RU2116344C1 - Strain of cultured hybrid cells of animal mus musculus - a producer of monoclonal antibody raised to thermostable surface antigen of meliodosis pathogen - Google Patents
Strain of cultured hybrid cells of animal mus musculus - a producer of monoclonal antibody raised to thermostable surface antigen of meliodosis pathogen Download PDFInfo
- Publication number
- RU2116344C1 RU2116344C1 RU97111527A RU97111527A RU2116344C1 RU 2116344 C1 RU2116344 C1 RU 2116344C1 RU 97111527 A RU97111527 A RU 97111527A RU 97111527 A RU97111527 A RU 97111527A RU 2116344 C1 RU2116344 C1 RU 2116344C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cells
- meliodosis
- strain
- producer
- pathogen
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к гибридомной технологии и касается получения моноклональных антител. Штамм назван MVd - 2(1F4). Штамм депонирован в специализированной коллекции перевиваемых соматических клеток позвоночных Всероссийской коллекции клеточных культур под номером ВСКК(П) 648Д. The invention relates to hybridoma technology and for the production of monoclonal antibodies. The strain is named MVd - 2 (1F4). The strain is deposited in a specialized collection of transplantable somatic cells of vertebrates of the All-Russian collection of cell cultures under the number VSCK (P) 648D.
Иммунодиагностические препараты для обнаружения и идентификации возбудителей сапа и мелиоидоза с помощью метода флуоресцирующих антител до недавнего времени изготавливали на основе иммунных специфических сывороток различных видов животных. Технологические особенности производства таких препаратов осложняют получение стандартных по свойствам диагностических средств. В то же время создание видоспецифических препаратов на основе поликлональных иммуноглобулинов представляет определенные трудности ввиду близкого родства возбудителей сапа и мелиоидоза [1]. Until recently, immunodiagnostic preparations for the detection and identification of glanders and melioidosis using the method of fluorescent antibodies were made on the basis of immune specific sera of various animal species. Technological features of the production of such drugs make it difficult to obtain standard diagnostic tools by properties. At the same time, the creation of species-specific preparations based on polyclonal immunoglobulins presents certain difficulties due to the close relationship of glanders and melioidosis pathogens [1].
Однако процесс получения гипериммунных специфических сывороток от животных-продуцентов продолжительный и сложный. При изготовлении препарата предусмотрен этап дополнительной адсорбции гетерологичных антител клетками возбудителя сапа, что, как правило, снижает активность иммуноглобулинового сырья и не обеспечивает абсолютной специфичности флуоресцирующих препаратов. Эти трудности являются серьезным препятствием к полному воспроизведению всех этапов технологии производства, влияют на качество отдельных серий и затрудняют стандартизацию препаратов. However, the process of obtaining specific specific hyperimmune sera from animal producers is long and complex. In the manufacture of the drug, a stage of additional adsorption of heterologous antibodies by glanders cells is provided, which, as a rule, reduces the activity of immunoglobulin raw materials and does not ensure the absolute specificity of fluorescent drugs. These difficulties are a serious obstacle to the full reproduction of all stages of the production technology, affect the quality of individual series and make standardization of drugs difficult.
Целью изобретения является получение штамма гибридомы-продуцента специфических гомогенных по составу и свойствам моноклональных антител МКА, взаимодействующих с антигеном, локализованным на поверхности клеточной стенки мелиоидозной бактерии - сырья для производства иммуноглобулинов диагностических флуоресцирующих мелиоидозных видоспецифических моноклональных. The aim of the invention is to obtain a strain of a hybridoma producer of specific homogeneous in composition and properties of monoclonal antibodies MCA, interacting with an antigen localized on the surface of the cell wall of the melioid bacterium, a raw material for the production of immunoglobulins diagnostic fluorescent melioid species-specific monoclonal.
Получение гибридомы достигается иммунизацией мышей BALB/c целыми клетками Pseudomonas pseudomallei с последующей гибридизацией лимфоцитов селезенки иммунизированных мышей с миеломными клетками мыши. Концентрация иммуноглобулинов (IgG2b) в среде составляет в среднем 0,6-1,2 мг/мл, активность иммуноглобулинов в культуральной среде в ТИФА 1:640, в асцитической жидкости 1:1•107. Стабильность продуцирования сохраняется на протяжении 20 пассажей в культуре. Антитела взаимодействуют с поверхностным антигеном возбудителя мелиоидоза, не взаимодействуют с близкородственным возбудителем сапа, вследствие чего данный тип моноклональных иммуноглобулинов отобран для использования в качестве сырья для производства видоспецифического препарата флуоресцирующих мелиоидозных иммуноглобулинов.Hybridoma production is achieved by immunization of BALB / c mice with whole Pseudomonas pseudomallei cells, followed by hybridization of spleen lymphocytes of immunized mice with mouse myeloma cells. The concentration of immunoglobulins (IgG 2b ) in the medium is on average 0.6-1.2 mg / ml, the activity of immunoglobulins in the culture medium in TIFA 1: 640, in ascitic fluid 1: 1 • 10 7 . Stability of production is maintained for 20 passages in the culture. Antibodies interact with the surface antigen of the causative agent of melioidosis, do not interact with the closely related pathogen of glanders, as a result of which this type of monoclonal immunoglobulin is selected for use as a raw material for the production of a species-specific preparation of fluorescent melioid immunoglobulins.
Гибридома получена слиянием миеломы мышей РЗ-Х63-Ag 8.653 и спленоцитов мыши линии BALB/c. Слияние проведено с помощью полиэтиленкликоля с последующим клонированием штамма-продуцента методом лимитирующих разведений. Полученный штамм назван MVd-2(1F4) и характеризуется следующими признаками. The hybridoma was obtained by fusion of the myeloma of mice PZ-X63-Ag 8.653 and mouse splenocytes of the BALB / c line. The merger was carried out using polyethylene glycol followed by cloning of the producer strain by the method of limiting dilutions. The resulting strain is named MVd-2 (1F4) and is characterized by the following features.
Культуральные признаки. Cultural signs.
Культивирование in vitro. Среда для культивирования - среда RPM1-1640 с добавлением 15%-ной эмбриональной телячьей сыворотки, 2 мМ L - глютамина, 10 мМ ГЭПЭС, 4 мМ пирувата натрия. In vitro cultivation. Cultivation medium is RPM1-1640 medium with the addition of 15% fetal calf serum, 2 mM L - glutamine, 10 mM HEPES, 4 mM sodium pyruvate.
Клетки культивируют при 37oC в атмосфере 5% CO2 и 70-80% влажности. Клетки пассируют один раз в 3-4 дня, контролируя микроскопически интенсивность роста. Кратность рассева 1:4-1:10. Культура суспензионная.Cells are cultured at 37 o C in an atmosphere of 5% CO 2 and 70-80% humidity. Cells are passaged once every 3-4 days, controlling microscopically the growth rate. Multiplicity of sieving 1: 4-1: 10. Suspension culture.
Культивирование в организме животного. Для накопления асцита клетки гибридомы вводят праймированным мышам линии BALB/c в дозе 1•105-1•106 клеток на мышь. Асцит образуется через 2-4 недели.Cultivation in the body of the animal. To accumulate ascites, hybridoma cells are administered to BALB / c primed mice at a dose of 1 • 10 5 -1 • 10 6 cells per mouse. Ascites is formed after 2-4 weeks.
Продуктивность штамма. Продукция МКА в среде культивирования составляет 0,6-1,2 мг/мл, в асцитической жидкости - 25-30 мг/мл. Продукция МКА в культуральной жидкости сохраняется на протяжении 20 пассажей. Strain productivity. The production of MCA in the culture medium is 0.6-1.2 mg / ml, in ascitic fluid - 25-30 mg / ml. MCA production in the culture fluid is maintained for 20 passages.
Характеристика получаемого продукта. Антитела относятся к классу IgG2b. Они специфически взаимодействуют с определенным эпитопом термостабильного поверхностного антигена возбудителя мелиоидоза. Специфичность взаимодействия определяют с помощью ТИФА и НМФА.Characteristics of the resulting product. Antibodies belong to the IgG class 2b . They specifically interact with a specific epitope of the thermostable surface antigen of the causative agent of melioidosis. The specificity of the interaction is determined using TIFA and NMFA.
Криоконсервирование. 2-4•106 клеток штамма консервируют в 1 мл среды RPM1-1640 с 20% эмбриональной телячьей сыворотки и 7% диметилсульфоксида в пластиковых ампулах. Замораживание производят при 4oC (30 мин), а затем помещают в комплекс криоконсервирования биоматериалов, предназначенный для контролируемого замораживания клеточных культур тканей в заданном режиме: до температуры - 20oC со скоростью 1oC/мин, до - 40oC со скоростью 1,5oC/мин, до -70oC со скоростью 5oC/мин. Затем ампулы погружают в жидкий азот и хранят в нем до момента использования. Размораживание производят быстро при -37oC на водяной бане. Жизнеспособность после размораживания составляет 65-75%.Cryopreservation. 2-4 • 10 6 cells of the strain are preserved in 1 ml of RPM1-1640 medium with 20% fetal calf serum and 7% dimethyl sulfoxide in plastic ampoules. Freezing is carried out at 4 o C (30 min), and then placed in a complex of cryopreservation of biomaterials designed for controlled freezing of cell tissue cultures in a given mode: up to a temperature of 20 o C at a rate of 1 o C / min, up to -40 o C a speed of 1.5 o C / min, up to -70 o C with a speed of 5 o C / min. Then the ampoules are immersed in liquid nitrogen and stored in it until use. Defrosting is carried out quickly at -37 o C in a water bath. Viability after thawing is 65-75%.
Пример 1. Штамм получают следующим образом. Example 1. The strain is obtained as follows.
Мышей линии BALB/c иммунизируют ультразвуковыми дезинтегратами клеток, P. pseudomallei C-141. Первые две инъекции с интервалом в одну неделю производят подкожно в дозе 5•108 м.к. с неполным адъювантом Фрейнда (1:1) в объеме 0,3 мл и внутрибрюшинно в дозе 1•109 м.к. в объеме 0,5 мл физиологического раствора. Бустирующее введение антигена производят на 21-22 в день после начала иммунизации внутриселезеночно в дозе клеток 5•108 м.к. в 0,1 мл физиологического раствора. Через 3 дня после этого 1•108 спленоцитов иммунных мышей гибридизируют с 1•107 клеток мышиной миеломы P3-X63-Ag8.653 в присутствии 1 мл 50% полиэтиленгликоля с мол.м. 4000 в течение 2 мин. Затем к этой смеси при постоянном перемешивании последовательно вносят 1, 2, 4 и 8 мл бессывороточной среды, каждую порцию в течение 2 мин. После этого клетки центрифугируют при 1000 об/мин в течение 10 мин. Осадок ресуспендируют в селективной среде ГАТ-среде с 15% эмбриональной телячьей сыворотки, 2 мм L - глютамина, 4 мМ пирувата натрия. Клетки высевают в 96-луночную пластину с фидером по 2,5-5•105 клеток в лунку. Смену среды производят через 3-4 дня. Отбор гибридом-продуцентов в лунках опытной пластины определяют по наличию специфических иммуноглобулинов в культуральной среде с помощью ТИФА. Выявленные гибридомы-продуценты клонируют не менее двух раз методом предельных разведений на среде RPMI-1640 с 15% эмбриональной телячьей сыворотки с добавками в 96-луночных плато с фидером - мышиными перитонеальными макрофагами (4•104 клеток в лунке). После второго клонирования практически все 100% субклонов продуцируют МКА.BALB / c mice are immunized with ultrasonic disintegrates of cells, P. pseudomallei C-141. The first two injections with an interval of one week are performed subcutaneously at a dose of 5 • 10 8 mk. with incomplete Freund's adjuvant (1: 1) in a volume of 0.3 ml and intraperitoneally at a dose of 1 • 10 9 mk in a volume of 0.5 ml of physiological saline. The boosting administration of antigen is performed on 21-22 per day after the start of immunization intrasplenicly at a dose of 5 • 10 8 mk cells. in 0.1 ml of physiological saline. 3 days after that, 1 • 10 8 splenocytes of immune mice hybridize with 1 • 10 7 mouse P3-X63-Ag8.653 mouse myeloma cells in the presence of 1 ml of 50% polyethylene glycol per mol.m. 4000 for 2 minutes Then, with constant stirring, 1, 2, 4, and 8 ml of serum-free medium are added to this mixture, each portion for 2 minutes. After that, the cells are centrifuged at 1000 rpm for 10 minutes The precipitate was resuspended in a selective medium GAT medium with 15% fetal calf serum, 2 mm L - glutamine, 4 mm sodium pyruvate. Cells are seeded in a 96-well plate with a feeder of 2.5-5 x 10 5 cells per well. Change of environment is carried out after 3-4 days. The selection of hybrid producers in the wells of the experimental plate is determined by the presence of specific immunoglobulins in the culture medium using TIFA. Identified producer hybridomas are cloned at least twice by limiting dilution on RPMI-1640 medium with 15% fetal calf serum supplemented in 96-well plateaus with feeder - mouse peritoneal macrophages (4 • 10 4 cells per well). After the second cloning, almost all 100% of the subclones produce MCA.
Среди продуктивных клонов, секретирующих МКА против антигенных детерминант возбудителей сапа и мелиоидоза, селекционирован клон-продуцент MVd-2(1F4). Among the productive clones secreting MCAs against antigenic determinants of glanders and melioidosis, the clone producer MVd-2 (1F4) was selected.
Пример 2. Накопление МКА. Example 2. The accumulation of MCA.
Ампулы с клетками гибридомы вынимают из сосуда с жидким азотом и быстро оттаивают на водяной бане при 37oC. Размороженные клетки переносят в центрифужную пробирку с 20 мл бессывороточной среды RPMI-1640, осторожно наслаивают взвесь клеток на среду. Клетки осаждают центрифугированием и после удаления отмывающей среды высевают на матрас 25 см2 на среду RPMI-1640 с 15% эмбриональной телячьей сыворотки. Матрас инкубируют во влажной атмосфере с 5% CO2 при 37oC. Когда колония клеток покрывает более трети дна матраса, осуществляют отбор проб культуральной среды с целью определения титра МКА с помощью ТИФА. При полном покрытии дна матраса гибридными клетками производят их рассев на несколько матрасов. Таким способом тиражируют клетки гибридомы in vitro.Ampoules with hybridoma cells are removed from a vessel with liquid nitrogen and quickly thawed in a water bath at 37 ° C. Thawed cells are transferred to a centrifuge tube with 20 ml of serum-free RPMI-1640 medium and the cell suspension is carefully layered onto the medium. Cells are pelleted by centrifugation and, after removal of the washing medium, plated on a 25 cm 2 mattress on RPMI-1640 medium with 15% fetal calf serum. The mattress is incubated in a humid atmosphere with 5% CO 2 at 37 o C. When the cell colony covers more than a third of the bottom of the mattress, culture medium samples are taken to determine the titer of MCA using TIFA. When the bottom of the mattress is completely covered by hybrid cells, they are sieved into several mattresses. In this way, in vitro hybridoma cells are replicated.
Для получения более концентрированного препарата антител гибридомы-продуценты накапливают в асцитической жидкости мышей BALB/c. Животных предварительно сенсибилизируют внутрибрюшинным введением пристана - 2,6,10,14-тетраметилпентадекана (0,3 мл на мышь) или неполного адъюванта Фрейнда (0,5 мл на мышь). Через неделю мышам внутрибрюшинно вводят по 1•105-1•106 клеток гибридомы. После появления у мышей асцитической жидкости и солидных опухолей собирают содержимое брюшной полости. Клетки осаждают центрифугированием, к надосадочной жидкости добавляют сульфат аммония до 50%-ного его насыщения. Рыхлый осадок центрифугируют при 10000 об/мин в течение 20 мин, надосадочную жидкость удаляют. Плотный осадок растворяют в физиологическом растворе до исходного объема, диализуют против этого же раствора в течение суток при 4oC до полного удаления сульфата аммония. Осаждение МКА сульфатом аммония до 50%-ного его насыщения повторяют трижды, как описано выше. В полученном растворе очищенных МКА определяют концентрацию белка спектрофотометрически. В качестве стандартного используют 1%-ный раствор бычьего сывороточного альбумина.To obtain a more concentrated antibody preparation, producer hybridomas accumulate BALB / c mice in the ascitic fluid. Animals are pre-sensitized by intraperitoneal administration of pristan - 2,6,10,14-tetramethylpentadecane (0.3 ml per mouse) or incomplete Freund's adjuvant (0.5 ml per mouse). After a week, mice were injected intraperitoneally with 1 • 10 5 -1 • 10 6 hybridoma cells. After the appearance of ascitic fluid and solid tumors in mice, the contents of the abdominal cavity are collected. Cells are pelleted by centrifugation, ammonium sulfate is added to the supernatant to its 50% saturation. The loose precipitate was centrifuged at 10,000 rpm for 20 minutes, the supernatant was removed. A dense precipitate is dissolved in physiological saline to the original volume, dialyzed against the same solution for 24 hours at 4 o C until ammonium sulfate is completely removed. The deposition of MCA with ammonium sulfate to 50% saturation is repeated three times, as described above. In the resulting solution of purified MCAs, the protein concentration is determined spectrophotometrically. A 1% bovine serum albumin solution is used as standard.
Специфическую активность МКА определяют с помощью ТИФА и НМФА. При постановке ТИФА полистироловые пластины обрабатывают в течение ночи при 4oC водно-солевым экстрактом P. pseudomallei 56830 или P.mallei 10230, разведенным на 0,05 М карбонатно-бикарбонатном буфере, pH 9,5, до концентрации 1-10 мкг/мл по белку. Затем пластины трижды отмывают забуференным физраствором с 0,05% твина-20. На этом же растворе производят титрование образцов МКА в объеме 100 мкл, которые выдерживают в пластинах в течение 1 ч при 37oC. После очередного трехкратного отмывания пластин вносят антивидовой конъюгат в рабочем разведении, приготовленный на ЭФР с твином-20. Конъюгат представляет собой кроличьи антимышиные IgG, меченные пероксидазой хрена. Время инкубации 1 ч при 37oC, объем 100 мкл на лунку. Вновь повторяют отмывание. В заключении вносят смесь - перекись водорода с 5-аминосалициловой кислотой. После инкубации при комнатной температуре в течение 40 мин - 1 ч измеряют оптическую плотность жидкости в каждой лунке при длине волны 405 нм. МКА, выделенные из асцитической жидкости в ТИФА, активны в разведении 1: 5•105-1•107.The specific activity of MCA is determined using TIFA and NMFA. When setting TIFA, polystyrene plates are treated overnight at 4 ° C. with a water-salt extract of
Специфическую активность МКА оценивают в непрямом методе флуоресцирующих антител с коммерческим антивидовым конъюгатом люминесцирующих иммуноглобулинов против глобулинов мыши. МКА, выделенные из асцитической жидкости мышей, в НМФА активны в разведении 1:1•103-1:104.The specific activity of MCA is evaluated in an indirect method of fluorescent antibodies with a commercial antiviral conjugate of luminescent immunoglobulins against mouse globulins. MCAs isolated from mouse ascitic fluid in NMFAs are active at a dilution of 1: 1 • 10 3 -1: 10 4 .
Средний объем асцитической жидкости, получаемый при культивировании гибридомы MVd-2(1F4) в организме животных, составляет 5,6+0,14 мл, продуцирующая активность in vivo - 25-30 мг моноклональных иммуноглобулинов на 1 мл асцитической жидкости. The average volume of ascitic fluid obtained by culturing the hybridoma MVd-2 (1F4) in animals is 5.6 + 0.14 ml; in vivo producing activity is 25-30 mg of monoclonal immunoglobulins per ml of ascitic fluid.
Пример 3. Использование МКА MVd-2(1F4) для изготовления иммуноглобулинов диагностических флуоресцирующих мелиоидозных видоспецифических моноклональных. Example 3. The use of MVA MVd-2 (1F4) for the manufacture of immunoglobulins for diagnostic fluorescent melioid species-specific monoclonal.
Для получения иммунодиагностических препаратов используют образцы МКА MVd-2(1F4) с титром не менее 1:5•103-1•104 в НМФА. Конъюгирование иммуноглобулинов с флуорохромом осуществляют при постоянном перемешивании, температуре +4oC и контроле pH раствора. При этом в раствор белка в течение 30-40 мин дробно вносят флуоресцеинизотиоцианат (ФИТЦ), растворенный в 1 мл 0,1 М NaHCO3, pH 9,5 из расчета 25 мг на 1 г белка. В течение этого времени поддерживают pH раствора на уровне 8,5-9 с помощью 0,1 М NaHCO3. После стабилизации pH раствора конъюгирование продолжают в течение 2 ч. Очистку конъюгата от несвязавшегося флуорохрома проводят на колонках сефадексом Г-25 элюирующим 0,1 М фосфатным буфером, pH 7,2 со скоростью 40-50 мл/ч. Качество приготовленных конъюгатов оценивают по показателю концентрации белка и молярного соотношения ФИТЦ/белок. Расчеты вели по формулам: Мфитц/Мбелок= 2,87 ОП495/ОП280-(0,35 ОП495); Сб = ОП280 - (0,35 ОП495)/1,4. Спектрофотометрически определяют показатели оптической плотности цельного конъюгата и его разведений при длине волны 280 и 495 нм.To obtain immunodiagnostic drugs, MVA-2 (1F4) MCA samples with a titer of at least 1: 5 • 10 3 -1 • 10 4 in NMFA are used. Conjugation of immunoglobulins with fluorochrome is carried out with constant stirring, a temperature of +4 o C and monitoring the pH of the solution. At the same time, fluoresceinisothiocyanate (FITC) dissolved in 1 ml of 0.1 M NaHCO 3 , pH 9.5 at the rate of 25 mg per 1 g of protein is fractionally added to the protein solution for 30-40 minutes. During this time, the pH of the solution was maintained at 8.5-9 with 0.1 M NaHCO 3 . After stabilization of the pH of the solution, conjugation is continued for 2 hours. Purification of the conjugate from unbound fluorochrome is carried out on columns with Sephadex G-25 eluting with 0.1 M phosphate buffer, pH 7.2 at a rate of 40-50 ml / h. The quality of the prepared conjugates is evaluated by the protein concentration index and the FITC / protein molar ratio. The calculations were carried out according to the formulas: M fitts / M protein = 2.87 OD 495 / OD 280 - (0.35 OD 495 ); Sat = OD 280 - (0.35 OD 495 ) / 1.4. Spectrophotometrically determine the optical density of the whole conjugate and its dilutions at a wavelength of 280 and 495 nm.
Концентрация белка в готовом препарате должна быть равна 5+1, молярное соотношение - 7,0+3,0. Лиофилизированные препараты МКА-ФИТЦ хранят в ампулах при +4oC в течение 2 лет.The protein concentration in the finished product should be equal to 5 + 1, the molar ratio - 7.0 + 3.0. Lyophilized preparations MKA-FITZ stored in ampoules at +4 o C for 2 years.
Пример 4. Оценка активности, специфической активности и специфичности иммуноглобулинов диагностических флуоресцирующих мелиоидозных видоспецифических моноклональных. Example 4. Evaluation of the activity, specific activity and specificity of immunoglobulins diagnostic fluorescent melioid species-specific monoclonal.
Рабочее разведение препаратов определяли на фиксированных мазках, приготовленных из бактериальных взвесей 5 типичных штаммов P.pseudomallei с концентрацией 5•108 м.к./мл.Working dilution of the preparations was determined on fixed smears prepared from bacterial suspensions of 5 typical P. pseudomallei strains with a concentration of 5 • 10 8 mk / ml.
Результаты определения красящего титра и рабочего разведения конъюгатов представлены в табл. 1. The results of determining the titer and working dilution of the conjugates are presented in table. one.
Данные, представленные в табл.1, свидетельствуют о том, что флуоресцирующие препараты на основе МКА MVd-2(1F4) по параметрам активности превышают возможности коммерческих поликлональных аналогов. Рабочее разведение МКА MVd-2(1F4), конъюгированных с ФИТЦ, 1:64-1:128 и выше. Минимальные концентрации МКА-ФИТЦ, обеспечивающие окрашивание бактерий на 3-4+ для различных серий препаратов, колебались в пределах для конъгатов: МКА 1F4-ФИТЦ 0,08-0.4 мг/мл, для коммерческих препаратов 0,16-0,8 мг/мл. The data presented in Table 1 indicate that fluorescent preparations based on MVA-2 (1F4) MCAs exceed the capabilities of commercial polyclonal analogs in terms of activity parameters. Working dilution of MCA MVd-2 (1F4) conjugated to FITC, 1: 64-1: 128 and higher. The minimum concentrations of MKA-FITZ, providing staining of bacteria by 3-4 + for various series of preparations, ranged from 1 to 4 mg / ml for commercial preparations: 0.16-0.8 mg / ml for commercial preparations ml
Специфическую активность и специфичность МКА 1F4, конъюгированных с ФИТЦ, оценивают в МФА на фиксированных мазках из живых культур Pseudomonas mallei, близкородственных (Pseudomonas cepacia, P.putida, P.aeruginosa, P. fluorescens) и гетерологичных видов микроорганизмов, приготовленных из взвесей с концентрацией 1•107 м.к./мл (табл. 2).The specific activity and specificity of MCA 1F4 conjugated to FITC is evaluated in MPA on fixed swabs from living cultures of Pseudomonas mallei, closely related (Pseudomonas cepacia, P.putida, P.aeruginosa, P. fluorescens) and heterologous species of microorganisms prepared from suspensions with 1 • 10 7 mk / ml (tab. 2).
В качестве препарата сравнения (прототип) используют коммерческий препарат, выпускаемый ВолгНИПЧИ: иммуноглоулины диагностические мелиоидозные адсорбированные видоспецифические люминесцирующие. As a comparison drug (prototype), a commercial preparation manufactured by VolgNIPCHI is used: immunogloulins diagnostic melioid adsorbed species-specific luminescent.
Таким образом, данные, приведенные в табл. 1, 2, свидетельствуют о том, что разработанные диагностические моноклональные ЛИГ для МФА высокоактивны и специфичны. Thus, the data given in table. 1, 2, indicate that the developed diagnostic monoclonal LIG for MFAs are highly active and specific.
Необходимо отметить, что чувствительность МФА при окрашивании мазков-препаратов моноклональными препаратами сохранялась на уровне 1•104 - 5•104 м. к. /мл. При проведении данного этапа исследования мазки-препараты использовали взвеси 5 штаммов P.mallei и 5 штаммов P.pseudomallei, приготовленных в концентрациях 5•105, 1•105, 5•104, 1•104, 5•103 м.к./мл. Результаты опытов представлены в табл. 3.It should be noted that the sensitivity of MFAs when staining smear preparations with monoclonal preparations remained at the level of 1 • 10 4 - 5 • 10 4 m.k. / ml. During this stage of the study, smear preparations used suspensions of 5 P.mallei strains and 5 P.pseudomallei strains prepared in concentrations of 5 • 10 5 , 1 • 10 5 , 5 • 10 4 , 1 • 10 4 , 5 • 10 3 m .k./ml. The results of the experiments are presented in table. 3.
Таким образом, в результате проведенных исследований были разработаны способы получения стандартных флуоресцирующих мелиоидозных моноклональных видоспецифических препаратов, установлена их высокая чувствительность и специфичность в МФА при обнаруржении и идентификации P.pseudomallei. По параметрам активности полученный на основе МКА MVd-2(1F4) диагностический препарат для МФА превосходит коммерческий поликлональный аналог. Thus, as a result of the studies, methods were developed for the preparation of standard fluorescent melioid monoclonal species-specific preparations, and their high sensitivity and specificity in MPA were established when P. pseudomallei was detected and identified. In terms of activity parameters, the diagnostic preparation for MFA obtained on the basis of MVA MVd-2 (1F4) surpasses the commercial polyclonal analogue.
Преимуществами использования моноклональных антител в качестве основы для конструирования диагностических флуоресцирующих мелиоидозных препаратов являются стабильность, гомогенность иммуноглобулинового сырья, более высокая удельная активность на 1 мг белка, при котором возможна достоверная индикация возбудителя мелиоидоза, практически 100%-ная воспроизводимость результатов опытов. Использование стабильных гибридных клеточных линий, депонированных во Всероссийской специализированной коллекции клеточных культур РАН (г. Санкт-Петербург), обеспечивает получение специфических иммуноглобулинов в необходимых количествах для производства стандартных иммунодиагностических препаратов для МФА. The advantages of using monoclonal antibodies as the basis for the construction of diagnostic fluorescent melioid preparations are stability, homogeneity of immunoglobulin raw materials, higher specific activity per 1 mg of protein, in which reliable indication of the causative agent of melioidosis is possible, and almost 100% reproducibility of experimental results. The use of stable hybrid cell lines deposited in the All-Russian Specialized Collection of Cell Cultures of the Russian Academy of Sciences (St. Petersburg) provides specific immunoglobulins in the required quantities for the production of standard immunodiagnostic preparations for MPA.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU97111527A RU2116344C1 (en) | 1997-07-02 | 1997-07-02 | Strain of cultured hybrid cells of animal mus musculus - a producer of monoclonal antibody raised to thermostable surface antigen of meliodosis pathogen |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU97111527A RU2116344C1 (en) | 1997-07-02 | 1997-07-02 | Strain of cultured hybrid cells of animal mus musculus - a producer of monoclonal antibody raised to thermostable surface antigen of meliodosis pathogen |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2116344C1 true RU2116344C1 (en) | 1998-07-27 |
RU97111527A RU97111527A (en) | 1998-12-20 |
Family
ID=20195052
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU97111527A RU2116344C1 (en) | 1997-07-02 | 1997-07-02 | Strain of cultured hybrid cells of animal mus musculus - a producer of monoclonal antibody raised to thermostable surface antigen of meliodosis pathogen |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2116344C1 (en) |
-
1997
- 1997-07-02 RU RU97111527A patent/RU2116344C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Рыбкин В.С., Яковлев А.Т., Волков Е.А. К вопросу о совершенствовании техн ологии производства мелиоидозных видоспецифических люминесцирующих иммуног лобулинов. Особо опасные инфекционные заболевания: иммунология, генетика и биология. Сборник научный работ. Волгоград: 1989. с.115-119. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
FI91421C (en) | A method for producing a monoclonal antibody reactive with human tumor necrosis factor (TNF) and an antibody-producing hybrid cell line | |
US5196337A (en) | Human monoclonal antibody, and its production and use | |
RU2116344C1 (en) | Strain of cultured hybrid cells of animal mus musculus - a producer of monoclonal antibody raised to thermostable surface antigen of meliodosis pathogen | |
Hokama et al. | Cross‐reactivity of ciguatoxin, okadaic acid, and polyethers with monoclonal antibodies | |
RU2117042C1 (en) | Strain of cultured hybrid cells of animal mus musculus - producer of monoclonal antibodies to thermostable component of capsule-like substance of meliodosis pathogen | |
RU2117043C1 (en) | Strain of cultured hybrid cells of animal mus musculus - producer of monoclonal antibodies to thermostable antigen which is common for glanders and meliodosis pathogens | |
RU2451078C1 (en) | Mus musculus cultivated hybrid cell strain 11d6 producer of monoclonal antibodies specific to lipopolysaccharide francisella tularensis | |
RU2012594C1 (en) | Strain of hybrid cultured mammalian cells mus musculus l - a producer of monoclonal antibodies to 146s-component of foot and mouth disease virus asia-1 | |
RU2265658C2 (en) | Strain of hybrid cells of animal mus musculus l, 9e2, used in preparing monoclonal antibody to west nile virus protein e of strain wnv/leiv-vig99-27889 | |
RU2319743C1 (en) | Strain of hybrid cultured mammalian cells mus musculus as producer of monoclonal antibodies to hypoglycosidated and deglycosidated isoforms of tumor-associated human antigen muc i | |
RU2002803C1 (en) | Strain of hybrid cultured animal cells mus musculus l used for preparation of monoclonal antibodies to human igg 1,3,4 | |
RU2008350C1 (en) | HYBRID STRAIN OF ANIMAL MUS MUSCULUS CELLS FOR PRODUCING MONOCLONAL ANTIBODIES AGAINST HUMAN IgG | |
RU2113475C1 (en) | Strain of hybrid cultured mammalian cells mus musculus l - a producer of monoclonal antibodies showing specificity to brucella protein preparation of molecular mass 18 and 38 kda | |
SU1751202A1 (en) | Strain of hybridous cultured mammalian cells mus musculus l , producing monoclonal antibodies to 146 s-component of foot-and-mouth virus a@@@ (aglie) | |
SU1640157A1 (en) | Strain of hybridous cultivating mammalian cells, mus musculus l, used for preparation of monoclonal antibodies for dna-dependent rna-polymerase of bacteriophage t7 | |
JP2525569B2 (en) | How to identify Candida | |
SU1640158A1 (en) | Strain of hybridous cultivating mammalian cells, mus musculus l, tsed for preparation of monoclonal antibodies for dna-dependent rna-polymerase of bacteriophaga t7 | |
RU2652885C1 (en) | MUS MUSCULUS HYBRID CULTIVATED ANIMAL CELLS STRAIN α - THE PRODUCER OF MONOCLONAL ANTIBODIES SPECIFIC TO THE CANCER-TESTICULAR ANTIGEN OF THE PERSON GAGE | |
RU2092554C1 (en) | Strain of the hybrid cultured animal cell mus musculus l - a producer of monoclonal antibody raised to aujeszky's disease virus, strain uniiev-18b | |
RU2542381C2 (en) | MUS MUSCULUS'S HYBRID CULTURE CELL STRAIN α PRODUCING MONOCLONAL ANTIBODIES SPECIFIC TO HUMAN GRANULOCYTE COLONY-STIMULATING FACTOR (GCSF) | |
SU1752764A1 (en) | Strain of hybridous cultured mammalian cells mus musculus l - producer of monoclonal antibodies to bacteria of brucella genus | |
SU1640156A1 (en) | Strain of hybridous cultivating mammalian cells, mus musculus l, used for preparation of monoclonal antibodies for dna-dependent rna-polymerase of bacteriophage t7 | |
RU2003681C1 (en) | Strain of hybrid cultured mammalian cells mus musculus l used for preparation of monoclonal antibodies to kappa-chains of human investigating | |
Erich et al. | In vitro stimulation of immune spleen cells enhances the number of anti-lipid A-producing hybridomas | |
SU1445183A1 (en) | Strain of hybrid cultivable mus musculus cells for producing monoclonal antibodies to mucobacterium bovis |