RU2101699C1 - Способ выявления лимфоидных узелков в тотальных анатомических препаратах - Google Patents
Способ выявления лимфоидных узелков в тотальных анатомических препаратах Download PDFInfo
- Publication number
- RU2101699C1 RU2101699C1 SU5055977A RU2101699C1 RU 2101699 C1 RU2101699 C1 RU 2101699C1 SU 5055977 A SU5055977 A SU 5055977A RU 2101699 C1 RU2101699 C1 RU 2101699C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- hours
- lymphoid nodules
- drug
- preparations
- total
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Использование: в медицине, а именно в анатомии, патологической анатомии и может применяться для изучения лимфоидных узелков в тотальных анатомических препаратах в макромикроскопическом поле видения в норме, в возрастном аспекте, в эксперименте и патологии. Сущность изобретения: для выявления лимфоидных узелков препарат предварительно промывают, а фиксацию проводят в 1,5 - 3% растворе сульфосалициловой кислоты в течение 1 - 2 ч, окрашивают реактивом Шиффа в темноте при температуре 3 - 4oC в течение 6 - 12 ч в зависимости от характера и толщины объекта, ополаскивают в 2/3 порциях сернистой воды и затем заключают в чистый глицерин. Способ позволяет изучить особенности топографического расположения лимфоидных узелков, особенности их строения формы и размеры в различные возрастные периоды, взаимоотношения с элементами субстрата /нервами, лимфатическими и кровеносными сосудами/ в макроскопическом поле видения. 2 ил.
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к анатомии, топографической анатомии, патологической анатомии и может быть использовано для изучения лимфоидных узелков в тотальных анатомических препаратах макромикроскопическом поле видения в норме, в возрастном аспекте, в эксперименте и патологии.
Наиболее близким к предложенному по техническому решению задачи является метод тотальной окраски по Т.Гельману (1921, 1953 с использованием раствора гематоксилина Гарриса).
При данной способе использовались куски расплавленного кишечника, которые помещались на 2 5 дней в 2 3% уксусную кислоту, после чего промывают в проточной воде в течение 2 3 ч и далее 12 60 ч окрашивают в растворе гематоксилина Гарриса; 12 24 ч дифференцируют в 2 3% растворе уксусной кислоты.
К недостаткам данного способа относятся:
большая продолжительность проведения метода выявления лимфоидных узелков;
лимфоидные узелки выявляются в пленочных препаратах;
не выявляются кровеносные сосуды и нервы;
не позволяет изучить взаимоотношение лимфоидных узелков с элементами субстрата.
большая продолжительность проведения метода выявления лимфоидных узелков;
лимфоидные узелки выявляются в пленочных препаратах;
не выявляются кровеносные сосуды и нервы;
не позволяет изучить взаимоотношение лимфоидных узелков с элементами субстрата.
Целью изобретения является устранение имеющихся недостатков метода с применением растворов гематоксилина и выявление лимфоидных узелков в тотальных анатомических препаратах разных размеров и толщины в макромикроскопическом поле видения.
Поставленную цель нам удалось достичь, применяя для фиксации 1,5 3% раствор сульфосалициловой кислоты в течение 1,5 2 ч, в зависимости от толщины и плотности изучаемого объекта. Для окрашивания использовали реактив Шиффа (фуксинсерную кислоту, разведенную сернистой водой в соотношении 1:5) в течение 6 12 ч.
Предложенный нами способ выявления лимфоидных узелков дает стабильные результаты, полностью исключает артефакты, не требует дорогостоящих и дефицитных реактивов, намного сокращает сроки обработки материала, позволяет проследить вариабельность их топографического расположения, вариабельность количества и размеров в различных возрастных периодах жизни человека. Способ позволяет выявить их взаимоотношение с элементами субстрата, а также с нервами и кровеносными сосудами; глубину их расположения. Других подобных способов светооптического макромикроскопического выявления лимфоидных узелков нами не установлено.
Исходным материалом для выявления лимфоидных узелков в предлагаемом способе служили тотальные препараты пищевода, трахеи, оболочки мошонки взрослых, плодов и новорожденных, полученные в различные сроки после смерти (от 12 до 24 ч). Способ испытан на 30 анатомических препаратах.
Способ осуществляется следующим образом:
исследуемый материал хорошо промывается в холодной проточной воде в течение часа;
фиксация препарата в 1,5 3% растворе сульфосалициловой кислоты в течение 1 2 ч (в зависимости от толщины и плотности изучаемого объекта);
препарат полощут в 2 3 порциях холодной дистиллированной воды;
препарат помещают в реактив Шиффа на 6 12 ч, окрашивание происходит в темноте, в плотно закупоренном сосуде при температуре 3 4oC; объем красителя превышает объем препарата в 2 3 раза;
препарат ополаскивают в 2 3 порциях сернистой воды;
препаровка под стереоскопическим микроскопом МБС-9; просветление препарата в смеси глицерина и сернистой воды в соотношении 1:1; препарат заключают в чистый глицерин и хранят при температуре 4 6oC.
исследуемый материал хорошо промывается в холодной проточной воде в течение часа;
фиксация препарата в 1,5 3% растворе сульфосалициловой кислоты в течение 1 2 ч (в зависимости от толщины и плотности изучаемого объекта);
препарат полощут в 2 3 порциях холодной дистиллированной воды;
препарат помещают в реактив Шиффа на 6 12 ч, окрашивание происходит в темноте, в плотно закупоренном сосуде при температуре 3 4oC; объем красителя превышает объем препарата в 2 3 раза;
препарат ополаскивают в 2 3 порциях сернистой воды;
препаровка под стереоскопическим микроскопом МБС-9; просветление препарата в смеси глицерина и сернистой воды в соотношении 1:1; препарат заключают в чистый глицерин и хранят при температуре 4 6oC.
Пример выявления лимфоидных узелков в препаратах пищевода.
Берем любой участок пищевода вместе с окружающими образованиями (длина не имеет значения, можно на всем протяжении) и промываем 1 1,5 ч в проточной холодной воде; далее пищевод или вскрывается на всем протяжении, или выворачивается слизистой кнаружи. Препарат фиксируют в 2% р-ре сульфосалициловой кислоты в течение 1 ч, после чего полощут в двух порциях холодной дистиллированной воды. Для окрашивания препарат помещают в реактив Шиффа на 6 ч; окрашивание происходит в темноте при температуре 4oC в плотно закупоренном сосуде. Объем красителя превышает объем препарата в 2 раза; препарат ополаскивают в 2-х порциях сернистой воды и далее изучают под стереоскопическим микроскопом МБС-9; просветление в смеси глицерина и сернистой воды в соотношении 1:1; заключают в чистый глицирин и хранят в холодильнике.
Другой пример: для исследования берем тотальный препарат мошонки новорожденного, препарат промывают от крови холодной водопроводной водой в течение 40 мин, далее фиксируют в 3% р-ре сульфосалициловой кислоты в течение 1,5 ч; полощут в двух порциях дистиллированной воды. Препарат помещают в реактив Шиффа на 12 ч; окрашивание проводят в темноте при температуре 4oC в плотно закрытом сосуде. Объем красителя превышает объем препарата в 3 раза. Далее препарат ополаскивают в двух порциях сернистой воды, препаровка под стереоскопическим микроскопом МФС-9, просветление в смеси глицерина и сернистой воды; препарат заключает в глицерин (см. фиг. 1, 2: фото 1 - групповое скопление мелких лимфоидных узелков в мясистой оболочке яичка плода человека 7 месяцев. Об. 2, ок. 6; фото 2 лимфоидные узелки влагалищной оболочки яичка. Об. 2, ок. 6).
Таким образом, предложенный способ выявления лимфоидных узелков в тотальных анатомических препаратах прост в исполнении, не требует дорогостоящих реактивов, а выполнение предлагаемых оптимальных условий позволяет получить качественные тотальные препараты для макромикроскопического изучения узелков лимфоидной ткани различных органов и систем и может быть рекомендован для широкого использования в морфологической практике для изучения органов иммунной системы.
Claims (1)
- Способ выявления лимфоидных узелков в тотальных анатомических препаратах, включающий фиксацию, промывание и окрашивание препарата, отличающийся тем, что предварительно препарат промывают, а фиксацию проводят в 1,5 3,0% -ном растворе сульфосалициловой кислоты в течение 1 2 ч, затем ополаскивают дистиллированной водой, окрашивают реактивом Шиффа в темноте в течение 6 12 ч при температуре 3 4oС, ополаскивают в 2 3 порциях сернистой воды и заключают в чистый глицерин.
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU5055977 RU2101699C1 (ru) | 1992-04-20 | 1992-04-20 | Способ выявления лимфоидных узелков в тотальных анатомических препаратах |
| MD95-0054A MD535C2 (ru) | 1992-04-20 | 1994-12-21 | Способ выявления лимфоидных узелков в тотальных анатомических препаратах |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU5055977 RU2101699C1 (ru) | 1992-04-20 | 1992-04-20 | Способ выявления лимфоидных узелков в тотальных анатомических препаратах |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2101699C1 true RU2101699C1 (ru) | 1998-01-10 |
Family
ID=21610239
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SU5055977 RU2101699C1 (ru) | 1992-04-20 | 1992-04-20 | Способ выявления лимфоидных узелков в тотальных анатомических препаратах |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| MD (1) | MD535C2 (ru) |
| RU (1) | RU2101699C1 (ru) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN108956242A (zh) * | 2018-05-16 | 2018-12-07 | 绍兴文理学院 | 一种乳腺癌腋窝淋巴结离体组织标本的固定处理方法 |
| RU2783250C1 (ru) * | 2021-11-29 | 2022-11-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Оренбургский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Способ исследования целлоидиновых срезов челюстно-лицевой области плодного материала человека |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| MD3194G2 (ru) * | 2006-02-13 | 2007-06-30 | Валерия БУЛАТ | Метод окрашивания лимфатических сосудов и узелков в тотальных анатомических препаратах |
-
1992
- 1992-04-20 RU SU5055977 patent/RU2101699C1/ru active
-
1994
- 1994-12-21 MD MD95-0054A patent/MD535C2/ru active IP Right Grant
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Helman T. Studies uber der Lijmfoige die Bendentung der Sekundarfollikle. Beitr. z. Pathol. Anat. u. Ajlg. Path. - 1921, Bd. 68, s. 335 - 336. * |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN108956242A (zh) * | 2018-05-16 | 2018-12-07 | 绍兴文理学院 | 一种乳腺癌腋窝淋巴结离体组织标本的固定处理方法 |
| RU2783250C1 (ru) * | 2021-11-29 | 2022-11-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Оренбургский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Способ исследования целлоидиновых срезов челюстно-лицевой области плодного материала человека |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| MD535B1 (en) | 1996-04-30 |
| MD535C2 (ru) | 1996-11-30 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Dingerkus et al. | Enzyme clearing of alcian blue stained whole small vertebrates for demonstration of cartilage | |
| Jordan | A Text-book of Histology | |
| Drolet et al. | The route of entry and progression of infectious haematopoietic necrosis virus in Oncorhynchus mykiss (Walbaum): a sequential immunohistochemical study | |
| Seress et al. | Postnatal development of CA3 pyramidal neurons and their afferents in the Ammon's horn of rhesus monkeys | |
| SU657732A3 (ru) | Диагностическое средство дл гинекологических исследований | |
| Anya | The structure and chemical composition of the nematode cuticle. Observations on some oxyurids and Ascaris | |
| Narisawa et al. | A high concentration of Merkel cells in the bulge prior to the attachment of the arrector pili muscle and the formation of the perifollicular nerve plexus in human fetal skin | |
| DE2801216A1 (de) | Diagnose-verfahren und -mittel zum nachweis von malabsorption | |
| RU2101699C1 (ru) | Способ выявления лимфоидных узелков в тотальных анатомических препаратах | |
| Gardiner | Oogenesis in Limulus polyphemus, with especial reference to the behavior of the nucleolus | |
| Bles | Arcella: A study in cell physiology | |
| Halton | Trans-tegumental absorption of L-alanine and L-leucine by a monogenean, Diclidophora merlangi | |
| Eve | Sympathetic nerve cells and their basophil constituent in prolonged activity and repose | |
| Peng et al. | Detection of honeybee tracheal mites (Acarapis woodi) by simple staining techniques | |
| Wright | The egg envelopes of Moniliformis dubius | |
| Jungersen et al. | Development of patent Ascaris suum infections in pigs following intravenous administration of larvae hatched in vitro | |
| Roosen-Runge et al. | On biology and structure of the testis of Phialidium Leuckhart (Leptomedusae) | |
| CN111289335A (zh) | 一种hdn染色液及其用于辣根过氧化酶特异性显色的试剂盒 | |
| BEERS | Plagiopyla minuta and Euplotes balteatus, Giliates of the sea urchin Strongylocentrotus dröbachiensis | |
| Mitchell et al. | A method to study changes in eye-related columns in the visual cortex of kittens during and following early periods of monocular deprivation | |
| Lockwood et al. | Intracellular potassium in diffuse proctocolitis | |
| Bishton et al. | A simple technique for the study of vascular pattern | |
| Decoursey et al. | A method of clearing the chorion of Aedes sollicitans (Walker) eggs and preliminary observations on their embryonic development | |
| Jona | Handling germinated pollen on Millipore membrane during the Feulgen and autoradiographic procedures | |
| Junqueira et al. | Carotenoid and pterin pigment localization in fish chromatophores |