RU2123010C1 - Method of preparing recombinant interferon-alpha-2 from insoluble inclusion bodies - Google Patents
Method of preparing recombinant interferon-alpha-2 from insoluble inclusion bodies Download PDFInfo
- Publication number
- RU2123010C1 RU2123010C1 RU96115817A RU96115817A RU2123010C1 RU 2123010 C1 RU2123010 C1 RU 2123010C1 RU 96115817 A RU96115817 A RU 96115817A RU 96115817 A RU96115817 A RU 96115817A RU 2123010 C1 RU2123010 C1 RU 2123010C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- interferon
- alpha
- inclusion bodies
- solution
- hcl
- Prior art date
Links
Images
Abstract
Description
Предлагаемое техническое решение относится к биотехнологии и предназначено для использования в медицинской и микробиологической промышленности для производства альфа-2-интерферона человека, необходимого для лечения различных вирусных и онкологических заболеваний. The proposed solution relates to biotechnology and is intended for use in the medical and microbiological industry for the production of human alpha-2-interferon, which is necessary for the treatment of various viral and oncological diseases.
Продукция рекомбинантных белков в микробных клетках часто сопровождается образованием нерастворимых агрегатов, локализованных в цитоплазме и называемых телами включения (ТВ). Чтобы выделить целевой белок, удаляют контаминирующие клеточные белки, солюбилизируют белок в детергенте и восстанавливают его конформацию, получая биологически активный белок. The production of recombinant proteins in microbial cells is often accompanied by the formation of insoluble aggregates localized in the cytoplasm and called inclusion bodies (TBs). To isolate the target protein, contaminating cellular proteins are removed, the protein is solubilized in the detergent and its conformation is restored, obtaining a biologically active protein.
Известно несколько способов выделения альфа-интерферона из тел включения. Several methods are known for isolating alpha interferon from inclusion bodies.
Известен способ получения альфа-интерферона, согласно которому осадок ТВ солюбилизируют в растворе 8 М гуанидинхлорида (Gdn-HCl). Для ренатурации раствор немедленно разбавляют в 4 раза 0,1 М трис-HCl буфером pH 7,5. Суспензию центрифугируют и осадок отбрасывают. 90% белка в супернатанте составляет нативный мономер альфа-интерферона. Процесс очистки белка в нативных условиях включает 4 хроматографии и конечный выход достигает 11% [1]. A known method of producing alpha-interferon, according to which the precipitate TB is solubilized in a solution of 8 M guanidine chloride (Gdn-HCl). For renaturation, the solution was immediately diluted 4 times with 0.1 M Tris-HCl buffer pH 7.5. The suspension is centrifuged and the precipitate is discarded. 90% of the protein in the supernatant is the native monomer of alpha interferon. The process of protein purification under native conditions includes 4 chromatography and the final yield reaches 11% [1].
Также известен способ, когда рекомбинантный альфа-интерферон солюбилизируют в 8 М Gdn-HCl, после чего раствор разбавляют водой и осаждают альфа-интерферон в труднорастворимой, олигомерной форме. Осадок вновь растворяют в Gdn-HCl, затем в 2 раза разбавляют водой и наносят на адсорбционную колонку, уравновешенную раствором 3 М Gdn-HCl. Сорбированный продукт элюируют водным раствором 0,5% Твин-20 в условиях ренатурации [2]. A method is also known where recombinant alpha interferon is solubilized in 8 M Gdn-HCl, after which the solution is diluted with water and alpha interferon is precipitated in a sparingly soluble, oligomeric form. The precipitate was redissolved in Gdn-HCl, then diluted 2 times with water and applied to an adsorption column balanced with a solution of 3 M Gdn-HCl. The sorbed product is eluted with an aqueous solution of 0.5% Tween-20 under renaturation conditions [2].
Оба способа основаны на солюбилизации тел включения в растворе сильного денатуранта (6 - 8 М Gdn-HCl) без добавления восстанавливающих агентов. Такое растворение не разрывает неправильно замкнутые дисульфидные связи, поэтому белок в нативных условиях сохраняет значительную тенденцию к образованию олигомеров и выделяется с низким выходом. Both methods are based on the solubilization of inclusion bodies in a solution of strong denaturant (6-8 M Gdn-HCl) without the addition of reducing agents. Such dissolution does not break improperly closed disulfide bonds; therefore, the protein under native conditions retains a significant tendency to form oligomers and is isolated in low yield.
Известен эффективный способ солюбилизации тел включения (прототип), позволяющий получить мономер альфа-интерферона быстро и с высоким выходом. Клетки разрушают лизоцимом, осадок промывают 1% Тритоном X-100 и растворяют в Gdn-HCl в присутствии дитиотреитола (DTT). Для ренатурации раствор разбавляют до концентрации гуанидина менее 3,8 М в присутствии дитиотреитола и транс-4,5-дигидрокси-1,2-дитиана (DHDT). Солюбилизация ТВ в растворе 6 М Gdn-HCl в присутствии DTT значительно повышает выход нативного мономера. Очистка нативного белка достигается гельпроникающей хроматографией [3]. There is an effective method for solubilization of inclusion bodies (prototype), which allows to obtain alpha-interferon monomer quickly and in high yield. Cells are destroyed by lysozyme, the pellet is washed with 1% Triton X-100 and dissolved in Gdn-HCl in the presence of dithiothreitol (DTT). For renaturation, the solution is diluted to a guanidine concentration of less than 3.8 M in the presence of dithiothreitol and trans-4,5-dihydroxy-1,2-dithian (DHDT). The solubilization of TB in a solution of 6 M Gdn-HCl in the presence of DTT significantly increases the yield of the native monomer. Purification of the native protein is achieved by gel permeation chromatography [3].
Однако промышленное использование такого способа сталкивается с техническими трудностями. Полная солюбилизация ТВ в сильном денатуранте в присутствии восстанавливающих агентов достигается лишь в разбавленных растворах (концентрация белка 0,5 - 1 мг/мл), кроме того, восстанавливающие агенты токсичны. При масштабировании процесса это приводит к большому расходу Gdn-HCl, большим объемам уже на первых стадиях выделения и соответственно увеличению цены препарата. Кроме того, эффективной ренатурации альфа-интерферона из раствора сильного денатуранта путем разбавления мешают примеси, контаминирующие ТВ. Удаление примесей при масштабировании процесса особенно необходимо для получения высокого выхода целевого белка. However, the industrial use of this method encounters technical difficulties. Complete solubilization of TB in strong denaturant in the presence of reducing agents is achieved only in dilute solutions (protein concentration 0.5 - 1 mg / ml), in addition, reducing agents are toxic. When scaling the process, this leads to a large consumption of Gdn-HCl, large volumes already in the first stages of isolation and, accordingly, an increase in the price of the drug. In addition, the effective renaturation of alpha interferon from a solution of strong denaturant by dilution is interfered with by TB contaminants. The removal of impurities during the scaling process is especially necessary to obtain a high yield of the target protein.
Задачей технического решения является разработка эффективных и пригодных для промышленного использования способов солюбилизации, очистки и эффективной ренатурации альфа-2-интерферона из штамма-продуцента, образующего нерастворимые агрегаты, представленные высокомолекулярными S-S олигомерами альфа-интерферона. The objective of the technical solution is to develop effective and industrially suitable methods for solubilization, purification and effective renaturation of alpha-2 interferon from a producer strain forming insoluble aggregates represented by high molecular weight S-S alpha interferon oligomers.
Данная задача решается тем, что разрушение клеток проводят ультразвуком, а после солюбилизации тел включения осуществляют реакцию окислительного сульфитолиза при концентрации белка 5 - 10 мг/мл в растворе, разрушая олигомеры альфа-2-интерферона. Низкомолекулярные примеси отделяют диализом реакционной смеси после сульфитолиза против 8 М мочевины, что позволяет получить стабильные выходы и повышает воспроизводимость способа. This problem is solved in that the destruction of the cells is carried out by ultrasound, and after solubilization of the inclusion bodies, an oxidative sulfitolysis reaction is carried out at a protein concentration of 5-10 mg / ml in solution, destroying the alpha-2-interferon oligomers. Low molecular weight impurities are separated by dialysis of the reaction mixture after sulfitolysis against 8 M urea, which allows to obtain stable yields and increases the reproducibility of the method.
Ренатурацию сульфитированного производного интерферона проводят в присутствии 3 - 4 М мочевины, используя смесь окисленного и восстановленного глутатиона. The renaturation of the sulfitated interferon derivative is carried out in the presence of 3-4 M urea using a mixture of oxidized and reduced glutathione.
Предлагаемый способ осуществлен с использованием штамма-продуцента, полученного трансформацией E.coli SG 20050 плазмидой pIF 16 [4]. Уровень биосинтеза альфа-2-интерферона в трансформированных клетках достигает 50 - 60%. По данным электронной микроскопии в клетках образуются тела включения размером 0,3 - 0,5 мкм. Клетки разрушают ультразвуком, центрифугируют и для дальнейшей работы используют осадок тел включения. Осадок тел включения промывают неионными детергентами, удаляют большую часть высокомолекулярных примесей. Полное растворение тел включения достигается в растворах 6 - 7 М Gdn-HCl. The proposed method was carried out using a producer strain obtained by transformation of E. coli SG 20050 with plasmid pIF 16 [4]. The level of biosynthesis of alpha-2-interferon in transformed cells reaches 50-60%. According to electron microscopy, inclusion cells 0.3 - 0.5 microns in size are formed in the cells. Cells are destroyed by ultrasound, centrifuged and sediment of inclusion bodies is used for further work. The precipitate of the inclusion bodies is washed with non-ionic detergents, most of the high molecular weight impurities are removed. Complete dissolution of inclusion bodies is achieved in solutions of 6-7 M Gdn-HCl.
По результатам электрофореза полученного материала в ПААГ в присутствии SDS, но без предварительной обработки 2-меркаптоэтанолом, нерастворимая фракция большей частью представляет собой сшитые дисульфидными связями олигомеры. Молекулярная масса S-S олигомеров очень высока, они не фракционируются в 15% ПААГ, задерживаясь на границе между концентрирующим и разделяющим гелем. На широкопористом носителе для гельфильтрации материал фракционируется в широких пределах - вплоть до 5 млн. дальтон. Высокая степень олигомеризации альфа-2-интерферона в составе тел включения приводит к тому, что при попытке удалить денатурирующий агент диализом против буферных растворов альфа-2-интерферон практически полностью вновь выпадает в осадок. According to the results of electrophoresis of the obtained material in PAGE in the presence of SDS, but without preliminary treatment with 2-mercaptoethanol, the insoluble fraction is mostly oligomers crosslinked by disulfide bonds. The molecular weight of S-S oligomers is very high, they do not fractionate in 15% SDS page, remaining at the boundary between the concentrating and separating gel. On a broad-porous gel-filtration support, the material is fractionated over a wide range - up to 5 million daltons. The high degree of oligomerization of alpha-2-interferon in the composition of the inclusion bodies leads to the fact that when trying to remove the denaturing agent by dialysis against buffer solutions, alpha-2-interferon almost completely re-precipitates.
Реакция сульфитолиза используется для восстановления активности мономера интерферона после полной инакивации [5], ее используют и для солюбилизации ряда других рекомбинантных белков непосредственно из тел включения [6]. Для растворения тел включения, содержащих альфа-2-интерферон, реакцию сульфитолиза не использовали. The sulfitolysis reaction is used to restore the activity of interferon monomer after complete inactivation [5], it is also used to solubilize a number of other recombinant proteins directly from inclusion bodies [6]. To dissolve inclusion bodies containing alpha-2-interferon, the sulfitolysis reaction was not used.
Использование окислительного сульфитолиза для разрыва неправильно замкнутых дисульфидных связей рекомбинантного альфа-интерферона в составе тел включения штамма-продуцента E. coli SG 20050 pIF 16 дает возможность быстро и эффективно растворять целевой белок в "концентрированном" виде, как сульфитированное производное. The use of oxidative sulfitolysis to break improperly closed disulfide bonds of recombinant alpha interferon in the inclusion bodies of the producer strain E. coli SG 20050 pIF 16 makes it possible to quickly and efficiently dissolve the target protein in a "concentrated" form, as a sulfitated derivative.
В условиях реакции сульфитолиза растворяют альфа-2-интерферон в составе тел включения до мономера в широком диапазоне концентрации белка (5 - 10 мг/мл). Способом SDS-электрофореза в ПААГ в нередуцирующих условиях обнаруживается в основном мономерная форма интерферона в продукте после сульфитолиза (75 - 80%). Under the conditions of the sulfitolysis reaction, alpha-2-interferon in the composition of the inclusion bodies is dissolved to a monomer in a wide range of protein concentration (5 - 10 mg / ml). By SDS-electrophoresis in PAGE under non-reducing conditions, the monomer form of interferon in the product after sulfitolysis (75 - 80%) is detected mainly.
В случае недостаточной очистки сульфитированного производного от примесей при ренатурации посредством разбавления раствора реакционной смеси после сульфитолиза происходит агрегация. Примеси, контаминирующие тела включения, ассоциируют с гидрофобными группами целевого белка и препятствуют ренатурации. Чтобы избежать неоднозначных результатов при ренатурации и нестабильности выхода удаляют низкомолекулярные примеси диализом реакционной смеси после сульфитолиза против раствора слабого детергента [7]. Растворимость сульфитированного мономера альфа-2-интерферона сохраняют и повышают при изменении сильно денатурирующей среды (6 - 7 М Gdn-HCl) на слабо денатурирующую среду (7 - 8 М мочевина). Для предотвращения агрегации реакционную смесь разбавляют в 7 - 10 раз 7 - 8 М раствором мочевины и диализуют против такого же раствора. In case of insufficient purification of the sulfitated derivative from impurities during renaturation by diluting the solution of the reaction mixture after sulfitolysis, aggregation occurs. Impurities that contaminate inclusion bodies are associated with hydrophobic groups of the target protein and inhibit renaturation. To avoid ambiguous results during renaturation and yield instability, low molecular weight impurities are removed by dialysis of the reaction mixture after sulfitolysis against a solution of weak detergent [7]. The solubility of sulfonated alpha-2-interferon monomer is maintained and increased when the strongly denaturing medium (6 - 7 M Gdn-HCl) changes to slightly denaturing medium (7 - 8 M urea). To prevent aggregation, the reaction mixture is diluted 7-10 times with a 7-8 M urea solution and dialyzed against the same solution.
Эффективная ренатурация достигается переформированием дисульфидных связей в присутствии смеси окисленного и восстановленного глутатиона в соотношении 1 : 10. Присутствие 3 - 4 М мочевины повышает выход ренатурированного белка. Effective renaturation is achieved by reforming disulfide bonds in the presence of a mixture of oxidized and reduced glutathione in a ratio of 1: 10. The presence of 3 to 4 M urea increases the yield of the renatured protein.
Описанный способ получения альфа-2-интерферона из тел включения дает возможность после двухступенчатой очистки белка в нативных условиях получить гомогенный препарат с удельной противовирусной активностью не менее 1,7 • 108 МЕ/мг, не содержащий примесных белков (не более 0,2 нг/мкг) с выходом 9 - 13 мг из 1 г биомассы.The described method for producing alpha-2-interferon from inclusion bodies makes it possible, after two-stage protein purification under native conditions, to obtain a homogeneous preparation with a specific antiviral activity of at least 1.7 • 10 8 IU / mg, not containing impurity proteins (not more than 0.2 ng / μg) with a yield of 9 - 13 mg from 1 g of biomass.
Препаративное использование данного способа позволяет получить до 400 мг нативного белка в каждом цикла из 30 г биомассы. Способ прост в применении и сочетает последовательные проточные диализы и хроматографическое разделение. Объемы диализных растворов последовательно возрастают от 200 мл на первых стадиях и не превышают 3 - 4 л на конечных стадиях диализа. The preparative use of this method allows you to get up to 400 mg of native protein in each cycle of 30 g of biomass. The method is simple to use and combines sequential flow dialysis and chromatographic separation. The volumes of dialysis solutions sequentially increase from 200 ml in the first stages and do not exceed 3-4 l in the final stages of dialysis.
Изобретение иллюстрируется следующими примерами конкретного исполнения. The invention is illustrated by the following examples of specific performance.
Пример 1. Удаление примесных белков промыванием осадка ТВ неионными детергентами
30 - 40 г биомассы штамма-продуцента альфа-2-интерферона E. coli SG 20050 pIF 16 суспендируют в 300 - 400 мл 50 мМ трис-HCl буфера pH 8,0, содержащего 2 мМ ЭДТА. Клетки разрушают ультразвуком, центрифугируют в течение 1 ч при 12000 об/мин при температуре 4oC. Для дальнейшей работы используют осадок.Example 1. Removal of impurity proteins by washing the precipitate TV with nonionic detergents
30 - 40 g of the biomass of the producer strain of alpha-2-interferon E. coli SG 20050 pIF 16 is suspended in 300 - 400 ml of 50 mm Tris-HCl buffer pH 8.0, containing 2 mm EDTA. Cells are destroyed by ultrasound, centrifuged for 1 h at 12000 rpm at a temperature of 4 o C. For further work, a precipitate is used.
Осадок тел включения промывают раствором Тритона X-100 1%, растирая суспензию в гомогенизаторе, и интенсивно перемешивают в течение 15 - 20 мин. Центрифугируют в течение 30 мин при 12000 об/мин при температуре 4oC.The precipitate of the inclusion bodies is washed with a solution of Triton X-100 1%, grinding the suspension in a homogenizer, and intensively stirred for 15 to 20 minutes. Centrifuged for 30 min at 12,000 rpm at a temperature of 4 o C.
Аналогично осадок дважды суспендируют в растворе 3 М мочевины в 50 мМ трис-HCl буфера pH 7,5. Промывочные растворы содержат набор солюбилизированных высокомолекулярных белков, но не содержат альфа-2-интерферона. Вес осадка 4 - 6 г, содержание альфа-2-интерферона 78 - 80%. Similarly, the precipitate was twice suspended in a solution of 3 M urea in 50 mm Tris-HCl buffer pH 7.5. Wash solutions contain a set of solubilized high molecular weight proteins, but do not contain alpha-2-interferon. The weight of the precipitate 4 - 6 g, the content of alpha-2-interferon 78 - 80%.
Пример 2. Растворение тел включения в гуанидинхлориде и проведение окислительного сульфитолиза
К полученному в примере 1 осадку добавляют 40 - 50 мл раствора 6 - 7 М Gdn-HCl в 100 мМ трис-HCl буфере pH 8,0, содержащем 1 мМ ЭДТА, и интенсивно перемешивают до прозрачности. Для лучшего растворения суспензию растирают в гомогенизаторе Поттера и обрабатывают ультразвуком 1 - 2 раза.Example 2. Dissolution of inclusion bodies in guanidinochloride and oxidative sulfitolysis
To the precipitate obtained in Example 1, 40-50 ml of a solution of 6-7 M Gdn-HCl in 100 mM Tris-HCl buffer pH 8.0 containing 1 mM EDTA was added and stirred vigorously until clear. For better dissolution, the suspension is triturated in a Potter homogenizer and sonicated 1 to 2 times.
Определяют содержание белка по методу Лоури (пробу разбавляют в 200 раз, чтобы исключить влияние детергента). Раствор тел включения разбавляют 6 - 7 М Gdn-HCl до концентрации белка 5 - 10 мг/мл и проводят окислительный сульфитолиз. К раствору ТВ добавляют сухие навески сульфита натрия и тетратионата натрия (30 мг/мл и 14 мг/мл соответственно). Реакцию проводят при перемешивании 16 - 18 ч при комнатной температуре [8]. По результатам электрофореза в нередуцирующих условиях 75 - 80% белка в растворе переходит в форму сульфитированного мономера в широком диапазоне концентрации белка альфа-2-интерферона в реакционной смеси (табл.1). Для препаративной наработки высокая концентрация белка 5 - 10 мг/мл реакционной смеси позволяет оперировать с небольшими объемами раствора Gdn HCl (100 - 200 мл) без снижения выхода модифицированного мономера. Determine the protein content by the Lowry method (the sample is diluted 200 times to exclude the influence of the detergent). The solution of inclusion bodies is diluted with 6-7 M Gdn-HCl to a protein concentration of 5-10 mg / ml and oxidative sulfitolysis is carried out. Dry samples of sodium sulfite and sodium tetrathionate (30 mg / ml and 14 mg / ml, respectively) are added to the TB solution. The reaction is carried out with stirring for 16 to 18 hours at room temperature [8]. According to the results of electrophoresis under non-reducing conditions, 75 - 80% of the protein in solution passes into the form of a sulfitated monomer in a wide range of alpha-2-interferon protein concentration in the reaction mixture (Table 1). For preparative production, a high protein concentration of 5–10 mg / ml of the reaction mixture allows one to operate with small volumes of Gdn HCl solution (100–200 ml) without reducing the yield of the modified monomer.
Пример 3. Очистка модифицированного мономера в денатурирующих условиях
Реакционную смесь (см. пример 2) разбавляют в 7 - 10 раз раствором 8 М мочевины в 50 мМ Na-фосфтаном буфере pH 8,0 и диализуют против такого же буферного раствора 8 М мочевины.Example 3. Purification of the modified monomer under denaturing conditions
The reaction mixture (see Example 2) is diluted 7-10 times with a solution of 8 M urea in 50 mM Na-phosphane buffer pH 8.0 and dialyzed against the same 8 M urea buffer solution.
Пример 4. Ренатурация модифицированного мономера
Как показали результаты экспериментов (см. табл.2) присутствие 3 - 4 М мочевины повышает выход нативного мономера после ренатурации, причем объем увеличивается в 2 - 2,5 раза.Example 4. Renaturation of the modified monomer
As shown by the experimental results (see Table 2), the presence of 3–4 M urea increases the yield of the native monomer after renaturation, and the volume increases by a factor of 2.5–2.
Отдиализованный раствор, полученный по примеру 3, разбавляют в 2 раза 50 мМ Na-фосфатным буфером pH 8,0, содержащим восстановленный и окисленный глутатион (концентрация 1 и 0,1 мМ соответственно). Раствор выдерживают 24 - 48 ч при 4 - 10oC и диализуют против 50 мМ Na-фосфатного буфера pH 8,0 и затем против 100 мМ Na-ацетатного буфера pH 4,6. Осадок собирают центрифугированием и отбрасывают.The dialyzed solution obtained in Example 3 is diluted 2 times with 50 mM Na-phosphate buffer pH 8.0 containing reduced and oxidized glutathione (concentrations of 1 and 0.1 mM, respectively). The solution was incubated for 24 - 48 hours at 4 - 10 o C and dialyzed against 50 mm Na-phosphate buffer pH 8.0 and then against 100 mm Na-acetate buffer pH 4.6. The precipitate was collected by centrifugation and discarded.
Пример 5. Очистка альфа-2-интерферона в нативных условиях до гомогенности
В процессе ренатурации и последовательных диализов складывается правильная конформация молекулы альфа-интерферона.Example 5. Purification of alpha-2-interferon under native conditions to homogeneity
In the process of renaturation and consecutive dialyses, the correct conformation of the alpha-interferon molecule is formed.
Для очистки белка до гомогенности раствор альфа-интерферона наносят на колонку СМ-52 целлюлозы и элюируют линейным градиентом соли (0 - 0,3 М) NaCl в 100 мМ Na-ацетатном буфере pH 4,6. To purify the protein to homogeneity, an alpha-interferon solution is applied to a CM-52 cellulose column and eluted with a linear gradient of salt (0 - 0.3 M) NaCl in 100 mM Na-acetate buffer pH 4.6.
Отделение мономерной формы от ди-, тримеров альфа-интерферона проводят гель-фильтрацией на сефадексе G-50 в 100 мМ Na-ацетатном буфере pH 4,6, содержащем 0,12 М NaCl. Separation of the monomeric form from di-, trimers of alpha-interferon is carried out by gel filtration on Sephadex G-50 in 100 mM Na-acetate buffer, pH 4.6, containing 0.12 M NaCl.
Двухступенчатой очистки в нативных условиях достаточно для получения препарата со следующими показателями качества:
- чистота препарата не менее 95% в редуцирующих условиях и не менее 90% в нередуцирующих условиях (по результатам SDS-электрофореза в ПААГ);
- удельная противовирусная активность альфа-2-интерферона не менее 1,7 • 108 МЕ/мг;
- препарат нетоксичен в культуре клеток и на животных;
- содержание примесных белков не более 0,2 нг/мкг белка;
- содержание примеси нуклеиновых кислот не более 40 пг/мг белка.A two-stage purification under native conditions is sufficient to obtain a preparation with the following quality indicators:
- the purity of the drug is not less than 95% in reducing conditions and not less than 90% in non-reducing conditions (according to the results of SDS-electrophoresis in SDS page);
- specific antiviral activity of alpha-2-interferon is not less than 1.7 • 10 8 IU / mg;
- the drug is non-toxic in cell culture and in animals;
- the content of impurity proteins is not more than 0.2 ng / μg of protein;
- the content of impurities of nucleic acids is not more than 40 pg / mg protein.
Выход конечного продукта варьирует от 9 до 13 мг из 1 г биомассы. The yield of the final product varies from 9 to 13 mg from 1 g of biomass.
Промышленная применимость
Эффективный и пригодный для масштабирования способ солюбилизации, очистки и эффективной ренатурации альфа-2-интерферона из штамма-продуцента, образующего нерастворимые агрегаты, представленные высокомолекулярными S-S олигомерами альфа-интерферона, дает возможность после двухступенчатой очистки белка в нативных условиях получить гомогенный препарат с удельной противовирусной активностью не менее 1,7 • 103 МЕ/мг, не содержащий примесных белков (не более 0,2 нг/мкг) с выходом 9-13 мг из 1 г биомассы.Industrial applicability
An effective and scalable method of solubilization, purification, and effective renaturation of alpha-2-interferon from a producer strain that forms insoluble aggregates represented by high molecular weight alpha-interferon oligomers gives an opportunity to obtain a homogeneous preparation with specific antiviral activity after two-step protein purification under native conditions not less than 1.7 • 10 3 IU / mg, not containing impurity proteins (not more than 0.2 ng / μg) with a yield of 9-13 mg from 1 g of biomass.
Использование данного способа позволяет получить до 400 мг нативного белка в каждом цикле из 30 г биомассы. Способ прост в применении и сочетает последовательные проточные диализы и хроматографическое разделение. Объемы диализных растворов последовательно возрастают от 200 мл на первых стадиях и не превышают 3-4 л на наконечных стадиях диализа. Using this method allows you to get up to 400 mg of native protein in each cycle of 30 g of biomass. The method is simple to use and combines sequential flow dialysis and chromatographic separation. The volumes of dialysis solutions consistently increase from 200 ml in the first stages and do not exceed 3-4 l in the final stages of dialysis.
Источники информации
1. Thatcher D.R., Panayotatos N. Purification of Recombinant Human IFN- α2. Methods in Enzymology, 1986, v. 119, p.166-177.Sources of information
1. Thatcher DR, Panayotatos N. Purification of Recombinant Human IFN-α2. Methods in Enzymology, 1986, v. 119, p. 166-177.
2. Заявка ФРГ N 3511011 "Способ выделения и очистки альфа-интерферона", опубл. 02.10.86. 2. Application of Germany N 3511011 "Method for the isolation and purification of alpha interferon", publ. 10/02/86.
3. Wilson M.J., Freedman R.B., Fitton J.E. Recovery, Refolding and Purification α2 -Interferon. Biochemical Society Transactions 1988, 76, 1, p. 58-60. 3. Wilson M.J., Freedman R. B., Fitton J. E. Recovery, Refolding and Purification α2-Interferon. Biochemical Society Transactions 1988, 76, 1, p. 58-60.
4. Патент РФ N 2054041 "Рекомбинантная плазмидная ДНК pIF16, кодирующая зрелый лейкоцитарный интерферон-альфа-2- человека, штамм E.coli-продуцент зрелого лейкоцитарного интерферона-альфа-2 человека". БИ N 4, опубл. 10.02.96. 4. RF patent N 2054041 "Recombinant plasmid DNA pIF16 encoding mature human leukocyte interferon-alpha-2-strain E. coli-producer of mature human leukocyte interferon-alpha-2".
5. Fanger J. A. , Pestka S. Procedure for Reduction and Reoxidation of Human Leukocyte Interferon. Methods in Enzymology, 1986, v. 119, p.248-255. 5. Fanger J. A., Pestka S. Procedure for Reduction and Reoxidation of Human Leukocyte Interferon. Methods in Enzymology, 1986, v. 119, p. 248-255.
6. Marston F.A. The purification of eukaryotic polypeptides synthesized in Escherichia coli - Biochem. J. 1986, 240 (1), 1-12. 6. Marston F.A. The purification of eukaryotic polypeptides synthesized in Escherichia coli - Biochem. J. 1986, 240 (1), 1-12.
7. Патент США N 4512922 "Очистка и обеспечение активности осажденных гетерологичных протеинов", опубл. 23.04.85. 7. US patent N 4512922 "Cleaning and maintaining the activity of precipitated heterologous proteins", publ. 04/23/85.
8. Panayotis G.K., et al. Studies of the Synthesis of Insulin from Natural and Synthetic A and B Chains. I. Splitting of Insulin and Isolation of the S-Sulfonated Derivatives of the A and B Chains. Biochemistry 1967, v.6, N 9, p. 635. 8. Panayotis G.K., et al. Studies of the Synthesis of Insulin from Natural and Synthetic A and B Chains. I. Splitting of Insulin and Isolation of the S-Sulfonated Derivatives of the A and B Chains. Biochemistry 1967, v. 6, N 9, p. 635.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU96115817A RU2123010C1 (en) | 1996-07-31 | 1996-07-31 | Method of preparing recombinant interferon-alpha-2 from insoluble inclusion bodies |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU96115817A RU2123010C1 (en) | 1996-07-31 | 1996-07-31 | Method of preparing recombinant interferon-alpha-2 from insoluble inclusion bodies |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2123010C1 true RU2123010C1 (en) | 1998-12-10 |
RU96115817A RU96115817A (en) | 1999-01-10 |
Family
ID=20184091
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU96115817A RU2123010C1 (en) | 1996-07-31 | 1996-07-31 | Method of preparing recombinant interferon-alpha-2 from insoluble inclusion bodies |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2123010C1 (en) |
-
1996
- 1996-07-31 RU RU96115817A patent/RU2123010C1/en active
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
Biochemical Society Transactions, 1988, v.76, p.58 - 60. * |
Methods in Enzymology. 1986, v.119, p. 116 - 177, p. 248 - 255. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4828990A (en) | Method for purifying an interferon | |
JP2575604B2 (en) | Methods for purification and activation of precipitated heterologous proteins | |
CA1339707C (en) | Formulations for recombinant beta-interferon | |
KR0126767B1 (en) | Production of proteins in active forms | |
EP0215625B1 (en) | Protein recovery | |
Samuelsson et al. | Facilitated in vitro refolding of human recombinant insulin-like growth factor I using a solubilizing fusion partner | |
JPS6272625A (en) | Stable oral dosage and manufacture | |
JPS6269998A (en) | Purification and activation of protein from insoluble seal body | |
US4966963A (en) | Production of proteins in active forms | |
JP2004516300A (en) | Methods for folding chemically synthesized polypeptides | |
EP0112849A1 (en) | A process for the preparation of chymosin. | |
JPS63169995A (en) | Recovery and purification of beta-interferon | |
EA022821B1 (en) | Method for obtaining biologically active recombinant human g-csf | |
JPH01503440A (en) | Recombinant human CSF-1 produced by purified biologically active bacteria | |
US4675387A (en) | Method for extracting protein with organic acid | |
JP2955294B2 (en) | Method for recovering recombinant interleukin-2 purified, oxidized and regenerated from microorganism | |
Khan et al. | Large-scale production of recombinant proteins: human leukocyte interferon | |
US20180037604A1 (en) | Process for the purification of recombinant proteins | |
EP0288280A2 (en) | Production of proteins in active forms | |
KR0178274B1 (en) | Method for recovering recombinant somatotropin | |
RU2123010C1 (en) | Method of preparing recombinant interferon-alpha-2 from insoluble inclusion bodies | |
JP3930051B2 (en) | Method for producing correctly folded biologically active recombinant protein | |
JPS62503143A (en) | Purification of somatotropin from transformed microorganisms | |
US4845032A (en) | Process for the isolation and purification of alpha-interferons | |
JP4055248B2 (en) | Purified human activin and method for producing the same |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PD4A | Correction of name of patent owner | ||
QZ4A | Changes in the licence of a patent |
Effective date: 20030423 |
|
QZ4A | Changes in the licence of a patent |
Effective date: 20030423 |
|
PD4A | Correction of name of patent owner | ||
QZ41 | Official registration of changes to a registered agreement (patent) |
Effective date: 20131223 Free format text: LICENCE FORMERLY AGREED ON 20030423 |