RU2118538C1 - Способ получения антигена для серологической диагностики паратуберкулеза у жвачных животных - Google Patents

Способ получения антигена для серологической диагностики паратуберкулеза у жвачных животных Download PDF

Info

Publication number
RU2118538C1
RU2118538C1 RU96123745/13A RU96123745A RU2118538C1 RU 2118538 C1 RU2118538 C1 RU 2118538C1 RU 96123745/13 A RU96123745/13 A RU 96123745/13A RU 96123745 A RU96123745 A RU 96123745A RU 2118538 C1 RU2118538 C1 RU 2118538C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
antigen
paratuberculosis
strain
distilled water
supernatant
Prior art date
Application number
RU96123745/13A
Other languages
English (en)
Other versions
RU96123745A (ru
Inventor
В.С. Тырина
Г.Г. Попова
Original Assignee
Всероссийский государственный научно-исследовательский институт контроля, стандартизации и сертификации ветеринарных препаратов
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всероссийский государственный научно-исследовательский институт контроля, стандартизации и сертификации ветеринарных препаратов filed Critical Всероссийский государственный научно-исследовательский институт контроля, стандартизации и сертификации ветеринарных препаратов
Priority to RU96123745/13A priority Critical patent/RU2118538C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2118538C1 publication Critical patent/RU2118538C1/ru
Publication of RU96123745A publication Critical patent/RU96123745A/ru

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Способ предназначен для получения антигена из штамма Mycobacterium paratuberculosis ВГНКИ"КА"-ДЕП. Штамм культивируют в среде Ватсона-Рейда в течение 28 - 35 суток. Выращенную бактериальную массу отмывают дистиллированной водой, суспендируют в физиологическом растворе до концентрации 70 - 90 мг/см3 и дезинтегрируют ультразвуком при 22 кГц в течение 15 - 16 мин. Отделяют клеточный детрит центрифугированием при 16 - 20 тыс. об/мин в течение 50 минут. Супернатант концентрируют тиомерсалом из расчета 1:10000. Способ позволяет получить более активный и специфичный антиген, использовать для диагностики паратуберкулеза жвачных животных в РИД. Применение РИД с полученным антигеном позволит выявлять в 1,4-9,8 раз больше больных животных, чем РСК. Проведение диагностики заболевания является простым, наглядным, быстрым и дешевым. 1 табл.

Description

Предлагаемое изобретение относится к области ветеринарной иммунологии, в частности, к способу получения антигена для серологической диагностики паратуберкулеза у жвачных животных.
Паратуберкулез - хроническое инфекционное заболевание жвачных животных, распространенное во всем мире, в т.ч. в странах с высокоразвитым животноводством.
Клиническое проявление болезни (диарея, истощение) имеет место в 2 - 5% случаев заболевания. Чаще наблюдается бессимптомная форма течения болезни, которая может длиться годами.
Для правильной постановки диагноза необходимо проведение комплексного исследования с использованием аллергического, паталогоанатомического, бактериологического и серологического методов.
Известны антигены для выявления гуморальных антител в сыворотке крови больных паратуберкулезом животных в реакции связывания комплемента (РСК), а также в реакции иммунодиффузии в агаровом геле (РИД).
Известен способ получения антигена для серологической диагностики паратуберкулеза у жвачных животных, включающий получение бактериальной массы из штамма микобактерий паратуберкулеза N 18 (Вейбриджская коллекция штаммов микроорганизмов), механическое ее разрушение, удаление клеточного детрита центрифугированием и высушивание супернатанта (1).
Недостатком данного антигена является невысокая его чувствительность ввиду того, что для получения препарата используется грубое механическое разрушение бактериальной массы (посредством механического пресса), что ведет к значительной потере серологически активных компонентов. Кроме того, для получения антигена используется не свежевыделенный изолят, а штамм, длительно поддерживаемый в лабораторных условиях, что привело к изменению некоторых его биологических свойств.
Известен также способ получения антигена для серологической диагностики паратуберкулеза у жвачных животных, включающий получение бактериальной массы из штаммов микобактерий паратурберкулеза II-V N106 и Teps N 105 (Вейбриджская коллекция штаммов микроорганизмов), путем выращивания их на среде Рейда в течение 45 - 60 суток, ее фильтрацию, отмывку от остатков среды дистиллированной водой, концентрацию путем центрифугирования при 2000 - 3000 об/мин в течение 15 мин, обработку ацетоном, диализ, добавление мертиолята 1:5000, последующую дезинтеграцию ультразвуком в течение 30 мин, осаждение клеточного детрита путем центрифугирования при 5000 об/мин в течение 30 мин, отделение супернатанта с содержанием 3,5 - 7 мг/см3 протеина и лиофильное высушивание целевого продукта (2).
Недостатком данного способа является невысокая чувствительность получаемого антигена из-за его использования в РСК, а также его низкая специфичность ввиду того, что до 50% реакций у животных являются ложноположительными (неспецифическими).
Данный способ является, кроме того, трудоемким по получению целевого продукта.
Целью изобретения является повышение эффективности антигена для диагностики паратуберкулеза в реакции иммунодиффузии, а также снижение затрат по его получению.
Указанная цель достигается тем, что получение бактериальной массы осуществляют из штамма Mycobacterium paratuberculosis ВГНКИ "КА" ДЕП, который выращивают на среде Ватсона-Рейда в течение 28 - 35 суток, после отмывки дистиллированной водой бактериальную массу суспендируют в физиологическом растворе до концентрации 70 - 90 мг/см3, дезинтегрируют при 22 кГц в течение 15 - 16 мин, осаждают клеточный детрит центрифугированием при 16 - 20 тыс. об/мин в течение 30 - 50 мин, после отделения супернатант консервируют тиомерсалом из расчета 1:10000.
Новый штамм Mycobacterium paratuberculosis получен из изолята, выделенного из организма больной паратурберкулезом козы. Штамм путем перемежающихся посевов и последовательных пассажей адаптирован к росту на жидкой синтетической среде Ватсона-Рейда.
Штамм M. paratuberculosis депонирован в коллекции микроорганизмов Всероссийского государственного научно-исследовательского института контроля, стандартизации и сертификации ветеринарных препаратов и имеет регистрационный номер "КА" - ДЕП.
Штамм M. paratuberculosis ВГНКИ "КА"-ДЕП характеризуется следующими признаками и свойствами.
По своим таксономическим признакам штамм ВГНКИ "КА"-ДЕП является типичным представителем вида M. paratuberculosis (Берги, 1988).
Морфологические признаки. При окраске по методу Циля-Нильсена в мазках - мелкие прямые или слегка изогнутые рубиново-красные палочки с 1-2 гранулами, собранные в кучки или лежащие изолированно, длиной 1-2 мкм и шириной 0,3 - 0,5 мкм.
Культуральные свойства. На элективных яичных средах (Левенштейна-Иенсена, Геррольда, Финна-2) с микобактином на 14 - 16 сутки инкубации при 37 - 38oC образует полусферические колонии серо-белого цвета. На этой же среде без обогащения микобактином рост отсутствует.
Добавление дополнительно в среду Левенштейна-Иенсена с микрбактином натрия салицилата в количестве 1 мг/см3, тубазида из расчета 5 мкг/см3, стрептомицина и этамбутола в количестве 1 мкг/см3 и 50 мкг/см3 соответственно не ингибирует роста штамма ВГНКИ "КА". Характер роста и морфология колоний на среде Левенштейна-Иенсена с указанными лекарственными средствами идентичны росту на среде Левенштейна-Иенсена с микобактином.
Ферментативные свойства. Штамм ВГНКИ "КА" не редуцирует нитраты в нитриты. Под действием специальных реактивов окраска раствора не меняется. Вызывает гидролиз Твина-80. Под действием энзимов изменяется окраска субстрата из янтарной в розово-красную. Каталазная активность 16 - 20 мм.
Серологические свойства. Штамм ВГНКИ "КА" в РИД с гипериммунными кроличьими сыворотками к штамму "КА" образует 4 полосы преципитации, а с антисыворотками к штаммам микобактерий паратуберкулеза, выделенных от крупного рогатого скота, - три полосы преципитации.
Вирулентные свойства. У хомяков и белых мышей вызывает массивную бактериальную диссеминацию паренхиматозных органов и кишечника.
Пример 1
Штамм M. paratuberculosis ВГНКИ "КА" культивируют в жидкой синтетической среде Ватсона-Рейда при 37 - 38oC в течение 28 - 35 суток. Бактериальную массу отмывают на бумажном фильтре от остатков среды 2-3 раза дистиллированной водой. После отмывки бактериальную массу суспендируют в стерильном физиологическом растворе до концентрации 70 мг/см3 и подвергают дезинтеграции ультразвуком при 22 кГц в течение 15 мин. После дезинтеграции ультразвуком проводят осаждение клеточного детрита центрифугированием при 16000 об/мин в течение 30 мин и отделяют супернатант, содержащий антиген с концентрацией белка 1,5 мг/см3. Перед расфасовкой и укупоркой в готовый препарат вносят консервант тиомерсал из расчета 1:10000.
Пример 2
Антиген готовят аналогично примеру 1. Отмытую дистиллированной водой бактериальную массу из штамма M. paratuberculosis ВГНКИ "КА" суспендируют в стерильном физиологическом растворе до концентрации 80 мг/см3 и подвергают дезинтеграции ультразвуком в течение 16 мин. Осаждение клеточного детрита проводят центрифугированием при 18000 об/мин в течение 40 мин и отделяют супернатант, содержащий антиген с концентрацией белка 1,6 мг/см3.
Пример 3
Антиген готовят аналогично примеру 1. Отмытую дистиллированной водой бактериальную массу из штамма M. paratuberculosis ВГНКИ "КА" суспендируют в стерильном физиологическом растворе до концентрации 90 мг/см3 и подвергают дезинтеграции ультразвуком в течение 16 мин. Осаждение клеточного детрита проводят центрифугированием при 20000 об/мин в течение 50 мин и отделяют супернатант, содержащий антиген с концентрацией белка 1,8 мг/см3.
Готовый антиген представляет собой жидкость желтоватого цвета с легкой опалесценцией.
Антиген сохраняет свои серологические свойства в течение 24 мес. хранения в сухом темном месте при температуре 2 - 8oC.
Пример 4
Изучают активность 3-х вариантов полученного антигена в реакции иммунодиффузии в геле (РИД) с сыворотками крови больных паратуберкулезом животных. Реакцию ставят в чашках Петри (d = 100 мм). Чашки расставляют на строго горизонтальной поверхности и в каждую вносят по 16 см3 расплавленного агара. Оставляют при комнатной температуре до полного застывания его. Штампом пробивают в агаре лунки с одной центральной и шестью, рапсоложенными по периферии. Кусочки геля из лунок удаляют с помощью водоструйного насоса или препаровальной иглой. На одной чашке размещают 6 фигур для исследования 36 проб сывороток.
В центральную лунку вносят антиген по примеру 1, 2 или 3, в периферические-испытуемые сыворотки. Исследуют 18 сывороток крови крупного рогатого скота, 39 сывороток крови овец и 59 сывороток крови коз из хозяйств, неблагополучных по паратуберкулезному энтериту. В одной чашке ставят контроль с положительной паратуберкулезной гипериммунной кроличьей сывороткой (референс-сыворотка). Чашки Петри закрывают крышками и оставляют при температуре не ниже 20oC.
Учет реакции проводят визуально при дневном свете или с помощью осветителя ОИ-19. Образование одной или нескольких полос преципитации между центральной лункой с антигеном и периферическими лунками с испытуемыми сыворотками через 18 - 48 часов после постановки реакции свидетельствует о положительной реакции. При отсутствии в контроле с референс-сывороткой линии преципитации результаты РИД с испытуемыми сыворотками не подлежат оценке.
При получении положительных результатов в РИД животное признают инфицированным возбудителем паратуберкулеза.
Устанавливают в РИД активность всех трех полученных антигенов с исследуемыми сыворотками животных и равнозначное количество положительно реагирующих сывороток крови животных с каждым из антигенов.
Регистрируют с положительными реакциями в РИД: 10 из 18 сывороток крови крупного рогатого скота, 21- из 39 сывороток овец и 33 из 59 сывороток крови коз. Таким образом, признают 55,6% коров, 53,8% овец и 55,9% коз от исследованного поголовья, инфицированными возбудителем паратуберкулеза в хозяйствах, неблагополучных по этому заболеванию.
Пример 5
Изучают специфичность антигена в РИД по примеру 1 в отношении близкородственных возбудителей - микобактерий туберкулеза бычьего вида.
Аналогично, как в примере 4 исследуют в РИД 50 сывороток крови крупного рогатого скота из туберкулезного изолятора и 20 сывороток крови от животных, имеющих туберкулезные поражения в органах на вскрытии.
Исследуемый антиген со всеми сыворотками не образует линий преципитации, что говорит об отрицательной РИД и специфичности антигена.
Пример 6
Изучают специфичность полученного антигена в РИД по примеру 3 с гипериммунными сыворотками против бруцеллеза (13 проб), псевдотуберкулеза, кампилобактериоза, лептоспироза (по 4 пробы каждой сыворотки), иерсиниоза (2 пробы). Со всеми сыворотками исследуемый антиген в РИД не образует линий преципитации, что подтверждает его специфичность.
Пример 7
Изучают диагностическую эффективность полученного антигена по примеру 2 и коммерческого антигена СибНИВИ.
Аналогично, как в примере 4, исследуют в РИД 18 сывороток крови крупного рогатого скота, 38 сывороток крови овец и 91 сыворотку коз, полученных из хозяйств, неблагополучных по паратуберкулезному энтериту. Одновременно, все полученные сыворотки исследуют в РСК с коммерческим антигеном СибНИВИ. Результаты сравнительных исследований сывороток крови на паратуберкулез представлены в таблице.
Из таблицы видно, что предлагаемый антиген значительно превосходит по своей активности известный препарат и выявляет в 1,4 - 9,8 раз больше больных животных, чем производственный антиген СибНИВИ.
Таким образом, заявляемый антиген является активным и специфичным препаратом.
Использование РИД с предлагаемым антигеном доступно любой ветеринарной лаборатории, т. к. не требует специального оборудования и высококвалифицированного персонала.
Способ является простым, наглядным, быстрым и дешевым.
РИД с разработанным антигеном может быть применена непосредственно в полевых условиях (на ферме, в отарах).
Использование для серологической диагностики паратуберкулеза у жвачных животных более совершенного метода позволит своевременно и эффективно проводить комплекс мероприятий по борьбе с паратуберкулезом, что значительно сократит экономический ущерб от этого заболевания.
Источники информации:
1. D.M. Sherman, K.J.F.Markham, F.Bates "Agar del immunodifusion testfor diagnosis et clinical paratuberculosis in cattle" J.Amer Veter Med. Association (AVMA), 1984, 185, N 2 p. 179 - 182
2. Патент Румынии N 81670, кл. A 61 K 39/02, 19833

Claims (1)

  1. Способ получения антигена для серологической диагностики паратуберкулеза у жвачных животных, включающий культивирование штамма бактерий Mycobacterium paratuberculosis в питательной среде, отмывку бактериальной массы дистиллированной водой с последующей ее дезинтеграцией ультразвуком, осаждением клеточного детрита центрифугированием и отделением супернатанта, отличающийся тем, что используют штамм Mycobacterium paratuberculosis ВГНКИ "КА"-ДЕП, который культивируют в среде Ватсона-Рейда в течение 28 - 35 суток, после отмывки дистиллированной водой полученную бактериальную массу суспендируют в физиологическом растворе до концентрации 70 - 90 мг/см3, дезинтеграцию ультразвуком проводят при 222 кГц в течение 15 - 16 мин, осаждение клеточного детрита центрифугированием осуществляют при 16000 - 20000 об/мин в течение 30 - 50 мин, после отделения супернатант консервируют тиомерсалом из расчета 1 : 10000.
RU96123745/13A 1996-12-17 1996-12-17 Способ получения антигена для серологической диагностики паратуберкулеза у жвачных животных RU2118538C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU96123745/13A RU2118538C1 (ru) 1996-12-17 1996-12-17 Способ получения антигена для серологической диагностики паратуберкулеза у жвачных животных

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU96123745/13A RU2118538C1 (ru) 1996-12-17 1996-12-17 Способ получения антигена для серологической диагностики паратуберкулеза у жвачных животных

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2118538C1 true RU2118538C1 (ru) 1998-09-10
RU96123745A RU96123745A (ru) 1999-01-27

Family

ID=20188228

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU96123745/13A RU2118538C1 (ru) 1996-12-17 1996-12-17 Способ получения антигена для серологической диагностики паратуберкулеза у жвачных животных

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2118538C1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
D.M. Sherman, K.J.F. Markman, F.Bates Agas del immunodifusion test for diagnosis et clunical paratuberculosis in cattle AVMA, 1984, 185, N 2, р.179 - 182. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Malmquist et al. Isolation, immunodiffusion, immunofluorescence, and electron microscopy of a syncytial virus of lymphosarcomatous and apparently normal cattle
Diaz et al. Radial immunodiffusion test with a Brucella polysaccharide antigen for differentiating infected from vaccinated cattle
Bokkenheuser et al. Detection of enteric campylobacteriosis in children
Colebrook The mycelial and other micro-organisms associated with human actinomycosis
Enger et al. Presence of the fish pathogen Vibrio salmonicida in fish farm sediments
KLIENEBERGER‐NOBEL Micro‐organisms of the pleuropneumonia group
Adlam et al. Natural and experimental staphylococcal mastitis in rabbits
Murray et al. Further studies on the diagnosis of mycetoma by double diffusion in agar
US4678748A (en) Process for the production of immunobiological preparations applicable in the diagnosis, prevention and/or treatment of Candida guilliermondii infections
Nielsen et al. Production of toxin in strains previously classified as Pasteurella multocida
RU2118538C1 (ru) Способ получения антигена для серологической диагностики паратуберкулеза у жвачных животных
Slack et al. STUDIES WITH MICROAEROPHILIC ACTINOMYCETES I: The Agglutination Reaction
CN101223915A (zh) 含抗幽门螺杆菌及其毒素特异性免疫球蛋白的牛初乳蛋白
Kurup Hypersensitivity pneumonitis due to sensitization with thermophilic actinomycetes
Robertson SEROLOGICAL GROUPINGS OF VIBRION SEPTIQUE AND THEIR RELATION TO THE PRODUCTION OF TOXIN. ¹
EA002181B1 (ru) Штамм бактерий serpens spp., фармацевтическая композиция, способы их применения и диагностический набор
Tarr STUDIES ON EUROPEAN FOUL BROOD OF BEES: II. THE PRODUCTION OP THE DISEASE EXPERIMENTALLY
Fairbrother A text-book of medical bacteriology
Meyer et al. A Disease in Wild Rats Caused by Pasteurella muricida, n. sp.: Plague Studies. 2
RU2798283C1 (ru) Штамм Chlamydia abortus "Chlamydia VNITIBP-21" для производства иммунобиологических лекарственных препаратов
CN108018228A (zh) 一株大肠杆菌o157:h7弱毒株及其应用
RU2802251C1 (ru) Вакцинная композиция для профилактики энзоотического аборта у овец
Duval et al. Further studies upon the leprosy bacillus. Its cultivation and differentiation from other acid-fast species
HOWARD Jr VOL. X.
El-Magawry et al. AETIOLOGICAL STUDY ON RESPIRATORY AFFECTION IN CAMELS AND ITS RELATION TO HAEMATOLOGICAL AND BIOCHEMICAL CHANGES

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20041218