RU2117997C1 - Способ моделирования у животных внутрисуставного дистрофического процесса - Google Patents

Способ моделирования у животных внутрисуставного дистрофического процесса Download PDF

Info

Publication number
RU2117997C1
RU2117997C1 RU94041530A RU94041530A RU2117997C1 RU 2117997 C1 RU2117997 C1 RU 2117997C1 RU 94041530 A RU94041530 A RU 94041530A RU 94041530 A RU94041530 A RU 94041530A RU 2117997 C1 RU2117997 C1 RU 2117997C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
intra
articular
modelling
animals
bone
Prior art date
Application number
RU94041530A
Other languages
English (en)
Other versions
RU94041530A (ru
Inventor
Н.А. Слесаренко
И.А. Бубакар
Н.В. Бабичев
Р.Ф. Капустин
Original Assignee
Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им.К.И.Скрябина
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им.К.И.Скрябина filed Critical Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им.К.И.Скрябина
Priority to RU94041530A priority Critical patent/RU2117997C1/ru
Publication of RU94041530A publication Critical patent/RU94041530A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2117997C1 publication Critical patent/RU2117997C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Abstract

Способ включает внутрисуставную инъекцию преднизолона. Препарат вводят в дозе 15 - 25 мл 1 - 2 раза в 2 недели в течение месяца. Инъекции преднизолона обеспечивают достижение устойчивой клинической картины остеоартроза. 2 ил.

Description

Изобретение относится к экспериментальной травматологии и может быть использовано при моделировании дистрофического процесса в костной и хрящевой тканях. Модель отражает клиническую картину остеоартроза и позволяет понять патогенез заболевания и разработать адекватные патогенетические методы лечения.
В настоящее время в литературе описаны многочисленные способы моделирования дистрофических и деструктивных поражений в суставах. Существуют три большие группы методов, включающие разнообразные варианты нанесения повреждения:
1. Моделирование дистрофического процесса в суставах путем введения химических веществ.
2. Действие различными физическими факторами.
3. Механические и травматические повреждения компонентов сустава.
Известны способы моделирования асептического некроза головки бедренной кости и коленного сустава у животных путем введения в сустав:
-папаина (Moriizumi T, Yamashifa N, Okada J, Ione S, Glim, 1986);
-витамина A (Boni H. et al, 1977);
-полиэтилена (Mitrovic D.R. et al, 1985);
-осмиевой кислоты (Okada J, 1986) и т.д.
Способы не обеспечивают эффективного и наглядного воспроизведения классической картины протекания дистрофического процесса в суставах у животных.
Прототипом предложенного способа является способ моделирования у животных внутрисуставного дистрофического процесса путем введения в сустав кортизона и гидрокортизона (Н. В.Дедух, И.А. Зупанец, В.Д.Черных, С.М.Дроговоз, 1992).
Зачастую перед экспериментаторами стоит задача оценки репаративных свойств не только хрящевой, но и костной тканей, однако способ не обеспечивает показательного воспроизведения стандартных "дырчатых" дефектов в суставном хряще, проникающих в субхондральную костную ткань (Salfen R.R. et al, 1980; И. А.Зупанец и соавт., 1989), или появления обширных субхондральных дефектов (Conver F.R, Aneson W.H, Keowa B.H, 1972).
Кроме того, на мартышках показано, что метилпреднизолон при введении в суставы (20 мл 1 раз в 2 недели) не оказывал выраженного влияния (Bilson N., 1977), что требует детального анализа специфики влияния различных стероидных препаратов на ткани суставов. Кроме того, препараты группы кортизона существенно влияют на минеральный обмен, что сказывается на чистоте опыта, а также действуют медленно и быстро инактивируются.
В основу изобретения положена задача создания способа, позволяющего надежно моделировать дистрофический процесс с проявлением глубоких внутрисуставных изменений. Поставленная задача достигается тем, что вводят в сустав животного преднизолон в дозе 15 - 25 мл 1-2 раза в 2 недели в течение месяца.
Пример: взято 7 неполовозрелых кроликов, из которых 2 служили клинико-морфологическим контролем. Кроликам опытной группы введен в область коленного сустава преднизолон. Препарат в дозе 15 - 25 мл вводили 1-2 раза в 2 недели в течение месяца, т.е. каждому животному было сделано по 2-4 инъекции преднизолона. Оценка структурно-функционального состояния костно-суставного аппарата проведена гематологическими и рентгенологическими методами до и после проведения опыта. (фиг. 1, 2).
Результаты проведенных исследований подтверждают развитие остеоартроза в коленном суставе. Гистоморфологическое изучение образцов головок бедра и коленного сустава производили до введения преднизолона и по прошествии месяца. Образцы костной ткани фиксировали в 10%-ном формалине, декальцинировали в 5%-ной азотной кислоте, обезвоживали в спиртах и заключали в целоидин. Изготовленные срезы были окрашены гематоксилином и эозином, а также пикрофуксином по Ван-Гизон и толуидиновым синим.
Состояние суставного хряща и субхондральной кости изучали на срезах с использованием микроскопа МБИ-6, оценивая структурную организацию клеток, матрикса суставного хряща и компонентов костной ткани. Через месяц после внутрисуставных инъекций преднизолона в дозе 15 - 25 мл 1-2 раза в 2 недели отмечены признаки остеоартроза: коленный сустав кроликов тугоподвижен и увеличен в объеме.
Макроскопически в полости сустава обнаруживаются бурые массы. Суставной хрящ матовый, на участках бурого цвета капсула плотная. В местах прикрепления к кости в ней выявляются очаги некроза.
Микроскопически обнаружены дистрофические и деструктивные изменения в компонентах сустава - суставном хряще, капсуле, менисках, а также в субхондральной костной ткани, участках прикрепления капсулы к кости, пластинках роста. Суставной хрящ, покрывающий мыщелки, неравномерной толщины, с очагами фибрилляций, трещинами и щелями различной конфигурации и протяженности.
Субхондральная костная ткань, прилежащая к суставному хрящу, на всем протяжении мыщелков с выраженными структурными перестройками деструктивного генеза; по периферии определяется нарушение остеогенеза, а в центральных отделах субхондральной кости обнаруживаются обширные очаги деструкции костной ткани, характерные для асептического некроза. Костные трабекулы в зонах поражения истончены.
Регенерат в пораженных участках выполнен в основном коллагеноволокнистым хрящем с характерной особенностью структурной организации клеток: хондроциты имеют ядра овальной или удлиненной формы и не формируют капсул, процесс регенерации не полный.
На отдельных участках суставного хряща, покрывающего мыщелки, обнаруживаются обширные бесклеточные очаги, клетки-тени и пикноформные хондроциты. При окраске толуидиновым синим (pH = 2,5) в бесклеточных участках суставного хряща метахромазия не обнаруживается, что свидетельствует об изменении метаболических процессов по периферии очагов нарушения остеогенеза, а в центральных отделах субхондральной кости отмечены обширные очаги деструктивной костной ткани, характерные для асептического некроза. Костные трабекулы в зонах деструкции истончены (с нарушением линии склеивания) или разволокнены, на поверхности не содержат остеоцитов или остеобластов. Зачастую они располагаются в виде мелких секвестров, окруженных остеобластами. Капсулы сустава дегенеративно изменены; нарушение в них наблюдается в местах прикрепления к кости. Во внутренних отделах капсулы обнаружены очаги детрита, а также микроэрозии клеток вблизи корковой зоны кости. Отмечено также наличие большого количества кистоподобных полостей.
Выраженные деструктивные изменения прослеживаются и в зоне роста: нарушено соотношение структурных слоев и определяются обширные зоны резорбции между колонками хондроцитов; в таких участках хондроциты в стадии дистрофии и некроза.
Результаты данного опыта показывают, что в отличие от прототипа (Н.В. Дедух, И. А. Зупанец, В.Д. Черных, С.М. Дроговоз, 1992) предложенный способ обеспечивает достижение устойчивой клинической картины остеоартроза, сокращая частоту инъекций и количество используемого препарата в 2 - 4 раза.

Claims (1)

  1. Способ моделирования внутрисуставного дистрофического процесса, включающий внутрисуставную инъекцию препарата, отличающийся тем, что в качестве препарата используют преднизолон, который вводят в дозе 15 - 25 мл 1 - 2 раза в две недели в течение месяца.
RU94041530A 1994-11-17 1994-11-17 Способ моделирования у животных внутрисуставного дистрофического процесса RU2117997C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU94041530A RU2117997C1 (ru) 1994-11-17 1994-11-17 Способ моделирования у животных внутрисуставного дистрофического процесса

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU94041530A RU2117997C1 (ru) 1994-11-17 1994-11-17 Способ моделирования у животных внутрисуставного дистрофического процесса

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU94041530A RU94041530A (ru) 1996-10-20
RU2117997C1 true RU2117997C1 (ru) 1998-08-20

Family

ID=20162472

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU94041530A RU2117997C1 (ru) 1994-11-17 1994-11-17 Способ моделирования у животных внутрисуставного дистрофического процесса

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2117997C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2445711C2 (ru) * 2010-06-15 2012-03-20 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Уральская государственная медицинская академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию" (ГОУ ВПО УГМА Росздрава) Способ моделирования остеоартроза височно-нижнечелюстного сустава

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2463669C2 (ru) * 2010-09-28 2012-10-10 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Читинская государственная медицинская академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию Способ моделирования остеоартроза височно-нижнечелюстного сустава

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Зупанец И.А. Экспериментальное использование глюкозамина и его производных в медицине: Дисс. доктора мед.наук - Купавна, 1993, с.90. 2. Дедух Н.В. Морфологические аспекты воздействия гормонов на суставной хрящ в онтогенезе: Автореф. дис. доктора биол. наук. - М., 1988, с.32. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2445711C2 (ru) * 2010-06-15 2012-03-20 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Уральская государственная медицинская академия Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию" (ГОУ ВПО УГМА Росздрава) Способ моделирования остеоартроза височно-нижнечелюстного сустава

Also Published As

Publication number Publication date
RU94041530A (ru) 1996-10-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lopes et al. Peripheral nerve injury treatments and advances: one health perspective
Mitchell et al. Healing of articular cartilage in intra-articular fractures in rabbits.
Fell et al. Comparison of the effects of papain and vitamin A on cartilage: II. The effects on organ cultures of embryonic skeletal tissue
Fell Skeletal development in tissue culture
EP1265986B1 (de) Verfahren zur in vitro-herstellung von dreidimensionalem, vitalem knorpel- oder knochengewebe
Kütük et al. Effect of platelet-rich plasma on fibrocartilage, cartilage, and bone repair in temporomandibular joint
Lundborg et al. In vivo regeneration of cut nerves encased in silicone tubes: growth across a six-millimeter gap
Carlson Regeneration of the completely excised gastrocnemius muscle in the frog and rat from minced muscle fragments
US20220151917A1 (en) Freeze-dried polymer compositions for mixing with platelet rich plasma to form implants for tissue repair and/or compositions for therapeutic intra-articular injections
Yan et al. Platelet-rich plasma combined with injectable hyaluronic acid hydrogel for porcine cartilage regeneration: a 6-month follow-up
EP0925076B1 (de) Verfahren zur herstellung eines implantates, bestehend aus einem resorbierbaren trägermaterial, eine medizinische wirksubstanz wie ein pharmazeutika, antibiotika, cytostatika oder hormon enthaltend
JP2002518319A5 (ru)
ES2380674B1 (es) Celulas mesenquimales y membrana compuesta para el tratamiento de lesiones osteocondrales
Matsusaki et al. Effects of basic fibroblast growth factor on proliferation and phenotype expression of chondrocytes embedded in collagen gel
CN106943628A (zh) 一种天然组织来源的半月板脱细胞材料及其制备方法
RU2117997C1 (ru) Способ моделирования у животных внутрисуставного дистрофического процесса
CH643732A5 (en) Aid for covering and/or filling bone defects and process for the production thereof
EP1481055A1 (de) Verfahren zur behandlung von erkranktem, degeneriertem oder geschädigtem gewebe unter verwendung von in vitro hergestelltem dreidimensionalem gewebe in kombination mit gewebezellen und/oder exogenen faktoren
Sun et al. Cell and biomimetic scaffold-based approaches for cartilage regeneration
Luder et al. Light and electron microscopic morphology of the temporomandibular joint in growing and mature crab-eating monkeys (Macaca fascicularis): the condylar calcified cartilage
Shaw et al. An improved method for evaluating osteogenesis in vitro
Moriizumi et al. Papain-induced changes in the guinea pig knee joint with special reference to cartilage healing
Kälebo et al. Temporary bone tissue ischemia in the hind limb of the rabbit: a vital microscopic study
Albright et al. Mechanisms of resorption and remodeling of cartilage
HARTLEY et al. Experimental osteogenesis in rabbit muscle