RU2092839C1 - Method for differential diagnosis of toxemias and septicemia cases - Google Patents

Method for differential diagnosis of toxemias and septicemia cases Download PDF

Info

Publication number
RU2092839C1
RU2092839C1 SU5029746A RU2092839C1 RU 2092839 C1 RU2092839 C1 RU 2092839C1 SU 5029746 A SU5029746 A SU 5029746A RU 2092839 C1 RU2092839 C1 RU 2092839C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
septicemia
forms
smears
saturated
immature
Prior art date
Application number
Other languages
Russian (ru)
Inventor
М.М. Бакуев
А.М. Шахназаров
Original Assignee
Дагестанский медицинский институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Дагестанский медицинский институт filed Critical Дагестанский медицинский институт
Priority to SU5029746 priority Critical patent/RU2092839C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2092839C1 publication Critical patent/RU2092839C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine; diagnostics of infectious diseases. SUBSTANCE: patient's leucoconcentrate smear is analyzed by subjecting it to myeloperoxidase reaction. Purpose of analysis is to detect in smears characteristics forms of cells. In case of detecting in smears paraleucoblast forms, immature cells of myeloid series saturated with ferment-containing granules, and neutrophils having definitely marked polymorphism in terms of their size, diagnostician must recognize in third picture specific feature of septicemic sepsis. In presence in inflammation focus without septicemia, immature forms are usually associated with degranulated cells. EFFECT: method makes it possible to draw clear-cut boundary between detected septicemia and TOXEMIAS syndromes, to detect their combinations and to diagnose bacteriemia case during first 1-3 days after contracting disease. 2 cl, 3 dwg

Description

Изобретение относится к медицине, а именно, к диагностике инфекционно-воспалительных заболеваний. The invention relates to medicine, namely to the diagnosis of infectious and inflammatory diseases.

В клинической практике о наличии синдрома токсемии судят по комплексу субъективных (головные боли, головокружение, слабость, недомогание, потливость), а также объективных (повышение СОЭ, количественные и качественные сдвиги лейкоцитарной формулы, а также белков плазмы) симптомов. В то же время известно, что эти критерии не являются строго специфичными только для токсемии; их определенные сочетания имеют место и при септицемии. In clinical practice, the presence of toxemia syndrome is judged by a complex of subjective (headaches, dizziness, weakness, malaise, sweating), as well as objective (increased ESR, quantitative and qualitative changes in the leukocyte formula, as well as plasma proteins) symptoms. At the same time, it is known that these criteria are not strictly specific only for toxemia; certain combinations thereof also occur with septicemia.

С целью диагностики септицемии в настоящее время используются бактериологические методы с использованием ряда сред: по Хью-Лейфсону; Гисса (для идентификации стафилококка), по Аронс Р.М. Колкер И.И. (для идентификации синегнойной палочки) и др. In order to diagnose septicemia, bacteriological methods are currently being used using a number of media: according to Hugh-Leifson; Gissa (for identification of staphylococcus), by Arons R.M. Kolker I.I. (for identification of Pseudomonas aeruginosa), etc.

В качестве прототипа взят бактериологический метод с использованием среды Хью-Лейфсона (В. С. Матковский и др. Инфекционные болезни. Л. 1977, с. 108-112). The bacteriological method using the Hugh-Leifson medium (V. S. Matkovsky et al. Infectious diseases. L. 1977, pp. 108-112) was taken as a prototype.

Состав среды: пептон 0,2% NaCl 0,5% K2HPO4 0,03% глюкоза 1% агар 0,3% бромтимол синий (индикатор) 0,003% Готовую среду разливают по 5 мл в пробирки. Непосредственно перед посевом пробирки со средой помещают на 15 мин в кипящую водяную баню для удаления кислорода. Суточную агаровую культуру исследуемого штамма сеют петлей в столбик среды уколом до дна пробирки, затем поверхность агара заливают стерильным вазелиновым маслом для создания анаэробных условий. Посев инкубируют при 37oC в течение 5 суток, ежедневно регистрируя результаты. Реакцию расценивают как положительную если не менее 2/3 столбика среды окрашивается в желтый цвет.Composition of the medium: peptone 0.2% NaCl 0.5% K 2 HPO 4 0.03% glucose 1% agar 0.3% bromothymol blue (indicator) 0.003% The prepared medium is poured into 5 ml tubes. Immediately before inoculation, tubes of medium are placed for 15 minutes in a boiling water bath to remove oxygen. The daily agar culture of the studied strain is sown in a loop in a column of medium by injection to the bottom of the tube, then the surface of the agar is poured with sterile liquid paraffin to create anaerobic conditions. Inoculation is incubated at 37 o C for 5 days, daily recording results. The reaction is regarded as positive if at least 2/3 of the medium is colored yellow.

Однако методы посева крови на стерильность используются в клиниках относительно редко в виду их технической сложности и длительности времени проведения. Следует также отметить, что бактериологический анализ обнаруживает наличие микробов в крови лишь в 10-18% случаев сепсиса (А.Д.Островский, А.С. Воробьев, 1985). Этот процент несколько возрастает при многократных исследованиях. И если к этому добавить известный факт, что даже при тяжелых формах сепсиса не всегда удается выделить возбудителя вследствие кратковременности бактеримии, то следует согласиться с мнением отрицательный результат бактериологического исследования не является достаточным основанием для исключения диагноза "сепсис". However, sterile blood culture methods are rarely used in clinics due to their technical complexity and length of time. It should also be noted that bacteriological analysis reveals the presence of microbes in the blood only in 10-18% of cases of sepsis (A.D. Ostrovsky, A.S. Vorobyov, 1985). This percentage increases slightly with repeated studies. And if we add to this the well-known fact that even with severe forms of sepsis, it is not always possible to isolate the pathogen due to the short duration of bacteremia, then a negative bacteriological test result should not be accepted as a sufficient reason to exclude the diagnosis of sepsis.

Целью настоящего изобретения является повышение достоверности диагностики токсемии и септицемии, а также их сочетание у детей. The aim of the present invention is to increase the reliability of the diagnosis of toxemia and septicemia, as well as their combination in children.

Предлагаемый способ основан на выявление в мазках лейкоконцентрата при постановке реакции на миелопероксидазу характерных клеточных форм:
при токсемии сочетание дегранулированных нейтрофилов с незрелыми формами (при- и миелоцитами, насыщенными пероксидазосодержащими гранулами)(ПО-гранулами).
The proposed method is based on the detection of smear of leukoconcentrate during the formulation of the response to myeloperoxidase characteristic cell forms:
in toxemia, a combination of degranulated neutrophils with immature forms (pri- and myelocytes saturated with peroxidase-containing granules) (PO granules).

при септицемии сочетание атипичных бластных клеток (паралейкобластов) миелоидного ряда с незрелыми формами, насыщенными ПО-гранулами при отсутствии дегранулированных нейтрофилов. in septicemia, a combination of atypical blast cells (paralukoblasts) of the myeloid series with immature forms saturated with PO granules in the absence of degranulated neutrophils.

при комбинации токсемии и септицемии сочетание признаков, характерных для первых двух вариантов, т.е. наличие в мазках дегранулированных клеток, паралейкобластов и незрелых форм нейтрофильного ряда, чрезмерно насыщенных ПО-гранулами. with a combination of toxemia and septicemia, a combination of signs characteristic of the first two options, i.e. the presence in smears of degranulated cells, paraleukoblasts and immature forms of the neutrophilic series, excessively saturated with PO granules.

Описание предлагаемого в качестве изобретения способа. Description of the proposed invention as a method.

1. Получение лейкоконцентрата. Гепаринизированная венозная кровь в количестве 3-5 мл отстаивается в течение 20-30 мин для осаждения эритроцитов. Надосадок со взвешенными лейкоцитами переносится в другую пробирку и отстаивается повторно 20-25 мин. После удаления плазмы из осадка готовят тончайшие мазки. Недопустимо встряхивание, центрифугирование или применение веществ, ускоряющих осаждение эритроцитов. 1. Obtaining leukoconcentrate. Heparinized venous blood in an amount of 3-5 ml settles for 20-30 minutes to precipitate red blood cells. The supernatant with suspended leukocytes is transferred to another tube and re-sedimented for 20-25 minutes. After removing the plasma from the precipitate, the thinnest smears are prepared. Shaking, centrifugation or the use of substances that accelerate the deposition of red blood cells is unacceptable.

2. Активность миелопероксидазы в мазках лейкоконцентрата выявляется усовершенствованным бензидиновым методом: тонкие мазки из лейкомассы высушивают в течение не менее чем 40-60 мин и фиксируют в свежеприготовленном спирт-формоле (1: 9). После промывки проточной водой мазки инкубируют в среде, содержащей 2,5 мл насыщенного при комнатной температуре раствора бензидина в трис-буфере (pH 7,2), 2,5 мл дистиллированной воды и 1 мл 0,03% раствора перекиси водорода в течение 5 мин. Насыщенный раствор бензидина в трис-буфере готовится следующим образом: к 90 мл трис-буфера, подогретом до 70oC, добавляют 90 мг бензидина и тщательно смешивают в течение 5-10 мин. Далее после фильтрации через ватный фильтр раствору дают остыть до комнатной температуры. При этом на дно пробирки оседают кристаллы бензидина, что является показателем насыщенности раствора. Использование такого раствора мы считаем существенным как для стандартизации концентрации субстрата, так и для последующего получения стабильных результатов. Раствор стоек в течение 2-3 месяцев при хранении в темном месте.2. The activity of myeloperoxidase in smears of the leukoconcentrate is detected by the improved benzidine method: thin smears from leukomass are dried for at least 40-60 minutes and fixed in freshly prepared alcohol-formol (1: 9). After washing with running water, the smears are incubated in a medium containing 2.5 ml of a solution of benzidine saturated in room temperature in Tris buffer (pH 7.2), 2.5 ml of distilled water and 1 ml of a 0.03% hydrogen peroxide solution for 5 min A saturated solution of benzidine in Tris buffer is prepared as follows: 90 mg of benzidine is added to 90 ml of Tris buffer heated to 70 ° C and mixed thoroughly for 5-10 minutes. Then, after filtration through a cotton filter, the solution was allowed to cool to room temperature. At the same time, benzidine crystals settle to the bottom of the tube, which is an indicator of the saturation of the solution. We consider the use of such a solution to be essential both for standardizing the concentration of the substrate and for the subsequent obtaining of stable results. The solution is resistant for 2-3 months when stored in a dark place.

Докрашивание ядер проводят гематоксилином Эрлиха. Для этого к 10 мл дистиллированной воды добавляют 10 капель гематоксилина и после фильтрации через бумажный фильтр наносят несколько капель на 2-3 мин. При этом достигается и фоновое докрашивание цитоплазмы, что существенно для характера распределения гранул в клетках. The nuclei are stained with Ehrlich hematoxylin. For this, 10 drops of hematoxylin are added to 10 ml of distilled water, and after filtering through a paper filter, a few drops are applied for 2-3 minutes. At the same time, background staining of the cytoplasm is achieved, which is essential for the nature of the distribution of granules in the cells.

Примеры конкретного выполнения способа:
1. Больной ребенок А. 4 года (и.б. N 2694) поступил в соматическое отделение детской многопрофильной больницы с диагнозом: острая пневмония. Болен две недели, началось заболевание с кашля, одышки, высокой температуры (38,8oC).
Examples of specific performance of the method:
1. A sick child A., 4 years old (IB No. 2694), was admitted to the somatic department of a multidisciplinary children's hospital with a diagnosis of acute pneumonia. Sick for two weeks, the disease began with cough, shortness of breath, high fever (38.8 o C).

Объективно: правая половина грудной клетки несколько отстает в акте дыхания. Перкуторно справа ниже угла лопатки отмечается притупление. Аускультативно там же звучные крепитирующие хрипы. Анализ крови: Нв 72 Ед, ЦП 0,9, СОЭ 17 мм/час, Л 4600. Objectively: the right half of the chest lags somewhat in the act of breathing. Percussion on the right below the angle of the scapula is blunted. Auscultatory, there are sonorous crepitating wheezing. Blood test: HB 72 units, CP 0.9, ESR 17 mm / h, L 4600.

На рентгенограмме средняя и нижняя доли левого легкого затемнены. Клинический диагноз: полисегментарная пневмония, среднетяжелой формы. Посев крови на стерильность, проведенный дважды, рост микробов не дал. On the radiograph, the middle and lower lobes of the left lung are darkened. Clinical diagnosis: polysegmental pneumonia, moderate form. Sowing blood for sterility, carried out twice, the growth of microbes did not give.

При исследовании описанным способом выявлено следующее:
Более 60% нейтрофилов имеют признаки дегрануляции выраженная изреженность гранул особенно на периферии клеток, неравномерность их расположения в средних отделах цитоплазмы. В мазках единичные незрелые формы (по- и миелобласты) насыщенные ПО-гранулами (фиг. 1). Картина характерна для токсемии. Даны рекомендации.
When studying the described method revealed the following:
More than 60% of neutrophils have signs of degranulation, pronounced thinning of the granules, especially on the periphery of the cells, uneven location in the middle sections of the cytoplasm. In smears, single immature forms (po and myeloblasts) saturated with PO granules (Fig. 1). The picture is characteristic of toxemia. Recommendations are given.

2. Ребенок Гусейнов М. 6 мес. (и.б. N 6350(527)) поступил в грудное отделение детской многопрофильной больницы г. Махачкалы. С 3-х месячного возраста у ребенка периодически повышалась температура до 38-39oC. Пупочная рана долго не заживала. Через месяц после начала заболевания на коже появились везикуло-пустулезные высыпания с жидким содержимым. Состояние ребенка при поступлении тяжелое беспокойный, капризный, плохо берет грудь. Умеренный цианоз. В легких везикулярное дыхание. Печень увеличена на 3 см. Гепатолиенальный синдром.2. Child Huseynov M. 6 months. (I.B. N 6350 (527)) was admitted to the thoracic department of the children's multidisciplinary hospital in Makhachkala. From 3 months of age, the child's temperature rose periodically to 38-39 o C. The umbilical wound did not heal for a long time. A month after the onset of the disease, vesicle-pustular rashes with liquid contents appeared on the skin. The condition of the child upon admission is severe, restless, capricious, and takes the breast poorly. Moderate cyanosis. In the lungs, vesicular breathing. The liver is increased by 3 cm. Hepatolienal syndrome.

Анализ крови: Л 13,3•109, СОЭ 55 мм/час. Предварительный диагноз: стафилококковый сепсис? Посев крови на стерильность, проведенный на третьи сутки, рост микробов не дал.Blood test: L 13.3 • 10 9 , ESR 55 mm / hour. Preliminary diagnosis: staphylococcal sepsis? Sowing blood for sterility, carried out on the third day, the growth of microbes did not give.

При исследовании описанным способом выявлено следующее: большинство сегментоядерных нейтрофилов имеет высокую и умеренную активность, отсутствуют признаки их дегрануляции. На мазках не мало (2%) атипичных бластных клеток-паралейкобластов слегка сегментированных ядром и следами диффузной или гранулярной активности (фиг.2). Указанные формы чередуются с незрелыми клетками миелоидного ряда (промиелоциты и миелоциты), насыщенные пероксидазосодержащими гранулами. Заметный полиморфизм нейтрофилов по размерам. Картина характерна для септицемии. In the study using the described method, the following was revealed: most segmented neutrophils have high and moderate activity, there are no signs of their degranulation. On smears, not a few (2%) of atypical blast cells-paraleukoblasts slightly segmented by the nucleus and traces of diffuse or granular activity (figure 2). These forms alternate with immature cells of the myeloid series (promyelocytes and myelocytes), saturated with peroxidase-containing granules. Noticeable polymorphism of neutrophils in size. The picture is characteristic of septicemia.

Даны рекомендации. При повторном (через 10 сут.) бактериологический анализ высеян. Recommendations are given. At repeated (in 10 days) bacteriological analysis is sown.

3. Больной, 7 лет (и. б. N 4449) поступил в хирургическое отделение детской многопрофильной больницы с диагнозом: деструктивная пневмония. Общее состояние при поступлении тяжелое, стонет, выраженная одышка, температура - 38oC.3. A 7-year-old patient (i.p. N 4449) was admitted to the surgical department of a children's multidisciplinary hospital with a diagnosis of destructive pneumonia. The general condition at admission is severe, groans, severe shortness of breath, temperature - 38 o C.

В легких справа укорочение перкуторного звука. Аускультативно дыхание с бронхиальным оттенком. Shortening percussion sound in the lungs on the right. Auscultatory breathing with a bronchial tinge.

Рентгеноскопия органов грудной клетки: справа от VIII ребра до диафрагмы интенсивное равномерное затемнение легочного поля с горизонтальной меткой. X-ray of the chest: to the right of the VIII rib to the diaphragm intense uniform dimming of the pulmonary field with a horizontal mark.

Анализ крови: СОЭ 66 мм/час, Л 14,5•109, миел 7, ю 10, п -13, с 42.Blood test: ESR 66 mm / h, L 14.5 • 10 9 , myel 7, 10, n -13, s 42.

Посев крови на стерильность дал рост. Sowing blood for sterility gave rise.

Клинический диагноз: острая бактериальная деструкция правого легкого. Сепсис. Clinical diagnosis: acute bacterial destruction of the right lung. Sepsis.

При исследовании описанным способом выявлено: нейтрофилы с признаками дегрануляции (45% ) чередуются с незрелыми клетками (про- и миелоцитами), насыщенными ПО-гранулами (3%) и паралейкобластными формами малых размеров со слабой диффузной ферментной активностью в цитоплазме (4%) (фиг. 3). In the study using the described method, it was revealed that neutrophils with signs of degranulation (45%) alternate with immature cells (pro and myelocytes), saturated PO granules (3%), and paraleukoblastic forms of small sizes with weak diffuse enzymatic activity in the cytoplasm (4%) ( Fig. 3).

Картина характерна для токсемии и септицемии. The picture is characteristic of toxemia and septicemia.

При повторном бактериологическом анализе также высеян. Repeated bacteriological analysis is also seeded.

С целью проверки достоверности полученных на клиническом материале результатов произведены эксперименты с воспроизведением септицемии и токсемии. Сепсис у крыс получен по методу Л.Л.Шимкевича путем однократного внутримышечного введения суточной культуры, содержащей 1•105 микробных тел в 1 мл. У всех животных при бактериологическом анализе в первые 1-3 дня высеян.In order to verify the reliability of the results obtained on clinical material, experiments were performed with the reproduction of septicemia and toxemia. Sepsis in rats was obtained by the method of L. L. Shimkevich by a single intramuscular injection of a daily culture containing 1 • 10 5 microbial bodies in 1 ml. In all animals, bacteriological analysis was seeded in the first 1-3 days.

В мазках лейкоконцентрата после постановки реакции на миелопероксидазу обнаружены: паралейкобластные формы (1%) с резким полиморфизмом размеров и следами гранулярной активности, единичные незрелые формы (промиелоциты) насыщенные ПО-гранулами. Зрелые формы нейтрофилов без признаков дегрануляции. After staging the reaction to myeloperoxidase, the following smears were found in smears of leukoconcentrate: paraleukoblastic forms (1%) with sharp size polymorphism and traces of granular activity, single immature forms (promyelocytes) saturated with PO granules. Mature forms of neutrophils without signs of degranulation.

При введении микробных тел в 10% растворе CaCl2, вызывающих как правило местный некроз тканей, в мазках наряду с паралейкобластами и незрелыми формами миелоидного ряда обнаруживается большой процент (55-65%) дегранулированных сегментоядерных нейтрофилов.With the introduction of microbial bodies in a 10% CaCl 2 solution, which usually causes local tissue necrosis, a large percentage (55-65%) of degranulated segmented neutrophils are found in smears along with paralukoblasts and immature forms of the myeloid series.

Отличительные признаки от прототипа:
ставят реакцию на миелопероксидазу (а по прототипу делают посев штамма в столбик среды и инкубируют при 37oC в течение 5 сут.);
при появлении в мазках дегранулированных нейтрофилов в сочетании с незрелыми формами (про- и миелоциты), насыщенные ПО-гранулами, диагностируют токсемию;
при появлении в мазках атипичных бластных форм (паралейкобластов) с резким полиморфизмом размеров, а также форм ядер в сочетании с незрелыми клетками миелоидного ряда и нейтрофилами без признаков дегрануляции, диагностируют сепсис;
при появлении в мазках дегранулированных клеток паралейкобластов и незрелых форм нейтрофильного ряда, чрезмерно насыщенных ПО-гранулами, диагностируют токсемию и септицемию;
раствор готовят следующим образом: к 2,5 мл насыщенного при комнатной температуре раствора бензидина в трис-буфере (pH 7,2) добавляют 2,5 мл дистиллированной воды и 1 мл 0,03% раствора перекиси водорода. Для получения насыщенного раствора бензидина к 90 мл трис-буфера, подогретом до 70oC, добавляют 90 мг бензидина и тщательно смешивают. Далее после фильтрации через ватный фильтр раствору дают остыть до комнатной температуры. При этом на дно пробирки оседают кристаллы бензидина, что является показателем насыщенности раствора.
Distinctive features of the prototype:
set the reaction to myeloperoxidase (and according to the prototype, the strain is inoculated into a medium column and incubated at 37 ° C for 5 days);
when degranulated neutrophils appear in smears in combination with immature forms (pro- and myelocytes), saturated with PO granules, diagnose toxemia;
when atypical blast forms (paraleukoblasts) appear in smears with a sharp polymorphism of sizes, as well as nuclear forms in combination with immature myeloid cells and neutrophils without signs of degranulation, sepsis is diagnosed;
with the appearance in the smears of degranulated cells of paraleukoblasts and immature forms of the neutrophilic series, excessively saturated with PO granules, toxemia and septicemia are diagnosed;
the solution is prepared as follows: 2.5 ml of distilled water and 1 ml of a 0.03% hydrogen peroxide solution are added to 2.5 ml of a solution of benzidine saturated in room temperature in Tris buffer (pH 7.2). To obtain a saturated solution of benzidine, 90 mg of benzidine are added to 90 ml of Tris buffer heated to 70 ° C and mixed thoroughly. Then, after filtration through a cotton filter, the solution was allowed to cool to room temperature. At the same time, benzidine crystals settle to the bottom of the tube, which is an indicator of the saturation of the solution.

Claims (2)

1. Способ дифференциальный диагностики токсемии и септицемии, включающий исследование крови больного, отличающийся тем, что из крови больного готовят мазки лейкоконцентрата и ставят реакцию на миелопероксидазу и при наличии в мазках дегранулированных нейтрофилов (50 70%) в сочетании с незрелыми формами (про- и миелоциты), насыщенными пероксидазосодержащими гранулами (2 - 4%), диагностируют токсемию, при наличии атипичных бластных форм (парлейкобластов) с резким полиморфизмом размеров, а также форм ядер (3 5%) в сочетании с незрелыми клетками миелоидного ряда (про- и миелоциты) в количестве 1 3% и нейтрофилами без признаков дегрануляции диагностируют септицемию, а при наличии дегранулированных нейтрофилов, паралейкобластов и незрелых форм миелоидного ряда, насыщенных пероксидазосодержащими гранулами, диагностируют сочетание токсемии и септицемии. 1. A differential method for the diagnosis of toxemia and septicemia, including a study of the patient’s blood, characterized in that smears of the leukoconcentrate are prepared from the patient’s blood and a reaction is made for myeloperoxidase and in the presence of degranulated neutrophils in the smears (50–70%) in combination with immature forms (pro- and myelocytes), saturated with peroxidase-containing granules (2 - 4%), diagnose toxemia in the presence of atypical blast forms (parleycloblast) with a sharp polymorphism of sizes, as well as nuclear shapes (3 5%) in combination with immature cells oidnogo of (pro- and myelocytes) in an amount of 1 3% neutrophils and degranulation without any signs of septicemia is diagnosed, and in the presence of degranulated neutrophils and immature forms paraleykoblastov myeloid series, saturated peroksidazosoderzhaschimi granules diagnose septicemia and toxemia combination. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что раствор для постановки реакции на миелопероксидазу готовят при комнатной температуре, приливая к 2,5 мл насыщенного раствора бензидина в трис-буфере (pH 7,2) 2,5 мл дистиллированной воды и 1 мл 0,03%-ного раствора перекиси водорода, при этом насыщенный раствор бензидина получают путем смешивания подогретого до 70oС 90 мл трис-буфера с 90 мг бензидина и последующей фильтрацией его через ватный тампон.2. The method according to claim 1, characterized in that the solution for staging the reaction to myeloperoxidase is prepared at room temperature, pouring 2.5 ml of distilled water and 1 to 2.5 ml of a saturated solution of benzidine in Tris buffer (pH 7.2) and ml of a 0.03% hydrogen peroxide solution, while a saturated solution of benzidine is obtained by mixing 90 ml of Tris buffer heated to 70 ° C with 90 mg of benzidine and then filtering it through a cotton swab.
SU5029746 1991-11-11 1991-11-11 Method for differential diagnosis of toxemias and septicemia cases RU2092839C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5029746 RU2092839C1 (en) 1991-11-11 1991-11-11 Method for differential diagnosis of toxemias and septicemia cases

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5029746 RU2092839C1 (en) 1991-11-11 1991-11-11 Method for differential diagnosis of toxemias and septicemia cases

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2092839C1 true RU2092839C1 (en) 1997-10-10

Family

ID=21598088

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5029746 RU2092839C1 (en) 1991-11-11 1991-11-11 Method for differential diagnosis of toxemias and septicemia cases

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2092839C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Матковский В.С. и др. Инфекционные болезни. - Л.: 1977, с.108 - 112. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Laughter et al. Lymphoproliferative responses to antigens mediated by human pulmonary alveolar macrophages
Wilson The proportion of viable bacteria in young cultures with especial reference to the technique employed in counting
Boone et al. Quality control studies on fetal bovine serum used in tissue culture
Fernandes Queiroga Moraes et al. Main laboratory methods used for the isolation and identification of Staphylococcus spp.
Dienes et al. Transformation of bacteria into L forms by amino acids
Welch et al. Method for determining the effect of chemical antisepsis on phagocytosis
Faine et al. Rapid microbiological assay of antibiotic in blood and other body fluids
Towner et al. Biotyping of Acinetobacter calcoaceticus using the API 2ONE system
Knox et al. Bacterial tetrathionase: adaptation without demonstrable cell growth: A report to the medical research council
RU2092839C1 (en) Method for differential diagnosis of toxemias and septicemia cases
Almdahl et al. Mononuclear phagocyte thromboplastin and endotoxin in patients with secondary bacterial peritonitis
Gunn et al. Clinical evaluation of 2%-LSM medium for primary isolation and identification of staphylococci
Spijkervet et al. Colonisation index of the oral cavity: a novel technique for monitoring colonisation defence
RU2262533C2 (en) Method for assay of microorganism sensitivity to antibiotic in treatment of suppurative-inflammatory process
RU2098486C1 (en) Method of bacteremia diagnosis
Kocka et al. Rapid detection and identification of enteric bacteria from blood cultures
Devanath A bacteriological study of acute exacerbation of chronic obstructive pulmonary disease over a period of one year
KR890004808B1 (en) Stain for bacterial flagella
Whitaker et al. The fluorescent antitoxin test for the immediate diagnosis of diphtheria
Corper et al. The Question of Tubercle Bacilli in the Blood in Advanced Pulmonary Tuberculosis: A Bacteriological Study
Roberts et al. Methods for isolating tubercle bacilli
RU2027994C1 (en) Method of diagnosis of bacterial sepsis in children
RU2103368C1 (en) Nutrient medium for isolation and culturing meningococci (meningoagar)
Roback et al. Delayed incubation of blood culture bottles: Effect on recovery rate of: Streptococcus pneumoniae: and: Haemophilus influenzae: type B
Truant Evaluation of various methods used for the detection of significant bacteriuria in humans