RU2129442C1 - Method of preparing vaccine against carnivores plague - Google Patents

Method of preparing vaccine against carnivores plague Download PDF

Info

Publication number
RU2129442C1
RU2129442C1 RU96114738A RU96114738A RU2129442C1 RU 2129442 C1 RU2129442 C1 RU 2129442C1 RU 96114738 A RU96114738 A RU 96114738A RU 96114738 A RU96114738 A RU 96114738A RU 2129442 C1 RU2129442 C1 RU 2129442C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
virus
vaccine
medium
subline
plague
Prior art date
Application number
RU96114738A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU96114738A (en
Inventor
И.Ф. Вишняков
Г.М. Карпов
В.В. Куриннов
Е.М. Хрипунов
В.Я. Савукова
С.Г. Юрков
С.А. Витина
А.А. Шевченко
Н.В. Малоголовкина
В.Н. Сазонкин
Original Assignee
Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии filed Critical Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии
Priority to RU96114738A priority Critical patent/RU2129442C1/en
Publication of RU96114738A publication Critical patent/RU96114738A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2129442C1 publication Critical patent/RU2129442C1/en

Links

Images

Abstract

FIELD: microbiology, vaccines. SUBSTANCE: invention relates to preparing live culture vaccines against carnivores plague. For vaccine preparing a new attenuated strain "VNIIVVim-88" (registration number is "VNIIVVim Dep" in VGNKI collection) is used. Highly sensitive subline CV-1 of an African green monkey transplanted kidney cells is used as a cellular system for virus culturing and for drying medium - a medium of the corresponding composition based on protein products hydrolysis. Monolayer cell culture of subline CV-1 is maintained by serial passage and virus culturing in transplanted cell culture is carried out under roller conditions. Collection of virus-containing material is carried out at virus titer up to 3.5-4.5 lg TCD 50/cu. cm. Material is mixed with protective medium at volume ratio 3:2. Value pH is corrected at the range 6.4-6.8 and material is lyophilized. Method exhibits high productivity, simplified procedure, availability and easily realized in industrial scale. Vaccine produced by new method shows the enhanced effectiveness by immunogenicity, safety, stability at storage, harmless and low cost. EFFECT: improved method of preparing, high quality and properties of vaccine. 1 tbl, 3 ex

Description

Изобретение относится к ветеринарной вирусологии и биотехнологии, а именно к способам получения живых культуральных вакцин против чумы плотоядных, и может использоваться на предприятиях биологической промышленности. The invention relates to veterinary virology and biotechnology, and in particular to methods for producing live culture vaccines against carnivorous plague, and can be used in enterprises of the biological industry.

Известен способ получения живых культуральных вакцин против чумы плотоядных (ЧП), включающий адаптацию аттенуированных штаммов вируса к первичным культурам клеток из тканей органов плотоядных животных из семейств псовых и куньих, почечной ткани африканской зеленой мартышки и тканей куриных и перепелиных эмбрионов, выращивание в указанных культурах вакционного вируса и его стабилизацию последующей лиофилизацией в подходящей среде (Патенты США кл. 424-89 N 2965544, 1960; N 3080291, 1963; кл. 435-237 N 4224412, 1980. Патенты ФРГ кл. 30h6 N 1138888, 1963; N 1235505, 1967. Автор. св-ва СССР кл. C 12 N 7/08 N 527072, 1977; кл. A 61 K 39/12 N 1287592, 1984). A known method of producing live culture vaccines against carnivore plague (PE), including the adaptation of attenuated virus strains to primary cell cultures from tissues of organs of carnivores from canine and mustache families, African green monkey kidney tissue and chicken and quail embryo tissues, the cultivation of vaccine in these cultures virus and its stabilization by subsequent lyophilization in a suitable medium (US Pat. Cl. 424-89 N 2965544, 1960; N 3080291, 1963; CL 435-237 N 4224412, 1980. German Patents CL 30h6 N 1138888, 1963; N 1235505, 1967. Author St. S CP cl C 12 N 7/08 N 527 072, 1977;. Cl A 61 K 39/12 N 1287592, 1984)..

Известен также способ получения культуральных вирусвакцин против ЧП, отличающийся тем, что в качестве клеточной системы для выращивания вируса используют линии трансформированных, неонкогенных перевиваемых клеток из почетной ткани животных: зеленой мартышки (Vero N 4647), макаки резус (LLC-MK2), собаки и сирийского хомяка (BHK-21S, BHK-21 13S) (Патенты США кл. 424-89 N 3836626, 1974: N 4004974, 1977; N 4351827, 1982; N 5000951, 1991. Патент Англии кл. A 61 K 39/175 N 2053679, 1981. Патент СРР кл. A 61 K 39/175 N 82518, 1983. Грачев В.Л. и др. //Вопр. вирусол. - 1990. - N 1). There is also known a method for producing culture virus vaccines against PE, characterized in that as the cell system for growing the virus, lines of transformed, non-oncogenic transplanted cells from the honorary tissue of animals are used: green monkey (Vero N 4647), rhesus monkey (LLC-MK2), dogs and Syrian hamster (BHK-21S, BHK-21 13S) (US Pat. CL 424-89 N 3836626, 1974: N 4004974, 1977; N 4351827, 1982; N 5000951, 1991. England patent CL A 61 K 39/175 N 2053679, 1981. CPP patent, class A 61 K 39/175 N 82518, 1983. Grachev V.L. et al. // Virusol. - 1990. - N 1).

Второй способ имеет несомненные преимущества перед первым, так как при производстве вакцины отпадает необходимость в использовании дорогостоящих, нестандартных и небезопасных первичных культур клеток. Основной недостаток второго способа состоит в невысокой иммуногенности получаемых вакцин, их прививочная доза варьирует в пределах от 1 тыс. до 1 млн ТЦД 50 (БОЕ 50). Другим недостатком способа является то, что репродукция вируса ЧП в ряде перевиваемых культур (LLC-MK2, BHK) протекает в течение 3 - 7 (иногда 10) сут и не сопровождается развитием специфического цитопатогенного действия (ЦПД), что с свою очередь затрудняет оценку результатов культивирования, усложняет и удорожает технологический процесс изготовления и контроля вакцины (Патенты США кл. 424-89, N 3836626, 1974; N 4351827, 1982. Патент Англии кл. A 61 K 39/175 N 2053679, 1981). The second method has undoubted advantages over the first, since in the production of vaccines there is no need to use expensive, non-standard and unsafe primary cell cultures. The main disadvantage of the second method is the low immunogenicity of the obtained vaccines, their vaccination dose varies from 1 thousand to 1 million TCD 50 (PFU 50). Another disadvantage of this method is that the reproduction of the virus of emergency in a number of transplantable cultures (LLC-MK2, BHK) proceeds within 3 to 7 (sometimes 10) days and is not accompanied by the development of a specific cytopathogenic effect (CPD), which in turn makes it difficult to evaluate the results cultivation, complicates and increases the cost of the manufacturing process and control of the vaccine (US Pat. CL 424-89, N 3836626, 1974; N 4351827, 1982. England patent CL A 61 K 39/175 N 2053679, 1981).

Наиболее близок к предлагаемому способ получения сухой культуральной вирусвакцины, содержащий аттенуированный штамм ЭПМ вируса ЧП, выращенный в первичной культуре клеток тканей эмбрионов японской перепелки (ЭП), и стабилизаторы высушивания - сорбит и желатозу (Патент США кл. 424-89 N 4224412, 1980). Closest to the proposed method of obtaining a dry culture virus vaccine containing an attenuated strain of EPM virus PE, grown in a primary culture of tissue cells of Japanese quail embryos (EP), and drying stabilizers - sorbitol and gelatose (US Patent. CL 424-89 N 4224412, 1980) .

Выращивание штамма ЭПМ выполняют в роллерной установке при множественности заражения 0,0001 - 0,001 ТЦД 50/клетку взвеси клеток ЭП с посевной концентрацией 0,8 - 1,0 млн на 1 см куб. В качестве ростовой среды применяют 0,5%-ный гидролизат лактальбумина на растворе Хенкса или среду 199 с 10% об. сыворотки крови крупного рогатого скотам (КРС), а в качестве среды поддержки - среду 199. Культивирование вируса проводят в течение 11 - 14 сут при температуре 36,5 - 37,5oC и скорости вращения сосудов 12 - 25 об. в час. Перед лиофилизацией вирус смешивают в объемном соотношении 1:1 с защитной средой, содержащей равные объемы 20%-ного раствора сорбита и 6%-ного раствора желатозы. Титр вакцинного вируса в сухом препарате составляет от 2,8 до 3,8 1g ТЦД 50/см куб (Технические условия ТУ 10.19. 87-89 на вакцину против чумы плотоядных культуральную сухую из штамма ЭПМ. - Временная инструкция по изготовлению и контролю вакцины, ассоциированной против вирусного энтерита, ботулизма, псевдомоноза и чумы плотоядных, утвержденная 08.08.92 г.).The cultivation of the EPM strain is performed in a roller unit with a multiplicity of infection of 0.0001 - 0.001 TCD 50 / cell suspension of EP cells with a seed concentration of 0.8 - 1.0 million per 1 cm3. As the growth medium, a 0.5% lactalbumin hydrolyzate in Hanks solution or medium 199 with 10% vol. serum of cattle (cattle), and as a support medium - environment 199. The cultivation of the virus is carried out for 11-14 days at a temperature of 36.5 - 37.5 o C and the speed of rotation of the vessels 12 - 25 about. in hour. Before lyophilization, the virus is mixed in a 1: 1 volume ratio with a protective medium containing equal volumes of a 20% sorbitol solution and a 6% gelatose solution. The titer of the vaccine virus in a dry preparation is from 2.8 to 3.8 1g TCD 50 / cm3 (Technical Specification TU 10.19. 87-89 for the vaccine against culture dry carnivore plague from the strain EPM. - Temporary instructions for the manufacture and control of the vaccine, associated against viral enteritis, botulism, pseudomonosis and carnivore plague, approved 08.08.92).

Основным недостатком ближайшего аналога является использование ЭП в качестве клеточного субстрата при выращивании вируса, которые, как известно, несвободны от посторонних микроорганизмов (эндогенных вирусов и микроплазм). Устранение этого недостатка возможно путем создания специализированных, постоянно контролируемых птицеферм со здоровым поголовьем, но это чрезвычайно повышает расходы на производство живой вакцины и контроль контаминированности перепелиного стада, яиц и биопрепарата. При этом применяемые индикации не могут гарантировать полного отсутствия контаминантов в объектах контроля. The main disadvantage of the closest analogue is the use of EP as a cell substrate in the cultivation of the virus, which, as you know, are not free from foreign microorganisms (endogenous viruses and microplasmas). The elimination of this drawback is possible by creating specialized, constantly monitored poultry farms with a healthy livestock, but this extremely increases the cost of producing live vaccines and controlling the contamination of quail herds, eggs and biological product. Moreover, the indications used cannot guarantee the complete absence of contaminants in the objects of control.

Второй недостаток известного способа состоит в нестандартности применяемого клеточного субстрата, а следовательно, нестандартности вируса и вакцины, что обусловлено невозможностью получить из гомогената тканей ЭП больших партий однородных по своим свойствам клеточных культур и требует дополнительных затрат на контроль пригодности каждого источника ткани. Выход клеток от одного ЭП невысок, обычно составляет не более 40%, что также приводит к большим затратам на получение промышленных серий культуры клеток и повышает себестоимость вакцины. The second disadvantage of the known method consists in the non-standard nature of the used cellular substrate, and therefore, the non-standard of the virus and vaccine, which is due to the inability to obtain large batches of cell cultures homogeneous in their properties from the tissue homogenate and requires additional costs for monitoring the suitability of each tissue source. The yield of cells from one EP is low, usually not more than 40%, which also leads to high costs for obtaining industrial series of cell culture and increases the cost of the vaccine.

К другим недостаткам аналога следует отнести длительный процесс культивирования (10 - 14 сут), что усложняет и удорожает производство препарата. Вакцина из штамма ЭПМ создает напряженный и продолжительный иммунитет после введения плотоядным в большом диапазоне доз: норкам, соболям, хорькам - от 120 до 120 ТЦД 50, лисам и песцам - от 240 до 2400 ТЦД 50, собакам - от 630 до 6300 ТЦД 50 вакционного вируса
Техническим результатом данного изобретения является получения безвредной, высокоиммуногенной, стабильной при хранении культуральной вакцины против ЧП.
Other disadvantages of the analogue include a long cultivation process (10-14 days), which complicates and increases the cost of production of the drug. The vaccine from the EPM strain creates intense and prolonged immunity after administration by the carnivores in a large range of doses: minks, sables, ferrets - from 120 to 120 TCD 50, foxes and Arctic foxes - from 240 to 2400 TCD 50, for dogs - from 630 to 6300 TCD 50 of the vaccine the virus
The technical result of this invention is to obtain a harmless, highly immunogenic, storage stable culture vaccine against PE.

Сущность изобретения состоит в том, что из штаммов вируса ЧП при изготовлении вакцины используют новый аттенуированный штамм "ВНИИВВиМ-88", в качестве клеточной системы - высокочувствительную сублинию CV-1 перевиваемых клеток почки африканcкой зеленой мартышки, из сред высушивания - среду соответствующего состава на основе продуктов гидролиза белков. The essence of the invention lies in the fact that from the strains of the virus of emergency in the manufacture of the vaccine use the new attenuated strain "VNIIVViM-88", as a cell system - highly sensitive subline CV-1 transplantable kidney cells of the African green monkey, from the drying media - an environment of the appropriate composition based on protein hydrolysis products.

Предлагаемый способ получения живой культуральной вакцины против ЧП включает в себя: поддержание монослойной культуры клеток сублинии CV-1 серийным пассированием, выращивание вируса в перевиваемой культуре клеток в роллерных условиях, сбор вируссодержащего материала при достижении титра вируса 3,5 - 4,5 1g ТЦД 50/ см куб., смешивание его с защитной средой в объемном соотношении 3:2, коррекцию pH смеси в пределах 6,4 - 6,8 и лиофилизацию. The proposed method for producing a live culture vaccine against PE includes: maintaining a monolayer culture of CV-1 subline cells by serial passaging, growing the virus in an inoculated cell culture under roller conditions, collecting virus-containing material when the virus titer reaches 3.5 - 4.5 1g TCD 50 / cm3, mixing it with a protective medium in a volume ratio of 3: 2, adjusting the pH of the mixture in the range of 6.4 - 6.8 and lyophilization.

Новый вакцинный штамм, получивший название "ВНИИВВиМ-88" (регистрационный номер "ВНИИВиМ-88 Деп" в коллекции ВГНКИ), выделен из штамма ЭПМ адаптацией его к сублинии CV-1 посредством серии перемежающих пассажей и последующим клонированием методом предельных разведений. Новый штамм характеризуется следующими свойствами:
1) Штамм обладает морфологическими свойствами, характерными для вируса ЧП рода Morbillivirus семейства Paramyxoviridae.
The new vaccine strain, called “VNIIVViM-88” (registration number “VNIIViM-88 Dep” in the VGNKI collection), was isolated from the EPM strain by adapting it to the CV-1 subline through a series of intermittent passages and subsequent cloning using the limiting dilution method. The new strain is characterized by the following properties:
1) The strain has morphological properties characteristic of the state of emergency virus of the genus Morbillivirus of the family Paramyxoviridae.

2) Штамм размножается в перевиваемой культуре клеток сублинии CV-1 с развитием ярко выраженного ЦПД в виде симпластов и последующей деструкцией клеток, титр вируса в указанной культуре достигает 3,5 - 4,5 1g ТЦД 50/см куб. Без адаптации вирус размножается в культуре клеток из тканей куриных и перепелиных эмбрионов, вызывая специфическое ЦПД и накапливаясь в титрах до 3,0 - 4,0 1g ТЦД 50/см куб. 2) The strain propagates in a transplanted CV-1 subline cell culture with the development of a pronounced CPD in the form of symplasts and subsequent cell destruction, the virus titer in this culture reaches 3.5 - 4.5 1g TCD 50 / cm3. Without adaptation, the virus multiplies in a culture of cells from the tissues of chicken and quail embryos, causing a specific CPD and accumulating in titers up to 3.0 - 4.0 1g TCD 50 / cm3.

3) Штамм культивируют в монослое перевиваемых клеток сублинии CV-1 в стационарных и роллерных условиях, при оптимальных режимах максимум биологической активности достигается через 44 - 52 час. 3) The strain is cultured in a monolayer of transplantable cells of the CV-1 subline under stationary and roller conditions; under optimal conditions, the maximum biological activity is reached after 44 - 52 hours.

4) Нерегулярно образует бляшки на ХАО куриных эмбрионов. 4) Irregularly forms plaques on HAO chicken embryos.

5) Не контаминирован бактериями, грибами, микоплазмами и посторонними вирусами. 5) Not contaminated by bacteria, fungi, mycoplasmas and extraneous viruses.

6) Безвреден для лабораторных и восприимчивых животных, неконтагиозен, нереверсибелен; непатогенен для человека. 6) Harmless to laboratory and susceptible animals, non-contagious, irreversible; non-pathogenic to humans.

7) Индуцирует формирование напряженного и продолжительного иммунитета против чумы у вакцинированных пушных зверей (норок, тхорзофреток, песцов, лис, енотов) и собак. 7) Induces the formation of intense and prolonged immunity against plague in vaccinated fur animals (minks, thorzofretoks, arctic foxes, foxes, raccoons) and dogs.

8) Вызывает образование вируснейтрализующих антител в титрах 1:8 - 1:32 и выше; гемагглютинирующими свойствами не обладает. 8) Causes the formation of virus-neutralizing antibodies in titers 1: 8 - 1:32 and above; does not possess hemagglutinating properties.

9) Генетически стабилен в течение 10 последовательных пассажей в культуре клеток сублинии CV-1. 9) Genetically stable for 10 consecutive passages in CV-1 subline cell culture.

В отличие от известного способа вирус выращивают в перевиваемой культуре клеточной сублинии, полученной во ВНИИВВиМ из исходной культуры перевиваемых клеток CV-1 из почки африканской зеленой мартышки (номер 43.2 в каталоге клеточной коллекции ВНИИВВиМ). В данном случае из технологического процесса изготовления вакцины исключается дорогостоящая, нестандартная, малотехнологичная и контаминированная посторонними микроорганизмами первичная культура клеток ЭП. In contrast to the known method, the virus is grown in a transplanted culture of cell subline obtained in VNIIVViM from the original culture of transplanted CV-1 cells from an African green monkey kidney (number 43.2 in the catalog of the VNIIVViM cell collection). In this case, the expensive, non-standard, low-tech and contaminated primary culture of EP cells is excluded from the technological process of manufacturing the vaccine.

Для виращивания вируса используют монослойную культуру клеток сублинии CV-1, полученную серийным пассированием с коэффициентом пересева 1:3 - 1:5 в пределах 50 последовательных пассажей. Для обеспечения стандартности производства вакцины создан криобанк рабочих клеток сублинии CV-1, содержащий клетки 17 пассажа в количестве 165 млн, охарактеризованные по стабильности морфологических, ростовых и кариологических показателей на отсутствие туморогенности и контаминации бактериями, грибами, микоплазмами и посторонними вирусами. To grow the virus, a monolayer cell culture of the CV-1 subline is used, obtained by serial passaging with a transfer coefficient of 1: 3 - 1: 5 within 50 consecutive passages. To ensure standard production of the vaccine, a cryobank of working cells of the CV-1 subline was created, containing cells of passage 17 in the amount of 165 million, characterized by the stability of morphological, growth and karyological indicators for the absence of tumorigenicity and contamination by bacteria, fungi, mycoplasmas and extraneous viruses.

Новый штамм и используемые перевиваемые клетки легко культивируются в роллерных условиях на недефицитной питательной среде Игла-МЕМ с сывороткой крови КРС (соответственно по 4 - 5 и 9 - 10% об.), не теряют своих свойств после низкотемпературного хранения и "освежения" - восстановления. При температуре 36,5 - 37,5oC время формирования монослоя клеток сублинии CV-1 и продолжительность культивирования вируса составляют по 44 - 52 час (каждый), что чрезвычайно выгодно для производства.The new strain and used transplanted cells are easily cultured under roller conditions on Igla-MEM non-deficient nutrient medium with cattle blood serum (4–5 and 9–10% vol., Respectively), do not lose their properties after low-temperature storage and “refreshment” - restoration . At a temperature of 36.5 - 37.5 o C, the formation time of the monolayer of CV-1 subline cells and the duration of the virus cultivation are 44 - 52 hours (each), which is extremely beneficial for production.

Применение быстроразмножающегося штамма и высокопродуктивной клеточной линии позволяет повысить технологичность и производительность производства, уменьшить экономические затраты и снизить себестоимость новой вакцины, а следовательно, обеспечивает ее коммерческое преимущество. The use of a rapidly propagating strain and a highly productive cell line can increase manufacturability and productivity, reduce economic costs and reduce the cost of a new vaccine, and therefore provides its commercial advantage.

Безвредность, ареактогенность, высокая антигенная и иммуногенная активность вакцины, изготовленной по новому способу, гарантируются условиями адаптации и поддержания штамма "ВНИИВВиМ-88", при которых достигается стабильность его аттенуированных свойств, генетических и иммунобиологических признаков. В повышенных дозах (до 2000 ТЦД 50/см куб.) вакцина из штамма "ВНИИВВиМ-88" безвредна и не вызывает у иммунизированных плодоядных каких-либо отклонений от физиологической нормы в поведении и приеме пищи, признаков заболевания чумой и гибели. The harmlessness, areactogenicity, high antigenic and immunogenic activity of the vaccine manufactured according to the new method are guaranteed by the conditions of adaptation and maintenance of the strain "VNIIVViM-88", in which stability of its attenuated properties, genetic and immunobiological characteristics is achieved. At elevated doses (up to 2000 TCD 50 / cm3), the vaccine from the VNIIVViM-88 strain is harmless and does not cause any deviations from the physiological norm in the behavior and food intake of the immunized fecivorous animals, signs of plague disease and death.

Прививочная доза вакцины из штамма "ВНИИВВиМ-88" содержит: для норок и тхорзофреток - не менее 100 ТЦД 50/см куб., для лис, песцов и енотов - не менее 200 ТЦД 50/см куб., для собак - не менее 500 ТЦД 50/см куб. При внутримышечном введении в прививочной дозе новая вакцина не вызывает поствакцинальных реакций и осложнений. Иммунитет у пушных зверей наступает на 14 - 21-е сут после однократной вакцинации, у взрослых собак - на 10 - 14-е сут после однократного введения, а у щенков собак - после второй вакцинации в те же сроки. Ревакцинацию взрослых плотоядных проводят ежегодно в тех же дозах. The grafting dose of the vaccine from the VNIIVViM-88 strain contains: for minks and thorzofret — not less than 100 TCD 50 / cm cubic meter, for foxes, arctic foxes and raccoons — not less than 200 TCD 50 / cm cubic meter, for dogs — not less than 500 TCD 50 / cm3 When administered intramuscularly in a vaccination dose, the new vaccine does not cause post-vaccination reactions and complications. Immunity in fur animals occurs on the 14th - 21st day after a single vaccination, in adult dogs - on the 10-14th day after a single injection, and in puppies of dogs - after the second vaccination at the same time. Revaccination of adult carnivores is carried out annually in the same doses.

Вакцина из штамма "ВНИИВВиМ-88" создает 100%-ную защиту от чумы среди пушных зверей и собак, привитых начиная с двухмесячного возраста. У вакцинированных животных выявляют вируснейтрализующие (ВН) антитела к вирусу ЧП: у собак и тхорзофреток - в титрах 1:16 - 1:128, песцов, лис и енотов - 1:8 - 1:32. Продолжительность иммунитета у плотоядных составляет не менее 12 мес. The vaccine from the strain "VNIIVViM-88" creates 100% protection against plague among fur animals and dogs vaccinated from two months old. In vaccinated animals, virus-neutralizing (BH) antibodies to the PE virus are detected: in dogs and thorsofret - in titers 1:16 - 1: 128, Arctic foxes, foxes and raccoons - 1: 8 - 1:32. The duration of immunity in carnivores is at least 12 months.

В отличие от аналогов для стабилизации физических и иммунобиологических свойств новой вакцины предлагается защитная среда на основе продуктов полного и неполного гидролиза белков, содержащая ферментативный пептон или гидролизат белков молочной сыворотки или ферментативный гидролизат мышечных белков, сорбит или сахарозу, гидролизованный желатин. Положительный эффект достигается при смешивании вируссодержащего материала с титром вакцинного вируса 3,5 - 4,5 1g ТЦД 50/см куб. и защитной среды в объемном соотношении 3:2. Предлагаемая среда гарантировано обеспечивает устойчивую эвтектическую зону препарата в пределах от минус 42 до минус 35oC, минимальные потери титра вируса при лиофилизации (не более 0,5 lg), высокую сохраняемость вакцины.In contrast to analogues, a protective medium based on products of complete and incomplete hydrolysis of proteins containing enzymatic peptone or whey protein hydrolyzate or enzymatic muscle protein hydrolyzate, sorbitol or sucrose, hydrolyzed gelatin is proposed to stabilize the physical and immunobiological properties of the new vaccine. A positive effect is achieved by mixing the virus-containing material with a vaccine virus titer of 3.5 - 4.5 1g TCD 50 / cm3. and a protective environment in a volume ratio of 3: 2. The proposed environment is guaranteed to provide a stable eutectic zone of the drug in the range from minus 42 to minus 35 o C, minimal loss of the titer of the virus during lyophilization (not more than 0.5 lg), high shelf life of the vaccine.

Ниже в таблице приведены физические и иммунобиологические свойства 5 серий сухой культуральной вакцины против ЧП, приготовленной по новому способу как из длительно хранившегося (серия 1), так и из свежеполученного вируссодержащего материала (серии 2 и 5), сразу после изготовления и спустя 12 - 13 мес хранения препарата при температуре 4 - 6oC. Титр вируса в свежеприготовленном препарате составляет 3,0 - 4,2 lg ТЦД 50/см куб. Срок годности вакцины - не менее 12 мес при температуре 4 - 6oC, при температуре хранения от минус 50 до минус 40oC он увеличивается до 18 мес.The table below shows the physical and immunobiological properties of 5 series of dry culture vaccine against emergency prepared according to the new method both from long-stored (series 1) and freshly obtained virus-containing material (series 2 and 5), immediately after manufacture and after 12 - 13 month of storage of the drug at a temperature of 4 - 6 o C. The titer of the virus in a freshly prepared preparation is 3.0 - 4.2 lg TCD 50 / cm3. The shelf life of the vaccine is at least 12 months at a temperature of 4 - 6 o C, at a storage temperature from minus 50 to minus 40 o C it increases to 18 months.

Таким образом, предлагаемый способ обеспечивает получение сухой культуральной вакцины против ЧП из штамма "ВНИИВВиМ-88", характеризующейся безвредностью, высокой иммуногенностью, отсутствием контаминации посторонними микроорганизмами (бактериями, грибами, микоплазмами и патогенными для плотоядных вирусами), высокой сохраняемостью своих полезных свойств. Новый способ изготовления вакцины прост в исполнении, доступен и может быть реализован в промышленном масштабе. Thus, the proposed method provides a dry culture vaccine against PE from the VNIIVViM-88 strain, which is characterized by harmlessness, high immunogenicity, the absence of contamination by extraneous microorganisms (bacteria, fungi, mycoplasmas and pathogenic for carnivorous viruses), and high preservation of its useful properties. A new method of manufacturing a vaccine is simple to implement, affordable and can be implemented on an industrial scale.

Для подтверждения преимуществ настоящего изобретения приведены примеры конкретного исполнения. To confirm the advantages of the present invention provides examples of specific performance.

Пример 1. Получение вируссодержащего материала. Example 1. Obtaining virus-containing material.

Для получения вакцины вирус выращивают в монослойной культуре клеток сублинии CV-1 на роллерной установке производительностью 48 дм куб. материала за один цикл. Перевиваемую культуру получают серийным пассированием с коэффициентом пересева 1:4. В качестве ростовой среды применяют Игла-МЕМ с 9,5% об. сыворотки крови КРС. При температуре инкубирования 37oC и скорости вращения сосудов 11 об. в час монослой клеток формируется через 48 час.To obtain a vaccine, the virus is grown in a monolayer culture of CV-1 subline cells on a roller unit with a productivity of 48 dm cube. material in one cycle. The transferred culture is obtained by serial passaging with a reseeding coefficient of 1: 4. As the growth medium used Igla-MEM with 9.5% vol. serum cattle. At an incubation temperature of 37 o C and a vessel rotation speed of 11 vol. per hour, a monolayer of cells is formed after 48 hours.

Выращивание вируса проводят в течение 48 час при температуре 37oC, регулярно просматривая инфицированную культуру под микроскопом. В качестве поддерживающей среды используют Игла-МЕМ с 4,5% об. сыворотки крови КРС. По завершении процесса проводят контроль вируссодержащего материала на контаминацию бактериями, грибами, микоплазмами и по титру вируса в культуре клеток сублинии CV-1. В нашем опыте с одной роллерной установки, несущей 96 роллерных сосудов, получено 48 дм куб. стерильного вируссодержащего материала с титром вируса 4,25 lg ТЦД 50/ см куб., который используется для изготовления сухой культуральной вакцины.The cultivation of the virus is carried out for 48 hours at a temperature of 37 o C, regularly looking at the infected culture under a microscope. As a supporting medium use Igla-MEM with 4.5% vol. serum cattle. At the end of the process, the virus-containing material is monitored for contamination with bacteria, fungi, mycoplasmas and the titer of the virus in the CV-1 subline cell culture. In our experience, from one roller unit carrying 96 roller vessels, 48 dm cube was obtained. sterile virus-containing material with a virus titer of 4.25 lg TCD 50 / cm3, which is used to make a dry culture vaccine.

Пример 2. Изготовление вакцины. Example 2. The manufacture of the vaccine.

Для иммунизации собак и пушных зверей готовят по одной серии вакцины соответственно в ампулах и во флаконах. For immunization of dogs and fur animals, one series of vaccine is prepared in ampoules and in vials, respectively.

Перед лиофилизацией вируссодержащий материал смешивают с защитной средой в объемном соотношении 3:2. С помощью 6%-ного (по массе) водного раствора янтарной кислоты устанавливают pH смеси в уровне 6,6. Before lyophilization, the virus-containing material is mixed with a protective medium in a volume ratio of 3: 2. Using a 6% (by weight) aqueous succinic acid solution, the pH of the mixture is adjusted to 6.6.

Вакцину фасуют по 1 см куб. в стеклянные ампулы, по 5 см куб. - в стеклянные флаконы и высушивают лиофильно. Ампулы с сухой вакциной отпаивают, флаконы - герметично укупоривают. The vaccine is packaged in 1 cm cube. in glass ampoules, 5 cm3 each. - in glass bottles and freeze-dried. Ampoules with dry vaccine are sealed off, bottles are hermetically sealed.

Полученный препарат контролируют по внешнему виду, цвету, растворимости, содержанию массовой доли влаги, контаминации бактериями, грибами, микроплазмами, биологической активности (титру вируса по ЦПД в культуре клеток сублинии CV-1), безвредности (для тхорзофреток в дозе 3000 ТЦД 50), реактогенности и иммуногенности (в опытах на тхорзофретках). Результаты испытаний вакцины серий 3 и 5, приготовленных соответственно для иммунизации собак и пушных зверей, представленны в таблице. The resulting preparation is controlled in terms of appearance, color, solubility, moisture content, contamination by bacteria, fungi, microplasmas, biological activity (virus titer according to CPD in CV-1 subline cell culture), harmlessness (for thorzofretc at a dose of 3000 TCD 50), reactogenicity and immunogenicity (in experiments on thorsofret). The test results of the vaccine series 3 and 5, prepared respectively for immunization of dogs and fur animals, are presented in the table.

Обе серии приготовленной вакцины отвечают нормативным требованиям и пригодны к применению. Both series of prepared vaccines meet regulatory requirements and are suitable for use.

Из 48 дм куб. вируссодержащего материала, полученного только на одной роллерной установке (пример 1), вышеописанным способом может быть изготовлено 80 тыс. доз для собак или 2 млн доз вакцины для иммунизации пушных зверей. From 48 dm cube 80,000 doses for dogs or 2 million doses of vaccine for immunization of fur-bearing animals can be made of the virus-containing material obtained on only one roller unit (Example 1) by the above method.

Пример 3. Испытания вакцины в производственных условиях. Example 3. Tests of a vaccine in a production environment.

Для испытания новой вакцины в производственных условиях проведена иммунизация 580 собак, 18640 норок, 14032 песцов и 628 енотов. Прививочная доза вакцины из штамма "ВНИИВВиМ-88" составила: собакам - от 1000 до 3000 ТЦД 50/см куб., норкам - от 200 до 470 ТЦД 50/см куб., песцам и енотам - от 400 до 940 ТЦД 50/2 см куб. вакцинного вируса. Поствакцинальных реакций и осложнений среди иммунизированных животных не наблюдали. To test the new vaccine under production conditions, 580 dogs, 18640 minks, 14032 Arctic foxes and 628 raccoons were immunized. The vaccination dose of the VNIIVViM-88 vaccine was: for dogs - from 1000 to 3000 TCD 50 / cm3, minks - from 200 to 470 TCD 50 / cm3, Arctic foxes and raccoons - from 400 to 940 TCD 50/2 cm cube vaccine virus. Post-vaccination reactions and complications were not observed among immunized animals.

Через 9 - 12 мес после вакцинации пушных зверей ВН-антитела к вирусу ЧП выявляли в титрах, достаточных для защиты от полевого вируса на уровне 1:8 - 1: 32 в 82% проб и 1:4 - в 13,5% проб сывороток крови. В ходе испытаний вакцины у привитых собак и пушных зверей не было отмечено случаев прорыва иммунитета в течение года наблюдения. 9-12 months after vaccination of fur-bearing animals, BH antibodies to the PE virus were detected in titers sufficient to protect against field virus at the level of 1: 8 - 1: 32 in 82% of samples and 1: 4 in 13.5% of serum samples blood. During vaccine tests in vaccinated dogs and fur animals, there were no cases of breakthrough immunity during the year of observation.

С положительными результатами проведена межведомственная проверка иммунобиологических свойств вакцины, имеется положительное решение Госветбиокомиссии, утверждены технические условия ТУ 9384-005-0000864-96 на опытно-промышленную серию препарата и временное наставление по его применению. Налажено опытно-промышленное производство вакцины по новому способу. An interdepartmental check of the immunobiological properties of the vaccine was carried out with positive results, there is a positive decision of the State Veterinary Commission, technical specifications TU 9384-005-0000864-96 for the pilot industrial series of the drug and temporary instruction for its use are approved. Pilot production of the vaccine has been established according to the new method.

Вакцина из штамма "ВНИИВВиМ-88" может использоваться для профилактической иммунизации домашних и служебных собак, пушных зверей в крупных зверокомплексах и фермерских хозяйствах. Применение вакцины безопасно в ветеринарно-санитарном отношении. Внедрение в производство предлагаемого способа позволит расширить ассортимент профилактических препаратов и повысить эффективность противоэпизоотических мероприятий против чумы плотоядных. The vaccine from the strain "VNIIVViM-88" can be used for the preventive immunization of domestic and service dogs, fur animals in large animal complexes and farms. The use of the vaccine is safe in veterinary and sanitary terms. The introduction of the proposed method into production will expand the range of preventive drugs and increase the effectiveness of anti-epizootic measures against carnivorous plague.

Claims (1)

Способ получения вакцины против чумы плотоядных, включающий выращивание вируса в культуре клеток, сбор вируссодержащего материала, смешивание его с защитной средой и лиофилизацию, отличающийся тем, что в качестве вируса используют аттенуированный штамм "ВНИИВВиМ-88" вируса чумы плотоядных, из культур клеток - перевиваемую культуру клеток сублинии CV-1 из почки африканской зеленой мартышки, из защитных сред - среду, содержащую ферментативный пептон или гидролизат белков молочной сыворотки или ферментативный гидролизат мышечных белков, сорбит или сахарозу и гидролизованный желатин, при этом сбор вируссодержащего материала проводят при достижении уровня накопления вируса 3,5 - 4,5 lg ТЦД 50/см3 и смешивают его с защитной средой в объемном соотношении 3 : 2.A method of obtaining a vaccine against carnivore plague, including growing the virus in a cell culture, collecting virus-containing material, mixing it with a protective medium and lyophilization, characterized in that the virus is an attenuated strain of VNIIVViM-88 virus of the carnivorous plague virus, from cell cultures - transplantable CV-1 subline cell culture from an African green monkey kidney, from protective media — a medium containing an enzymatic peptone or whey protein hydrolyzate or an enzymatic muscle protein hydrolyzate, sor um or sucrose and hydrolyzed gelatin, with collection of virus-containing material is performed when the accumulation level virus 3.5 - 4.5 lg TCD 50 / cm 3 and mixed with the protective medium in a volume ratio of 3: 2.
RU96114738A 1996-07-18 1996-07-18 Method of preparing vaccine against carnivores plague RU2129442C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU96114738A RU2129442C1 (en) 1996-07-18 1996-07-18 Method of preparing vaccine against carnivores plague

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU96114738A RU2129442C1 (en) 1996-07-18 1996-07-18 Method of preparing vaccine against carnivores plague

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU96114738A RU96114738A (en) 1998-12-27
RU2129442C1 true RU2129442C1 (en) 1999-04-27

Family

ID=20183606

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU96114738A RU2129442C1 (en) 1996-07-18 1996-07-18 Method of preparing vaccine against carnivores plague

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2129442C1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN106399260B (en) Canine distemper and parvovirus bivalent live vaccine and preparation method thereof
US4224412A (en) Living virus culture vaccine against canine distemper and method of preparing same
CN111000993B (en) Bivalent inactivated vaccine for duck viral hepatitis and duck reovirus disease and preparation method thereof
US4556556A (en) Vaccine for the prevention of vesicular stomatitis virus infection
US3526696A (en) Shipping fever vaccine
CN111808826B (en) Porcine type-A seneca virus SVA/CH-Fuj strain and application thereof
US4320115A (en) Rabies virus vaccine
HU183765B (en) Process for producing lyophilized vaccine against duck hepatitis
US3585266A (en) Live rabies virus vaccine and method for the production thereof
US5789231A (en) Marek's disease vaccine
RU2129442C1 (en) Method of preparing vaccine against carnivores plague
CN112080478B (en) Efficient propagation method and application of H5 subtype avian influenza virus
RU2332234C1 (en) Method of virus vaccine production against classical swine fever
US3629396A (en) Avian encephalomyelitis vaccine
RU2035918C1 (en) Method for producing duck virus hepatitis vaccine
CN111467488B (en) Water-soluble composite immunoadjuvant and application thereof
US4004974A (en) Live virus culture vaccine against carnivore distemper and method of producing same
RU2108385C1 (en) Attenuated strain of carnivorous plague virus pestis carnivorum
CN108144053A (en) A kind of method for preparing veterinary rabies vaccine
RU2134590C1 (en) Method of preparing inactivated vaccine against rabies in animals
RU2304447C1 (en) Culture vaccine against poultry pox out of hen's virus (ospovac) (variants)
RU2154496C2 (en) Vaccine against plague, infectious hepatitis and parvoviral enteritis in carnivores
CN114668838A (en) Tetrad inactivated vaccine for preventing and treating duck circovirus disease, novel duck reovirus disease, duck viral hepatitis and duck adenovirus type 3
RU2279473C1 (en) Strain of bovine parainfluenza virus for production of vaccine and diagnostic preparations
RU2264227C1 (en) Mixed vaccine based on antigens of microorganism moraxella bovis and herpes virus type i for specific prophylaxis of infectious keratoconjunctivitis in cattle