RU2092188C1 - Vaccine for specific prophylaxis of chlamydiosis in cattle - Google Patents

Vaccine for specific prophylaxis of chlamydiosis in cattle Download PDF

Info

Publication number
RU2092188C1
RU2092188C1 SU5008246A RU2092188C1 RU 2092188 C1 RU2092188 C1 RU 2092188C1 SU 5008246 A SU5008246 A SU 5008246A RU 2092188 C1 RU2092188 C1 RU 2092188C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
chlamydia
vaccine
cattle
antigen
strain
Prior art date
Application number
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Р.Х. Хамадеев
А.З. Равилов
Ф.М. Хусаинов
А.Ю. Беклешова
Original Assignee
Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт filed Critical Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт
Priority to SU5008246 priority Critical patent/RU2092188C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2092188C1 publication Critical patent/RU2092188C1/en

Links

Images

Abstract

FIELD: veterinary microbiology. SUBSTANCE: vaccine has an antigen from the strain Chlamydia psittaci-"250" (pathogen inducing abortus in cows). Antigen is inactivated with formaldehyde in the presence of glutaric dialdehyde. Pathogen is grown simultaneously in yolk and allantois envelops of chicken embryos at concentration 15-20 mcg/ml. Pathogen is adsorbed on alumino-potassium alum and emulsified in oil-lanolin mixture. EFFECT: enhanced effectiveness of vaccine, decreased morbidity and death of calves. 4 tbl

Description

Изобретение относится к ветеринарной микробиологии и может быть использовано для специфической профилактики хламидиозной инфекции крупного рогатого скота. The invention relates to veterinary microbiology and can be used for specific prophylaxis of chlamydial infection in cattle.

Хламидиоз крупного рогатого скота инфекционная болезнь, которая проявляется преимущественно абортами у коров и нетелей преждевременным рождением слабых и нежизнеспособных телят, воспалительными явлениями органов генитальной системы у коров и быков-производителей и заболеваемостью молодняка крупного рогатого скота гастроэнтеритом, пневмонией, полиартритом, менингоэнцефалитом и другими синдромами. Хламидиоз крупного рогатого скота в последние годы получил широкое распространение в животноводческих комплексах и племпредприятиях страны. Chlamydia in cattle is an infectious disease, which is manifested mainly by abortion in cows and heifers by the premature birth of weak and non-viable calves, inflammatory phenomena of the organs of the genital system in cows and bulls and the incidence of young cattle with gastroenteritis, pneumonia, polyarthritis, meningoencephalitis and other syndromes. Chlamydia in cattle in recent years has become widespread in livestock complexes and breeding enterprises of the country.

Для хламидиозной инфекции в целом характерна слабая иммунологическая реакция, тенденция к хроническому и латентному течению с сохранением возбудителя в организме даже после острого переболевания и клинического выздоровления [1]
Меры борьбы с хламидиозом крупного рогатого скота как у нас в стране, так и за рубежом до недавнего времени были основаны на применении медикоментозных средств, ветеринарно-санитарных и ограничительных мероприятий.
Chlamydial infection as a whole is characterized by a weak immunological reaction, a tendency to a chronic and latent course with preservation of the pathogen in the body even after acute illness and clinical recovery [1]
Until recently, measures to combat cattle chlamydia in our country and abroad were based on the use of medicines, veterinary-sanitary and restrictive measures.

Недостатком указанной вакцины является низкая эффективность ее для иммунизации крупного рогатого скота против хладиоза из-за существующих между штаммами хламидий антигенных различий. Известно, что существующие между штаммами хламидий антигенные различия значительно влияют на эффективность иммунизации против заболеваний, вызываемых хламидиями (Ata F.A. Storz J. 1973). The disadvantage of this vaccine is its low efficiency for immunization of cattle against chladiosis due to antigenic differences between the chlamydia strains. It is known that antigenic differences between strains of chlamydia significantly affect the effectiveness of immunization against diseases caused by chlamydia (Ata F.A. Storz J. 1973).

Наиболее близким по сущности к предлагаемому изобретению (прототип) является "Вакцина против хламидиоза сельскохозяйственных животных", содержащая в качестве антигена возбудитель хламидиозного аборта, выращенный в желточной оболочке куриных эмбрионов, инактивированный мертиолятом, а в качестве адъюванта служат раствор тригидрооксиметиламинометана и тетраметилдиамина, раствор акриламинда и метилбисакриламида, раствор персульфата аммония и раствор глутарового альдегида [2]
Состав вакцины, взятой в качестве прототипа, следующий, мл:
Антигенная жидкость из 20-40%-ной суспензии желточных мешков, зараженных хламидиями (ЭЛД50 10-6,5-7,0) 8-10
Смесь растворов тригидрооксиметиламинометана (36,3%-ного) с тетраметилдиамином (0,23%-ным) 1-2
Смесь растворов акриламида (30%-ного) и метилбисакриламидом (0,8%-ным) - 3-4
1,4%-ный раствор персульфата аммония 1-2
25% -ный раствор глутарового альдегида до конечной концентрации 0,05% - 0,038
Недостатком известной вакцины является неочищенность от компонентов желточной оболочки куриных эмбрионов исходной биомассы хламидий в качестве которой используют 20-40%-ную суспензию возбудителя хламидиозного аборта коров (штамм "250") и низкая концентрация хламидийного антигена в инактивированной вакцине и как следствие этого слабая иммуногенная активность вакцины необеспечивающая формирование длительного и напряженного иммунитета против хламидиоза крупного рогатого скота.
The closest in essence to the proposed invention (prototype) is a “vaccine against chlamydia of farm animals”, containing a chlamydial abortion causative agent grown in the yolk membrane of chicken embryos inactivated with merthiolate, and a solution of trihydrooxymethylaminomethane and tetramethyl amide amide amide amide amide amine and tetramethyldiamine methyl bisacrylamide, ammonium persulfate solution and glutaraldehyde solution [2]
The composition of the vaccine, taken as a prototype, the following, ml:
Antigenic liquid from a 20-40% suspension of yolk sacs infected with chlamydia (ELD 50 10 -6.5-7.0 ) 8-10
A mixture of solutions of trihydroxymethylaminomethane (36.3%) with tetramethyldiamine (0.23%) 1-2
A mixture of solutions of acrylamide (30%) and methylbisacrylamide (0.8%) - 3-4
1.4% solution of ammonium persulfate 1-2
25% glutaraldehyde solution to a final concentration of 0.05% - 0.038
A disadvantage of the known vaccine is the lack of purity of the components of the vitelline membrane of the chicken embryos of the original chlamydial biomass, which is used as a 20-40% suspension of the causative agent of chlamydial abortion of cows (strain "250") and a low concentration of chlamydial antigen in an inactivated vaccine and, as a result, weak immunogenic activity vaccines are not providing the formation of long-term and intense immunity against chlamydia in cattle.

Целью изобретения является разработка противохламидиозной вакцины, обеспечивающей повышение напряженности и длительности иммунитета за счет щадящей инактивации возбудителя, очистки, концентрации, адсорбции на алюмокалиевых квасцах и эмульгирования биомассы хламидий в масляно-ланолиновой смеси. The aim of the invention is the development of a chlamydia vaccine that provides increased tension and duration of immunity due to gentle inactivation of the pathogen, purification, concentration, adsorption on alum-potassium alum and emulsification of chlamydial biomass in oil-lanolin mixture.

Поставленная цель достигается тем, что возбудитель хламидиозного аборта коров (штамм "250") выращивают одновременно в желточной и хорионаллантоисной оболочках куриных эмбрионов (согласно авт.св. N 1641883 от 15 декабря 1990 г. ), биомассу хламидий инактивируют 0,2%-ным формальдегидом в присутствии 0,1% глутарового альдегида в течение 24 ч, антиген подвергают очистке и концентрированию до 30-40 мкг/мл хламидий дифференциальным центрифугированием, адсорбируют на алюмокалиевых квасцах и эмульгируют в масляно-ланолиновой смеси при следующих соотношениях компонентов мас. This goal is achieved by the fact that the causative agent of chlamydial abortion of cows (strain "250") is grown simultaneously in the vitelline and chorionallantoic membranes of chicken embryos (according to ed. St. N 1641883 of December 15, 1990), the chlamydia biomass is inactivated by 0.2% formaldehyde in the presence of 0.1% glutaraldehyde for 24 hours, the antigen is purified and concentrated to 30-40 μg / ml chlamydia by differential centrifugation, adsorbed on potassium alum and emulsified in an oil-lanolin mixture in the following ratios to mponentov wt.

Антиген из штамма Chlamydia psittaci "250" 45-50
Масло-ланолиновый адъювант 45-50
Формальдегид 0,04-0,06
Сопоставительный анализ с прототипом позволяет сделать вывод, что предлагаемая вакцина против хламидиоза крупного рогатого скота отличается от известной новым способом выращивания специфического хламидийного антигена одновременно в желточной и аллантоисной оболочках куриного эмбриона, новым ускоренным способом инактивации хламидий путем комбинированного воздействия на возбудителя формальдегидом (0,2% ) в присутствии глутарового альдегида (0,1%), очисткой биомассы от компонентов куриных эмбрионов, концентрацией до 30-40 мк/мл специфического хламидийного антигена и введением в состав вакцин новых компонентов, а именно: алюмокалиевых квасцов, минерального масла (ПЭС-3) и в качестве консерванта формальдегида. Таким образом предлагаемое техническое решение соответствует критерию "новизна". Анализ составов известных вакцин против хламидиоза сельскохозяйственных животных (авт.св. N N 826744, 690128) показал, что некоторые введенные в предлагаемом решении вещества известны, например, возбудитель хламидиозного аборта коров (штамм "250"), масляный адъювант. Однако их применение в этих препаратах в сочетании с другими компонентами не обеспечивает вакцинам такие свойства, которые они проявляют в предложенном решении, а именно: значительное усилие иммуногенных свойств и, как следствие повышение напряженности и длительности противохламидийного иммунитета у вакцинированного крупного рогатого скота. Таким образом, данный состав компонентов придает вакцине новые свойства, что позволяет сделать вывод о соответствии предлагаемого решения критерию "существенные отличия".
Antigen from Chlamydia psittaci strain "250" 45-50
Oil-lanolin adjuvant 45-50
Formaldehyde 0.04-0.06
Comparative analysis with the prototype allows us to conclude that the proposed vaccine against chlamydia in cattle differs from the known new method of growing specific chlamydial antigen simultaneously in the vitelline and allantoic membranes of the chicken embryo, a new accelerated method of inactivation of chlamydia by combined exposure of the pathogen to formaldehyde (0.2% ) in the presence of glutaraldehyde (0.1%), purification of biomass from components of chicken embryos, concentration up to 30-40 μ / ml specific chlamydial antigen and the introduction of new components into the vaccines, namely potassium alum, mineral oil (PES-3) and formaldehyde as a preservative. Thus, the proposed technical solution meets the criterion of "novelty." Analysis of the compositions of known vaccines against chlamydia of farm animals (ed. St. NN 826744, 690128) showed that some of the substances introduced in the proposed solution are known, for example, the causative agent of chlamydial abortion of cows (strain "250"), an oil adjuvant. However, their use in these preparations in combination with other components does not provide vaccines with the properties that they exhibit in the proposed solution, namely, a significant increase in immunogenic properties and, as a result, increased tension and duration of antichlamydial immunity in vaccinated cattle. Thus, this composition of the components gives the vaccine new properties, which allows us to conclude that the proposed solution meets the criterion of "significant differences".

В качестве антигена в вакцине используют штамм (Chlamydia psittaci "250" возбудитель хламидиозного аборта коров. Штамм выделен от абортированного плода коровы и депонирован в коллекции микроорганизмов Всесоюзного государственного научно-контрольного института ветеринарных препаратов под номером 5 от 3 октября 1990 г. The strain (Chlamydia psittaci "250", the causative agent of chlamydial abortion of cows, is used as an antigen in the vaccine. The strain is isolated from the aborted cow fetus and deposited in the microorganism collection of the All-Union State Scientific and Control Institute of Veterinary Medicines under number 5 of October 3, 1990).

Штамм Chlamydia psittaci "250" обладает следующими свойствами:
Морфологические признаки. Культура штамма представляет собой мелкие элементарные тельца хламидий, имеющие сферическую форму размером 200-400 нм. которые хорошо воспринимают карбол-фуксин Циля в разведении 1:5 и окрашиваются по модифицированному методу Стемп в ярко-красный цвет.
The strain of Chlamydia psittaci "250" has the following properties:
Morphological signs. The culture of the strain is a small elementary body of chlamydia having a spherical shape with a size of 200-400 nm. which perceive Tsilya carbol-fuchsin well at a dilution of 1: 5 and are stained in bright red color according to the modified Stemp method.

Культуральные свойства. Штамм хламидий "250" хорошо культивируется в желточной оболочке 6-7 суточных и аллантоисной оболочке 8-9-суточный развивающихся куриных эмбрионов. Специфическая гибель куриных эмбрионов, инфицированных в желточную полость, отмечается на 5-9 сутки после заражения; возбудитель накапливается при этом в титре 106,5-10-7,5ЭЛД50 в 0,3 мл.Cultural properties. Chlamydia strain "250" is well cultivated in the vitelline membrane of 6-7 day old and allantoic membrane of 8-9-day old developing chicken embryos. The specific death of chicken embryos infected in the vitelline cavity is observed 5–9 days after infection; the pathogen accumulates in this case in a titer of 10 6.5 -10 -7.5 ELD 50 in 0.3 ml.

Патогенные свойства. Штамм хламидий "250" обладает токсичностью и высокой вирулентностью для лабораторных и восприимчивых животных. При внутрибрюшинном и интраназальном заражении белых мышей и морских свинок в дозе соответственно 0,5 и 1 мл 10%-й свежеполученной суспензией инфицированных желточных оболочек, вызывает заболевание и гибель животных на 4-16 сутки после введения материала. У нетелей после внутреннего заражения в дозе 8 мл 10-7,5ЭЛД50 в 0,3 мл штамм обусловливает аборты и рождения слаборазвитого приплода на 20-60 сутки после инфицирования.Pathogenic properties. Chlamydia strain "250" has toxicity and high virulence for laboratory and susceptible animals. With intraperitoneal and intranasal infection of white mice and guinea pigs at a dose of 0.5 and 1 ml, respectively, of a 10% freshly obtained suspension of infected yolk membranes, the disease and death of animals occur on 4-16 days after administration of the material. In heifers, after internal infection at a dose of 8 ml of 10 -7.5 ELD 50 in 0.3 ml, the strain causes abortion and the birth of an underdeveloped offspring on the 20-60 day after infection.

Иммуногенные свойства. Использование в качестве антигена биомассы, приготовленной из штамма Chlamydia psittaci "250" в инактивированной адсорбированно-эмульгированной вакцине обеспечивает формирование у 100% привитых животных напряженного и длительного иммунитета. Immunogenic properties. The use of biomass prepared from Chlamydia psittaci strain "250" as an antigen in an inactivated adsorbed-emulsified vaccine ensures the formation of intense and prolonged immunity in 100% of vaccinated animals.

В экспериментальных опытах при двукратной иммунизации нетелей вакцина предохраняла 100% животных от развития хламидиозной инфекции и абортов после искусственного заражения их вирулентным штаммом возбудителя хламидиозного аборта коров. In experimental experiments with double immunization of heifers, the vaccine protected 100% of the animals from the development of chlamydial infection and abortion after artificial infection with their virulent strain of the causative agent of chlamydial abortion of cows.

Использование вакцины в полевых опытах в неблагополучных по хламидиозу хозяйствах существенно уменьшает количество абортов и мертворождений у коров и нетелей, снижает заболеваемость и гибель телят от хламидиозной инфекции и тем самым в 4-5 раз сокращает потери молодняка крупного рогатого скота и уменьшает напряженность эпизоотической ситуации по хламидийным инфекциям. The use of the vaccine in field experiments in chlamydia-poor households significantly reduces the number of abortions and stillbirths in cows and heifers, reduces the incidence and death of calves from chlamydial infections, and thereby reduces the loss of young cattle by 4-5 times and reduces the tension of the epizootic situation for chlamydia infections.

Для экспериментальной проверки предлагаемой вакцины, ее готовят следующим образом. Куриные эмбрионы 7-дневного возраста заражают в желточную полость суспензией свежепассированного штамма хламидий "250" возбудителя хламидиозного аборта коров, разведенной до 10-4 в дозе 0,3 мл. Инфицированные эмбрионы инкубируют при 37-38oC в течение двух дней, затем проводят овоскопию, отбирают и уничтожают павших (неспецифическая гибель), а живые эмбрионы заражают повторно в аллантоисную полость суспензий штамма "250", разведенной до 10-3 в дозе 0,3 мл. Далее зараженные эмбрионы инкубируют при 37-38oC в течение 7-8 дней. Специфическая гибель 90-95% инфицированных эмбрионов происходит на 6-9 дни после первичного заражения. Павшие эмбрионы охлаждают и вскрывают. От каждого эмбриона отсасывают 4-4,5 мл хламидосодержащей аллантоисной жидкости и отбирают 1-2 г хорионаллантоисной и желточной оболочек вместе с сопутствующим желтком.For experimental verification of the proposed vaccine, it is prepared as follows. Chicken embryos of 7 days of age are infected into the vitelline cavity with a suspension of a freshly-passaged strain of chlamydia "250" of the causative agent of chlamydial abortion of cows, diluted to 10 -4 at a dose of 0.3 ml. Infected embryos are incubated at 37-38 o C for two days, then ovoscopy is performed, the dead are taken and destroyed (non-specific death), and live embryos are re-infected in the allantoic cavity of suspensions of strain "250" diluted to 10 -3 at a dose of 0, 3 ml Next, infected embryos are incubated at 37-38 o C for 7-8 days. The specific death of 90-95% of infected embryos occurs 6–9 days after the initial infection. Fallen embryos are cooled and opened. From each embryo, 4-4.5 ml of chlamydia-containing allantoic fluid is aspirated and 1-2 g of chorionallantoic and vitelline membranes are taken together with the accompanying yolk.

Хламидосодержащий материал до использования хранят в замороженном при минус 20-30oC состоянии. Аллантоисную жидкость перед заморозкой осветляют центрифугированием при 3 тыс. об/мин в течение 30 мин.Chlamydol-containing material is stored frozen at minus 20-30 o C until use. Allantoic fluid before freezing is clarified by centrifugation at 3 thousand rpm for 30 minutes

Для получения полуфабриката вакцины из хламидиосодержащего материала готовят 10%-ю исходную суспензию на фосфатно-буферном физиологическом растворе (ФБР) pH 7,2-7,4 следующим образом: хламидиосодержащие оболочки взвешивают подвергают термолизису путем трехкратного замораживания и оттаивания, и суспензируют до 20% -й концентрации на коллоидной мельнице добавив расчетное количество ФБР. Суспензию центрифугируют при 3000 об/мин в течение 30 мин и отсасывают средний слой центрифугата взвесь хламидий. Осадок тканей и верхний желточный слой повторно гомогенизируют в таком же количестве ФБР, центрифугируют в тех же условиях и снова отсасывают суспензию хламидий. To obtain a semi-finished vaccine from chlamydia-containing material, a 10% initial suspension is prepared in phosphate-buffered saline (FBI) pH 7.2-7.4 as follows: chlamydia-containing membranes are weighed, thermolysed by freezing and thawing three times, and they are suspended up to 20% th concentration in a colloid mill by adding the calculated amount of the FBI. The suspension is centrifuged at 3000 rpm for 30 minutes and the middle layer of the centrifugate is suctioned off a suspension of chlamydia. The tissue sediment and the upper yolk layer are re-homogenized in the same amount of PBS, centrifuged under the same conditions, and the chlamydia suspension is again suctioned off.

Замороженную хламидиосодержащую аллантоисную жидкость размораживают по возможности быстро в водяной бане при температуре 37oC интенсивно встряхивая флакон с целью предотвращения образования крупных хлопьев. Размороженную слегка опалесцирующую аллантоисную жидкость разводят в соотношении 1:1 с ФБР.Frozen chlamydia-containing allantoic liquid is thawed as quickly as possible in a water bath at a temperature of 37 o C intensively shaking the bottle in order to prevent the formation of large flakes. Thawed slightly opalescent allantoic liquid is diluted in a ratio of 1: 1 with the FBI.

Хламидиосодержащие суспензии инфицированных оболочек и аллантоисной жидкости объединяют в соотношении 1:1 и добавляют сначала глутаровый альдегид в конечной концентрации 0,1% затем через 30 минут, формальдегид в конечной концентрации 0,2% Суспензию после добавления реагентов перемешивают и выдерживают в течение 24 ч при температуре плюс 20-24o (комнатная температура) для инактивации хламидий.Chlamydia-containing suspensions of infected membranes and allantoic fluid are combined in a 1: 1 ratio and glutaraldehyde is added first at a final concentration of 0.1%, then after 30 minutes, formaldehyde at a final concentration of 0.2%. The suspension after adding the reagents is stirred and incubated for 24 hours at temperature plus 20-24 o (room temperature) for inactivation of chlamydia.

Хламидии из инактивированной суспензии осаждают путем центрифугирования ее при 18-20 тыс. об/мин в течение 60 мин. Надосадочную жидкость вместе с верхним желточным слоем удаляют, осадок элементарных телец хламидий взвешивают и ресуспендируют в соотношении 1:10 с ФБР, содержащим 0,1% формальдегида. Chlamydia from an inactivated suspension is precipitated by centrifuging it at 18-20 thousand rpm for 60 minutes The supernatant together with the upper yolk layer is removed, the precipitate of elementary chlamydial bodies is weighed and resuspended in a ratio of 1:10 with PBS containing 0.1% formaldehyde.

Стандартизацию суспензии по содержанию элементарных телец хламидий осуществляют путем определения ее оптической плотности. Для этого из приготовленной взвеси хламидий готовят разведение 1:10 (к 0,5 мл взвеси добавляют 4,5 мл ФБР) и измеряют коэффициент поглощения на ФЭК 56М при длине волны 540 нм в кюветах с рабочей длиной 10 мм. Оптимальным для получения иммуногенной вакцины является коэффициент поглощения, равный 2,4-2,6 единиц, что соответствует содержанию 30-40 мкг антигена в одном мл суспензии. The standardization of the suspension according to the content of elementary bodies of chlamydia is carried out by determining its optical density. For this, a 1:10 dilution is prepared from the prepared suspension of chlamydia (4.5 ml of PBS are added to 0.5 ml of suspension) and the absorption coefficient is measured on an FEK 56M at a wavelength of 540 nm in cuvettes with a working length of 10 mm. Optimum for obtaining an immunogenic vaccine is an absorption coefficient of 2.4-2.6 units, which corresponds to a content of 30-40 μg of antigen in one ml of suspension.

Стандартизованную взвесь хламидий пропускают через коллоидную мельницу, добавляют алюмо-калиевые квасцы в конечной концентрации 0,5% и снова гомогенизируют в течение 5 мин, затем взвесь сливают в стеклянные баллоны и помещают в рефрижератор при 4-6oC на 1-2 суток. В этих условиях хламидии адсорбируются на алюмокалиевых квасцах и осаждаются в виде хлопьев. Надосадочную жидкость осторожно отсасывают и удаляют, а осадок ресуспендируют до исходного объема фосфатно-буферным раствором, содержащим 0,1% формальдегида. Процедуру отмывки хламидий от избытка алюмо-калиевых квасцов повторяют 2-3 раза. Полученный полуфабрикат вакцины с консервантом хранят до использования в рефрижераторе при 4-6oC.A standardized suspension of chlamydia is passed through a colloidal mill, potassium alum at a final concentration of 0.5% is added and homogenized again for 5 minutes, then the suspension is poured into glass cylinders and placed in a refrigerator at 4-6 ° C for 1-2 days. Under these conditions, chlamydia is adsorbed on alum-potassium alum and precipitated in the form of flakes. The supernatant is carefully aspirated and removed, and the precipitate is resuspended to the original volume with a phosphate-buffered saline containing 0.1% formaldehyde. The procedure for washing chlamydia from excess alum-potassium alum is repeated 2-3 times. The resulting prefabricated vaccine with a preservative is stored until use in the refrigerator at 4-6 o C.

Пример 1. Для изготовления 1 л вакцины берут 500 мл инактивированного антигена Chlamydia psittaci "250", содержащего 30 мкг/мл хламидий адсорбированных на алюмо-калиевых квасцах с 0,08% формальдегида. Добавляют 500 мл стерильной масло-ланолиновой смеси в соотношении 84:16. Пропускают через коллоидную мельницу и расфасовывают в стерильные флаконы по 100 мл. Средний арифметический титр комплементсвязывающих антител в сыворотке крови вакцинированных морских свинок составляет не ниже 1:20. Example 1. For the manufacture of 1 liter of vaccine take 500 ml of inactivated antigen Chlamydia psittaci "250" containing 30 μg / ml of chlamydia adsorbed on potassium alum with 0.08% formaldehyde. Add 500 ml of a sterile oil-lanolin mixture in a ratio of 84:16. Pass through a colloidal mill and packaged in sterile vials of 100 ml. The arithmetic average titer of complement-binding antibodies in the blood serum of vaccinated guinea pigs is not less than 1:20.

Пример 2. Для изготовления 1 л вакцины берут 450 мл инактивированного антигена Chlamydia psittaci "250", содержащего 40 мкг/мл хламидий адсорбированных на алюмо-калиевых квасцах с 0,12% формальдегида. Добавляют 550 мл стерильной масло-ланолиновой смеси в соотношении 85:15. Пропускают через коллоидную мельницу и расфасовывают в стерильные флаконы по 100 мл. Средний арифметический титр комплементсвязывающих антител в сыворотке крови вакцинированных морских свинок составляет не ниже 1:20. Example 2. For the manufacture of 1 liter of vaccine take 450 ml of inactivated antigen Chlamydia psittaci "250" containing 40 μg / ml of chlamydia adsorbed on potassium alum with 0.12% formaldehyde. 550 ml of a sterile oil-lanolin mixture are added in a ratio of 85:15. Pass through a colloidal mill and packaged in sterile vials of 100 ml. The arithmetic average titer of complement-binding antibodies in the blood serum of vaccinated guinea pigs is not less than 1:20.

При изменении минимума и максимума в соотношениях компонентов при изготовлении вакцины происходит расслоение эмульсии на водную и масляную фракции, что снижает иммуногенность эмульсионной вакцины. When the minimum and maximum changes in the ratios of the components in the manufacture of the vaccine, the emulsion is stratified into water and oil fractions, which reduces the immunogenicity of the emulsion vaccine.

Контроль вакцины на стерильность, стойкость эмульсии и безвредность проводится по общепринятым методам. Контроль иммуногенности проводят на морских свинках. Животных вакцинируют в дозе 0,5 мл подкожно в области лопатки справа и слева (по 0,25 мл). Вакцинация способствует выработке специфических хламидийных комплементсвязывающих антител на 30-35 день в титрах 1:5 1:80 (средний арифметический титр не ниже 1:20). The vaccine is monitored for sterility, durability of the emulsion and harmlessness according to generally accepted methods. Immunogenicity control is carried out on guinea pigs. Animals are vaccinated at a dose of 0.5 ml subcutaneously in the scapular region on the right and left (0.25 ml each). Vaccination promotes the development of specific chlamydial complement-binding antibodies on days 30-35 in titers of 1: 5 1:80 (average arithmetic titer not lower than 1:20).

Вакцину применяют с профилактической целью в хозяйствах и племпредприятиях неблагополучных или угрожаемых по хламидиозу крупного рогатого скота. Вакцинируют все серонегативное поголовье крупного рогатого скота однократно один раз в год с трехмесячного возраста. Телок случного возраста и коров вакцинируют за 20-25 дней до осеменения или случки. Больных хламидиозом животных перед вакцинацией подвергают лечению с использованием антибиотиков тетрациклинового ряда и вакцинируют после выздоровления. The vaccine is used as a preventive measure in farms and breeding enterprises of dysfunctional or threatened by chlamydia cattle. All seronegative cattle are vaccinated once once a year from three months of age. Heifers of a random age and cows are vaccinated 20-25 days before insemination or mating. Chlamydia patients in animals are vaccinated before treatment with tetracycline antibiotics and vaccinated after recovery.

Вакцину вводят крупному рогатому скоту в асептических условиях подкожно в область подгрудка или верхней трети шеи из расчета не более 1,5 мл в одно место в следующих дозах: 1 мл телятам в возрасте от 3 до 6 месяцев; 2 мл телятам в возрасте от 6 до 12 месяцев; 3 мл телятам старше года, коровам и быкам-производителям. The vaccine is administered to cattle under aseptic conditions subcutaneously in the area of the breast or upper third of the neck at the rate of not more than 1.5 ml in one place in the following doses: 1 ml to calves aged 3 to 6 months; 2 ml of calves aged 6 to 12 months; 3 ml of calves older than a year, cows and bulls.

У вакцинированных животных на месте введения вакцины образуется уплотнение размером до 3х4 см, которое постепенно рассасывается в течение 4-8 месяцев. Иммунитет у привитых животных создается через 30 сут. после вакцинации и сохраняется в течение 12 месяцев. Срок годности вакцины 1,5 года. In vaccinated animals, at the injection site, a seal forms up to 3x4 cm in size, which gradually dissolves over 4-8 months. Immunity in vaccinated animals is created after 30 days. after vaccination and persists for 12 months. The shelf life of the vaccine is 1.5 years.

Проведены испытания 6 экспериментальных и 3 опытно-промышленных серий инактивированной эмульсионной вакцины против хламидиоза крупного рогатого скота на антигенную и иммуногенную активность. Tests of 6 experimental and 3 pilot industrial series of inactivated emulsion vaccine against chlamydia in cattle were tested for antigenic and immunogenic activity.

Экспериментальные серии вакцины были испытаны в опытах на лабораторных животных и нетелях. Белых мышей массой 16-18 г вакцинировали двукратно подкожно с интервалом 7 дней в дозе 0,1-0,15 мл. Через 21-28 дней после вакцинации мышей заражали возбудителем хламидиозного аборта коров (штамм "250") внутрибрюшинно в дозе 0,3-0,5 мл 10%-й взвесью возбудителя. Одновременно с иммунизированными мышами инфицировали интактных (контрольных) мышей аналогичного возраста. Результаты проведенных шести серий опытов (табл. 1) показали, что выживаемость предварительно вакцинированных мышей после контрольного заражения вирулентной культурой хламидий колебалась в пределах 86-92,3% (88,6±1,2% ). При этом в контрольной группе отмечалась гибель от 66,7 до 88% мышей (78,7% ). Следовательно, вакцина обладает высокой иммуногенностью и обеспечивает устойчивость вакцинированных мышей к искусственному заражению вирулентной культурой хламидий. The experimental vaccine series were tested in experiments on laboratory animals and heifers. White mice weighing 16-18 g were vaccinated twice subcutaneously with an interval of 7 days at a dose of 0.1-0.15 ml. 21-28 days after vaccination, the mice were infected with the causative agent of chlamydial abortion of cows (strain "250") intraperitoneally at a dose of 0.3-0.5 ml of a 10% suspension of the pathogen. Simultaneously with immunized mice, intact (control) mice of the same age were infected. The results of six series of experiments (Table 1) showed that the survival rate of pre-vaccinated mice after control of infection with a virulent chlamydia culture ranged from 86-92.3% (88.6 ± 1.2%). In the control group, deaths from 66.7 to 88% of mice (78.7%) were noted. Therefore, the vaccine has high immunogenicity and ensures the resistance of vaccinated mice to artificial infection with a virulent chlamydia culture.

В опытах на нетелях в экспериментальных условиях было установлено, что двукратное подкожное введение вакцины в дозе по 1,5 мл нетелям предохраняет их от развития хламидиозного аборта крупного рогатого скота после контрольного заражения вирулентным штаммом хламидий "250" (табл. 2). In experiments on heifers under experimental conditions, it was found that double subcutaneous administration of a vaccine in a dose of 1.5 ml of heifers prevents them from developing chlamydial abortion in cattle after infection with a virulent chlamydia strain "250" (Table 2).

В условиях Херсонской биофабрики согласно разработанной нами технологии было изготовлено 3 опытно-промышленные серии вакцины против хламидиоза крупного рогатого скота. Производственный контроль стерильности, безвредности и иммуногенной активности, их приемку, а также заключение о промышленном производстве было сделано согласно приказу ГУВ СССР N 57 от 5.06.90 г. При этом было установлено, что все три изготовленные опытно-промышленные серии вакцины являются стерильными, безвредными и иммуногенными препаратами (Акт Херсонской биофабрики от 24 мая 1990 г.). Under the conditions of the Kherson Biofactory, according to the technology developed by us, 3 pilot industrial series of the vaccine against chlamydia in cattle were manufactured. Production control of sterility, safety and immunogenic activity, their acceptance, as well as the conclusion on industrial production was made according to the order of the USSR GUV N 5.06.06. It was found that all three manufactured experimental industrial vaccine series are sterile, harmless and immunogenic preparations (Act of the Kherson Biofactory of May 24, 1990).

Производственные испытания вакцины, изготовленной на Херсонской биофабрике, проводили в девяти неблагополучных по хламидиозу хозяйствах ТССР и Владимирской области. При этом было вакцинировано 6862 гол. крупного рогатого скота, в том числе 3715 коров, 79 быков-производителей и 3068 телят и телок случного возраста. Результаты испытания вакцины в полевых условиях обобщены в табл. 3 и 4. Из приведенных в табл. 3 данных видно, что через месяц после вакцинации у 100% вакцинированных животных выявлена серопозитивность в РСК к хламидийному антигену. Средний арифметический титр специфических хламидийных антител при этом колебался в пределах 1:65 1:87. Через 6 месяцев положительно на хламидиоз по РСК реагировали от 90 до 93,6% вакцинированных животных со средним арифметическим титром 1:12 1:14. Через 12 месяцев серопозитивность к хламидиозному антигену сохранилась у 50-60% крупного рогатого скота со средним комплементсвязывающих антител 1:7 1:10. Production tests of a vaccine manufactured at the Kherson Biofactory were carried out in nine chlamydia-poor farms in the TSSR and Vladimir Region. At the same time 6862 goals were vaccinated. cattle, including 3,715 cows, 79 manufacturing bulls and 3,068 calves and heifers of a random age. Field test results of the vaccine are summarized in table. 3 and 4. From the above table. 3 data shows that a month after vaccination in 100% of vaccinated animals revealed seropositivity in CSC to chlamydial antigen. The arithmetic average titer of specific chlamydial antibodies in this case ranged from 1:65 to 1:87. After 6 months, from 90 to 93.6% of vaccinated animals with an arithmetic average titer of 1:12 1:14 reacted positively to chlamydia by CSC. After 12 months, seropositivity for chlamydial antigen persisted in 50-60% of cattle with an average complement-binding antibody of 1: 7 1:10.

Таким образом вакцинация животных обусловливает их серопозитивность к хламидиозному антигену. Максимальный уровень антител (титры 1:10 1:160) формируется через 30-35 дней после вакцинации и сохраняется на высоком уровне у 90-93,6% животных в течение 6 месяцев; затем происходит постепенное снижение уровня серопозитивности к 12 месяцам после иммунизации. Thus, vaccination of animals determines their seropositivity for chlamydial antigen. The maximum level of antibodies (titers 1:10 1: 160) is formed 30-35 days after vaccination and remains at a high level in 90-93.6% of the animals for 6 months; then there is a gradual decrease in seropositivity by 12 months after immunization.

Оценку эффективности вакцинации крупного рогатого скота в полевых условиях проводили сравнивая количество абортов и мертворождений среди коров и нетелей, а также количества падежа и вынужденного убоя телят в неблагополучных хозяйствах до вакцинации (1989 г.) и после вакцинации (1990, 1991 гг. ). Из приведенных в табл. 4 данных видно, что количество абортов и мертворождений в пяти хозяйствах до вакцинации составили в среднем 6% падеж и вынужденный убой 10% Общие потери молодняка составили в среднем 16% После применения вакцины количество абортов и мертворождений в этих же хозяйствах уменьшилось в 5,4 раза и составило лишь 1,1% Одновременно в 3,7 раза сократилась заболеваемость и вынужденный убой телят от хламидиозной инфекции. Общие потери молодняка после вакцинации составили 3,7% что в 4,2 раза меньше, чем до применения вакцины в этих хозяйствах. Следовательно, вакцина в условиях неблагополучного по хламидиозу крупного рогатого скота хозяйства до минимума сокращает количество абортов и мертворождаемости, значительно уменьшает заболеваемость и гибель телят от хламидиозной инфекции, улучшает эпизоотическую обстановку по хламидиозу и таким образом обеспечивает повышение продуктивности животных. The effectiveness of vaccination of cattle in the field was assessed by comparing the number of abortions and stillbirths among cows and heifers, as well as the number of deaths and forced slaughter of calves in dysfunctional farms before vaccination (1989) and after vaccination (1990, 1991). From the above table. Figure 4 shows that the number of abortions and stillbirths in five households before vaccination averaged 6% mortality and forced slaughter 10%. The total loss of young animals averaged 16%. After using the vaccine, the number of abortions and stillbirths in these same households decreased by 5.4 times and amounted to only 1.1%. At the same time, the incidence and forced slaughter of calves from chlamydial infection decreased by 3.7 times. The total loss of young animals after vaccination was 3.7%, which is 4.2 times less than before the vaccine was used in these farms. Consequently, the vaccine under conditions of cattle chlamydia-dysfunctional cattle economy minimizes the number of abortions and stillbirths, significantly reduces the incidence and death of calves from chlamydial infections, improves the epizootic situation for chlamydia, and thus ensures an increase in animal productivity.

Ввиду того, что предлагаемое изобретение обладает признаками патентоспособности вакцина для специфической профилактики хламидиоза крупного рогатого скота может быть представлена для загранпатентования. Due to the fact that the present invention has the features of patentability, a vaccine for specific prophylaxis of chlamydia in cattle can be submitted for foreign patenting.

Внедрение вакцины в ветеринарную практику позволит животноводческим хозяйствам предотвратить экономические потери, обусловленные недополучением до 20% телят за счет абортов, мертворождений у коров и нетелей, падежа и вынужденного убоя телят, а также стабилизации привесов на откорме животных и сохранение уровня удоя молока лактирующими коровами. The introduction of the vaccine in veterinary practice will allow livestock farms to prevent economic losses due to underreporting of up to 20% of calves due to abortion, stillbirths in cows and heifers, mortality and forced slaughter of calves, as well as stabilization of weight gain in animal fattening and maintenance of milk yield by lactating cows.

Claims (1)

Вакцина для специфической профилактики хламидиоза крупного рогатого скота, содержащая инактивированный антиген Chlamydia psittaci, адъювант и консервант, отличающаяся тем, что содержит инактивированный и очищенный хламидийный антиген из штамма Chlamydia psittaci "250" возбудителя аборта коров в концентрации 15 20 мг/мл, адсорбированный на алюмокалиевых квасцах и эмульгированный в масляно-ланолиновом адъюванте, а в качестве консерванта - формальдегид при следующих соотношениях компонентов, мас. A vaccine for specific prophylaxis of cattle chlamydia containing an inactivated Chlamydia psittaci antigen, an adjuvant and a preservative, characterized in that it contains an inactivated and purified chlamydial antigen from a Chlamydia psittaci strain "250" of a cow abortion pathogen at a concentration of 15 to 20 mg / ml adsorbed alum and emulsified in an oil-lanolin adjuvant, and as a preservative - formaldehyde in the following ratios of components, wt. Инактивированный и очищенный хламидийный антиген из штамма Chlamydia psittaci "250" возбудителя аборта коров 45 50
Алюмокалиевые квасцы 0,2 0,3
Масляно-ланолиновый адъювант 45 55
Формальдегид 0,04 0,06о
Inactivated and purified chlamydial antigen from strain Chlamydia psittaci "250" of the causative agent of abortion of cows 45 50
Alum potassium alum 0.2 0.3
Oil-lanolin adjuvant 45 55
Formaldehyde 0.04 0.06 °
SU5008246 1991-10-29 1991-10-29 Vaccine for specific prophylaxis of chlamydiosis in cattle RU2092188C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5008246 RU2092188C1 (en) 1991-10-29 1991-10-29 Vaccine for specific prophylaxis of chlamydiosis in cattle

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5008246 RU2092188C1 (en) 1991-10-29 1991-10-29 Vaccine for specific prophylaxis of chlamydiosis in cattle

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2092188C1 true RU2092188C1 (en) 1997-10-10

Family

ID=21588333

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5008246 RU2092188C1 (en) 1991-10-29 1991-10-29 Vaccine for specific prophylaxis of chlamydiosis in cattle

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2092188C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Хламидиозы сельскохозяйственных животных / Под ред. Н.З.Хазипова и А.З.Равилова. - М.: Колос, 1984. 2.SU, авторское свидетельство, 826744, кл. C 12 N 5/00, 1984. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Blasco Brucella ovis
Heller et al. Passive immunisation of chicks against Escherichia coli
KR100374434B1 (en) Modified Respiratory-Related Synthetic Virus (BRSV) Live Vaccine Composition
US4645665A (en) Live infectious bronchitis vaccine for poultry
JP2012062330A (en) C. PERFRINGENS α TOXOID VACCINE
US4559229A (en) Avian proventriculitis vaccine
CA1184115A (en) Infectious bronchitis vaccines for poultry and process for the preparation of such vaccines
KR100583259B1 (en) Novel antigenic class of avian reoviruses
US4136167A (en) Process for reducing the incidence of neonatal diarrhoea in pigs
JPS6121924B2 (en)
RU2403063C1 (en) Inactivated combined vaccine against viral diarrhea, rota-, corona-virus diseases and escherichiosis of cattle
NO159782B (en) SPRING SYSTEM DEVICE, FIRST AND FIRST ON VEHICLES.
JP2004137286A (en) Vaccine against intestinal protozoon
RU2092188C1 (en) Vaccine for specific prophylaxis of chlamydiosis in cattle
Saito et al. Attenuation of the myxoma virus and use of the living attenuated virus as an immunizing agent for myxomatosis
US3143474A (en) Preparation of duck-embryo modified infectious canine hepatitis virus vaccine
US4386065A (en) Vaccine against EAE
RU2301682C1 (en) Vaccine for specific prophylaxis of chlamydiosis in cattle and sheep and goats
RU2247577C2 (en) Vaccine for specific prophylaxis of porcine chlamydiosis
US3629413A (en) Polyvalent bovine vaccines and methods of making and using same
RU2452512C2 (en) Inactivated emulsion associated vaccine for parvoviral, rheoviral, type i herpes-viral infections and viral diarrhoeia - cattle mucosal disease
US5059419A (en) Streptococcus suis antiserum and its use in treating Streptococcus suis infections
KR101085667B1 (en) Producing Method For Yolk Powder Having A Immuneantibody Of Duck Disease and Yolk Powder Using The Same
US3704203A (en) Transmissible gastroenteritis vaccines and methods of producing the same
RU2806810C1 (en) Hydroxide aluminum oil vaccine against escherichiosis in calves and piglets