RU2101692C1 - Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity - Google Patents

Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity Download PDF

Info

Publication number
RU2101692C1
RU2101692C1 SU5048346A RU2101692C1 RU 2101692 C1 RU2101692 C1 RU 2101692C1 SU 5048346 A SU5048346 A SU 5048346A RU 2101692 C1 RU2101692 C1 RU 2101692C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
head
oral cavity
sleeve
handle
tube holder
Prior art date
Application number
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Сабирджан Ахмеджанович Зуфаров
Галибжан Азизович Абдуллаев
Абдукаюм Кадырович Аблакулов
Original Assignee
Аблакумов Абдукаюм Кадырович
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Аблакумов Абдукаюм Кадырович filed Critical Аблакумов Абдукаюм Кадырович
Priority to SU5048346 priority Critical patent/RU2101692C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2101692C1 publication Critical patent/RU2101692C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Abstract

FIELD: medicine. SUBSTANCE: method involves rinsing mouth with sterile physiological salt solution, taking samples, culturing and identifying microorganisms in oral cavity using standard set of media. Microflora is taken from local parts of mucosa and dental prostheses directly into sterilized metal tubes having nutrient medium inside. The device has sterilized reservoir being metal tube placed into tube holder bound to head and handle. The handle is threadedly axially rotatably connected to head stem. Tube holder is pivotally attached to the head. The head is elastic to enable friction in the hinge to be adjustable. The tube has spout-like member with sharp edges for localizing sample. Hinged joints connecting the head and tube holder are manufactured as elastic half-ring plate having the tube holder suspended on two half-axles inside the plate. One axle has thread and adjusting screw. EFFECT: improved quality of samples; enhanced reliability of analysis results. 3 cl, 7 dwg

Description

Изобретение относится к медицине, а именно стоматологии и микробиологии. The invention relates to medicine, namely to dentistry and microbiology.

Известен способ взятия проб материала для изучения микроорганизмов полости рта (см. журнал "Стоматология", N 4, М.1971, с. 57-60, авт. Кускова В.Ф. Ребреева Л.И.), при котором материал берут тонкими ватными турундами на корневых иглах или плотно скрученными из ваты шариками диаметром от 2-х до 5 мм, предварительно простерилизованными в чашках Петри или бумажных пакетиках суховоздушным методом (в сухопарочных шкафах). Стандартные условия стерилизации: 165-170oC (не выше, иначе слои бумаги и ваты могут стать хрупкими) в течение 1 ч, или 155-160oC в течение 2 ч. Турунду или ватный шарик непосредственно перед взятием пробы слегка увлажняют прикосновением к стерильному физраствору в пробирке. Немедленно после взятия пробы турунду, снятую пинцетом с корневой иглы, ватный шарик опускают в пробирку с питательной средой. При этом соблюдается обычная бактериостатическая техника посевов над пламенем горелки.A known method of sampling material for the study of microorganisms of the oral cavity (see journal "Dentistry", N 4, M.1971, S. 57-60, author Kuskova VF Rebreeva LI), in which the material is taken thin with cotton turundas on root needles or balls tightly twisted from cotton wool with a diameter of 2 to 5 mm, previously sterilized in Petri dishes or paper bags by the dry-air method (in dry-cupboard cabinets). Standard sterilization conditions: 165-170 o C (not higher, otherwise the layers of paper and cotton wool may become brittle) for 1 h, or 155-160 o C for 2 hours. Before the sample, the turunda or cotton ball is slightly moistened by touching sterile saline in vitro. Immediately after taking the sample, the turunda, taken with tweezers from the root needle, is lowered into a test tube with a nutrient medium. In this case, the usual bacteriostatic technique of crops over the flame of the burner is observed.

Далее изучают микробную флору слюны. Определяют только присутствие или количество микробных клеток различных видов микроорганизмов. Учитывая роль слюноотделения, жевания, глотания в процессах самоочищения полости рта от избытка микроорганизмов, надлежит брать пробы слюны всегда в одни и те же сроки между приемами пищи: натощак или через 3-4 ч после еды. В день взятия пробы обследуемый должен воздержаться от чистки зубов зубной щеткой и полоскания рта. Next, the microbial flora of saliva is studied. Only the presence or quantity of microbial cells of various types of microorganisms is determined. Given the role of salivation, chewing, and swallowing in the processes of oral self-cleaning from excess microorganisms, saliva samples should always be taken at the same time between meals: on an empty stomach or 3-4 hours after eating. On the day of sampling, the subject should refrain from brushing his teeth and rinsing his mouth.

Для вымывания микробов в слюну из тех участков, где они скапливаются в наибольшем количестве (межзубные промежутки, поверхность корня языка, десневые карманы и т.д.), могут быть применены два способа. For washing microbes into saliva from those areas where they accumulate in the greatest amount (interdental spaces, surface of the root of the tongue, gingival pockets, etc.), two methods can be applied.

Первый способ: обследуемому дают жевать кусочки стерильного воска или парафина /объемом около 5 см3/. Стерилизацию производят в автоклаве большими порциями в колбах. Перед употреблением парафин или воск расплавляют на водяной бане, разливают в стерильные чашки Петри и нарезают стерильным инструментом. Достаточно выбрать 5-6 мл слюны. Непосредственно перед стимуляцией обследуемый прополаскивает рот кипяченой водой.The first method: the subject is given chewing pieces of sterile wax or paraffin / with a volume of about 5 cm 3 /. Sterilization is carried out in an autoclave in large portions in flasks. Before use, paraffin or wax is melted in a water bath, poured into sterile Petri dishes and cut with a sterile instrument. It is enough to choose 5-6 ml of saliva. Immediately before stimulation, the subject rinses his mouth with boiled water.

Второй способ: обследуемый предварительно прополаскивает рот 50-100 мл стерильного физраствора для удаления остатков пищи и стимуляции слюноотделения. Спустя 10-15 мин обследуемому дают прополоснуть рот 8-10 мл стерильного физраствора и берут разведенную таким путем слюну полоскательную жидкость. Полоскание должно быть сильным и продолжительным /до 3-х мин./ и чтобы полоскательная жидкость омыла рот полностью. The second method: the subject pre-rinses his mouth with 50-100 ml of sterile saline to remove food debris and stimulate salivation. After 10-15 minutes, the subject is allowed to rinse his mouth with 8-10 ml of sterile saline solution and a saliva diluted in this way is taken. Rinse should be strong and long (up to 3 minutes) and so that the rinse liquid washes the mouth completely.

При обоих способах слюну берут в широкогорлые пробирки или колбочки, простерилизованные под двойными колпаками, чем обеспечивается стерильность краев стекла, которых обследуемый может коснуться губами. Такая же предосторожность нужна при стерилизации пробирок с физраствором для полоскания рта. Когда проба взята, бумажный колпачек заменяют ватной пробкой, простерилизованной в бумажном пакете или чашке Петри. Пробы слюны сохраняют в холодильнике /без замораживания/ не дольше 4-х ч. In both methods, saliva is taken into wide-necked tubes or cones sterilized under double caps, which ensures the sterility of the edges of the glass, which the subject can touch with her lips. The same precaution is needed when sterilizing test tubes with saline rinse. When the sample is taken, the paper cap is replaced with a cotton stopper, sterilized in a paper bag or Petri dish. Samples of saliva are stored in the refrigerator / without freezing / for no longer than 4 hours.

Этот способ и применяемые для его реализации средства приняты в качестве прототипа. This method and the means used for its implementation are adopted as a prototype.

При культивировании и идентификации микроорганизмов полости рта рекомендуется, как минимум, следующий набор сред: 1 кровяной агар, печеночный полужидкий бульон, среда для аскорогенных анаэробов; 2 - желточно-солевой агар для лактобактерий /Кускова В.Ф. Ребреева Л.И. М. 1967г./
Кашкин П.И. /1964 г./ для культивирования Candida берет сцелоагар, морковно-картофельный агар и среду Чапока-Донга /ж-л "Стоматология", N 5, 1971, с. 59-62/.
When cultivating and identifying oral microorganisms, it is recommended that at least the following set of media be used: 1 blood agar, hepatic semi-liquid broth, medium for ascorbic anaerobes; 2 - yolk-salt agar for lactobacilli / Kuskova V.F. Rebreeva L.I. M. 1967 /
Kashkin P.I. / 1964 / for the cultivation of Candida takes stseloagar, carrot-potato agar and Chapok-Dong medium / w / "Dentistry", N 5, 1971, S. 59-62 /.

Однако подобные исследования не дают исчерпывающей информации для оценки взаимодействия зубных протезов со слизистой оболочкой полости рта. В оптимальном варианте ортопеду-стоматологу необходимо изучение локальной микрофлоры в отдельных участках слизистой оболочки и зубных протезов, что и сделано авторами заявки на изобретение. However, such studies do not provide comprehensive information for assessing the interaction of dentures with the oral mucosa. In the best case scenario, an orthopedic dentist needs to study the local microflora in certain areas of the mucous membrane and dentures, which is what the authors of the application for the invention did.

Задача изобретения получение более качественных проб с локальной поверхности полости рта и протезов, появление достоверности микробиологического анализа и удобство в эксплуатации. The objective of the invention is to obtain better samples from the local surface of the oral cavity and prostheses, the appearance of the reliability of microbiological analysis and ease of use.

Были взяты стоматологические гильзы диаметром 17 мм, которые стерилизовались в автоклаве при 1,5 атм. в течение 30 мин или сухим жаром при температуре 180oC в течение 2 ч. Для удобства доступа к различным участкам слизистой оболочки полости рта и с целью выявления микрофлоры изолированного участка, гильзы помещаются в гильзодержатель.Dental sleeves with a diameter of 17 mm were taken, which were sterilized in an autoclave at 1.5 atm. for 30 minutes or dry heat at a temperature of 180 o C for 2 hours. For ease of access to various parts of the oral mucosa and in order to identify the microflora of the isolated area, the sleeves are placed in the sleeve holder.

На фиг. 1 изображен общий вид предлагаемого устройства /сбоку/; на фиг. 2 то же, вид сверху; на фиг. 3 в увеличенном виде гильзодержатель с гильзой; на фиг. 4 в увеличенном виде соединение /резьбовое/ ручки с переходником; на фиг. 5 в увеличенном виде соединение головки гильзодержателя с гильзодержателем и регулировочным винтом; на фиг. 6 предпочтительный вариант выполнения гильзы со специальным выступом; на фиг. 7 этот выступ на виде сверху. In FIG. 1 shows a General view of the proposed device / side /; in FIG. 2 same, top view; in FIG. 3 enlarged view of a sleeve holder with a sleeve; in FIG. 4 enlarged connection / threaded / handle with adapter; in FIG. 5 enlarged view of the connection of the head of the sleeve holder with the sleeve holder and the adjusting screw; in FIG. 6 preferred embodiment of a sleeve with a special protrusion; in FIG. 7 this protrusion in a top view.

Устройство содержит металлическую гильзу 1 с гильзодержателем 2, соединенным с головкой 3. Головка 3 жестко соединена с хвостовиком 4, который посредством резьбового соединения 5 соединен с ручкой 6. Гильзодержатель 2 прикреплен к головке гильзодержателя 3 посредством шарнирного соединения, состоящего из двух полуосей 7 и 3, жестко закрепленных к гильзодержателю и свободно проходящих через отверстия 9 /фиг. 5/ головки. The device comprises a metal sleeve 1 with a sleeve holder 2 connected to the head 3. The head 3 is rigidly connected to the shank 4, which is connected to the handle 6 by a threaded connection 5. The sleeve holder 2 is attached to the head of the sleeve 3 by means of a swivel consisting of two axles 7 and 3 rigidly fixed to the sleeve holder and freely passing through the holes 9 / Fig. 5 / heads.

Полуось 8 расположена между шарнирами, расстояние обозначено L /фиг. 2/, оно может изменяться с помощью рифленной гайки 11 /фиг. 2,5/, при этом трение в шарнирах изменяется от нуля до величины, соответствующей закреплению головки гильзодержателя. Головка 3 выполнена из стальной пластины и обладает упругостью. The axle shaft 8 is located between the hinges, the distance is indicated by L / Fig. 2 /, it can be changed with a fluted nut 11 / FIG. 2.5 /, while the friction in the joints varies from zero to a value corresponding to the fastening of the head of the sleeve holder. The head 3 is made of a steel plate and has elasticity.

Гильза 1 имеет элемент локализации пробы в виде носика 12 с острыми краями. Ручка 6 выполнена из шестигранника, а резьбовое соединение ручки с хвостовиком 4 может быть и жестким, для чего ручку следует завернуть до упора резьбы. The sleeve 1 has an element of localization of the sample in the form of a spout 12 with sharp edges. The handle 6 is made of hexagon, and the threaded connection of the handle with the shank 4 can be rigid, for which the handle should be screwed until the thread stops.

Размеры устройства. Dimensions of the device.

Стоматологическая гильза Д 16 мм; высота гильзы 10 мм; длина ручки 155 мм; диаметр гильзодержателя 17 мм; высота гильзодержателя 12 мм; диаметр резьбового соединения хвостовика с ручкой М 2,6; размер шестигранника ручки 5 мм; диаметр полуосей 2,5 мм; резьба рифленной гайки 11 равна М2,6; толщина полукольца головки 0,4 0,5 мм. Dental sleeve D 16 mm; sleeve height 10 mm; handle length 155 mm; sleeve diameter 17 mm; sleeve height 12 mm; the diameter of the threaded connection of the shank with the handle M 2.6; handle hexagon size 5 mm; diameter of semiaxes 2.5 mm; the thread of the fluted nut 11 is equal to M2.6; the thickness of the half ring of the head is 0.4 0.5 mm.

Варианты закрепления составных частей устройства:
полностью жесткое соединение, т.е. резьба ввинчена до упора, а гайка 11 тоже закручена до упора; (взятие проб с протезов);
головка с гильзодержателем не закреплена, т.е. гильзодержатель свободно вращается на своих полуосях, а резьбовое соединение 5 законтрено (там возможна постановка дополнительной контргайки);
все подвижные из нержавеющей стали марки 12Х18Н10Т, поверхность отполирована, а края 1 заострены по всей окружности /фиг. 6/, что позволяет брать локальные пробы с помощью носика 12, а более общие пробы любым местом края гильзы (при этом ее можно поворачивать внутри гильзодержателя).
Options for fixing the components of the device:
completely rigid connection i.e. the thread is screwed all the way, and the nut 11 is also tightened completely; (taking samples from prostheses);
the head with the sleeve holder is not fixed, i.e. the sleeve holder rotates freely on its half shafts, and the threaded connection 5 is locked (it is possible to set an additional lock nut);
all movable stainless steel grade 12X18H10T, the surface is polished, and the edges 1 are pointed around the entire circumference / Fig. 6 /, which allows you to take local samples using the spout 12, and more general samples at any point on the edge of the sleeve (you can rotate it inside the sleeve holder).

Предлагаемое устройство удобно в применении. Гильза 1 с питательной средой вставляется в гильзодержатель 2, устройство с помощью ручки 6 вводится в полость рта и прикладывается к любому из подлежащих исследованию участков слизистой оболочки или другим объектам полости рта, в том числе к поверхности зубных протезов (или вне полости рта). The proposed device is convenient to use. A sleeve 1 with a nutrient medium is inserted into the sleeve holder 2, the device is inserted into the oral cavity with the handle 6 and applied to any of the areas of the mucous membrane to be examined or other objects of the oral cavity, including the surface of the dentures (or outside the oral cavity).

Шарнирная подвеска гильзодержателя 2 к головке 3 и резьбовое соединение 5 позволяет прикладывать питательную среду на любой участок полости рта. Предварительно прополаскивают рот стерильным физраствором (50-100 мл) для удаления остатков пищи и стимуляции слюноотделения, а все устройство стерилизуют общепринятым способом, например, в сухопарочном шкафу при температуре 180oC в течение 2 ч.The hinged suspension of the sleeve holder 2 to the head 3 and the threaded connection 5 allows you to apply a nutrient medium to any part of the oral cavity. Pre-rinse the mouth with sterile saline solution (50-100 ml) to remove food debris and stimulate salivation, and the entire device is sterilized in the usual way, for example, in a dry cabinet at a temperature of 180 o C for 2 hours

Для определения микрофлоры исследуемого участка пользовались следующими питательными средствами:
1. Для выявления грибков использовалась среда Сабура.
To determine the microflora of the studied area, the following nutrients were used:
1. Sabur medium was used to identify fungi.

2. Для кишечной палочки Эндо. 2. For E. coli Endo.

3. Для стрептококков Кровяной агар. 3. For streptococcus blood agar.

4. Для стафилококков Молочно-сахарный агар. 4. For staphylococci Milk-sugar agar.

Соответственно каждая питательная среда заливалась в отдельную гильзу, таким образом для одного больного использовались четыре гильзы с различными питательными средами. Такая гильза вкладывалась в гильзодержатель и практически с любого участка слизистой оболочки полости рта или зубных протезов можно получить посев микробов. Accordingly, each nutrient medium was poured into a separate sleeve, so four sleeves with different nutrient media were used for one patient. Such a sleeve was inserted into the sleeve holder and microbial culture can be obtained from almost any part of the oral mucosa or dentures.

После снятия отпечатков гильзы помещались в термостат при температуре 36,6oC в течение одних суток. На следующий день на поверхности агара появляются различные колонии микробов. Они имеют разнообразные светлые, прозрачные, мутные, полумутные содержимые. На этих препаратах подсчитываем количество однородных колоний.After imprinting, the liners were placed in a thermostat at a temperature of 36.6 o C for one day. The next day, various colonies of microbes appear on the surface of the agar. They have a variety of light, transparent, cloudy, semi-cloudy contents. On these preparations, we count the number of homogeneous colonies.

Производили посев на различные питательные среды, где под микроскопом на приготовленных мазках можно качественно определить микрофлору изолированных участков слизистой оболочки полости рта и численное соотношение различных колоний микробов. Sowing was carried out on various nutrient media, where under the microscope on the prepared smears it is possible to qualitatively determine the microflora of isolated sections of the oral mucosa and the numerical ratio of various microbial colonies.

Для определения принадлежности каждой колонии к той или иной разновидности микробов, мы производили посев каждой колонии в различные среды. To determine whether each colony belongs to a particular variety of microbes, we sowed each colony in different environments.

Таким образом, предлагаемый способ позволяет получить топографический симбиоз различных микроорганизмов на каждой единице площади исследования, а также их качественную характеристику. Thus, the proposed method allows to obtain topographic symbiosis of various microorganisms on each unit of the research area, as well as their qualitative characteristics.

Предлагаемое устройство в полной мере реализует возможности предлагаемого способа. The proposed device fully implements the capabilities of the proposed method.

Claims (3)

1. Способ взятия проб материала для микробиологических исследований полости рта, включающий прополаскивание рта стерильным физраствором, отбор пробы для последующего культивирования и идентификации микроорганизмов полости рта в стандартном наборе сред, отличающийся тем, что отбор пробы осуществляют путем прикладывания предварительно помещенной в стерилизованную металлическую гильзу питательной среды на исследуемый участок полости рта. 1. The method of sampling material for microbiological studies of the oral cavity, including rinsing the mouth with sterile saline, sampling for subsequent cultivation and identification of microorganisms of the oral cavity in a standard set of media, characterized in that the sampling is carried out by applying pre-placed in a sterilized metal sleeve nutrient medium on the studied area of the oral cavity. 2. Устройство для взятия проб материала для микробиологических исследований полости рта, содержащее простерилизованную емкость, отличающееся тем, что емкость выполнена в виде металлической гильзы, имеющей элемент локализации пробы в виде заостренных краев по всей окружности гильзы и носика, устройство дополнительно содержит гильзодержатель для установки в него гильзы, головку с хвостовиком и ручку, при этом ручка соединена с хвостовиком посредством осевого резьбового соединения, а гильзодержатель шарнирно закреплен в головке, выполненной упругой и снабженной средствами регулирования трения в шарнирном соединении. 2. A device for sampling material for microbiological studies of the oral cavity, containing a sterilized container, characterized in that the container is made in the form of a metal sleeve having an element of localization of the sample in the form of pointed edges around the entire circumference of the sleeve and nose, the device further comprises a sleeve holder for installation in sleeves, a head with a shank and a handle, while the handle is connected to the shank by means of an axial threaded connection, and the sleeve holder is pivotally mounted in the head, elastic and equipped with friction control in a swivel. 3. Устройство по п. 2, отличающееся тем, что головка выполнена в виде полукольцевой упругой пластины, внутри которой на двух полуосях подвешен гильзодержатель, при этом одна из полуосей выполнена с резьбой и снабжена регулировочной гайкой. 3. The device according to p. 2, characterized in that the head is made in the form of a semi-ring elastic plate, inside of which a sleeve holder is suspended on two half shafts, one of the half shafts being threaded and equipped with an adjusting nut.
SU5048346 1992-06-18 1992-06-18 Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity RU2101692C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5048346 RU2101692C1 (en) 1992-06-18 1992-06-18 Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5048346 RU2101692C1 (en) 1992-06-18 1992-06-18 Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2101692C1 true RU2101692C1 (en) 1998-01-10

Family

ID=21607319

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5048346 RU2101692C1 (en) 1992-06-18 1992-06-18 Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2101692C1 (en)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2636623C1 (en) * 2017-02-01 2017-11-24 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ДВГМУ Минздрава России) Tongue root microbiome as prognostic model of disbiotic state of genital tract in pregnant women
RU2661609C1 (en) * 2017-07-26 2018-07-17 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ДВГМУ Минздрава России) Tongue microbioma as a prognostic model for determining the seeding of cariesogenic bacteria of streptococcus mutans of dental hard tissues in young children
RU2814756C1 (en) * 2023-06-16 2024-03-04 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method for oral microbiota examination depending on material of fixed orthopedic structures

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Стоматология, 1971, N 4, с.57 - 60. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2636623C1 (en) * 2017-02-01 2017-11-24 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ДВГМУ Минздрава России) Tongue root microbiome as prognostic model of disbiotic state of genital tract in pregnant women
RU2661609C1 (en) * 2017-07-26 2018-07-17 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ДВГМУ Минздрава России) Tongue microbioma as a prognostic model for determining the seeding of cariesogenic bacteria of streptococcus mutans of dental hard tissues in young children
RU2814756C1 (en) * 2023-06-16 2024-03-04 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации Method for oral microbiota examination depending on material of fixed orthopedic structures

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Otten et al. Bacterial colonization on different suture materials—a potential risk for intraoral dentoalveolar surgery
Harrigan et al. Laboratory methods in microbiology
Krakow et al. In vivo study of temporary filling materials used in endodontics in anterior teeth
JPS58225029A (en) Simple diagnostic method for tooth decay and device therefor
BUDTZ‐JÖRGENSEN et al. Method for studying the development, structure and microflora of denture plaque
CN104622709B (en) Human stem cell factor skin repair liquid and preparation method thereof
Levine An introduction to laboratory technique in bacteriology
RU2101692C1 (en) Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity
Collins et al. Safety of reusing disposable plastic insulin syringes
Garrocho-Rangel et al. Lesion sterilization tissue repair (LSTR) approach of non-vital primary molars with a chloramphenicol-tetracycline-ZOE antibiotic paste: A scoping review
Contrepois Notes on the early history of infective endocarditis and the development of an experimental model
US5270174A (en) Method and kit for indicating the level of oral microbial activity
Pigman et al. The action of individual bacterial strains on human teeth under in vitro conditions
EP0065137B1 (en) Culture medium composition
CN209327158U (en) A kind of drug sensitive test sampler
Engelhardt et al. Factors affecting sterilization in glass bead sterilizers
Blake The incidence and control of bacterial infection in dental spray reservoirs
Tanner Bacteriology and mycology of foods
Kuhl et al. d’Hérelle. Preparation of therapeutic bacteriophages, Appendix 1 from: Le Phénomène de la Guérison dans les maladies infectieuses: Masson et Cie, 1938, Paris—OCLC 5784382
RU2694374C1 (en) Method for taking washout from toothbrush head and assessing its microbial population
RU2779689C1 (en) Method for collecting biomaterial for microbiological research during dental examination of patients with cystic fibriosis
Shuturminskiy et al. Evaluation of the efficacy of stomatitis prevention in prosthetics with complete dentures with additional fixation with the cream
Sims Some comments on the microbiological examination of root canals
Kodariah et al. Antibacterial effect of corarian seed (Coriandrum sativum L.) extract on Streptococcus mutans
IFMAILY THE ANTIBACTERIAL MOUTHWASH OF TAPAK LIMAN LEAVES EXTRACT (Elephanthopus scaber L) AGAINST Streptococcus mutans