RU2101354C1 - Method of bacillus anthracis nucleic acid preparing - Google Patents
Method of bacillus anthracis nucleic acid preparing Download PDFInfo
- Publication number
- RU2101354C1 RU2101354C1 RU95101495A RU95101495A RU2101354C1 RU 2101354 C1 RU2101354 C1 RU 2101354C1 RU 95101495 A RU95101495 A RU 95101495A RU 95101495 A RU95101495 A RU 95101495A RU 2101354 C1 RU2101354 C1 RU 2101354C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- biomass
- nucleic acids
- lysozyme
- suspension
- bacillus anthracis
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биохимии и бактериологии и может быть использовано для получения нуклеиновых кислот у возбудителя сибирской язвы и других спорообразующих бацилл. The invention relates to biochemistry and bacteriology and can be used to obtain nucleic acids from the causative agent of anthrax and other spore-forming bacilli.
Общий принцип получения нуклеиновых кислот заключается в выращивании максимального количества биомассы, полного разрушения бактериальных клеток с последующим отделением нуклеиновых кислот от белков, полисахаридов и других клеточных элементов. The general principle of obtaining nucleic acids is to grow the maximum amount of biomass, complete destruction of bacterial cells, followed by the separation of nucleic acids from proteins, polysaccharides and other cellular elements.
При работе с возбудителем сибирской язвы возникают трудности, связанные с высокой устойчивостью этого микроорганизма к воздействию физико-химических факторов и способностью к спорообразованию (Инструкция о противоэпидемическом режиме работы с материалом, зараженным или подозрительным на зараженность, возбудителями инфекционных заболеваний I II групп. Саратов 1979). When working with the causative agent of anthrax, difficulties arise associated with the high resistance of this microorganism to the effects of physicochemical factors and the ability to spore formation (Instruction on the anti-epidemic regime of working with material infected or suspicious of infection with pathogens of infectious diseases of the II group. Saratov 1979) .
Для разрушения клеток существует ряд методов: замораживание и оттаивание, деструкция осмотическим шоком или с помощью ферментов, воздействие лизирующими агентами, а также механическая обработка в гомогенизаторе, ультразвуковом дезинтеграторе. Выбор метода выделения нуклеиновых кислот обуславливается в основном клеточной структурой микроорганизма (П. Зентбуш, Молекулярная и клеточная биология. М.Мир, 1982, с.50.). For the destruction of cells, there are a number of methods: freezing and thawing, destruction by osmotic shock or using enzymes, exposure to lysing agents, as well as mechanical processing in a homogenizer, ultrasonic disintegrator. The choice of nucleic acid isolation method is mainly determined by the cellular structure of the microorganism (P. Zentbusch, Molecular and Cellular Biology. M. Mir, 1982, p. 50.).
Известен метод получения нуклеиновых кислот из клеток Bac. cereusthuringiensis ( Африкян Э.К. Энтомопатогенные бактерии и их значение, изд. А.Н.Армянской ССР,1973, с.418). A known method of obtaining nucleic acids from Bac cells. cereusthuringiensis (Afrikyan E.K. Entomopathogenic bacteria and their significance, ed. by A.N.Armyanskoy SSR, 1973, p. 418).
Свежую культуру бактерий с агаризованного косяка пересевают на мясо-пептонный бульон и выращивают на качалке в пробирках в течение 8 ч. Затем культуру пересевают в колбу с 1л бульона и инкубируют на качалке при 37oC. Через 10 ч в колбу добавляют в конечных концентрациях глицин 2,5% сахарозу 20% и культивирование продолжают в течение 3 ч при умеренном перемешивании, после чего вносят лизоцим из расчета 200 мкг/мл. Инкубацию при малых оборотах качалки продолжают еще в течение 2 ч. При микроскопии отмечают массовый лизис клеток. После центрифугирования и суспендирования осадка в цитратной смеси лизоцим в той же концентрации вновь добавляют в присутствии ЭДТА и ТРИС буфера при pH 8,0. После 30-ти минутного инкубирования добавляют 2%-ный раствор лаурилсульфата натрия, pH-8,0. Продолжают выращивание в течение 15 мин при 37oC и добавляют в 4-х кратном объеме цитратно-солевой буфер (2М хлористый натрий и 0,05М цитрат натрия) и выдерживают при 4oC 30 мин. После центрифугирования к осадку добавляют цитратно-солевой раствор, инкубируют 30 мин и после очередного центрифугирования к осадку добавляют 95% этанол. Следующий этап заключается в том, что в полученную суспензию вносят 0,9М хлористый натрий и 0,01М цитрат натрия и инкубируют при 37oC в течение 15 мин. Затем вновь добавляют лизоцим в концентрации 200 мкг/мл в сочетании с ЭДГА и ТРИС-буфером, pH 8,0 и помещают в термостат на 30 мин при 37oC. После обработки 2% -ным лаурилсульфатом натрия, pH 8,0 смесь выдерживают при 37oC 15 мин и добавляют 4 объема цитратно-солевого раствора (2М хлористый натрий и 0,05М цитрат натрия). Инкубация 30 мин при 37oC. После центрифугирования к осадку добавляют цитратно-солевой раствор и инкубируют при 30oC. Затем суспензию центрифугируют, добавляют этанол и вновь центрифугируют. Полученный осадок обрабатывают смесью хлороформа и октанола в соотношении 5 1 и вновь центрифугируют. РНК из смеси удаляют добавлением РНК-азы в концентрации 20 мкг/мл в течение 20 мин при комнатной температуре. Затем проводят депротеинизацию смесью хлороформа и октанола. После этого производят осаждение этанолом и экстракцию в цитратно-солевом растворе. Для получения очищенной ДНК проводят 4-краткую депротеинизацию смесью хлороформа и октанола.A fresh bacterial culture from an agarized school was transferred to a meat-peptone broth and grown on a rocking chair in test tubes for 8 hours. The culture was then transferred to a flask with 1 liter of broth and incubated on a rocking chair at 37 o C. After 10 hours, glycine was added to the flask in final concentrations 2.5%
Способ позволяет получить очищенную ДНК для дальнейшего молекулярно-генетического исследования. Недостатком его является длительность и большой набор используемых реактивов. Он не обеспечивает полного лизиса клеток Bac. antharacis и соответственно гарантированного обеззараживания культуры сибиреязвенного микроба и увеличения выхода готового продукта. The method allows to obtain purified DNA for further molecular genetic research. Its disadvantage is the duration and a large set of reagents used. It does not provide complete lysis of Bac cells. antharacis and, accordingly, guaranteed disinfection of the culture of anthrax microbe and increase the yield of the finished product.
Наиболее близким по технической сущности к изобретению является выбранный в качестве прототипа способ получения бактериальных нуклеиновых кислот [1]
По этому способу свежеосажденные клетки в пробирке из нержавеющей стали смешиваются с лизоцимом в концентрации 2 мг/г и растворяются в солевом ЭДГА (1 мл/г). Полученная смесь выдерживается в термостате 20 мин при 37oC, pH доводится до 9,0 добавлением раствора едкого натра. После начала лизирования клеток их быстро замораживают в смеси сухого льда с ацетоном. При этом достигается температура -20oC. Экспозиция 20 мин. Затем проводят оттаивание при 60oC. После этого к суспензии добавляют ТРИС-СДС-буфер в концентрации 10 мл на 1г биомассы. Следующим этапом добавляют равный объем фенола pH 9,0 и полученную смесь встряхивают на холоду (ниже -4oC) в течение 20 мин в колбе со стеклянной пробкой. Полученную суспензию разделяют на 2 слоя при центрифугировании на низкоскоростной центрифуге. Водную фазу отсасывают и осветляют при центрифугировании (12000 об/мин). Нуклеиновые кислоты осаждают добавлением 3-х объемов холодного этанола. Нитевидный осадок выбирается накручиванием на стеклянную палочку. После сушки получается сухой порошок, содержащий нуклеиновые кислоты.The closest in technical essence to the invention is the selected as a prototype method for producing bacterial nucleic acids [1]
In this method, freshly precipitated cells in a stainless steel tube are mixed with lysozyme at a concentration of 2 mg / g and dissolved in saline EDGA (1 ml / g). The resulting mixture was kept in a thermostat for 20 min at 37 o C, the pH was adjusted to 9.0 by adding a solution of caustic soda. After the start of cell lysis, they are quickly frozen in a mixture of dry ice with acetone. This reaches a temperature of -20 o C. Exposure to 20 minutes Thawing is then carried out at 60 ° C. Then, TRIS-SDS buffer is added to the suspension at a concentration of 10 ml per 1 g of biomass. The next step is added an equal volume of phenol, pH 9.0, and the resulting mixture is shaken in the cold (below -4 o C) for 20 min in a flask with a glass stopper. The resulting suspension is divided into 2 layers by centrifugation in a low speed centrifuge. The aqueous phase is sucked off and clarified by centrifugation (12000 rpm). Nucleic acids are precipitated by the addition of 3 volumes of cold ethanol. The filamentous precipitate is selected by winding on a glass rod. After drying, a dry powder is obtained containing nucleic acids.
У прототипа и изобретения имеются следующие сходные существенные признаки. The prototype and the invention have the following similar essential features.
Подготовка биомассы, обработка ее лизоцимом в присутствие ЭДТА в течение 20 мин при 37oC, pH 9,0, что необходимо для разрушения клеточной оболочки.Preparation of biomass, processing it with lysozyme in the presence of EDTA for 20 min at 37 o C, pH 9.0, which is necessary for the destruction of the cell membrane.
Замораживание и оттаивание суспензии, обеспечивающие более полный лизис клеток. Freezing and thawing the suspension, providing a more complete lysis of cells.
Дополнительное лизирование клеток ТРИС-СДС-буфером. Обработка клеточной суспензии фенолом в соотношении 1:1 с целью очистки нуклеиновых кислот от белков, полисахаридов и других клеточных элементов. Additional cell lysis with TRIS-SDS buffer. Treatment of the cell suspension with phenol in a 1: 1 ratio in order to purify nucleic acids from proteins, polysaccharides and other cellular elements.
Осаждение нуклеиновых кислот тройным объемом холодного этанола. Precipitation of nucleic acids by a triple volume of cold ethanol.
Недостатком прототипа является неполное обеззараживание Bac. antharacis, связанное с частичным лизисом клеток, и более низкий выход нуклеиновых кислот. The disadvantage of the prototype is the incomplete disinfection of Bac. antharacis associated with partial cell lysis and a lower yield of nucleic acids.
Этот недостаток обусловлен высокой устойчивостью возбудителя сибирской язвы к воздействию физико-химических факторов, способностью к спорообрааованию. Поэтому обработка клеток Bac. antharacis по методу К.Миура не позволяет добиться их полного лизиса, а значит и гарантированного обеззараживания. Используемое в этом способе количество лизоцима (2 мг на 1 г биомассы) и температура замораживания (-20oC, даже при трехкратном повторе операции не позволяют выполнить вышеописанные требования, что снижает выход нуклеиновых кислот.This drawback is due to the high resistance of the causative agent of anthrax to the effects of physico-chemical factors, the ability to spore formation. Therefore, the processing of Bac. antharacis according to the method of K. Miura does not allow to achieve their complete lysis, and therefore guaranteed disinfection. The amount of lysozyme used in this method (2 mg per 1 g of biomass) and the freezing temperature (-20 o C, even with a three-fold repetition of the operation do not allow to fulfill the above requirements, which reduces the yield of nucleic acids.
Целью изобретения является повышение выхода нуклеиновых кислот и обеспечение гарантированного обеззараживания патогенных бацилл. The aim of the invention is to increase the yield of nucleic acids and ensuring guaranteed disinfection of pathogenic bacilli.
Поставленная цель достигается тем, что подготовку биомассы проводили с предварительным подращиванием в течение 16-17 ч, с соблюдением условий герметизации колб. Биомассу обрабатывали лизоцимом в концентрации 20-25 мг на 1 г биомассы в присутствии ЭДТА, выдерживали в термостате при 37oC в течение 20 мин. Затем суспензию трехкратно замораживали в жидком азоте (-196oC) с последующим оттаиванием при 60oC. Процесс замораживания длился 40-60 с. Проводили дополнительное лизирование ТРИС-СДС-буфером. Нуклеиновые кислоты очищали фенолом и осаждали тройным объемом холодного этанола.This goal is achieved in that the biomass was prepared with preliminary growth for 16-17 hours, subject to the conditions for sealing flasks. The biomass was treated with lysozyme at a concentration of 20-25 mg per 1 g of biomass in the presence of EDTA, kept in an incubator at 37 ° C for 20 minutes. Then, the suspension was frozen three times in liquid nitrogen (-196 ° C), followed by thawing at 60 ° C. The freezing process lasted 40-60 s. Additional lysis was performed with TRIS-SDS buffer. Nucleic acids were purified with phenol and precipitated with a triple volume of cold ethanol.
По отношению к прототипу у изобретения имеются следующие отличительные признаки. With respect to the prototype, the invention has the following distinctive features.
Культивирование биомассы проводили с предварительным подращиванием в течение 16-17 ч с соблюдением условия герметичности колб, что обеспечивает получение максимально возможных количеств микробных клеток в логарифмической фазе роста при минимальной споруляции. The cultivation of biomass was carried out with preliminary growth for 16-17 hours under the condition of the tightness of the flasks, which ensures the receipt of the maximum possible amounts of microbial cells in the logarithmic growth phase with minimal sporulation.
В табл.1 приведены сравнительные данные по спорообразованию и выходу биомассы при различных способах культивирования. Table 1 shows comparative data on spore formation and biomass yield in various cultivation methods.
Увеличение количества лизоцима с 2 мг/г до 20-25 мг/г обеспечивает более полный лизис клеток Bac. antharacis, а соответственно повышение выхода нуклеиновых кислот. An increase in the amount of lysozyme from 2 mg / g to 20-25 mg / g provides a more complete lysis of Bac cells. antharacis, and accordingly an increase in the yield of nucleic acids.
В табл. 2 приведены сравнительные данные степени лизиса клеток и выхода нуклеиновых кислот от концентрации лизоцима по аналогу, прототипу и изобретению. In the table. 2 shows comparative data on the degree of cell lysis and the yield of nucleic acids from the concentration of lysozyme by analogue, prototype and invention.
Снижение температуры замораживания до -196oC и сокращение времени с 20-30 мин до 40-60 с способствует полноте лизиса и повышению выхода нуклеиновых кислот, что показано в табл.3.Reducing the freezing temperature to -196 o C and reducing the time from 20-30 minutes to 40-60 s contributes to the complete lysis and increase the yield of nucleic acids, as shown in table 3.
Возможность осуществления изобретения с использованием полной совокупности заявляемых признаков подтверждается примерами конкретного выполнения. The possibility of carrying out the invention using the full totality of the claimed features is confirmed by examples of specific performance.
Пример 1. В опыте использовали вакцинный штамм Bac. antharacis СТИ-1. Посев споровой взвеси производили на 2 чашки Петри с агаром Хоттингера. Выращивали в термостате при 37oC в течение 24 ч. На следующий день отбирали типичные колонии сибиреязвенного микроба и пересевали петлей в 250 мл. колбы с бульоном. Колбы закрывали ватно-марлевыми пробками и поверх них резиновыми колпачками. Последние использовали для создания повышенного содержания CO2 в колбах, так как бикарбонат ингибирует процесс спорообразования и стимулирует чувствительность культур Bac. antharacis к лизоциму (Chatterjee B.R. Williams R. P. j. Bact. 1985. vol. 89 p.1128-1133). Колбы помещали в термостатированную качалку на 8 ч при 37oC. Через 6 ч делали контрольные мазки. Споровые формы сибиреязвенного микроба отсутствовали. Затем производили пересев 20 мл бульонной культуры в 750 мл колбы с 200 мл бульона и помещали в термокачалку на 9 ч при 37oC. Вновь использовали резиновые колпачки. Затем культуру центрифугировали и полученную биомассу трижды отмывали от среды забуференным физ. раствором. Вес влажной биомассы 12г. Ее переносили в пластмассовый центрифужный стаканчик и добавляли 240 мг лизоцима (20 мг/г) и 12 мл солевого ЭДГА (1 мд/г). Содержимое стаканчика тщательно перемешивали и оставляли в термостате на 20 мин при 37oC. Затем суспензию замораживали в жидком азоте (-196oC), а затем оттаивали в ультратермостате при 60oC в течение 7-10 мин. Эту операцию повторяли 3 раза. После последнего оттаивания добавляли ТРИС-СДС-буфер в количестве 96 мл (6 мл/г), тщательно перемешивали и оставляли в термостате на 20 мин при 37oC. Затем добавляли 120 мл свежоперегнанного фенола pH 9,0 и встряхивали на холоду 30 мин. Суспензию переносили в стеклянный центрифужный стаканчик и разделяли на два слоя на центрифуге при 5000 об/мин. Верхний слой отсасывали в стеклянный цилиндр. Объем жидкости составил 90 мл. Осторожно добавляли 270 мл холодного этанола (тройной объем) и перемешивали. Полученный нитевидный осадок извлекали накручиванием на стеклянную палочку и переносили в центрифужный стаканчик. Осадок 3 раза сушили спиртом, 3 раза смесью Никифорова (спирт + эфир) и 3 раза эфиром. Вес полученного сухого порошка составил 11,4 мг. Сухую смесь нуклеиновых кислот запаивали в ампулы и оставляли для дальнейшего исследования.Example 1. In the experiment used a vaccine strain of Bac. antharacis STI-1. Sowing spore suspension was performed on 2 Petri dishes with Hottinger agar. They were grown in an incubator at 37 ° C for 24 hours. The next day, typical colonies of anthrax microbe were selected and passaged in a loop of 250 ml. flasks with broth. The flasks were closed with cotton-gauze plugs and rubber caps on top of them. The latter were used to create an increased CO 2 content in the flasks, since bicarbonate inhibits spore formation and stimulates the sensitivity of Bac cultures. antharacis to lysozyme (Chatterjee BR Williams RP j. Bact. 1985. vol. 89 p.1128-1133). The flasks were placed in a temperature-controlled shaker for 8 hours at 37 ° C. After 6 hours, control smears were made. Spore forms of anthrax microbe were absent. Then, 20 ml of broth culture was reseeded in a 750 ml flask with 200 ml of broth and placed in a heat shaker for 9 hours at 37 ° C. Again, rubber caps were used. Then the culture was centrifuged and the resulting biomass was washed three times from the medium with buffered nat. solution. The weight of wet biomass is 12 g. It was transferred to a plastic centrifuge cup and 240 mg of lysozyme (20 mg / g) and 12 ml of saline EDHA (1 ppm / g) were added. The contents of the cup were thoroughly mixed and left in a thermostat for 20 minutes at 37 ° C. Then, the suspension was frozen in liquid nitrogen (-196 ° C), and then thawed in an ultra-temperature bath at 60 ° C for 7-10 minutes. This operation was repeated 3 times. After the last thawing, TRIS-SDS buffer was added in an amount of 96 ml (6 ml / g), mixed thoroughly and left in a thermostat for 20 min at 37 ° C. Then 120 ml of freshly distilled phenol, pH 9.0, were added and shaken in the cold for 30 min. . The suspension was transferred to a glass centrifuge cup and divided into two layers in a centrifuge at 5000 rpm. The top layer was aspirated into a glass cylinder. The fluid volume was 90 ml. 270 ml of cold ethanol (triple volume) were carefully added and mixed. The obtained filamentous precipitate was removed by winding on a glass rod and transferred to a centrifuge cup. The precipitate was dried 3 times with alcohol, 3 times with a mixture of Nikiforov (alcohol + ether) and 3 times with ether. The weight of the obtained dry powder was 11.4 mg. A dry mixture of nucleic acids was sealed in ampoules and left for further research.
Выход нуклеиновых кислот составил 0,95 мг на 1 г биомассы. Контрольный высев через 30 мин после обработки лизоцимом показал отсутствие роста, т.е. полный лизис клеток. The yield of nucleic acids was 0.95 mg per 1 g of biomass. Control seeding 30 minutes after lysozyme treatment showed a lack of growth, i.e. complete cell lysis.
Пример 2. Выполняется аналогично примеру 1, за исключением того, что культивирование с предварительным подращиванием микробных клеток производили в течение 16 ч, концентрация лизоцима составила 22 мг/г биомассы и замораживание суспензии клеток проводили в течение 40 с. Выход нуклеиновых кислот также составил 0,95 мг на 1г биомассы, а контрольный высев показал отсутствие роста. Example 2. It is carried out analogously to example 1, except that the cultivation with preliminary growth of microbial cells was performed for 16 hours, the concentration of lysozyme was 22 mg / g of biomass and the suspension of the cells was frozen for 40 s. The yield of nucleic acids also amounted to 0.95 mg per 1 g of biomass, and control seeding showed a lack of growth.
Пример 3. Выполнялся аналогично примерам 1 и 2. Отличие заключалось в том, что время культивирования составляло 16,5 ч, для лизирования использовали 22 мг лизоцима на 1 г биомассы, а замораживание суспензии проводили в течение 45 с. Выход нуклеиновых кислот составил 0,95 мг/г биомассы. Отмечено отсутствие роста при контрольном высеве. Example 3. It was carried out analogously to examples 1 and 2. The difference was that the cultivation time was 16.5 hours, 22 mg of lysozyme per 1 g of biomass was used for lysis, and the suspension was frozen for 45 s. The nucleic acid yield was 0.95 mg / g biomass. There was a lack of growth during control seeding.
Как показали экспериментальные испытания, уменьшение времени культивирования ниже 16 ч не обеспечивает получения максимально возможных количеств микробных клеток, а следовательно, снижает выход готового продукта. Увеличение же этого времени приводит к образованию спор и соответственно не обеспечивает гарантированного обеззараживания Bac. anthracis. As shown by experimental tests, reducing the cultivation time below 16 hours does not provide the maximum possible amounts of microbial cells, and therefore, reduces the yield of the finished product. An increase in this time leads to the formation of spores and, accordingly, does not provide guaranteed Bac disinfection. anthracis.
Уменьшение концентрации лизоцима менее 20 мг/г биомассы не обеспечивает полноты лизиса клеток, что снижает выход готового продукта и не гарантирует обеззараживание клеток. Увеличение количества лизоцима более 25 мг/г биомассы нецелесообразно. A decrease in the lysozyme concentration of less than 20 mg / g of biomass does not ensure complete cell lysis, which reduces the yield of the finished product and does not guarantee cell disinfection. An increase in the amount of lysozyme over 25 mg / g biomass is impractical.
Заявленные интервалы времени замораживания клеточной суспензии в жидком азоте необходимы и достаточны в совокупности с остальными признаками изобретения для достижения поставленной цели. The claimed time intervals for freezing a cell suspension in liquid nitrogen are necessary and sufficient, together with the remaining features of the invention, to achieve the goal.
Таким образом, изобретение практически осуществимо, его использование позволяет осуществлять получение нуклеиновых кислот из различных спорообразующих микроорганизмов при гарантированном их обеззараживании и увеличить выход готового продукта более чем на 70% по сравнению с прототипом. Thus, the invention is practicable, its use allows the production of nucleic acids from various spore-forming microorganisms with guaranteed disinfection and increase the yield of the finished product by more than 70% compared with the prototype.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU95101495A RU2101354C1 (en) | 1995-01-31 | 1995-01-31 | Method of bacillus anthracis nucleic acid preparing |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU95101495A RU2101354C1 (en) | 1995-01-31 | 1995-01-31 | Method of bacillus anthracis nucleic acid preparing |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU95101495A RU95101495A (en) | 1997-03-20 |
RU2101354C1 true RU2101354C1 (en) | 1998-01-10 |
Family
ID=20164486
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU95101495A RU2101354C1 (en) | 1995-01-31 | 1995-01-31 | Method of bacillus anthracis nucleic acid preparing |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2101354C1 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP3464589A4 (en) * | 2016-05-31 | 2020-02-26 | DNA Genotek Inc. | A composition, system and method for removal of detergents from aqueous solutions |
US11002646B2 (en) | 2011-06-19 | 2021-05-11 | DNA Genotek, Inc. | Devices, solutions and methods for sample collection |
US11572581B2 (en) | 2002-06-07 | 2023-02-07 | DNA Genotek, Inc. | Compositions and methods for obtaining nucleic acids from sputum |
-
1995
- 1995-01-31 RU RU95101495A patent/RU2101354C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Miura K. Meth. Enzymol, 1967, р. 343. * |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US11572581B2 (en) | 2002-06-07 | 2023-02-07 | DNA Genotek, Inc. | Compositions and methods for obtaining nucleic acids from sputum |
US11002646B2 (en) | 2011-06-19 | 2021-05-11 | DNA Genotek, Inc. | Devices, solutions and methods for sample collection |
US11536632B2 (en) | 2011-06-19 | 2022-12-27 | DNA Genotek, Inc. | Biological collection system |
US11549870B2 (en) | 2011-06-19 | 2023-01-10 | DNA Genotek, Inc. | Cell preserving solution |
US11592368B2 (en) | 2011-06-19 | 2023-02-28 | DNA Genotek, Inc. | Method for collecting and preserving a biological sample |
EP3464589A4 (en) * | 2016-05-31 | 2020-02-26 | DNA Genotek Inc. | A composition, system and method for removal of detergents from aqueous solutions |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU95101495A (en) | 1997-03-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
AU2020100853A4 (en) | Proteus mirabilis phage rdp-sa-16033 and industrial production process thereof | |
CN115044505A (en) | Antibacterial lipopeptide produced by bacillus belgii and application of antibacterial lipopeptide in cosmetics and foods | |
Reilly et al. | An actinophage for Streptomyces griseus | |
RU2101354C1 (en) | Method of bacillus anthracis nucleic acid preparing | |
JPS61135583A (en) | Bacteriolytic enzyme product obtained from streptomyces bacteria, its production and strain suitable therefor | |
CN114736846B (en) | WAYNE293LVPRO cell culture medium additive for improving adenovirus production and preparation method thereof | |
RU2532227C1 (en) | Strain enterococcus mundtii producing peptide substance with antilisterial ativity | |
Jansson | Isolation of fastidious mycoplasma from human sources | |
CZ308157B6 (en) | Clostridium histolyticum strain, collagenase prepared using this strain and its use | |
JPH07246097A (en) | Method for producing trehalose | |
RU2790685C1 (en) | A new killer yeast strain saccharomyces cerevisiae | |
CN117546873B (en) | Application of extremely oriental pseudomonas in preventing and treating pepper light mottle virus | |
CN113564073B (en) | Leptospira predatory and application thereof in preparation of medicines for inhibiting methicillin-resistant staphylococcus aureus | |
RU2158302C2 (en) | Nutrient medium for bifidobacterium and lactobacterium culturing | |
Karube et al. | Bacteriolysis by immobilized enzymes | |
US4690897A (en) | Method for transformation of anaerobic microorganisms | |
CN116004750B (en) | Method for producing angustin by using erwinia persicae | |
CN113215111B (en) | Bacteriophage and medical application thereof in preventing and treating endocarditis of broiler chickens | |
Farid et al. | Production of rifamycin B and SV by free and immobilized cells of Amycolatopsis mediterranei | |
RU2384619C1 (en) | STREPTOMYCIN-RESISTANT STRAIN Bacillus sp ARCIM B-9862, PRODUCER OF EXTRACELLULAR ALKALINE RIBONUCLEASE | |
NZ221455A (en) | Microbial production of cellulose | |
SU1395676A1 (en) | Method of separating obligate anaerobic coccuses | |
CN117925405A (en) | Bdellovibrio freeze-dried powder and preparation method thereof | |
SU1123293A1 (en) | Agents for activation of growth and improvement of titer of rhizobia | |
CN116769660A (en) | Protect myxobacteria and application thereof in preparation of methicillin-resistant staphylococcus aureus biofilm removal drugs |