RU2100434C1 - Method of preparing the uniformly isotope-modified natural l-$$$-amino acids - Google Patents

Method of preparing the uniformly isotope-modified natural l-$$$-amino acids Download PDF

Info

Publication number
RU2100434C1
RU2100434C1 RU93016328A RU93016328A RU2100434C1 RU 2100434 C1 RU2100434 C1 RU 2100434C1 RU 93016328 A RU93016328 A RU 93016328A RU 93016328 A RU93016328 A RU 93016328A RU 2100434 C1 RU2100434 C1 RU 2100434C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
producer
vkpm
amino acids
modified
uniformly
Prior art date
Application number
RU93016328A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU93016328A (en
Inventor
Н.Ф. Мясоедов
О.Б. Кузнецова
М.М. Рогачева
Н.И. Жданова
М.М. Гусятинер
Л.А. Тихомирова
И.В. Савочкина
Original Assignee
Институт молекулярной генетики РАН
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт молекулярной генетики РАН filed Critical Институт молекулярной генетики РАН
Priority to RU93016328A priority Critical patent/RU2100434C1/en
Publication of RU93016328A publication Critical patent/RU93016328A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2100434C1 publication Critical patent/RU2100434C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology, organic chemistry, biochemistry. SUBSTANCE: uniformly isotope-modified natural amino acids were prepared by incubation of strains - producers of the corresponding amino acid. Firstly, cells were grown on medium with glucose and acetate as carbon sources. Then cells were separated, washed out and used for preparing a suspension on the salt medium with a single carbon source as isotope-modified acetate as sodium acetate and/or ammonium acetate modified with isotopes $$$ or $$$ and/or $$$. New compounds modified with $$$ and $$$ were obtained first. EFFECT: improved method of preparing. 5 cl, 1 tbl

Description

Изобретение относится к области биотехнологии и органической химии, к способам получения изотопомодифицированных природных соединений, а именно: L-α-аминокислот, и может найти применение в экспериментальной биологии, медицине, ветеринарии, сельском хозяйстве. The invention relates to the field of biotechnology and organic chemistry, to methods for producing isotopically modified natural compounds, namely: L-α-amino acids, and may find application in experimental biology, medicine, veterinary medicine, and agriculture.

Известен способ получения равномерно изотопомодифицированных природных L-a-аминокислот путем инкубации клеток микроорганизмов на среде, содержащей единственный источник углерода в виде изотопомодифицированных солей уксусной кислоты с последующим выделением целевого продукта. В качестве изотопомодифицированной соли в данном известном способе используют 14C ацетат натрия. Клетки микроорганизма Bacillus pumilus при росте в присутствии данного источника углерода включают 14C в вещество своего тела. После завершения инкубации белок клеток гидролизуют и из гидролизата выделяют целевые продукты равномерные изотопомодифицированные природные L-a-аминокислоты.A known method for producing uniformly isotopically modified natural La-amino acids by incubating microorganism cells on a medium containing a single carbon source in the form of isotopodified salts of acetic acid with subsequent isolation of the target product. As an isotopically modified salt in this known method, 14 C sodium acetate is used. Cells of the microorganism Bacillus pumilus, when grown in the presence of this carbon source, incorporate 14 C into their body matter. After the incubation is completed, the cell protein is hydrolyzed and the target products are isolated and homogeneous isotopically modified natural La amino acids are isolated from the hydrolyzate.

Недостатком известного способа является сложная процедура разделения гидролизата белка клеток микроорганизма на индивидуальные изотопомодифицированные L-a-аминокислоты. Кроме того, данным известным способом получают L-a-аминокислоты, модифицированные только изотопом 14C. Последнее время возрос интерес к природным соединениям, в том числе, к аминокислотам, меченым стабильным изотопом 13C. Но для работы с ними такие соединения требуются в больших количествах, недоступных для получения их данным известным способом. Большая часть природных L-a-аминокислот, меченых стабильным изотопом 13C, в настоящее время еще не получена и не описана. Не описаны и природные L-a-аминокислоты, которые равномерно модифицированы двумя изотопами: 14C и 15N или 13C и 15N.The disadvantage of this method is the complicated procedure for separating the hydrolyzate of the protein of the cells of the microorganism into individual isotopically modified La-amino acids. In addition, La-amino acids modified only with the 14 C isotope are obtained by this known method. Recently, interest in natural compounds, including amino acids labeled with the stable 13 C isotope, has increased. But such compounds are required in large quantities to work with them. inaccessible to receive them in a known manner. Most of the natural La amino acids labeled with the stable 13 C isotope have not yet been obtained and been described. Not described and natural La-amino acids that are uniformly modified by two isotopes: 14 C and 15 N or 13 C and 15 N.

Техническим результатом, достигаемым при реализации настоящего изобретения, является получение новых соединений, равномерно изотопомодифицированных изотопом 13C или изотопами 13C и 15N, а также упрощение технологии получения природных L-a-аминокислот, равномерно модифицированных изотопом 14C или изотопами 14C и 15N.The technical result achieved by the implementation of the present invention is to obtain new compounds uniformly isotopically modified with the 13 C isotope or 13 C and 15 N isotopes, as well as simplifying the production of natural La-amino acids uniformly modified with the 14 C isotope or 14 C and 15 N isotopes.

Достигается это тем, что в способе получения равномерно изотопомодифицированных природных L-a-аминокислот путем инкубации клеток микроорганизмов на среде, содержащей единственный источник углерода в виде изотопомодифицированных солей уксусной кислоты, с последующим выделением целевого продукта отличительной особенностью является то, что используют клетки штаммов микроорганизмов продуцентов целевого продукта, которые предварительно инкубируют на среде, содержащей источники углерода в виде солей уксусной кислоты в сочетании с углеводами с последующим отделением и отмыванием полученных клеток, а по завершении инкубации на среде с равномерно изотопомодифицированными солями уксусной кислоты клетки отделяют и отбрасывают, а целевой продукт выделяют из среды. This is achieved by the fact that in the method of producing uniformly isotopically modified natural La-amino acids by incubating microorganism cells on a medium containing a single carbon source in the form of isotopodified salts of acetic acid, followed by isolation of the target product, the distinctive feature is that cells of microorganism strains of the producers of the target product are used that are pre-incubated on a medium containing carbon sources in the form of salts of acetic acid in combination with carbohydrates odes, followed by separation and washing of the obtained cells, and upon completion of incubation on a medium with uniformly isotopically modified acetic acid salts, the cells are separated and discarded, and the target product is isolated from the medium.

При этом в качестве штаммов продуцентов L-a-аминокислот используют продуцент лизина Corynebacterium glutamicum ВКПМ В-38, продуцент глутаминовой кислоты Corynebacterium glutamicum ВКПМ В-832, продуцент лейцина Brevibacterium flavum ВКПМ В-2736, продуцент изолейцина Brevibacterium flavum ВКПМ В-1570, продуцент треонина Brevibacterium flavum ВКПМ В-1280, продуцент серина Brevibacterium flavum ВКПМ В-3559, продуцент гистидина Corynebacterium glutamicum ВКПМ В-4380, причем в качестве продуцента аланина используют продуцент глутаминовой кислоты Corynebacterium glutamicum ВКПМ В-832 или продуцент гистидина Corynebacterium glutamicum ВКПМ В-4380. In this case, the strains of La-amino acid producers are the lysine producer Corynebacterium glutamicum VKPM B-38, the glutamic acid producer Corynebacterium glutamicum VKPM B-832, the producer of Leucine Brevibacterium flavum VKPM B-2736, the producer of isoleucine Breavumacterium Brevibacterium Brevibacterium Brevivacterium Breviberumium Brevibacterium Breviberumium Brevivacterium Breviverium bacteriumprevent flavum VKPM B-1280, a serine producer Brevibacterium flavum VKPM B-3559, a histidine producer of Corynebacterium glutamicum VKPM B-4380, and the producer of alanine is a producer of glutamic acid Corynebacterium glutamicum VKPM B-8iderum glutamicum VKPM Bistidum gistamidum bistum gumbistum gumbistum gumbistum

В способе в качестве солей уксусной кислоты используют ацетат натрия и/или ацетат аммония, немодифицированные или равномерно модифицированные изотопами 13C или 14C, причем ацетат аммония может быть дополнительно модифицирован изотопом 15N.In the method, sodium acetate and / or ammonium acetate, unmodified or uniformly modified with 13 C or 14 C isotopes, are used as acetic acid salts, moreover, ammonium acetate can be further modified with the 15 N isotope.

В способе выделения наряду с целевой изотопомодифицированной аминокислотой сопутствующих ей аминокислот повышается степень конверсии изотопов углерода из изотопомодифицированных солей уксусной кислоты в получаемые изотопомодифицированные аминокислоты. Для этого после пропускания надосадочной жидкости инкубационной смеси через Дауэкс и элюции раствором аммиака элюат дополнительно пропускают через Амберлит GC-50 II в медной форме, фракции аминокислот элюируют раствором аммиака и пропускают через карбоксилметилцеллюлозу в Н+ форме.In the method of isolation, along with the target isotopically modified amino acid of its accompanying amino acids, the degree of conversion of carbon isotopes from isotopically modified salts of acetic acid to the resulting isotopically modified amino acids is increased. To do this, after passing the incubation mixture supernatant through Dowex and eluting with ammonia solution, the eluate is additionally passed through Amberlite GC-50 II in copper form, the amino acid fractions are eluted with ammonia solution and passed through carboxyl methyl cellulose in H + form.

Получены новые соединения природные L-a-аминокислоты: аланин, лизин, глутаминовая кислота, лейцин, изолейцин, треонин, серин и гистидин, равномерно модифицированные изотопом 13C или изотопом 13C и 15N.New compounds of natural La amino acids were obtained: alanine, lysine, glutamic acid, leucine, isoleucine, threonine, serine and histidine, uniformly modified with the 13 C isotope or 13 C and 15 N isotope.

Пример 1. Ночную культуру клеток штаммов-продуцентов, выросшую на полной питательной среде, выращивают на солевой среде, содержащей 1% ацетата натрия, 0,2% глюкозы и минеральные соли: KH2PO4, NaCl, /NH4/2SO4 и MgSO4; среда имеет нейтральное значение pH. По мере потребления культурой иона ацетата величина pH среды повышается, в связи с чем среду периодически нейтрализуют добавлением уксусной кислоты. По достижении культурой поздней логарифмической фазы роста биомассу осаждают центрифугированием и заливают тем же объемом той же среды, но без глюкозы. При этом свежая среда содержит равномерно модифицированный ацетат натрия и/или ацетат аммония. Концентрация клеток в свежей среде оказывается высокой и поэтому в процессе инкубации полученной суспензии клеток они практически не растут, но катализируют биосинтез равномерно меченых аминокислот из равномерно меченых солей уксусной кислоты, что сопровождается повышением величины pH инкубационной смеси. Смесь периодически нейтрализуют добавлением соляной кислоты. Время инкубации 1-2,5 сут при 30-37oC в зависимости от используемого штамма.Example 1: An overnight culture of strains of cells grown in complete medium, grown on salt medium containing 1% sodium acetate, 0.2% glucose and mineral salts: KH 2 PO 4, NaCl, / NH 4/2 SO 4 and MgSO 4 ; the medium has a neutral pH value. As the culture consumes acetate ion, the pH of the medium rises, and therefore the medium is periodically neutralized by the addition of acetic acid. When the culture reaches the late logarithmic phase of growth, the biomass is precipitated by centrifugation and poured with the same volume of the same medium, but without glucose. In this case, the fresh medium contains uniformly modified sodium acetate and / or ammonium acetate. The concentration of cells in fresh medium is high and therefore, during the incubation of the resulting cell suspension, they practically do not grow, but they catalyze the biosynthesis of uniformly labeled amino acids from uniformly labeled salts of acetic acid, which is accompanied by an increase in the pH of the incubation mixture. The mixture is periodically neutralized by the addition of hydrochloric acid. The incubation time is 1-2.5 days at 30-37 o C depending on the strain used.

В тех случаях, когда клетки накапливают только одну аминокислоту, инкубационную смесь после завершения инкубации центрифугируют, надосадочную жидкость пропускают через ионообменную смолу Дауэкс и после элюции раствором аммиака выделяют из элюата целевую аминокислоту. Если используемый штамм-продуцент накапливает в инкубационной смеси не только целевую, но и сопутствующие ей иные аминокислоты, то их тоже выделяют. In cases where the cells accumulate only one amino acid, the incubation mixture is centrifuged after incubation, the supernatant is passed through a Dowex ion exchange resin, and after elution with an ammonia solution, the desired amino acid is isolated from the eluate. If the used producer strain accumulates in the incubation mixture not only the target, but also other amino acids accompanying it, then they are also isolated.

Разделение основной и сопутствующих аминокислот осуществляют с помощью лигандообменной хроматографии на карбоксильном сорбенте, заполненном ионами меди. Степень зарядки составляет 100, 70, 30% в зависимости от набора аминокислот в инкубационной среде. Таким сорбентом служит Амберлит GC-50 II (частицы размером 200-400 меш/, через него пропускают элюат аминокислот, полученный после пропускания надосадочной жидкости через Дауэкс 50 и удаления аммиака. При элюции раствором аммиака собирают фракции аминокислот в виде их медных комплексов. Удаляют медь пропусканием фракций элюата через карбоксиметилцеллюлозу в H+ форме.The separation of the basic and associated amino acids is carried out using ligand exchange chromatography on a carboxylic sorbent filled with copper ions. The degree of charge is 100, 70, 30%, depending on the set of amino acids in the incubation medium. Amberlite GC-50 II (particles with a size of 200-400 mesh /, passes through it an amino acid eluate obtained after passing the supernatant through Dowex 50 and removing ammonia. The elution with ammonia solution collects fractions of amino acids in the form of their copper complexes. Copper is removed. passing the eluate fractions through carboxymethyl cellulose in H + form.

Пример 2. Получение изотопомодифицированного лизина. Example 2. Obtaining isotopically modified lysine.

Ночную культуру клеток штамма Corynebacterium glutamicum ВКПМ В-38, продуцента лизина, засевают на среду, содержащую 0,2% глюкозы, 0,1% KH2PO4, 1% /NH4/2SO4, 0,04% MgSO4, 1,5% ацетата натрия и 0,05% NaCl и инкубируют при 30oC в течение суток. Полученные клетки отделяют центрифугированием, отмывают, заливают тем же объемом той же солевой среды, но без глюкозы, содержащей равномерно изотопомодифицированный ацетат натрия и/или ацетат аммония. Суспензию клеток инкубируют при 30oC 8 ч. Инкубационную смесь центрифугируют, надосадочную жидкость пропускают через Дауэкс 50•8 в NH + 4 -форме. Элюируют лизин 2Н раствором аммиака. Аммиак удаляют упариванием, лизин перекристаллизовывают из этилового спирта (см. таблицу).An overnight culture of cells of Corynebacterium glutamicum strain VKPM B-38 lysine producer, inoculated on a medium containing 0,2% glucose, 0,1% KH 2 PO 4, 1% / NH 4/2 SO 4, 0,04% MgSO 4 , 1.5% sodium acetate and 0.05% NaCl and incubated at 30 o C for a day. The resulting cells are separated by centrifugation, washed, poured with the same volume of the same salt medium, but without glucose containing uniformly isotopically modified sodium acetate and / or ammonium acetate. The cell suspension is incubated at 30 o C for 8 hours. The incubation mixture is centrifuged, the supernatant is passed through Dowex 50 • 8 in NH + 4 form. Elute lysine with 2N ammonia solution. Ammonia is removed by evaporation, lysine is recrystallized from ethanol (see table).

Пример 3. Получение изотопомодифицированной глутаминовой кислоты
В качестве штамма-продуцента использована культура Corynebacterium glutamicum ВКПМ В-832. При инкубации суспензии отмытых клеток в условиях по примеру 2, но в течение 16 ч наряду с глутаминовой кислотой наблюдают образование в небольших количествах аланина. Инкубационную смесь центрифугируют, надосадочную жидкость пропускают через Дауэкс 1•8 в формиатной форме. Элюируют 0,1 н. раствором муравьиной кислоты. Аланин очищают на Дауэкс 50•8 в H+-форме, элюируя 0,5 н. раствором аммиака (см. таблицу).
Example 3. Obtaining isotopically modified glutamic acid
The culture of Corynebacterium glutamicum VKPM B-832 was used as the producer strain. When incubating a suspension of washed cells under the conditions of Example 2, but for 16 hours, along with glutamic acid, the formation of small amounts of alanine is observed. The incubation mixture is centrifuged, the supernatant is passed through Dowex 1 • 8 in formate form. Elute 0.1 N. formic acid solution. Alanine is purified on a Dowex 50 • 8 in the H + form, eluting with 0.5 n. ammonia solution (see table).

Пример 4. Получение изтопомодифицировнных лейцина и изолейцина
В качестве штаммов-продуцентов используют культуры Brevibacterium flavum ВКПМ В-2736 и Brevibacterium flavum ВКПМ В-1507 соответственно. Инкубируют суспензии отмытых клеток по примеру 2 на среде с 2% изотопомодифицированного ацетата натрия в течение 1,5 сут. После пропускания надосадочной жидкости инкубационной смеси через Дауэкс 50 для выделения аминокислот используют смолу амберлит GC-50 II в медной форме со степенью зарядки медью 70% Элюент 0,2 н. раствор аммиака. После удаления аммиака из полученных фракций их пропускают через карбоксиметилцеллюлозу в H+-форме. Результаты приведены в таблице.
Example 4. Obtaining isopmodified leucine and isoleucine
As producer strains, cultures of Brevibacterium flavum VKPM B-2736 and Brevibacterium flavum VKPM B-1507, respectively, are used. The washed cell suspensions of Example 2 were incubated in a medium with 2% isotopically modified sodium acetate for 1.5 days. After passing the supernatant of the incubation mixture through Dowex 50, amberlite resin GC-50 II in copper form with a degree of charge of copper of 70% Eluent 0.2 N is used to isolate the amino acids. ammonia solution. After ammonia was removed from the obtained fractions, they were passed through carboxymethyl cellulose in the H + form. The results are shown in the table.

Пример 5. Получение изотопомодифицированного треонина
В качестве штамма-продуцента используют культуру Brevibacterium flavum ВКПМ В-1280 (суспензию отмытых клеток инкубируют по примеру 2, но на среде с 1% изотопомодифицированного ацетата натрия и 0,05% глюкозы). Кроме треонина, клетки образуют лейцин и аланин. Разделение смеси аминокислот производят на смоле Амберлит GC-50 II со 100%-ной зарядкой медью. Элюент 0,2 н. раствора аммиака (см. таблицу).
Example 5. Obtaining isotopically modified threonine
As a producer strain, a Brevibacterium flavum VKPM B-1280 culture was used (the suspension of washed cells was incubated as in Example 2, but in a medium with 1% isotopically modified sodium acetate and 0.05% glucose). In addition to threonine, cells form leucine and alanine. The separation of the mixture of amino acids is carried out on Amberlite GC-50 II resin with 100% copper charge. Eluent 0.2 N. ammonia solution (see table).

Пример 6. Получение изтопомодифицированного серина
В качестве штамма-продуцента используют культуру Brevibacterium flavum ВКПМ В-3559. Биомассу клеток выращивают по примеру 2, но в течение 2 сут (суспензию отмытых клеток инкубируют по примеру 2, но на среде с 1% изотопомодифицированного ацетата натрия и 0,05% глюкозы). Кроме серина, культура образует аланин и глутаминовую кислоту. Разделение аминокислот в соответствии с примером 5. Результаты приведены в таблице.
Example 6. Obtaining istopmodified serine
As a producer strain, a Brevibacterium flavum VKPM B-3559 culture is used. The biomass of cells was grown in accordance with Example 2, but for 2 days (the suspension of washed cells was incubated in Example 2, but on a medium with 1% isotopically modified sodium acetate and 0.05% glucose). In addition to serine, the culture forms alanine and glutamic acid. The separation of amino acids in accordance with example 5. The results are shown in the table.

Пример 7. Получение изотопомодифицированных гистидина и аланина
Использован штамм-продуцент гистидина Corynebacterium glutamicum ВКПМ В-4380, который дополнительно синтезирует аланин. Биомассу клеток получают на солевой среде с 0,1% глюкозы. Для разделения аминокислот используют Амберлит GC-50 II, заряженный медью на 30% Элюируют 0,5 н раствором аммиака. Остальные операции по примерам 1-2. Результаты приведены в таблице.
Example 7. Obtaining isotopically modified histidine and alanine
The histidine producing strain Corynebacterium glutamicum VKPM B-4380, which additionally synthesizes alanine, was used. Cell biomass is obtained in saline with 0.1% glucose. For the separation of amino acids, Amberlite GC-50 II, charged with copper at 30%, is eluted with a 0.5 N ammonia solution. The remaining operations in examples 1-2. The results are shown in the table.

Claims (5)

1. Способ получения равномерно изотопомодифицированных природных L-α-аминокислот путем инкубации клеток микроорганизмов на среде, содержащей единственный источник углерода в виде изотопомодифицированных солей уксусной кислоты, с последующим выделением целевого продукта, отличающийся тем, что используют клетки штаммов микроорганизмов продуцентов целевого продукта, которые предварительно инкубируют на среде, содержащей источники углерода в виде солей уксусной кислоты в сочетании с углеводами, с последующим отделением и отмыванием полученных клеток, а по завершении инкубации на среде с равномерно изотопомодифицированными солями уксусной кислоты клетки отделяют и отбрасывают, а целевой продукт выделяют из среды. 1. The method of producing uniformly isotopically modified natural L-α-amino acids by incubating microorganism cells on a medium containing a single carbon source in the form of isotopodified salts of acetic acid, followed by isolation of the target product, characterized in that cells of microorganism strains of the producers of the target product are used, which are previously incubated in a medium containing carbon sources in the form of salts of acetic acid in combination with carbohydrates, followed by separation and washing according to irradiated cells, and upon completion of incubation on a medium with uniformly isotopically modified acetic acid salts, the cells are separated and discarded, and the target product is isolated from the medium. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве штаммов продуцентов используют продуцент лизина Corynebacterium glutamicum ВКПМ В-38, продуцент глутаминовой кислоты Corynebacterium glutamicum ВКМП В-832, продуцент лейцина Brevibacterium flavum ВКПМ В-2736, продуцент изолейцина Brevibacterium flavum ВКПМ В-1507, продуцент треонина Brevibacterium flavum ВКПМ В-1280, продуцент серина Brevibacterium flavum ВКПМ В-3559, продуцент гистидина Corynebacterium glutamicum ВКПМ В-4380, причем в качестве продуцента аланина используют продуцент глутаминовой кислоты Corynebacterium glutamicum ВКПМ В-832 или продуцент гистидина Corynebacterium glutamicum ВКПМ В-4380. 2. The method according to claim 1, characterized in that the producer strains use the lysine producer Corynebacterium glutamicum VKPM B-38, the glutamic acid producer Corynebacterium glutamicum VKPM B-832, the producer of Brevibacterium flavum leucine VKPM B-2736, the producer of isoleucine flumvav Brev B-1507, a producer of Brevibacterium flavum threonine VKPM B-1280, a serine producer of Brevibacterium flavum VKPM B-3559, histidine producer Corynebacterium glutamicum VKPM B-4380, and a glutamic acid producer Corynebacterium 8 or glutamic acid producer Corynebumerumium glutamicum VKPM B-4380. 3. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве солей уксусной кислоты используют ацетат натрия и/или ацетат аммония, равномерно модифицированным изотопами 13С или 14С.3. The method according to claim 1, characterized in that sodium acetate and / or ammonium acetate uniformly modified with 13 C or 14 C isotopes are used as acetic acid salts. 4. Способ по п.1, отличающийся тем, что используют равномерно модифицированный изотопами 13С или 14С ацетат аммония, дополнительно модифицированный изотопом 15N.4. The method according to claim 1, characterized in that they use uniformly modified isotopes 13 C or 14 C ammonium acetate, additionally modified with the isotope 15 N. 5. Способ по п.1, отличающийся тем, что после выделения целевой изотопомодифицированной L-α-аминокислоты при необходимости дополнительно выделяют сопутствующие ей равномерно изотопомодифицированные L-α-аминокислоты, при этом целевые L-α-аминокислоты выделяют пропусканием надосадочной жидкости инкубационной смеси через Дауэкс и элюцией раствором аммиака, а сопутствующие L-α-амнокислоты выделяют дополнительным пропусканием полученного элюата через Амберлит GС-50П в медной форме, элюцией раствором аммиака и пропусканием данного элюата через карбоксиметилцеллюлозу в Н+-форме.5. The method according to claim 1, characterized in that after isolation of the target isotopically modified L-α-amino acid, if necessary, additionally uniformly isotopically modified L-α-amino acids accompanying it are further isolated, while the target L-α-amino acids are isolated by passing the incubation mixture supernatant through Dowex and elution with an ammonia solution, and the concomitant L-α-amino acids are isolated by additional passing the obtained eluate through Amberlite GS-50P in copper form, eluting with an ammonia solution and passing this eluate of carboxymethylcellulose in H + form.
RU93016328A 1993-03-31 1993-03-31 Method of preparing the uniformly isotope-modified natural l-$$$-amino acids RU2100434C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93016328A RU2100434C1 (en) 1993-03-31 1993-03-31 Method of preparing the uniformly isotope-modified natural l-$$$-amino acids

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93016328A RU2100434C1 (en) 1993-03-31 1993-03-31 Method of preparing the uniformly isotope-modified natural l-$$$-amino acids

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU93016328A RU93016328A (en) 1997-01-20
RU2100434C1 true RU2100434C1 (en) 1997-12-27

Family

ID=20139470

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU93016328A RU2100434C1 (en) 1993-03-31 1993-03-31 Method of preparing the uniformly isotope-modified natural l-$$$-amino acids

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2100434C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
FR, патент, 2128844, кл. C 07 B 23/00, 1972. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JPH07506192A (en) Compositions and methods for protein structure determination
Kornguth et al. β-Hydroxyaspartic acid: Synthesis and separation of its diastereoisomers
EP0542222B1 (en) Process for producing trans-L-hydroxyproline
RU2100434C1 (en) Method of preparing the uniformly isotope-modified natural l-$$$-amino acids
US4492757A (en) Process for preparing L-threonine
Knowles et al. [44] Preparation of 3-enolpyruvylshikimate 5-phosphate
US11814334B2 (en) Separation of basic amino acids
CA1187432A (en) Microorganism and its use for the preparation of glutathione
JP3116102B2 (en) Method for producing L-3,4-dihydroxyphenylalanine
EP0187525B1 (en) Process for producing l-serine
US2947666A (en) Amino acids and process
Kahana et al. Biosynthesis of l-[15N] aspartic acid and l-[15N] alanine by immobilized bacteria
JP3006615B2 (en) Method for producing D-β-hydroxy amino acid
US3716551A (en) Deuterated l-amino acid mixture
JPH06261743A (en) Stable isotope-labeled yeast and extract therefrom and their production
JP2001245689A (en) Method for producing halo-l-tryptophan
KR830002328B1 (en) Method for preparing L-Tryptophan by enzyme
US3689360A (en) Process for producing delta-(n-acetyl)-l-ornithine
KR800000003B1 (en) Biological process for the preparation of l-aminor-methylphosphenyl butyrate
JPH06181787A (en) Production of l-alpha-aminoadipic acid
JPS6262157B2 (en)
JPH074265B2 (en) Method for producing D-alanine by fermentation method
JPS58877B2 (en) l↓-Production method of coronaminic acid
Ishida et al. Incorporation of 14C-Labelled Glycerol and γ-Aminobutyric Acid into Vitamin B6 in a Cell-suspension of Achromobacter cycloclastes
JPH0347839B2 (en)