RU2092560C1 - Способ получения биомассы - Google Patents

Способ получения биомассы Download PDF

Info

Publication number
RU2092560C1
RU2092560C1 RU94012998A RU94012998A RU2092560C1 RU 2092560 C1 RU2092560 C1 RU 2092560C1 RU 94012998 A RU94012998 A RU 94012998A RU 94012998 A RU94012998 A RU 94012998A RU 2092560 C1 RU2092560 C1 RU 2092560C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
biomass
yeast
hydroxyethyl
concentration
yield
Prior art date
Application number
RU94012998A
Other languages
English (en)
Other versions
RU94012998A (ru
Inventor
Г.Н. Максимова
А.Ю. Винаров
Т.В. Ипатова
Ю.Е. Казанцев
Н.В. Хлунова
Original Assignee
Государственный научно-исследовательский институт биосинтеза белковых веществ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственный научно-исследовательский институт биосинтеза белковых веществ filed Critical Государственный научно-исследовательский институт биосинтеза белковых веществ
Priority to RU94012998A priority Critical patent/RU2092560C1/ru
Publication of RU94012998A publication Critical patent/RU94012998A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2092560C1 publication Critical patent/RU2092560C1/ru

Links

Landscapes

  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Использование: микробиологическая промышленность, в частности выращивание микроорганизмов в присутствии химических соединений в качестве стимулятора роста. Сущность: изобретение представляет собой способ получения биомассы микроорганизмов в условиях перемешивания и аэрации в питательной среде, содержащей источники азота и углерода, необходимые минеральные соли, в качестве стимулятора роста клеток микроорганизмов используют трис-(2-оксиэтил) аммониевую соль ортохлорфеноксиуксусной кислоты, причем в ферментационную среду дополнительно вводят в качестве стимулятора роста клеток гибберсиб в количестве 1•10-12 - 1•10-8 мас.%. Введение в среду ферментации микроорганизмов композиционного биостимулятора, включающего гибберсиб и трис-(2-оксиэтил)аммониевую соль ортохлорфенилоксиуксусной кислоты позволяет увеличить выход биомассы на 8-25%. При этом существенно снижается концентрация каждого из стимуляторов по сравнению с количеством, необходимым для достижения аналогичного эффекта при их раздельной подаче, что очень важно для реализации способа в условиях крупнотоннажного производства, выявлен сверхсуммарный прирост биомассы, т.е. синергетический эффект.

Description

Изобретение относится к микробиологической промышленности, в частности к способам выращивания микроорганизмов в присутствии химических соединений в качестве стимуляторов роста.
В качестве стимуляторов роста клеток микроорганизмов используют как индивидуальные химические соединения, такие как витамины, аминокислоты, микроэлементы, поверхностно-активные вещества, пуриновые или пиримидиновые основания, так и сложные смеси, включающие ряд биологически активных веществ (БАВ) и представленные часто отходами различных биологических производств.
Использование стимуляторов роста клеток в процессе получения биомассы как при периодическом, так и при непрерывном культивировании приводит к более полной утилизации субстрата, однако их применение экономически не всегда целесообразно.
Известен способ выращивания микроорганизмов, в частности дрожжей, с использованием в качестве стимуляторов роста кротонбетаина и бутилбетаина [1] Основным недостатком этого способа является то, что действие кротонбетаина и бутилбетаина проверено только для выращивания дрожжей и лишь в периодических условиях в колбах при встряхивании при низких концентрациях биомассы. Недостатком метода является также значительный расход кротонбетаина и бутилбетаина, который составляет 0,1 мг на 1 л питательной среды.
Известен способ выращивания дрожжей в условиях аэрации на минеральных питательных средах, содержащих источник углерода, азота, фосфора и микроэлементов с использованием в качестве стимулятора роста дрожжей одной или нескольких альфа-аминокарбоновых кислот, входящих в состав натуральных полипептидов, особенно аргинина, лейцина и лизина, а также одного или нескольких витаминов группы B, особенно пантотеновой кислоты и ее солей и пиридоксина [2] Одновременное добавление 0,2 мас. к объему среды комплекса из аминокислот и витаминов (аргинина, пиридоксина и пантотеновой кислоты) или 0,25% аминокислот и 0,10% витаминов к объему среды приводит к интенсификации процесса получения биомассы дрожжей. Однако широкое применение известного способа в крупнотоннажном производстве биомассы микроорганизмов невозможно, поскольку как индивидуальные аминокислоты, так и отдельные витамины достаточно дороги, кроме того, они имеют самостоятельную пищевую ценность, а производство их сравнительно ограничено.
Известен способ выращивания дрожжей родов Pichia, Saccharomyces, Zygosacchar, Candida и Torulopsis на средах с углеводородами, спиртами или органическими кислотами, в котором в качестве источника стимулятора роста используют культуральную жидкость, полученную после выращивания нуждающихся в тиамине дрожжей (представителей родов Candida, Torulopsis, Trichosparon, Rhodotorula, Cryptococcum [3] При добавлении 0,1-10,0% такой культуральной жидкости для стимуляции роста указанных дрожжей отмечается прирост биомассы на 7-30% или увеличение выхода биомассы на 5-15% Однако для выращивания нуждающихся в тиамине дрожжей используется питательная среда, обогащенная такими витаминами, как биотин, пантотенат кальция, фолевая кислота, инозит, α-аминобензойная кислота, пиридоксин, рибофлавин, тиамин и др. После прекращения роста дрожжей клетки отделяют центрифугированием и культуральную жидкость добавляют в среду того же состава, кроме замены глюкозы на парафин (13 г/л), т.е. стимулирующий эффект указанной культуральной жидкости также проявляется в сочетании с перечисленными витаминами, что делает способ достаточно дорогим.
Описан также способ выращивания дрожжей с использованием в качестве стимулятора роста комплекса веществ, выделенных из отработанной культуральной жидкости с помощью полярного растворителя, в качестве которого используют этиловый спирт [4]
По этому способу дрожжи выращивают на питательной среде, содержащей парафин, минеральные соли, стимулятор роста, выделенный на отработанной культуральной жидкости с помощью этилового спирта. Дрожжи выращивают в колбе на качалке в течение 24 ч на водно-минеральной среде с использованием в качестве источника углерода углеводородов и в качестве стимулятора роста - дрожжевого автолизата и кубового остатка, получаемого обработкой культуральной жидкости с равным объемом этилового спирта и последующей отгонкой растворителя. Применение описанного комплекса стимуляторов позволяет повысить выход биомассы. Существенным недостатком известного способа является значительный расход автолизата дрожжей, а также использование значительных количеств спирта, который имеет самостоятельную пищевую ценность, и при этом незначительное увеличение выхода биомассы.
Ближайшим решением к предлагаемому способу получения биомассы по технической сущности и достигаемому эффекту является способ выращивания дрожжей [5] Согласно известному способу предусматривается выращивание микроорганизмов, например дрожжей Saccharomyces cerevisiae, с использованием в качестве питательной среды источника углерода и энергии и компонентов минерального питания пивного сусла. В начале выращивания м/о в культуральную среду в качестве стимулятора роста добавляют препарат гиббереллин (производства Курганского завода) в количестве 1,2•10-3 М (2,0•10-2% 200 мг/л). При этом дрожжи наиболее интенсивно размножались в первые трое суток.
Увеличение концентрации биомассы в среднем составило 20-25% Недостатком известного способа является невысокий выход биомассы, значительная длительность выращивания биомассы (до нескольких суток), высокий удельный расход стимулятора, который является индивидуальным гиббереллином, для выделения которого используется дорогостоящая очистка, в связи с чем он является достаточно дорогим препаратом, что снижает эффективность процесса в целом.
Технический результат изобретения заключается в увеличении прироста биомассы и снижении затрат сырья на ее получение.
Указанный технический результат достигается тем, что в ферментационную среду в качестве стимулятора роста клеток вводят N-трис-(2-оксиэтил)-аммониевую соль ортохлорфеноксиуксусной кислоты в количестве 1•10-11 1•10-8 мас. и гибберсиб в количестве 1•10-12 1•10-8 мас. при этом оба стимулятора вводят в процесс выращивания микроорганизмов либо синхронно, либо чередуя их подачу.
Способ осуществляется следующим образом.
Выращивание микроорганизмов проводят в непрерывных или периодических условиях при перемешивании и аэрации среды кислородсодержащим газом, например воздухом в присутствии источника азота, например фосфорнокислых или сернокислых солей аммония, хлористого аммония, раствора аммиака, источников фосфора, например фосфаты, минеральных солей калия, магния, микроэлементов - солей железа, цинка, марганца и др. В качестве микроорганизмов используют разные виды дрожжей, например рода Кандида, или различные виды бактерий.
В качестве источника углерода могут быть использованы, в частности, очищенные и неочищенные парафины, нефтяные дистилляты, природный газ, спирты, например этиловый, метиловый и др. жирные кислоты или углеводы, например гидролизаты растительного сырья.
При этом в качестве стимуляторов роста микроорганизмов в среду добавляют N-трис-(2-оксиэтил)аммониевую соль ортохлорфеноксиуксусной кислоты в количестве 1•10-11 1•10-8 мас. и дополнительно гибберсиб в количестве 1•10-12 1•10-8 мас. При этом оба стимулятора в аппарат для выращивания микроорганизмов подают либо вместе с источником углерода, либо с раствором питательных солей, в частности с раствором микроэлементов, либо в растворе технологической воды, в частности в отработанной культуральной жидкости, либо распыляют в подаваемый в аппарат воздух; при этом оба стимулятора вводят в процесс выращивания микроорганизмов одновременно, либо чередуя их подачу.
Выращивание микроорганизмов проводят при температуре 25 40oC и при pH 3,0 8,0 в зависимости от используемого микроорганизма. Непрерывный процесс выращивания микроорганизмов проводят как в одну, так и в несколько стадий.
Стимулятор N-трис-(2-оксиэтил) аммониевая соль ортохлорфеноксиуксусной кислоты является синтетическим препаратом, представляет собой белый порошок с молекулярной массой 335,8, т.пл. 89 91oC и имеет формулу
Figure 00000001

Гибберсиб представляет собой природный комплекс гиббереллинов, вырабатываемый грибами Fusarium moniliforma. Полученный из культуральной жидкости этого гриба препарат представляет собой порошок кремового оттенка, гигроскопичный, легко растворимый в воде, достаточно устойчивый при хранении в сухом состоянии (в сухом темном месте), совершенно безвредный для человека и животных (ТУ-59.05.01-81).
Способ иллюстрируется, но не ограничивается следующими примерами, которые доказывают влияние отличительных существенных признаков на достижение поставленной цели, то есть показывают взаимосвязь между выходом биомассы и количеством добавляемых в процессе выращивания веществ стимуляторов.
Пример 1. Дрожжи Candida maltosa ВСБ-899 (ЦМПМ-У-262) выращивают в колбах на качалке с объемом питательной среды 100 мл на минеральной среде следующего состава, г/л: NH4H2PO4 10; K2HPO4 10; MgSO4•7H2O 0,7; FeSO4•7H2O 0,093; ZnSO4•7H2O 0,042; MnSO4•5H2O 0,0105.
В питательную среду добавляют 1 об. очищенных жидких парафинов и стимуляторы роста: гибберсиб 1•10-9 мас. и трис-(2-оксиэтил)аммониевую соль ортохлорфенилоксиуксусной кислоты - 1•10-10 мас. Выращивание дрожжей проводят при температуре 32 - 34oC, pH 5,5; 24 ч.
В результате получают дрожжи с концентрацией биомассы 4,3 г/л. В контрольном опыте, т.е. без добавок стимуляторов, концентрация биомассы составляет 1,9 г/л. При добавлении лишь 1•10-10% трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты концентрация биомассы составляет 3,0 г/л. При добавлении лишь 1•10-9% гибберсиба концентрация биомассы составляет 2,3 г/л. Прирост биомассы при подаче лишь 1•10-9% гибберсиба составил 26,3% При подаче лишь 1•10-10% трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты 59,4% При совместной подаче двух стимуляторов прирост биомассы составляет 126,7% т.е. при совместной подаче двух стимуляторов в указанных количествах имеет место сверхсуммарный прирост биомассы.
Пример 2. Дрожжи Candida maltosa ВСБ-899 (ЦМПМ-У-262) выращивают по примеру 1. В питательную среду добавляют 1 об. очищенных жидких парафинов и стимуляторы роста: гибберсиб 1•10-10% и трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфеноксиуксусной кислоты в количестве 1•10-10% Выращивание дрожжей проводят при температуре 32 34oC, pH среды 5,5 в течение 24 ч. В результате получают дрожжи с концентрацией биомассы 4,1 г/л. В контрольном опыте, т.е. без добавок стимуляторов концентрация биомассы составляет 1,9 г/л. При добавлении лишь 1•10-10% трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты, концентрация биомассы составляет 2,4 г/л (прирост биомассы 26,3%). При добавлении лишь 1•10-10% гибберсиба концентрация биомассы составляет 2,5 г/л (прирост биомассы 31,6%). При совместной подаче двух стимуляторов прирост биомассы по сравнению с контрольным опытом составляет 117,5% т. е. при совместной подаче двух стимуляторов в указанных количествах имеет место сверхсуммарный прирост биомассы.
Пример 3. Дрожжи Candida tropicalis ВСБ-928 (ЦМПМ-У-503) выращивают по примеру 1 в течение 20 ч. В питательную среду добавляют 1 об. очищенных жидких парафинов, в качестве стимулятора роста добавляют композицию веществ - гибберсиб в количестве 1•10-10 мас. и трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты 1•10-10% Выращивание дрожжей проводят при температуре 32 34oC, pH среды 5,5 в течение 24 ч. В результате получают дрожжи с концентрацией биомассы 4,96 г/л. В контрольном опыте, т.е. без добавок стимуляторов, концентрация биомассы составляет 3,83 г/л. При добавлении лишь 1•10-10% трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты, концентрация биомассы составляет 3,91 г/л (прирост по сравнению с контролем составляет 2,3% ). При добавлении лишь 1•10-10% гибберсиба концентрация биомассы составляет 4,01 г/л (прирост по сравнению с контролем составляет 4,8% ). При совместном введении двух стимуляторов роста прирост биомассы составляет 29,6% т.е. при совместной подаче двух стимуляторов в указанных количествах имеет место сверхсуммарный прирост биомассы.
Пример 4. Дрожжи Candida multosa ВСБ-777 (ЦМПМ-У-194) выращивают по примеру 1 в течение 20 ч. В питательную среду добавляют 1 об. очищенных жидких парафинов, 1•10-8% трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты и 1•10-9% гибберсиба. Дрожжи выращивают при температуре 32 34oC, pH среды 5,5 в течение 24 ч. В результате получают дрожжи с концентрацией 5,21 г/л. В контрольном опыте, т.е. без добавок стимуляторов, концентрация биомассы составляет 2,76 г/л. При добавлении 1•10-8% трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты концентрация биомассы составляет 3,41 г/л (прирост биомассы по сравнению с контролем составляет 23%). При добавлении лишь 1•10-9% гибберсиба концентрация биомассы составляет 3,62 г/л (прирост биомассы составил 31%). При совместной подаче двух стимуляторов в указанных количествах прирост биомассы составляет 89% т.е. при этом имеет место сверхсуммарный прирост биомассы.
Пример 5. Дрожжи Candida maltosa ВСБ-899 (ЦМПМ-У-262) выращивают при периодическом режиме в аппарате, снабженном эжекционной мешалкой, работающей со скоростью 1200 об./мин, с рабочим объемом 5 л, при pH 4,0, температуре 32oC, на питательной среде следующего состава, г/л: H3PO4 (70%) 2,6; (NH4)2SO4 (20%) 8,0; KCl 1,27; MgSO4•7H2O 0,91; FeSO4•7H2O 0,174; ZnSO4•7H2O 0,038; MnSO4•7H2O 0,038; парафин 20 г/л. В качестве стимулятора добавляют трис-(2-оксиэтил)аммониевую соль ортохлорфенилоксиуксусной кислоты в количестве 1•10-7 мас. и гибберсиб в количестве 1•10-9 мас. Выращивание ведут до прекращения потребления pO2. В результате получают биомассу с концентрацией 20,85 г/л (выход биомассы составляет 104,2%). В контрольном опыте (без добавок стимуляторов) концентрация биомассы составляет 14,07 г/л (выход биомассы 70,30% ). При добавлении лишь 1•10-7 мас. трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты (контроль по прототипу) концентрация биомассы составляет 16,95 г/л (выход биомассы 80,5% увеличение на 10,2%), при добавлении лишь 1•10-9 мас. гибберсиба концентрация биомассы составляет 16,65 г/л (выход биомассы составляет 80,30%), увеличение на 10% по сравнению с контролем. При совместной подаче двух стимуляторов прирост биомассы по сравнению с контрольным опытом составляет 33,9% т.е. при совместной подаче двух стимуляторов в указанных количествах имеет место сверхсуммарный прирост биомассы.
Пример 6. Дрожжи Candida maltosa ВСБ-899 (ЦМПМ-У-262) выращивают при непрерывном режиме в аппарате, снабженном эжекционной мешалкой, работающей со скоростью 1200 об. /мин, рабочим объемом 5 л, при pH 4,0, температуре 32oC, Д 0,2 ч-1 на питательной среде по примеру 5. В питательную среду непрерывно добавляют 2,5 об. и в качестве стимулятора добавляют 1•10-11% гибберсиба и 1•10-10% трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты. При этом получают биомассу с концентрацией 18,6 г/л (выход в биомассы по парафину составляет 103,3%). В контрольном опыте (без добавок стимуляторов) концентрация биомассы составляет 14,4 г/л, выход биомассы составляет 80,0% При добавлении лишь 1•10-11% гибберсиба концентрация биомассы составляет 16,1 г/л (выход биомассы 89,9% на 9,9% больше, чем в контрольном опыте). При добавлении лишь 1•10-10% трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты концентрация биомассы составляет 15,73 г/л (выход биомассы составляет 87,3% т.е. на 7,3% больше, чем в контрольном опыте). При совместной подаче двух стимуляторов выход биомассы на 23,3% больше, чем в контрольном опыте, т.е. имеет место сверхсуммарный прирост биомассы.
Пример 7. Дрожжи Candida utilis ВСБ-651 (ЦМПМ-У-277) выращивают в непрерывном режиме в 10-метровом аппарате с рабочим объемом 15 л на минеральной среде следующего состава, г/л: (NH4)2SO4 1,5; H3PO4(70%) 1,53; KCl 0,96; MgSO4•7H2O 0,58; FeSO4•7H2O 0,116; ZnSO4•7H2O 0,052; MnSO4•5H2O 0,013. В качестве источника углерода используют 3 об. к протоку этилового спирта, а в качестве стимулятора роста добавляют смесь из 1•10-8% трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты и 1•10-9% гибберсиба. Выращивание дрожжей проводят при температуре 32 34oC при Д 0,25 ч-1. В результате получают биомассу с концентрацией биомассы 1,6 г/л (выход 67,5% ). В контрольном опыте, т.е. без добавок стимуляторов концентрация, биомассы составляет 1,2 г/л (выход 50,6%). При добавлении лишь 1•10-8% трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты концентрация биомассы составляет 1,3 г/л (выход биомассы 54,8 г/л). При добавлении лишь 1•10-9% гибберсиба концентрация биомассы составляет 1,4 г/л (выход биомассы составляет 59,1%).
Пример 8. Дрожжи Pseudomonas desmolyticum ВСБ-578 (ЦМПМ-В-513) выращивают в колбах при встряхивании на качалке на питательной среде, содержащей фосфорнокислый калий двузамещенный и фосфорнокислый аммоний однозамещенный в концентрации 3 г/л, сернокислый магний и хлористый натрий 0,2 г/л и микроэлементы: сернокислое железо, марганец, цинк в концентрации 0,006 г/л. В качестве источника углерода используют неочищенные жидкие парафины с содержанием н-алканов C13 C26 94% и ароматических углеводородов 1,5% В 100 мл питательной среды добавляют 0,5 мл парафина, а в качестве стимуляторов роста 1•10-10% гибберсиба и 1•10-9% трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты. Бактерии выращивают при температуре 32 36oC, pH среды 6,6 7,2, в течение 18 ч. Концентрация биомассы достигает 3,65 г/л, т.е. выход биомассы составляет 93,6% При выращивании этих бактерий в контрольных условиях (без добавок стимуляторов) концентрация биомассы составляет 2,18 г/л (выход биомассы 56%). При добавлении лишь 1•10-10% гибберсиба концентрация биомассы составляет 2,78 г/л (выход биомассы составляет 71,3% т.е. на 15,3% выше контрольного). При добавлении лишь 1•10-9% трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты концентрация биомассы составляет 2,65 г/л (выход биомассы составляет 67,9% т.е. на 11,9% выше контрольного). При совместной подаче стимуляторов выход биомассы превышает контрольный уровень на 37,6% т.е. при совместной подаче двух стимуляторов в указанных количествах имеет место сверхсуммарный прирост биомассы.
Пример 9. Дрожжи Candida maltosa ВСБ-899 выращивают непрерывно в промышленном ферментере с рабочим объемом 450 м3 при pH 4,0 4,2 при 32 34oC, расходе воздуха 106 м33 ч на среде с очищенным жидким парафином при расходе на 1 т дрожжей следующих компонентов, кг/т: аммофос 114, калий хлористый 5,4, магний сернокислый (эпсомит) 26, железный купорос 7, цинковый купорос 4,5, марганец сернокислый 2,5. В качестве стимулятора подают одновременно гибберсиб (50 мг/ферментер/сутки - 2,5•10-9%) и трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусную кислоту (500 мг/ферментер/сутки). Производительность ферментера составляет 42,8 т/сут, выход биомассы 110% Без подачи стимуляторов производительность ферментера составляет 34,4 т/сут, выход биомассы составляет 88,4% При подаче лишь гибберсиба производительность ферментера составляет 36,2 т/сут (выход биомассы составляет 93,0%). При подаче лишь трис-(2-оксиэтил)аммониевой соли ортохлорфенилоксиуксусной кислоты производительность ферментера составляет 35,3 т/сут, выход биомассы составляет 90,7%
Таким образом, как видно из приведенных выше примеров, введение в среду ферментации микроорганизмов композиционного биостимулятора, включающего гибберсиб и трис-(2-оксиэтил)аммониевую соль ортохлорфенилоксиуксусной кислоты, позволяет увеличивать выход биомассы на 8 25% При этом существенно снижается концентрация каждого из стимуляторов по сравнению с количеством, необходимым для достижения аналогичного эффекта при их раздельной подаче, что очень важно для реализации способа в условиях крупнотоннажного производства, выявлен сверхсуммарный прирост биомассы, т.е. синергический эффект.

Claims (1)

  1. Способ получения биомассы, включающий выращивание микроорганизмов в условиях перемешивания и аэрации на питательной среде, содержащей источники азота, углерода, необходимые минеральные соли, а также стимулятор роста клеток микроорганизмов, отличающийся тем, что в ферментационную среду в качестве стимулятора роста клеток вводят N-трис-(2-оксиэтил)аммониевую соль ортохлорфеноксиуксусной кислоты в количестве 1•10-11 - 1•10-8 мас. и гибберсиб в количестве 1•10-12 - 1•10-8 мас.
RU94012998A 1994-04-12 1994-04-12 Способ получения биомассы RU2092560C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU94012998A RU2092560C1 (ru) 1994-04-12 1994-04-12 Способ получения биомассы

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU94012998A RU2092560C1 (ru) 1994-04-12 1994-04-12 Способ получения биомассы

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU94012998A RU94012998A (ru) 1997-03-27
RU2092560C1 true RU2092560C1 (ru) 1997-10-10

Family

ID=20154652

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU94012998A RU2092560C1 (ru) 1994-04-12 1994-04-12 Способ получения биомассы

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2092560C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2001068796A3 (en) * 2000-03-15 2002-02-14 Miller Brewing Method of aerating yeast prior to pitching

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Патент Японии N 54-17026, кл. C 12 C 11/08, 1979. 2. Патент Франции N 1538957, кл. C 12 C, 1969. 3. Патент Японии N 54-19462, кл. C 12 C 11/20, 1971. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2001068796A3 (en) * 2000-03-15 2002-02-14 Miller Brewing Method of aerating yeast prior to pitching
US7563469B1 (en) 2000-03-15 2009-07-21 Millercoors Llc Method of aerating yeast prior to pitching

Also Published As

Publication number Publication date
RU94012998A (ru) 1997-03-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hosler et al. Penicillin from chemically defined media
US3713976A (en) Cultivation of micro-organisms on hydrocarbons
US3933590A (en) Method of continuously culturing yeast
US2363227A (en) Fermentation process for the production of riboflavin
RU2092560C1 (ru) Способ получения биомассы
US3474001A (en) Growing microorganisms on hydrocarbons
RU2384612C2 (ru) Способ получения биомассы дрожжей
EP1543143A2 (en) Astaxanthin production using fed-batch fermentation process by phaffia rhodozyma
FI71766B (fi) Framstaellning av etanol genom hoegeffektiv bakteriejaesning
US3620927A (en) Cultivation of micro-organisms on hydrocarbons
US4731329A (en) Ethanol production by high performance bacterial fermentation
RU2093570C1 (ru) Способ получения биомассы микроорганизмов
US3440141A (en) Production of amino acids by the fermentation of c15-c22 olefins
US4355109A (en) Microbiological production of novel biosurfactants
US3433707A (en) Method for the preparation of riboflavin
Seidel et al. Process engineering aspects of the production of cephalosporin C by Acremonium chrysogenum. Part I. Application of complex media
RU2032737C1 (ru) Способ выращивания метанокисляющих микроорганизмов
JPS6111590B2 (ru)
US4229543A (en) Process for culturing methanol-utilizing yeasts
US3414477A (en) Biosynthesis of protein from hydrocarbons using an antibiotic
US3902965A (en) Method for production of citric acid
SU357749A1 (ru) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ jBHOMACcbf
JPS6335318B2 (ru)
US3406095A (en) Process for producing l-glutamic acid by fermentation of hydrocarbons
RU328745C (ru) Способ выделени микроорганизмов