins, Chromatin Structure, rDNA Transcription and Cell Size in Different Tissues7
Rose et al. A sequential response to growth substances in coleoptiles from γ-irradiated wheat
Nedunchezhiyan et al. Effects of gibberellic acid on seed dormancy of black gram (Vigna mungo L.)
Hageseth Effect of noise on the mathematical parameters that describe isothermal seed germination
Murata et al. Mitotic delay in root tips of peas induced by artificial seed aging
Sheoran et al. Effect of different seed scarification treatments on seed germination parameters of ber (Ziziphus rotundifolia Lamk.) under laboratory conditions
Elangbam et al. Effect of growth regulators on germination and vigour of Chickpea (Cicer arietinum L.) seed
RU2332841C1 (en) Method of stimulating mitotic activity of plant cells
El-Bialee et al. Germination scenario and growth analysis for irradiated cowpea.
SU1692408A1 (en) Method for presowing seeds treatment for synchronization cell division in embryonic meristoma of grain crops
Dell’Aquila et al. Polyethylene glycol 6000 priming effect on germination of aged wheat seed lots
OLOGUNDUDU et al. Effect of Nitrogen Nutritional Stress on Some Growth Parameters of Zea mays L. and Vigna unguiculata (L.) Walp.
Zargar et al. Peg-Induced Drought Stress Effects on Spinach Germination Parameters
Zanini The Effects of Magnetic Fields on Seed Germination & Plant Growth
Campbell Irradiation in successive generations: effects on developing barley (Hordeum distichum, L.) embryos in situ
Jassal et al. Effect of seed priming and its duration on seed germination and vigour of soybean
Rana et al. EFFECT OF GIBBERELLIC ACID PRE-TREATMENTS ON GROWTH PARAMETERS OF WALNUT (Juglans regia L.)