RU2101692C1 - Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity - Google Patents
Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity Download PDFInfo
- Publication number
- RU2101692C1 RU2101692C1 SU5048346A RU2101692C1 RU 2101692 C1 RU2101692 C1 RU 2101692C1 SU 5048346 A SU5048346 A SU 5048346A RU 2101692 C1 RU2101692 C1 RU 2101692C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- head
- oral cavity
- sleeve
- handle
- tube holder
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно стоматологии и микробиологии. The invention relates to medicine, namely to dentistry and microbiology.
Известен способ взятия проб материала для изучения микроорганизмов полости рта (см. журнал "Стоматология", N 4, М.1971, с. 57-60, авт. Кускова В.Ф. Ребреева Л.И.), при котором материал берут тонкими ватными турундами на корневых иглах или плотно скрученными из ваты шариками диаметром от 2-х до 5 мм, предварительно простерилизованными в чашках Петри или бумажных пакетиках суховоздушным методом (в сухопарочных шкафах). Стандартные условия стерилизации: 165-170oC (не выше, иначе слои бумаги и ваты могут стать хрупкими) в течение 1 ч, или 155-160oC в течение 2 ч. Турунду или ватный шарик непосредственно перед взятием пробы слегка увлажняют прикосновением к стерильному физраствору в пробирке. Немедленно после взятия пробы турунду, снятую пинцетом с корневой иглы, ватный шарик опускают в пробирку с питательной средой. При этом соблюдается обычная бактериостатическая техника посевов над пламенем горелки.A known method of sampling material for the study of microorganisms of the oral cavity (see journal "Dentistry", N 4, M.1971, S. 57-60, author Kuskova VF Rebreeva LI), in which the material is taken thin with cotton turundas on root needles or balls tightly twisted from cotton wool with a diameter of 2 to 5 mm, previously sterilized in Petri dishes or paper bags by the dry-air method (in dry-cupboard cabinets). Standard sterilization conditions: 165-170 o C (not higher, otherwise the layers of paper and cotton wool may become brittle) for 1 h, or 155-160 o C for 2 hours. Before the sample, the turunda or cotton ball is slightly moistened by touching sterile saline in vitro. Immediately after taking the sample, the turunda, taken with tweezers from the root needle, is lowered into a test tube with a nutrient medium. In this case, the usual bacteriostatic technique of crops over the flame of the burner is observed.
Далее изучают микробную флору слюны. Определяют только присутствие или количество микробных клеток различных видов микроорганизмов. Учитывая роль слюноотделения, жевания, глотания в процессах самоочищения полости рта от избытка микроорганизмов, надлежит брать пробы слюны всегда в одни и те же сроки между приемами пищи: натощак или через 3-4 ч после еды. В день взятия пробы обследуемый должен воздержаться от чистки зубов зубной щеткой и полоскания рта. Next, the microbial flora of saliva is studied. Only the presence or quantity of microbial cells of various types of microorganisms is determined. Given the role of salivation, chewing, and swallowing in the processes of oral self-cleaning from excess microorganisms, saliva samples should always be taken at the same time between meals: on an empty stomach or 3-4 hours after eating. On the day of sampling, the subject should refrain from brushing his teeth and rinsing his mouth.
Для вымывания микробов в слюну из тех участков, где они скапливаются в наибольшем количестве (межзубные промежутки, поверхность корня языка, десневые карманы и т.д.), могут быть применены два способа. For washing microbes into saliva from those areas where they accumulate in the greatest amount (interdental spaces, surface of the root of the tongue, gingival pockets, etc.), two methods can be applied.
Первый способ: обследуемому дают жевать кусочки стерильного воска или парафина /объемом около 5 см3/. Стерилизацию производят в автоклаве большими порциями в колбах. Перед употреблением парафин или воск расплавляют на водяной бане, разливают в стерильные чашки Петри и нарезают стерильным инструментом. Достаточно выбрать 5-6 мл слюны. Непосредственно перед стимуляцией обследуемый прополаскивает рот кипяченой водой.The first method: the subject is given chewing pieces of sterile wax or paraffin / with a volume of about 5 cm 3 /. Sterilization is carried out in an autoclave in large portions in flasks. Before use, paraffin or wax is melted in a water bath, poured into sterile Petri dishes and cut with a sterile instrument. It is enough to choose 5-6 ml of saliva. Immediately before stimulation, the subject rinses his mouth with boiled water.
Второй способ: обследуемый предварительно прополаскивает рот 50-100 мл стерильного физраствора для удаления остатков пищи и стимуляции слюноотделения. Спустя 10-15 мин обследуемому дают прополоснуть рот 8-10 мл стерильного физраствора и берут разведенную таким путем слюну полоскательную жидкость. Полоскание должно быть сильным и продолжительным /до 3-х мин./ и чтобы полоскательная жидкость омыла рот полностью. The second method: the subject pre-rinses his mouth with 50-100 ml of sterile saline to remove food debris and stimulate salivation. After 10-15 minutes, the subject is allowed to rinse his mouth with 8-10 ml of sterile saline solution and a saliva diluted in this way is taken. Rinse should be strong and long (up to 3 minutes) and so that the rinse liquid washes the mouth completely.
При обоих способах слюну берут в широкогорлые пробирки или колбочки, простерилизованные под двойными колпаками, чем обеспечивается стерильность краев стекла, которых обследуемый может коснуться губами. Такая же предосторожность нужна при стерилизации пробирок с физраствором для полоскания рта. Когда проба взята, бумажный колпачек заменяют ватной пробкой, простерилизованной в бумажном пакете или чашке Петри. Пробы слюны сохраняют в холодильнике /без замораживания/ не дольше 4-х ч. In both methods, saliva is taken into wide-necked tubes or cones sterilized under double caps, which ensures the sterility of the edges of the glass, which the subject can touch with her lips. The same precaution is needed when sterilizing test tubes with saline rinse. When the sample is taken, the paper cap is replaced with a cotton stopper, sterilized in a paper bag or Petri dish. Samples of saliva are stored in the refrigerator / without freezing / for no longer than 4 hours.
Этот способ и применяемые для его реализации средства приняты в качестве прототипа. This method and the means used for its implementation are adopted as a prototype.
При культивировании и идентификации микроорганизмов полости рта рекомендуется, как минимум, следующий набор сред: 1 кровяной агар, печеночный полужидкий бульон, среда для аскорогенных анаэробов; 2 - желточно-солевой агар для лактобактерий /Кускова В.Ф. Ребреева Л.И. М. 1967г./
Кашкин П.И. /1964 г./ для культивирования Candida берет сцелоагар, морковно-картофельный агар и среду Чапока-Донга /ж-л "Стоматология", N 5, 1971, с. 59-62/.When cultivating and identifying oral microorganisms, it is recommended that at least the following set of media be used: 1 blood agar, hepatic semi-liquid broth, medium for ascorbic anaerobes; 2 - yolk-salt agar for lactobacilli / Kuskova V.F. Rebreeva L.I. M. 1967 /
Kashkin P.I. / 1964 / for the cultivation of Candida takes stseloagar, carrot-potato agar and Chapok-Dong medium / w / "Dentistry",
Однако подобные исследования не дают исчерпывающей информации для оценки взаимодействия зубных протезов со слизистой оболочкой полости рта. В оптимальном варианте ортопеду-стоматологу необходимо изучение локальной микрофлоры в отдельных участках слизистой оболочки и зубных протезов, что и сделано авторами заявки на изобретение. However, such studies do not provide comprehensive information for assessing the interaction of dentures with the oral mucosa. In the best case scenario, an orthopedic dentist needs to study the local microflora in certain areas of the mucous membrane and dentures, which is what the authors of the application for the invention did.
Задача изобретения получение более качественных проб с локальной поверхности полости рта и протезов, появление достоверности микробиологического анализа и удобство в эксплуатации. The objective of the invention is to obtain better samples from the local surface of the oral cavity and prostheses, the appearance of the reliability of microbiological analysis and ease of use.
Были взяты стоматологические гильзы диаметром 17 мм, которые стерилизовались в автоклаве при 1,5 атм. в течение 30 мин или сухим жаром при температуре 180oC в течение 2 ч. Для удобства доступа к различным участкам слизистой оболочки полости рта и с целью выявления микрофлоры изолированного участка, гильзы помещаются в гильзодержатель.Dental sleeves with a diameter of 17 mm were taken, which were sterilized in an autoclave at 1.5 atm. for 30 minutes or dry heat at a temperature of 180 o C for 2 hours. For ease of access to various parts of the oral mucosa and in order to identify the microflora of the isolated area, the sleeves are placed in the sleeve holder.
На фиг. 1 изображен общий вид предлагаемого устройства /сбоку/; на фиг. 2 то же, вид сверху; на фиг. 3 в увеличенном виде гильзодержатель с гильзой; на фиг. 4 в увеличенном виде соединение /резьбовое/ ручки с переходником; на фиг. 5 в увеличенном виде соединение головки гильзодержателя с гильзодержателем и регулировочным винтом; на фиг. 6 предпочтительный вариант выполнения гильзы со специальным выступом; на фиг. 7 этот выступ на виде сверху. In FIG. 1 shows a General view of the proposed device / side /; in FIG. 2 same, top view; in FIG. 3 enlarged view of a sleeve holder with a sleeve; in FIG. 4 enlarged connection / threaded / handle with adapter; in FIG. 5 enlarged view of the connection of the head of the sleeve holder with the sleeve holder and the adjusting screw; in FIG. 6 preferred embodiment of a sleeve with a special protrusion; in FIG. 7 this protrusion in a top view.
Устройство содержит металлическую гильзу 1 с гильзодержателем 2, соединенным с головкой 3. Головка 3 жестко соединена с хвостовиком 4, который посредством резьбового соединения 5 соединен с ручкой 6. Гильзодержатель 2 прикреплен к головке гильзодержателя 3 посредством шарнирного соединения, состоящего из двух полуосей 7 и 3, жестко закрепленных к гильзодержателю и свободно проходящих через отверстия 9 /фиг. 5/ головки. The device comprises a
Полуось 8 расположена между шарнирами, расстояние обозначено L /фиг. 2/, оно может изменяться с помощью рифленной гайки 11 /фиг. 2,5/, при этом трение в шарнирах изменяется от нуля до величины, соответствующей закреплению головки гильзодержателя. Головка 3 выполнена из стальной пластины и обладает упругостью. The
Гильза 1 имеет элемент локализации пробы в виде носика 12 с острыми краями. Ручка 6 выполнена из шестигранника, а резьбовое соединение ручки с хвостовиком 4 может быть и жестким, для чего ручку следует завернуть до упора резьбы. The
Размеры устройства. Dimensions of the device.
Стоматологическая гильза Д 16 мм; высота гильзы 10 мм; длина ручки 155 мм; диаметр гильзодержателя 17 мм; высота гильзодержателя 12 мм; диаметр резьбового соединения хвостовика с ручкой М 2,6; размер шестигранника ручки 5 мм; диаметр полуосей 2,5 мм; резьба рифленной гайки 11 равна М2,6; толщина полукольца головки 0,4 0,5 мм. Dental sleeve D 16 mm;
Варианты закрепления составных частей устройства:
полностью жесткое соединение, т.е. резьба ввинчена до упора, а гайка 11 тоже закручена до упора; (взятие проб с протезов);
головка с гильзодержателем не закреплена, т.е. гильзодержатель свободно вращается на своих полуосях, а резьбовое соединение 5 законтрено (там возможна постановка дополнительной контргайки);
все подвижные из нержавеющей стали марки 12Х18Н10Т, поверхность отполирована, а края 1 заострены по всей окружности /фиг. 6/, что позволяет брать локальные пробы с помощью носика 12, а более общие пробы любым местом края гильзы (при этом ее можно поворачивать внутри гильзодержателя).Options for fixing the components of the device:
completely rigid connection i.e. the thread is screwed all the way, and the
the head with the sleeve holder is not fixed, i.e. the sleeve holder rotates freely on its half shafts, and the threaded
all movable stainless steel grade 12X18H10T, the surface is polished, and the
Предлагаемое устройство удобно в применении. Гильза 1 с питательной средой вставляется в гильзодержатель 2, устройство с помощью ручки 6 вводится в полость рта и прикладывается к любому из подлежащих исследованию участков слизистой оболочки или другим объектам полости рта, в том числе к поверхности зубных протезов (или вне полости рта). The proposed device is convenient to use. A
Шарнирная подвеска гильзодержателя 2 к головке 3 и резьбовое соединение 5 позволяет прикладывать питательную среду на любой участок полости рта. Предварительно прополаскивают рот стерильным физраствором (50-100 мл) для удаления остатков пищи и стимуляции слюноотделения, а все устройство стерилизуют общепринятым способом, например, в сухопарочном шкафу при температуре 180oC в течение 2 ч.The hinged suspension of the
Для определения микрофлоры исследуемого участка пользовались следующими питательными средствами:
1. Для выявления грибков использовалась среда Сабура.To determine the microflora of the studied area, the following nutrients were used:
1. Sabur medium was used to identify fungi.
2. Для кишечной палочки Эндо. 2. For E. coli Endo.
3. Для стрептококков Кровяной агар. 3. For streptococcus blood agar.
4. Для стафилококков Молочно-сахарный агар. 4. For staphylococci Milk-sugar agar.
Соответственно каждая питательная среда заливалась в отдельную гильзу, таким образом для одного больного использовались четыре гильзы с различными питательными средами. Такая гильза вкладывалась в гильзодержатель и практически с любого участка слизистой оболочки полости рта или зубных протезов можно получить посев микробов. Accordingly, each nutrient medium was poured into a separate sleeve, so four sleeves with different nutrient media were used for one patient. Such a sleeve was inserted into the sleeve holder and microbial culture can be obtained from almost any part of the oral mucosa or dentures.
После снятия отпечатков гильзы помещались в термостат при температуре 36,6oC в течение одних суток. На следующий день на поверхности агара появляются различные колонии микробов. Они имеют разнообразные светлые, прозрачные, мутные, полумутные содержимые. На этих препаратах подсчитываем количество однородных колоний.After imprinting, the liners were placed in a thermostat at a temperature of 36.6 o C for one day. The next day, various colonies of microbes appear on the surface of the agar. They have a variety of light, transparent, cloudy, semi-cloudy contents. On these preparations, we count the number of homogeneous colonies.
Производили посев на различные питательные среды, где под микроскопом на приготовленных мазках можно качественно определить микрофлору изолированных участков слизистой оболочки полости рта и численное соотношение различных колоний микробов. Sowing was carried out on various nutrient media, where under the microscope on the prepared smears it is possible to qualitatively determine the microflora of isolated sections of the oral mucosa and the numerical ratio of various microbial colonies.
Для определения принадлежности каждой колонии к той или иной разновидности микробов, мы производили посев каждой колонии в различные среды. To determine whether each colony belongs to a particular variety of microbes, we sowed each colony in different environments.
Таким образом, предлагаемый способ позволяет получить топографический симбиоз различных микроорганизмов на каждой единице площади исследования, а также их качественную характеристику. Thus, the proposed method allows to obtain topographic symbiosis of various microorganisms on each unit of the research area, as well as their qualitative characteristics.
Предлагаемое устройство в полной мере реализует возможности предлагаемого способа. The proposed device fully implements the capabilities of the proposed method.
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU5048346 RU2101692C1 (en) | 1992-06-18 | 1992-06-18 | Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU5048346 RU2101692C1 (en) | 1992-06-18 | 1992-06-18 | Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2101692C1 true RU2101692C1 (en) | 1998-01-10 |
Family
ID=21607319
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU5048346 RU2101692C1 (en) | 1992-06-18 | 1992-06-18 | Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2101692C1 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2636623C1 (en) * | 2017-02-01 | 2017-11-24 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ДВГМУ Минздрава России) | Tongue root microbiome as prognostic model of disbiotic state of genital tract in pregnant women |
RU2661609C1 (en) * | 2017-07-26 | 2018-07-17 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ДВГМУ Минздрава России) | Tongue microbioma as a prognostic model for determining the seeding of cariesogenic bacteria of streptococcus mutans of dental hard tissues in young children |
RU2814756C1 (en) * | 2023-06-16 | 2024-03-04 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for oral microbiota examination depending on material of fixed orthopedic structures |
-
1992
- 1992-06-18 RU SU5048346 patent/RU2101692C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Стоматология, 1971, N 4, с.57 - 60. * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2636623C1 (en) * | 2017-02-01 | 2017-11-24 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ДВГМУ Минздрава России) | Tongue root microbiome as prognostic model of disbiotic state of genital tract in pregnant women |
RU2661609C1 (en) * | 2017-07-26 | 2018-07-17 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ДВГМУ Минздрава России) | Tongue microbioma as a prognostic model for determining the seeding of cariesogenic bacteria of streptococcus mutans of dental hard tissues in young children |
RU2814756C1 (en) * | 2023-06-16 | 2024-03-04 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for oral microbiota examination depending on material of fixed orthopedic structures |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Otten et al. | Bacterial colonization on different suture materials—a potential risk for intraoral dentoalveolar surgery | |
Harrigan et al. | Laboratory methods in microbiology | |
Krakow et al. | In vivo study of temporary filling materials used in endodontics in anterior teeth | |
JPS58225029A (en) | Simple diagnostic method for tooth decay and device therefor | |
BUDTZ‐JÖRGENSEN et al. | Method for studying the development, structure and microflora of denture plaque | |
CN104622709B (en) | Human stem cell factor skin repair liquid and preparation method thereof | |
Levine | An introduction to laboratory technique in bacteriology | |
RU2101692C1 (en) | Method and device for taking material samples for performing microbiological examination of oral cavity | |
Collins et al. | Safety of reusing disposable plastic insulin syringes | |
Garrocho-Rangel et al. | Lesion sterilization tissue repair (LSTR) approach of non-vital primary molars with a chloramphenicol-tetracycline-ZOE antibiotic paste: A scoping review | |
Contrepois | Notes on the early history of infective endocarditis and the development of an experimental model | |
US5270174A (en) | Method and kit for indicating the level of oral microbial activity | |
Pigman et al. | The action of individual bacterial strains on human teeth under in vitro conditions | |
EP0065137B1 (en) | Culture medium composition | |
CN209327158U (en) | A kind of drug sensitive test sampler | |
Engelhardt et al. | Factors affecting sterilization in glass bead sterilizers | |
Blake | The incidence and control of bacterial infection in dental spray reservoirs | |
Tanner | Bacteriology and mycology of foods | |
Kuhl et al. | d’Hérelle. Preparation of therapeutic bacteriophages, Appendix 1 from: Le Phénomène de la Guérison dans les maladies infectieuses: Masson et Cie, 1938, Paris—OCLC 5784382 | |
RU2694374C1 (en) | Method for taking washout from toothbrush head and assessing its microbial population | |
RU2779689C1 (en) | Method for collecting biomaterial for microbiological research during dental examination of patients with cystic fibriosis | |
Shuturminskiy et al. | Evaluation of the efficacy of stomatitis prevention in prosthetics with complete dentures with additional fixation with the cream | |
Sims | Some comments on the microbiological examination of root canals | |
Kodariah et al. | Antibacterial effect of corarian seed (Coriandrum sativum L.) extract on Streptococcus mutans | |
IFMAILY | THE ANTIBACTERIAL MOUTHWASH OF TAPAK LIMAN LEAVES EXTRACT (Elephanthopus scaber L) AGAINST Streptococcus mutans |