RU2099417C1 - Pyrazineamide-containing nutrient medium for determination of medicinal resistance of tuberculosis pathogen and their identification - Google Patents

Pyrazineamide-containing nutrient medium for determination of medicinal resistance of tuberculosis pathogen and their identification Download PDF

Info

Publication number
RU2099417C1
RU2099417C1 RU93001105A RU93001105A RU2099417C1 RU 2099417 C1 RU2099417 C1 RU 2099417C1 RU 93001105 A RU93001105 A RU 93001105A RU 93001105 A RU93001105 A RU 93001105A RU 2099417 C1 RU2099417 C1 RU 2099417C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
ammonium
sulfate
succinic acid
pyrazinamide
acid
Prior art date
Application number
RU93001105A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU93001105A (en
Inventor
В.А. Аникин
В.И. Голышевская
А.А. Корнеев
С.Г. Сафонова
Т.Д. Гришина
Original Assignee
Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза РАМН
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза РАМН filed Critical Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза РАМН
Priority to RU93001105A priority Critical patent/RU2099417C1/en
Publication of RU93001105A publication Critical patent/RU93001105A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2099417C1 publication Critical patent/RU2099417C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicinal microbiology. SUBSTANCE: nutrient medium has the following components, g: potassium dihydrogen phosphate 4.0-9.0; magnesium sulfate 0.2-0.6; sodium citrate 0.3-0.9; ferric ammonium sulfate 0.01-0.04; ferrous ammonium sulfate 0.01-0.04; aminoacetic acid 0.5-1.3; α-aminosuccinic acid 0.3-0.9; succinic acid 0.8-1.6; ammonium succinate 1.2-2.4; sodium dihydrogen phosphate 1.3-2.4; brilliant green 0.01-0.04, and also, ml: glycerol 7.0-17.0; hydrolysin 15-50; homogenized egg mass 200-500, and also: penicillin 100000-300000 U/mcl; pyrazineamide 50-200 mcg/ml, and water - up to 1 l. EFFECT: enhanced effectiveness of medium. 1 tbl

Description

Изобретение относится к области медицинской микробиологии и может быть использовано в лабораториях НИИ, системе противотуберкулезных учреждений, а также ветеринарии. The invention relates to the field of medical microbiology and can be used in the laboratories of the research institute, the system of TB facilities, as well as veterinary medicine.

Характеристика аналога. Известны среды для определения лекарственной устойчивости к пиразанамиду. Наиболее часто с целью определения лекарственной резистентности используются среды Миддлбрука 7H10 и Левенштейна-Йенсена, содержащие пиразанамид. Однако аналогов заявляемого предложения (как комплекса) нет. В научной и информационно-патентной литературе, а также в практике фтизиобактериологии не известны субстрат и способ, одинаково пригодный как для определения лекарственной резистентности к пиразанамиду, так и для идентификации микробактерий. The characteristic of the analogue. Mediums are known for determining drug resistance to pyrazanamide. Most often, Middlebrook 7H10 and Levenshtein-Jensen media containing pyrazanamide are used to determine drug resistance. However, there are no analogues of the proposed proposal (as a complex). In the scientific and information-patent literature, as well as in the practice of phthisiobacteriology, the substrate and the method are equally well known both for determining drug resistance to pyrazanamide and for identifying microbacteria.

Критика прототипа. В связи с тем, что резистентность к пиразинамиду выявляется в строго определенном диапазоне pH (5,0 5,5), вышеназванные среды необходимо подкислять до указанных значений pH. Однако при подкислении ухудшаются ростовые свойства сред. Так при субкультировании взвеси, содержащей стандартный инокулят, на плотной среде Левенштейна-Иенсена с нейтральным pH (6,8 7,2) результат читают на 14-й день. Рост на подкисленной до 5,0 5,5 среде замедляется, и результат можно прочесть лишь на 4-й 6-й неделе. Кроме того, недостатком прототипа является сложный состав, включающий дорогостоящий и дефицитные импортные ингредиенты. Дополнительными недостатками среды Левенштейна-Иенсена с низким pH являются разрывы скошенной поверхности среды, наступающие в процессе коагуляции, и чрезвычайно поздние сроки получения результатов исследования устойчивости к пиразинамиду (до 6 недель) применительно к отдельным клиническим случаям с хроническим течением туберкулеза (4). Дополнительным недостатком среды является необходимость выращивания микобактерий в газовой среде, содержащей углекислоту. Criticism of the prototype. Due to the fact that resistance to pyrazinamide is detected in a strictly defined pH range (5.0 to 5.5), the above media must be acidified to the indicated pH values. However, with acidification, the growth properties of the media deteriorate. So when subculturing a suspension containing a standard inoculum on a dense Levenshtein-Jensen medium with a neutral pH (6.8 7.2), the result is read on the 14th day. Growth in a medium acidified to 5.0 5.5 slows down, and the result can be read only at the 4th 6th week. In addition, the disadvantage of the prototype is a complex composition, including expensive and scarce imported ingredients. Additional disadvantages of the low pH Levenshtein-Jensen medium are ruptures of the sloping surface of the medium that occur during coagulation, and extremely late dates for obtaining the results of a pyrazinamide resistance study (up to 6 weeks) in relation to individual clinical cases with chronic tuberculosis (4). An additional disadvantage of the medium is the need to grow mycobacteria in a gaseous medium containing carbon dioxide.

Сущность настоящего предложения. Целью заявляемого объекта является: а) создание нового субстрата с пиразинамидом на основании отечественных доступных химиопрепаратов и препаратов; б) исключение дополнительного технологического этапа подкисления среды; в) обеспечение роста испытываемых культур микобактерий в короткие сроки; г) удешевление анализа. The essence of this proposal. The purpose of the proposed facility is: a) the creation of a new substrate with pyrazinamide based on domestic available chemotherapeutic agents and drugs; b) the exclusion of an additional technological stage of acidification of the environment; c) ensuring the growth of the tested cultures of mycobacteria in a short time; d) cheaper analysis.

Решение поставленных задач обеспечивается специально сконструированным субстратом, в который входят следующие компоненты, г на 1 л готовой среды:
Калий фосфорнокислый однозамещенный 4,0 9,0
Магний сернокислый 0,2 0,6
Натрий лимоннокислый 0,3 0,9
Железо-аммоний (III) сернокислое 0,01 0,04
Железо-аммоний (II) сернокислое 0,01 0,04
Аминоуксусная кислота 0,5 1,3
α-аминоянтарная кислота 0,3 0,9
Янтарная кислота 0,8 1,6
Аммоний янтарнокислый 1,2 2,4
Натрий фосфорнокислый однозамещенный 1,3 2,4
Бриллиантовый зеленый 0,01 0,04
Глицерин, мл 7,0 17,0
Гидролизин, мл 15,0 50,0
Гомогенизированная яичная масса, мл 200 500
Пенициллин 100000 300000
Вода Остальное
Конечная pH среды 5,4 5,6
Перед коагуляцией в среду вводят пиразинамид для обеспечения концентрации 25-50-75-100-200-400 мкг/мл.
The solution of the tasks is provided by a specially designed substrate, which includes the following components, g per 1 liter of the finished medium:
Potassium phosphate monosubstituted 4.0 9.0
Magnesium sulfate 0.2 0.6
Sodium citrate 0.3 0.9
Ammonium iron (III) sulfate 0.01 0.04
Ammonium iron (II) sulfate 0.01 0.04
Aminoacetic acid 0.5 1.3
α-amino succinic acid 0.3 0.9
Succinic acid 0.8 1.6
Ammonium succinic acid 1.2 2.4
Monosubstituted sodium phosphate 1.3 2.4
Diamond Green 0.01 0.04
Glycerin, ml 7.0 17.0
Hydrolysin, ml 15.0 50.0
Homogenized egg mass, ml 200 500
Penicillin 100000 300000
Water Else
Final pH of the medium 5.4 5.6
Before coagulation, pyrazinamide is introduced into the medium to provide a concentration of 25-50-75-100-200-400 μg / ml.

Как видно из компонентного состава, предлагаемый субстрат состоит из доступных отечественных препаратов, а достигаемая без подтитровки pH обеспечивает те уникальные условия, при которых наиболее эффективно действует пиразинамид. Кроме того, специально подобранные новые химические соединения несут двойную функцию: способствуют формированию низкой pH и одновременно являются стимуляторами роста измененных микобактерий. Особый режим уплотнения и коагуляции сред обеспечивает требуемую консистенцию и способствует быстрому росту микобактерий. Кроме того, предлагаемый способ позволяет инкубировать микобактерии в обычных условиях, без применения CO2-инкубатора.As can be seen from the component composition, the proposed substrate consists of available domestic preparations, and the pH achieved without subtraction provides those unique conditions under which pyrazinamide acts most effectively. In addition, specially selected new chemical compounds have a dual function: they contribute to the formation of low pH and at the same time are stimulators of the growth of altered mycobacteria. A special mode of compaction and coagulation of the media provides the required consistency and promotes the rapid growth of mycobacteria. In addition, the proposed method allows incubation of mycobacteria under ordinary conditions, without the use of a CO 2 incubator.

Исследование резистентности к пиразанамиду у микобактерий, выделенных от больных, показало, что предлагаемая методика позволяет выдать в клинику результат на 10-й 14-й день. The study of resistance to pyrazanamide in mycobacteria isolated from patients showed that the proposed method allows to give the result to the clinic on the 10th 14th day.

Минимально-ингибирующая концентрация пиразинамида для большинства лабораторных штаммов: Академия, H37RV, Erdman составляет 25 мкг/мл. Чувствительными штаммами следует считать те, которые не растут на предлагаемой среде с 50 100 мкг/мл пиразинамида. Помимо определения резистентности к пиразинамиду предлагаемый способ позволяет установить тип микобактерий (человеческий либо бычий). Дифференцирующая способность сред с пиразинамидом отражена в таблице 1. The minimum inhibitory concentration of pyrazinamide for most laboratory strains: Academy, H37RV, Erdman is 25 μg / ml. Sensitive strains should be considered those that do not grow on the proposed medium with 50 to 100 μg / ml pyrazinamide. In addition to determining resistance to pyrazinamide, the proposed method allows to establish the type of mycobacteria (human or bovine). The differentiating ability of media with pyrazinamide is shown in table 1.

Пример 1. В подогретой до 80 90oC дистиллированной воде последовательно растворяют, г: калий фосфорнокислый однозамещенный 4,0; магний сернокислый 0,2; натрий лимоннокислый 0,3; железо-аммоний (II) сернокислое 0,01; железо- аммоний (Ш) сернокислое 0,01; аминоуксуная кислота 0,5; a-аминоянтарная кислота 0,3; янтарная кислота 0,8; аммоний янтарнокислый 1,2; натрий фосфорнокислый однозамещенный 1,2; бриллиантовый зеленый 0,01; глицерин 7 мл; гидролизин 15 мл; гомогенизированная яичная масса 200 мл, дистиллированная вода остальное. Солевые компоненты растворяют в указанном растворе, автоклавируют при 1 атм (121oC) в течение 25 мин, охлаждают до комнатной температуры, добавляют гомогенизированную яичную массу, раствор бриллиантового зеленого, 100000 ед. пенициллина, пиразинамид для получения рабочих концентраций 25-50-75-100-200-400 мкг/мл. Часть среды без пиразинамида используют как контроль. Коагулируют при 78oC в течение 30 мин. Стерильность сред с пиразинамидом и без него испытывается термостатированием при 37oC в течение 48 ч. Засев взвести плотностью 10 млн. микробных тел в 1 мл производится по 0,2 мл на каждую опытную пробирку и контроль. Индикация роста производится визуально, начиная с 8-го дня ежедневно.Example 1. In distilled water heated to 80 90 o C, successively dissolved, g: potassium phosphate monosubstituted 4.0; magnesium sulfate 0.2; sodium citrate 0.3; ammonium iron (II) sulfate 0.01; ammonium iron (III) sulfate 0.01; aminoacetic acid 0.5; a-amino succinic acid 0.3; succinic acid 0.8; ammonium succinic 1,2; monosubstituted sodium phosphate 1.2; diamond green 0.01; glycerin 7 ml; hydrolysin 15 ml; homogenized egg mass 200 ml, distilled water the rest. The salt components are dissolved in the indicated solution, autoclaved at 1 atm (121 ° C) for 25 minutes, cooled to room temperature, homogenized egg mass, brilliant green solution, 100,000 units are added. penicillin, pyrazinamide to obtain working concentrations of 25-50-75-100-200-400 μg / ml. Part of the medium without pyrazinamide is used as a control. Coagulate at 78 o C for 30 minutes The sterility of media with and without pyrazinamide is tested by incubation at 37 ° C for 48 hours. Sowing with a density of 10 million microbial cells in 1 ml is inoculated with 0.2 ml for each test tube and control. Indication of growth is made visually, starting from the 8th day daily.

Пример 2. В подогретой до 80 90oC дистиллированной воде последовательно растворяют, г: калий фосфорнокислый однозамещенный 9,0, магний сернокислый 0,6; натрий лимоннокислый 0,9; железо-аммоний (II) сернокислое 0,04; железо- аммоний (III) сернокислое 0,04; аминоуксусная кислота 1,3; a-аминоянтарная кислота 0,9; янтарная кислота 1,6; аммоний янтарнокислый 2,4; натрий фосфорнокислый однозамещенный 2,4; бриллиантовый зеленый 0,04; глицерин 17 мл; гидролизин 50 мл; гомогенизированная яичная масса 500 мл; пенициллин 300000 ед. дистилированная вода остальное. Солевые компоненты растворяют в указанном порядке, автоклавируют при 1 атм (121oC) в течение 25 мин, охлаждают до комнатной температуры, добавляют гомогенизированную яичную массу, раствор бриллиантового зеленого, 300000 ед. пенициллина, пиразинамид для получения рабочих концентраций 25-50-75-100-200-400 мкг/мл. Далее, как в примере 1.Example 2. In distilled water heated to 80–90 ° C., successively dissolved, g: potassium phosphate monosubstituted 9.0, magnesium sulfate 0.6; sodium citrate 0.9; ammonium iron (II) sulfate 0.04; ammonium iron (III) sulfate 0.04; aminoacetic acid 1.3; a-amino succinic acid 0.9; succinic acid 1.6; ammonium succinic acid 2.4; monosubstituted sodium phosphate 2.4; diamond green 0.04; glycerin 17 ml; hydrolysin 50 ml; homogenized egg mass of 500 ml; penicillin 300,000 units distilled water the rest. The salt components are dissolved in this order, autoclaved at 1 atm (121 o C) for 25 min, cooled to room temperature, add homogenized egg mass, a solution of brilliant green, 300,000 units. penicillin, pyrazinamide to obtain working concentrations of 25-50-75-100-200-400 μg / ml. Further, as in example 1.

Пример 3. В подогретой до 80 90oC дистиллированной воде последовательно растворяют, г: калий фосфорнокислый однозамещенный 6,5; магний сернокислый 0,4; натрий лимоннокислый 0,6; железо-амомний (II) сернокислое 0,025; железо-аммоний (III) сернокислое 0,025; аминоуксусная кислота 0,9; a-аминоянтарная кислота 0,6; янтарная кислота 1,2; аммоний янтарнокислый 1,8; натрий фосфорнокислый однозамещенный 1,8; бриллиантовый зеленый 0,025; глицерин 12 мл; гидролизин 32 мл; гомогенизированная яичная масса 350 мл; пенициллин 200000 ед. Перед коагуляцией в среду вводят пиразинамид для обеспечения концентраций 25-50-75-100-200-400 мкг/мл. Далее, как в примере 1.Example 3. In distilled water heated to 80 ° -90 ° C., successively dissolved, g: monosubstituted potassium phosphate 6.5; magnesium sulfate 0.4; sodium citrate 0.6; Ammonium iron (II) sulfate 0.025; ammonium iron (III) sulfate 0.025; aminoacetic acid 0.9; a-amino succinic acid 0.6; succinic acid 1.2; ammonium succinic acid 1.8; monosubstituted sodium phosphate 1.8; diamond green 0.025; glycerin 12 ml; hydrolysin 32 ml; homogenized egg mass 350 ml; penicillin 200,000 units Before coagulation, pyrazinamide is introduced into the medium to provide concentrations of 25-50-75-100-200-400 μg / ml. Further, as in example 1.

Технико-экономическая или иная эффективность. Предлагаемая среда состоит из доступных недефицитных ингредиентов отечественного производства. По источнику аминного азота предлагаемая среда дешевле среды Левенштейна-Иенсена в 75 раз. Предлагаемая среда имеет полуплотную консистенцию, в связи с чем расход уплотнителя (диэтические яйца) на единицу объема в 2 раза меньше, чем в среде Левенштейна-Иенсена. В целом 1 т предлагаемой среды дешевле 1 т среды Левенштейна-Иенсена приблизительно на 1000 руб. Feasibility or other efficiency. The proposed environment consists of affordable non-deficient ingredients of domestic production. According to the source of amine nitrogen, the proposed medium is 75 times cheaper than the Levenshtein-Jensen medium. The proposed medium has a semi-dense consistency, and therefore the consumption of the sealant (dietary eggs) per unit volume is 2 times less than in the Levenshtein-Jensen medium. In general, 1 ton of the proposed medium is cheaper than 1 ton of the Levenshtein-Jensen medium by approximately 1000 rubles.

Кроме того, существенная экономия затрат рабочего времени обеспечивается одноэтапной технологией приготовления среды. Использование предлагаемой среды не требует специальных условий (CO2-инкубатор), обеспечивает быстрый рост испытуемых штампов в "кислом" диапазоне pH (5,4 5,6), служит надежным тестом для типирования микобактерий.In addition, significant savings in working time are provided by a one-stage technology for preparing the medium. Using the proposed medium does not require special conditions (CO 2 incubator), provides rapid growth of test dies in the “acidic” pH range (5.4 to 5.6), and serves as a reliable test for typing mycobacteria.

Источники информации
1. Z.N. Kantos, I.E. Amadio, E.A. Catalini, M. D.C. Zonardo, Z. Dominguez, D. Cuffo, A. Zaslo, O. Zatini, I. Poggio, H. Reyes Iutierres, M.T. Vacenzuela. Pyrasinamidase activity and susceptibility to pyrazinamide in clinical isolates of Mycobacterium tuberculosis. Pyrazinamide suseptibility of M. tuberculosis.
Sources of information
1. ZN Kantos, IE Amadio, EA Catalini, MDC Zonardo, Z. Dominguez, D. Cuffo, A. Zaslo, O. Zatini, I. Poggio, H. Reyes Iutierres, MT Vacenzuela. Pyrasinamidase activity and susceptibility to pyrazinamide in clinical isolates of Mycobacterium tuberculosis. Pyrazinamide suseptibility of M. tuberculosis.

2. Slottmeier K.D. Blat R.F. and Kubica I.P. Pyrazinamide suseptibility and amidase activity of tubercle bacilli, American Review of Respiratory Desease 1967, 97, 1072. 2. Slottmeier K.D. Blat R.F. and Kubica I.P. Pyrazinamide suseptibility and amidase activity of tubercle bacilli, American Review of Respiratory Desease 1967, 97, 1072.

3. Mycobacterial culture collection US Goverment Printing Office 1980. 3. Mycobacterial culture collection US Goverment Printing Office 1980.

4. Авт. св. СССР N 1666530, C 12 N 1/20, C 12 Q 1/04, 1991. 4. Auth. St. USSR N 1666530, C 12 N 1/20, C 12 Q 1/04, 1991.

Claims (1)

Питательная среда с пиразинамидом для определения лекарственной устойчивости возбудителей туберкулеза и их идентификации, содержащая калий фосфорнокислый однозамещенный, магний сернокислый, бриллиантовый зеленый, глицерин, гомогенизированную яичную массу и воду, отличающаяся тем, что она дополнительно содержит натрий лимоннокислый, железо (III) сернокислое аммиачное, железо (II) сернокислое аммиачное, аминоуксусную кислоту, α-аминоянтарную кислоту, янтарную кислоту, аммоний янтарнокислый, натрий фосфорнокислый однозамещенный, гидролизин, пенициллин, пиразинамид при следующем количественном соотношении компонентов:
Калий фосфорнокислый однозамещенный, г 4,0 9,0
Магний сернокислый, г 0,2 0,6
Натрий лимоннокислый, г 0,3 0,9
Железо (III) сернокислое аммиачное, г 0,01 0,04
Железо (II) сернокислое аммиачное, г 0,01 0,04
Аминоуксусная кислота 0,5 1,3 г
α-аминоянтарная кислота, г 0,3 0,9
Янтарная кислота, г 0,8 1,6
Аммоний янтарнокислый, г 1,2 2,4
Натрий фосфорнокислый однозамещенный, г 1,3 2,4
Бриллиантовый зеленый, г 0,01 0,04
Глицерин, мл 7,0 17,0
Гидролизин, мл 15,0 50,0
Гомогенизированная яичная масса, мл 200 500
Пиразинамид, мкг/мл 50 200
Пенициллин, ед/мкл 100000 300000
Вода, л До 1о
Nutrient medium with pyrazinamide for determining the drug resistance of tuberculosis pathogens and their identification, containing potassium phosphate monosubstituted, magnesium sulfate, brilliant green, glycerin, homogenized egg mass and water, characterized in that it additionally contains sodium citrate, iron (III) ammonium sulfate iron (II) ammonium sulfate, aminoacetic acid, α-aminosuccinic acid, succinic acid, ammonium succinic acid, monosubstituted sodium phosphate, hydrolysis in, penicillin, pyrazinamide with the following quantitative ratio of components:
Potassium phosphate monosubstituted, g 4.0 9.0
Magnesium sulfate, g 0.2 0.6
Sodium citrate, g 0.3 0.9
Ammonium iron (III) sulfate, g 0.01 0.04
Ammonium iron (II) sulfate, g 0.01 0.04
Aminoacetic acid 0.5 1.3 g
α-amino succinic acid, g 0.3 0.9
Succinic acid, g 0.8 1.6
Ammonium succinic acid, g 1.2 2.4
Monosubstituted sodium phosphate, g 1.3 2.4
Diamond green, g 0.01 0.04
Glycerin, ml 7.0 17.0
Hydrolysin, ml 15.0 50.0
Homogenized egg mass, ml 200 500
Pyrazinamide, μg / ml 50 200
Penicillin, u / μl 100,000 300,000
Water, l Up to 1o
RU93001105A 1993-01-06 1993-01-06 Pyrazineamide-containing nutrient medium for determination of medicinal resistance of tuberculosis pathogen and their identification RU2099417C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93001105A RU2099417C1 (en) 1993-01-06 1993-01-06 Pyrazineamide-containing nutrient medium for determination of medicinal resistance of tuberculosis pathogen and their identification

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93001105A RU2099417C1 (en) 1993-01-06 1993-01-06 Pyrazineamide-containing nutrient medium for determination of medicinal resistance of tuberculosis pathogen and their identification

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU93001105A RU93001105A (en) 1996-08-20
RU2099417C1 true RU2099417C1 (en) 1997-12-20

Family

ID=20135380

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU93001105A RU2099417C1 (en) 1993-01-06 1993-01-06 Pyrazineamide-containing nutrient medium for determination of medicinal resistance of tuberculosis pathogen and their identification

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2099417C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002046360A2 (en) * 2000-11-03 2002-06-13 Vladimir Vasiljevich Vlasenko Methods for producing tuberculosis causative agent on a culture medium, culture medium for producing the tuberculosis causative agent, method for producing said medium and growth stimulator for the tuberculosis causative agent

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
SU, авторское свидетельство, N 1666530, кл. C 12 N 1/20, C 12 Q 1/14, 1991. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002046360A2 (en) * 2000-11-03 2002-06-13 Vladimir Vasiljevich Vlasenko Methods for producing tuberculosis causative agent on a culture medium, culture medium for producing the tuberculosis causative agent, method for producing said medium and growth stimulator for the tuberculosis causative agent
WO2002046360A3 (en) * 2000-11-03 2002-09-26 Vladimir Vasiljevich Vlasenko Methods for producing tuberculosis causative agent on a culture medium, culture medium for producing the tuberculosis causative agent, method for producing said medium and growth stimulator for the tuberculosis causative agent

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Tarshis et al. Lack of significant in vitro sensitivity of Mycobacterium tuberculosis to pyrazinamide on three different solid media
Middlebrook et al. Bacteriology of tuberculosis: laboratory methods
Salfinger et al. Determination of pyrazinamide MICs for Mycobacterium tuberculosis at different pHs by the radiometric method
Roberts et al. Evaluation of the BACTEC radiometric method for recovery of mycobacteria and drug susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis from acid-fast smear-positive specimens
Butler et al. Susceptibility of Mycobacterium tuberculosis to pyrazinamide and its relationship to pyrazinamidase activity
JP2831474B2 (en) Salmonella identification method and culture medium
White et al. Antimicrobial resistance: standardisation and harmonisation of laboratory methodologies for the detection and quantification of antimicrobial resistance
Phillips Identification of Pseudomonas aeruginosa in the clinical laboratory
Heifets et al. Capreomycin is active against non-replicating M. tuberculosis
Milner The differentiation of Enterobacteriaceae infecting the urinary tract: A study in male paraplegics
RU2099417C1 (en) Pyrazineamide-containing nutrient medium for determination of medicinal resistance of tuberculosis pathogen and their identification
BAKER et al. A riboflavin assay suitable for clinical use and nutritional surveys
Weisberger et al. Nutritional requirements for an oral strain of Lactobacillus acidophilus
CN100372941C (en) Quick tubercle myco-bacillus culture medium
Baker et al. Estimation of folic acid with a thermophilic bacillus.
Thomas et al. Bacteremic epididymo-orchitis due to Hemophilus influenzae type B
Hardie et al. Transferrin-binding ability of invasive and commensal isolates of Haemophilus spp.
JPH0526478B2 (en)
Fusillo et al. Qualitative estimation of staphylococcal deoxyribonuclease
Wolf et al. A test for bacterial alkaline phosphatase: use in rapid identification of Serratia organisms
Wolf et al. A new test to differentiate Serratia from Enterobacter
Lorian et al. Quantitative bacteriological analysis of sputum as a test of antibiotic efficacy
McCarthy Ammonium ion requirement for the cell cycle of Mycobacterium avium
RU2099425C1 (en) Method of assay of tuberculosis mycobacterium drug resistance
Liu et al. Clinical Diagnosis of Bacterial Negative Pulmonary Tuberculosis by Microscopic Observation of Drug Sensitivity.