RU2086101C1 - Oyster mushroom growing method - Google Patents
Oyster mushroom growing method Download PDFInfo
- Publication number
- RU2086101C1 RU2086101C1 RU94042309A RU94042309A RU2086101C1 RU 2086101 C1 RU2086101 C1 RU 2086101C1 RU 94042309 A RU94042309 A RU 94042309A RU 94042309 A RU94042309 A RU 94042309A RU 2086101 C1 RU2086101 C1 RU 2086101C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- substrate
- cultivation
- vessels
- growing
- pots
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Mushroom Cultivation (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к сельскому хозяйству, в частности к выращиванию вешенки. The invention relates to agriculture, in particular to the cultivation of oyster mushrooms.
Известен способ выращивания вешенки на стерилизованном субстрате в асептических условиях [1] К недостаткам способа относится сложность его реализации и высокая себестоимость продукции, связанные с необходимостью приобретения и эксплуатации дорогостоящего технологического оборудования. Вследствие этого способ [1] а также другие способы выращивания вешенки в стерильных условиях не находят широкого применения в промышленном грибоводстве [2]
Интенсивное выращивание вешенки в нестерильных условиях позволяет устранить данные недостатки, однако при этом появляется другая проблема: размножение в субстрате конкурирующих бактерий и плесневых грибов.A known method of growing oyster mushrooms on a sterilized substrate under aseptic conditions [1] The disadvantages of the method include the complexity of its implementation and the high cost of production associated with the need to purchase and operate expensive technological equipment. As a result, the method [1] as well as other methods of growing oyster mushrooms in sterile conditions are not widely used in industrial mushroom growing [2]
Intensive cultivation of oyster mushrooms in non-sterile conditions eliminates these shortcomings, but there is another problem: reproduction of competing bacteria and mold in the substrate.
Конкурентоспособность вешенки поддерживают путем создания селективных условий роста за счет предварительной обработки субстрата с помощью защитных микроорганизмов [3, 4] подготовки многокомпонентных субстратов [5] добавок в субстрат беномила [6] препарата "Custos" и применения быстрорастущих агрессивных культур вешенки [7] Трудности при реализации интенсивного выращивания вешенки по способам [2-7] связаны с необходимостью раскрытия или покупки "ноу-хау" и использования дефицитных препаратов беномила и "Custos". Предметами "ноу-хау" являются штаммы защитных микроорганизмов [3, 4] состав многокомпонентных субстратов [5] и культуры вешенки [7] Кроме того, известно, что при длительном применении беномил и препарат "Custos", как и другие пестициды, теряют свою эффективность. Oyster mushroom competitiveness is supported by creating selective growth conditions due to pre-treatment of the substrate with the help of protective microorganisms [3, 4] preparation of multicomponent substrates [5] additives to the benomyl substrate [6] of the Custos preparation and the use of rapidly growing aggressive oyster mushroom cultures [7] the implementation of intensive cultivation of oyster mushrooms by the methods [2-7] is associated with the need to disclose or purchase "know-how" and the use of scarce preparations of benomyl and "Custos". The know-how subjects are strains of protective microorganisms [3, 4] the composition of multicomponent substrates [5] and oyster mushroom cultures [7] In addition, it is known that with prolonged use of benomyl and the drug “Custos”, like other pesticides, lose their efficiency.
Дополнительные возможности повысить конкурентноспособность основаны на способности вешенки и других съедобных грибов при освоении значительного объема субстрата подавлять активность конкурирующих микроорганизмов при колонизации оставшегося объема субстрата. Additional opportunities to increase competitiveness are based on the ability of oyster mushrooms and other edible fungi to assimilate the activity of competing microorganisms during colonization of a significant amount of substrate when colonizing the remaining volume of the substrate.
Известно, например, что если гриб шиитаке колонизирует 85% объема субстрата, то конкурирующие микроорганизмы не способны остановить колонизацию оставшихся 15% объема субстрата [8] На практике эту способность съедобных грибов реализуют за счет использования больших количеств посевного материала. It is known, for example, that if a shiitake mushroom colonizes 85% of the substrate volume, then competing microorganisms are not able to stop the colonization of the remaining 15% of the substrate volume [8] In practice, this ability of edible fungi is realized through the use of large quantities of seed.
Известен способ выращивания съедобных грибов на стерилизованном субстрате, который инокулируют по всему объему зерновым мицелием. При заполнении культивационных сосудов непророщенный инокулированный субстрат чередуют со слоями предварительно пророщенного субстрата [9] Подобный способ выращивания осуществляют также на пастеризованном субстрате [10] а слои гриба при заполнении культивационных сосудов формируют с помощью мицелия, выращенного на зерне [11] Затруднения при реализации способов [9-11] связаны с необходимостью приобретения большого количества посевного материала или введения дополнительной технологической операции для предварительного проращивания субстрата в стерильных условиях. A known method of growing edible mushrooms on a sterilized substrate, which is inoculated throughout the volume of cereal mycelium. When filling cultivation vessels, a non-germinated inoculated substrate is alternated with layers of previously sprouted substrate [9] A similar method of growing is also carried out on a pasteurized substrate [10] and fungus layers when filling cultivation vessels are formed using mycelium grown on grain [11] Difficulties in implementing the methods [ 9-11] are associated with the need to purchase a large amount of seed or to introduce additional technological operations for the preliminary germination of sub waste in a sterile environment.
Наиболее близким к предлагаемому способу по совокупности признаков является способ выращивания съедобных грибов [12] в культивационных мешочках, которые заполняют питательным субстратом. Мешочки (5) располагают внутри крупногабаритной емкости (фиг.1). Форма емкости определяется жестким корпусом (4). Горловина емкости (3) закрыта колпачком (2) с ручкой (1). После стерилизации емкости через горловину (3) опорами инокулируют верхний слой мешочков. Грибница распространяется по субстрату фронтально от верхнего слоя мешочков к нижнему слою через отверстия, выполненные на верхних и нижних поверхностях мешочков. После прорастания субстрата мешочки извлекают из крупногабаритной емкости и отправляют в камеру плодоношения. Недостатками способа [12] как и других способов выращивания вешенки в асептических условиях, являются высокая себестоимость продукции и трудность реализации способа в промышленном грибоводстве, обусловленные необходимостью приобретения и эксплуатации дорогостоящего оборудования для стерилизации субстрата и поддержания асептических условий в процессе выращивания. Кроме того, недостатком способа [2] является длительный срок проращивания субстрата вследствие распространения грибницы только в одном направлении, показанном на фиг. 1 стрелками. Closest to the proposed method for the totality of signs is a method of growing edible mushrooms [12] in cultivation bags, which are filled with a nutrient substrate. Sacks (5) are located inside a large container (figure 1). The shape of the container is determined by the rigid body (4). The container neck (3) is closed by a cap (2) with a handle (1). After sterilization of the container through the neck (3), the upper layer of sacs is inoculated with supports. The mycelium spreads along the substrate frontally from the upper layer of the sacs to the lower layer through openings made on the upper and lower surfaces of the sacs. After germination of the substrate, the bags are removed from the large container and sent to the fruiting chamber. The disadvantages of the method [12] as well as other methods of growing oyster mushrooms under aseptic conditions are the high cost of production and the difficulty of implementing the method in industrial mushroom growing, due to the need to purchase and operate expensive equipment for sterilizing the substrate and maintaining aseptic conditions during the growing process. In addition, the disadvantage of the method [2] is the long period of germination of the substrate due to the spread of mycelium in only one direction, shown in FIG. 1 arrows.
Таким образом, затруднения при реализации интенсивного выращивания вешенки обусловлены необходимостью приобретения и эксплуатации дорогостоящего технологического оборудования [1, 12] раскрытия или покупки "ноу-хау" [3-5, 7] применения дефицитных препаратов [6, 7] расхода больших количеств инокулята (9-11] длительного культивирования [12] В предлагаемом способе решаются следующие задачи, направленные на устранение недостатков, присущих прототипу [12]
разработка технологического цикла выращивания вешенки с использованием аналогичного прототипу культивационного оборудования, но в нестерильных условиях;
сокращение срока проращивания субстрата.Thus, the difficulties in implementing intensive cultivation of oyster mushrooms are due to the need to purchase and operate expensive technological equipment [1, 12] to discover or purchase know-how [3-5, 7] using scarce preparations [6, 7] to consume large quantities of inoculum ( 9-11] long-term cultivation [12] In the proposed method, the following problems are solved, aimed at eliminating the disadvantages inherent in the prototype [12]
development of a technological cycle for growing oyster mushrooms using a similar prototype of cultivation equipment, but in non-sterile conditions;
shortening the germination period of the substrate.
В соответствии со сложившейся в грибоводстве технико-экономической ситуацией [2] решение этих задач должно привести к снижению себестоимости продукции и, следовательно, к расширению возможностей применения предлагаемого способа в промышленном грибоводстве. In accordance with the prevailing technical and economic situation in mushroom growing [2], the solution of these problems should lead to a reduction in the cost of production and, therefore, to the expansion of the possibilities of applying the proposed method in industrial mushroom growing.
Следует отметить дополнительное технико-экономическое условие, возникающее при решении поставленных задач. Это условие появляется с учетом того, что целесообразность перехода от стерильных условий выращивания к нестерильным условиям не вызывает сомнения с технико-экономической точки зрения и этот переход можно осуществить с помощью известных способов, например если готовить субстрат способом аэробной [3] или полуанаэробной [7] ферментации. It should be noted an additional technical and economic condition that occurs when solving tasks. This condition appears taking into account the fact that the feasibility of switching from sterile growing conditions to non-sterile conditions is not in doubt from a technical and economic point of view and this transition can be carried out using known methods, for example, if the substrate is prepared using the aerobic method [3] or semi-anaerobic [7] fermentation.
Следовательно, дополнительным условием при решении поставленных задач является достижение преимущества предлагаемого способа по технико-экономическим показателям не только в отношении прототипа, но и в отношении способов [2-7] Поэтому технологический переход от условий стерильного выращивания в прототипе к нестерильным условиям в предлагаемом способе осуществляется с помощью оригинальной технологии инокуляции и проращивания субстрата. Therefore, an additional condition for solving the tasks is to achieve the advantages of the proposed method according to technical and economic indicators, not only in relation to the prototype, but also in relation to the methods [2-7] Therefore, the technological transition from sterile growing conditions in the prototype to non-sterile conditions in the proposed method is carried out using the original technology of inoculation and germination of the substrate.
С учетом технико-экономической ситуации, сложившейся в грибоводстве [2] технический результат, получаемый при реализации предлагаемого способа по сравнению с прототипом, заключается в следующем:
отпадает необходимость стерилизации субстрата и поддержания асептических условий при выращивании вешенки, что должно привести к снижению себестоимости продукции и расширению возможностей применения способа в промышленном грибоводстве,
сокращается срок проращивания субстрата за счет компоновки культивационных сосудов с непророщенным и предварительно пророщенным субстратом в крупногабаритной емкости, что обеспечивает распространение грибницы в нескольких направлениях.Given the technical and economic situation prevailing in mushroom growing [2], the technical result obtained by the implementation of the proposed method in comparison with the prototype is as follows:
there is no need to sterilize the substrate and maintain aseptic conditions when growing oyster mushrooms, which should lead to lower production costs and expand the possibilities of using the method in industrial mushroom growing,
the substrate germination time is reduced due to the arrangement of cultivation vessels with ungrown and previously sprouted substrate in a large container, which ensures the spread of mycelium in several directions.
Поставленные задачи решают следующим образом. Субстрат готовят любым доступным способом, например путем аэробной [3, 4] или полуанаэробной [6, 7] ферментации. В отличие от известных способов подготовки субстрата применение специальных защитных микроорганизмов [3, 4] беномила [6] и препарата "Custos" [7] не является обязательным. Ферментация осуществляется за счет спонтанной микрофлоры. Применение культур вешенки, специально подобранных для выращивания на субстрате после полуанаэробной ферментации [7] также не является обязательным. The tasks are solved as follows. The substrate is prepared by any available method, for example, by aerobic [3, 4] or semi-anaerobic [6, 7] fermentation. In contrast to the known methods of preparation of the substrate, the use of special protective microorganisms [3, 4] benomyl [6] and the drug "Custos" [7] is not mandatory. Fermentation is carried out due to spontaneous microflora. The use of oyster mushroom cultures specially selected for growing on a substrate after semi-anaerobic fermentation [7] is also not required.
Культивационные сосуды, полностью заполненные пророщенным субстратом, помещают в крупногабаритные емкости в плотном контакте с сосудами, объем которых заполнен непророщенным субстратом частично. Инокуляция непророщенного субстрата осуществляется через отверстия в стенках смежных сосудов. Cultivation vessels, completely filled with a germinated substrate, are placed in large containers in tight contact with vessels, the volume of which is partially filled with a non-germinated substrate. Inoculation of non-germinated substrate is carried out through holes in the walls of adjacent vessels.
Компоновку сосудов с пророщенным и непророщенным субстратом в крупногабаритных емкостях осуществляют таким образом, чтобы обеспечить распространение грибницы в нескольких направлениях. Возможные варианты расположения сосудов с пророщенным и непророщенным субстратом и направления распространения грибницы показаны на фиг. 2, 3. Форма крупногабаритной емкости зависит от схемы взаимного расположения сосудов. Например, для варианта 2б крупногабаритная емкость представляет собой обойму, имеющую форму креста в поперечном сечении. В не заполненный субстратом объем культивационных сосудов вводят вставки, с помощью которых субстрат удерживается в заданном положении. Пророщенный субстрат обозначен перекрестной штриховкой, а непророщенный - продольной и поперечной. Направления распространения грибницы показаны стрелками. Культивационные сосуды, как и в прототипе [12] могут быть выполнены в виде мешочков из проницаемого для грибницы материала. Крупногабаритная емкость в этом варианте также имеет форму мешка, а вставки не требуются. The arrangement of vessels with sprouted and non-sprouted substrate in large containers is carried out in such a way as to ensure the spread of mycelium in several directions. Possible variants of the arrangement of vessels with sprouted and non-sprouted substrate and the direction of propagation of the mycelium are shown in FIG. 2, 3. The shape of the large-sized container depends on the pattern of the mutual arrangement of the vessels. For example, for option 2b, the oversized container is a cross-shaped cage in cross section. Inserts are introduced into the volume of cultivation vessels not filled with the substrate, with the help of which the substrate is held in a predetermined position. Germinated substrate is indicated by cross-hatching, and non-germinated - longitudinal and transverse. The directions of spread of the mycelium are shown by arrows. Cultivation vessels, as in the prototype [12] can be made in the form of bags of permeable material for mycelium. The oversized container in this embodiment also has the shape of a bag, and inserts are not required.
После прорастания первой порции субстрата вставки удаляют и заполняют культивационные сосуды субстратом в полном объеме. Культивационные сосуды с предварительно пророщенным субстратом, обозначенные на фиг. 2 перекрестной штриховкой, используют при проращивании второй порции субстрата либо отправляют в камеру плодоношения. Проращивание второй порции субстрата проводят посредством размещения культивационных сосудов в крупногабаритных емкостях. Компоновку сосудов осуществляют таким образом, чтобы обеспечить распространение грибницы по крайней мере в двух направлениях. Один из вариантов компоновки сосудов при проращивании второй порции субстрата показан на фиг. 3. After the first portion of the substrate has germinated, the inserts are removed and the cultivation vessels are filled with the substrate in full. The cultivation vessels with the previously sprouted substrate indicated in FIG. 2 cross-hatched, used when germinating a second portion of the substrate or sent to the fruiting chamber. Germination of the second portion of the substrate is carried out by placing cultivation vessels in large containers. The arrangement of the vessels is carried out in such a way as to ensure the spread of the mycelium in at least two directions. One of the options for arranging vessels during germination of a second portion of the substrate is shown in FIG. 3.
Аргументами в пользу порционного проращивания субстрата являются следующие факты:
порция субстрата колонизируется вешенкой быстрее, чем субстрат в полном объеме культивационного сосуда, и соответственно конкурирующие микроорганизмы имеют меньше времени для размножения;
по аналогии с работой [8] вешенка получает больше возможностей для подавления конкурирующих микроорганизмов, если уменьшить объем непророщенного субстрата по отношению к объему пророщенного субстрата.The arguments in favor of portioned germination of the substrate are the following facts:
a portion of the substrate is colonized by oyster mushroom faster than the substrate in the full volume of the cultivation vessel, and accordingly, competing microorganisms have less time for propagation;
by analogy with [8], oyster mushroom gets more opportunities for suppressing competing microorganisms if the volume of ungrown substrate is reduced in relation to the volume of germinated substrate.
После прорастания второй порции субстрата одну часть от общего количества используемых сосудов отправляют в камеру плодоношения, а другую часть используют для инокуляции и проращивания субстрата описанным выше способом в следующем технологическом цикле. After the second portion of the substrate has germinated, one part of the total number of vessels used is sent to the fruiting chamber, and the other part is used to inoculate and germinate the substrate as described above in the next process cycle.
Снижение урожайности или скорости роста грибницы при неоднократном повторении технологического цикла свидетельствует о необходимости использования дополнительного инокулята. Для этого на дно сосудов до их заполнения субстратом и размещения в крупногабаритных емкостях помещают измельченные плодовые тела или мицелий вешенки, выращенный на зерне, и покрывают дополнительный инокулят порцией субстрата. A decrease in yield or growth rate of mycelium with repeated repetition of the technological cycle indicates the need for an additional inoculum. To do this, crushed fruit bodies or oyster mushrooms grown on grain are placed on the bottom of the vessels until they are filled with a substrate and placed in large containers and an additional inoculum is coated with a portion of the substrate.
Предлагаемый способ отличается от прототипа следующими признаками:
первой порцией субстрата заполняют не весь объем культивационных сосудов, а часть их объема;
инокуляцию питательного субстрата проводят не посредством внесения спор через горловину крупногабаритной емкости, а с помощью размещения в крупногабаритной емкости культивационных сосудов с непророщенным и предварительно пророщенным субстратом;
заполнение субстратом культивационных сосудов в полном объеме проводят после прорастания предыдущей порции субстрата и извлечения культивационных сосудов из крупногабаритной емкости;
инокуляцию и проращивание последующей порции субстрата осуществляют посредством размещения культивационных сосудов в крупногабаритной емкости;
размещение и компоновку культивационных сосудов в крупногабаритной емкости проводят таким образом, чтобы обеспечить распространение грибницы не в одном, а в нескольких направлениях;
распространение грибницы в нескольких направлениях обеспечивают за счет выполнения перфорационных отверстий не только на верхней и нижней стороне культивационных сосудов, а по всей их поверхности;
после проращивания субстрата в полном объеме культивационных сосудов не все культивационные сосуды отправляют в камеру плодоношения, а часть их используют для инокуляции субстрата в следующем технологическом цикле;
предлагаемый способ представляет собой замкнутый технологический цикл, в котором воспроизводство инокулята, инокуляция и проращивание субстрата не являются отдельными самостоятельными операциями, а являются результатом выполнения предлагаемых технологических операций и приемов.The proposed method differs from the prototype in the following features:
the first portion of the substrate does not fill the entire volume of cultivation vessels, but part of their volume;
the inoculation of the nutrient substrate is carried out not by introducing spores through the neck of a large-sized container, but by placing cultivating vessels with a non-germinated and previously sprouted substrate in a large-sized container;
the filling of the cultivation vessels with the substrate is carried out in full after the germination of the previous portion of the substrate and the extraction of the cultivation vessels from a large container;
inoculation and germination of a subsequent portion of the substrate is carried out by placing cultivation vessels in a large container;
the placement and layout of cultivation vessels in a large container is carried out in such a way as to ensure the spread of the mycelium not in one but in several directions;
the spread of mycelium in several directions is ensured by making perforations not only on the upper and lower sides of the cultivation vessels, but over their entire surface;
after germination of the substrate in full cultivation vessels, not all cultivation vessels are sent to the fruiting chamber, and some of them are used to inoculate the substrate in the next technological cycle;
the proposed method is a closed technological cycle in which the reproduction of the inoculum, inoculation and germination of the substrate are not separate independent operations, but are the result of the implementation of the proposed technological operations and techniques.
На фиг. 1 изображена схема размещения культивационных мешочков в крупногабаритной емкости по прототипу; на фиг. 2 варианты размещения культивационных сосудов с пророщенным и непророщенным субстратом в крупногабаритных емкостях; на фиг. 3 схема размещения культивационных сосудов при инокулировании и проращивании субстрата в обойме; на фиг. 4 - схема размещения культивационных сосудов с пророщенным и непророщенным инокулируемым субстратом в крупногабаритной емкости, иллюстрирующая конкретный пример реализации предлагаемого способа; на фиг. 5 технологическая схема предварительного проращивания субстрата для запуска технологического цикла выращивания вешенки; на фиг. 6 схема технологического цикла выращивания вешенки. In FIG. 1 shows a layout of cultivation bags in a large container of the prototype; in FIG. 2 options for the placement of cultivation vessels with sprouted and non-sprouted substrate in large containers; in FIG. 3 layout of the cultivation vessels during inoculation and germination of the substrate in the holder; in FIG. 4 is a diagram of the placement of cultivation vessels with sprouted and non-sprouted inoculated substrate in a large container, illustrating a specific example of the implementation of the proposed method; in FIG. 5 technological scheme of preliminary germination of the substrate to start the technological cycle of growing oyster mushrooms; in FIG. 6 diagram of the technological cycle of growing oyster mushrooms.
Пример конкретного выполнения способа
Культивационные сосуды представляют собой кубические емкости с одной открытой гранью, имеющие размер ребра 150 мм. В каждой стенке сосудов выполнены отверстия диаметром 10 мм. Отверстия расположены в шахматном порядке. Межцентровое расстояние между смежными отверстиями равно 17 мм. Расположение отверстий относительно каждой стенки во всех сосудах является одинаковым, что обусловлено необходимостью совмещать отверстия смежных сосудов при их размещении в крупногабаритной емкости. Помимо отверстий диаметром 10 мм в центре каждой стенки сосуда выполнено по одному отверстию диаметром 24 мм для выхода плодовых тел.An example of a specific implementation of the method
Cultivation vessels are cubic containers with one open face, having a rib size of 150 mm. Holes with a diameter of 10 mm are made in each vessel wall. The holes are staggered. The center distance between adjacent holes is 17 mm. The location of the holes relative to each wall in all vessels is the same, due to the need to combine the holes of adjacent vessels when they are placed in a large container. In addition to the holes with a diameter of 10 mm, one hole with a diameter of 24 mm was made in the center of each vessel wall for the exit of fruiting bodies.
Крупногабаритная емкость имеет форму куба с одной открытой гранью, закрывающейся крышкой. Внутренние размеры емкости 300 х 300 х 300 мм. В емкости размещают 8 культивационных сосудов. The oversized container has the shape of a cube with one open face, a lockable lid. The internal dimensions of the container are 300 x 300 x 300 mm. 8 cultivation vessels are placed in the tank.
Обойма имеет форму параллелепипеда. Внутренние размеры обоймы 150 х 150 х 1055 мм. Торцевые стороны обоймы открыты и могут закрываться крышками. По осевой линии каждой из четырех стенок обоймы выполнено по 7 отверстий для выхода плодовых тел. Диметр отверстий равен 24 мм, межцентровое расстояние равно 150 мм. В обойме размещают 7 культивационных сосудов. The clip has the shape of a parallelepiped. The internal sizes of a holder are 150 x 150 x 1055 mm. The ends of the cage are open and can be closed with covers. On the axial line of each of the four walls of the cage, 7 openings are made for the exit of the fruiting bodies. The hole diameter is 24 mm, the center distance is 150 mm. In the holder place 7 cultivation vessels.
Вставка имеет форму параллелепипеда с размерами 140 х 140 х 97 мм. Введенная в культивационный сосуд вставка занимает 2/3 его внутреннего объема. The insert has the shape of a parallelepiped with dimensions 140 x 140 x 97 mm. The insert introduced into the cultivation vessel occupies 2/3 of its internal volume.
Выращивание вешенки осуществляют следующим образом. Oyster mushroom cultivation is as follows.
Этап 1. Проращивание субстрата для инокуляции (фиг. 5). Step 1. Germination of the substrate for inoculation (Fig. 5).
Пшеничную солому измельчают до размеров частиц 3-10 мм. Дальнейшую подготовку соломы проводят способом полуанаэробной ферментации [6, 7] путем погружения соломы в воду на 15 сут. В отличие от известных способов [6, 7] беномил и препарат "Custos" при ферментации не применяют. По истечении 15 сут. солому вынимают из воды и отжимают так, чтобы ее влажность составляла 70-75%
В 6 крупногабаритных емкостях размещают по 4 культивационных сосуда. На дно каждого сосуда помещают мицелий культуры Pleurotus fiorida, выращенный на пшеничном зерне (50 г на сосуд). В отличие от [7] подбора культуры вешенки для выращивания на соломе, подготовленной способом полуанаэробной ферментации, не требуется. Поверх посевного мицелия накладывают подготовленную солому и слегка уплотняют, чтобы ее плотность в сосуде составляла около 0,5 кг/дм3. Солома должна занимать около 1/3 объема сосуда. В каждый сосуд вводят вставку. Затем в каждую крупногабаритную емкость помещают еще по 4 сосуда и выполняют те же операции. Емкости закрывают крышками. Субстрат проращивают 10 сут.Wheat straw is crushed to a particle size of 3-10 mm. Further straw preparation is carried out by the method of semi-aerobic fermentation [6, 7] by immersing the straw in water for 15 days. Unlike the known methods [6, 7], benomyl and the Custos preparation are not used for fermentation. After 15 days. the straw is removed from the water and squeezed so that its moisture content is 70-75%
In 6 large containers accommodate 4 cultivation vessels. At the bottom of each vessel is placed the mycelium of the Pleurotus fiorida culture grown on wheat grain (50 g per vessel). In contrast to [7], selection of an oyster mushroom culture for growing on straw prepared by the method of semi-anaerobic fermentation is not required. Prepared straw is laid on top of the seed mycelium and slightly compacted so that its density in the vessel is about 0.5 kg / dm 3 . Straw should occupy about 1/3 of the volume of the vessel. An insert is introduced into each vessel. Then, in each large-sized container, 4 more vessels are placed and the same operations are performed. Tanks are closed with lids. The substrate is germinated for 10 days.
По окончании этого срока все сосуды извлекают из крупногабаритных емкостей. Из каждого сосуда извлекают вставку и заполняют оставшийся объем подготовленной соломой. Затем все 48 сосудов размещают в 8 обоймах, по 6 сосудов в каждой. Взаимное расположение сосудов в обоймах показано на фиг. 3. Поверхность соломы в верхних сосудах, размещенных в обоймах, покрывают мицелием вешенки, выращенным на пшеничном зерне. В каждом верхнем сосуде размещают по 50 г мицелия. Обоймы закрывают с обеих сторон крышками. Отверстия в обоймах диаметром 24 мм закрывают круглыми вставками, чтобы предотвратить высыпание соломы. Проращивание соломы проводят в течение 10 дней. По истечении этого срока сосуды извлекают из обойм и используют для инокуляции субстрата в технологическом цикле. At the end of this period, all vessels are removed from bulky containers. An insert is removed from each vessel and the remaining volume is filled with prepared straw. Then all 48 vessels are placed in 8 holders, 6 vessels in each. The mutual arrangement of the vessels in the holders is shown in FIG. 3. The surface of the straw in the upper vessels placed in the holders is covered with oyster mushroom mycelium grown on wheat grain. 50 g of mycelium are placed in each upper vessel. The clips are closed on both sides by covers. The holes in the clips with a diameter of 24 mm are closed with round inserts in order to prevent straw from spilling out. Germination of straw is carried out for 10 days. After this period, the vessels are removed from the cages and used to inoculate the substrate in the technological cycle.
Этап 2. Технологический цикл проращивания субстрата и получения инокулята (фиг. 6). Step 2. The technological cycle of germination of the substrate and receiving the inoculum (Fig. 6).
Приготовленные на 1-м этапе 48 культивационных сосудов с пророщенной соломой размещают в 24 крупногабаритных емкостях, по 2 сосуда в каждой емкости. Кроме того, в каждую емкость помещают по 6 сосудов, заполненных подготовленной соломой на 1/3 объема. Взаимное расположение сосудов с пророщенной и непророщенной соломой в крупногабаритной емкости показано на фиг. 4. Два сосуда с пророщенной соломой заштрихованы перекрестными линиями. Шесть сосудов, заполненные на 1/3 объема непророщенной соломой, отмечены продольными и поперечными линиями. В заданном положении солома удерживается в этих 6 сосудах вставками, которые на фиг. 4 не показаны. Проращивание соломы проводят в течение 10 сут. 48 cultivating vessels with sprouted straw prepared at the 1st stage are placed in 24 large containers, 2 vessels in each container. In addition, 6 vessels filled with prepared straw for 1/3 of the volume are placed in each container. The mutual arrangement of vessels with sprouted and ungrown straw in a large container is shown in FIG. 4. Two vessels with sprouted straw are shaded with cross lines. Six vessels filled to 1/3 of the volume of ungrown straw are marked by longitudinal and transverse lines. In a predetermined position, the straw is held in these 6 vessels by inserts, which in FIG. 4 are not shown. Germination of straw is carried out for 10 days.
По истечении этого срока все сосуды извлекают из крупногабаритных емкостей. 24 сосуда, использованных для инокуляции, отправляют в камеру плодоношения. Сосуды, наполненные пророщенной соломой, на 1/3 объема наполняют подготовленной соломой в полном объеме и помещают в обоймы (фиг. 3). Сверху в каждую обойму помещают по одному сосуду из оставшихся от 48 штук, подготовленных на этапе 1. Через 5 сут. когда солома в нижнем смежном сосуде частично прорастает, эти 24 сосуда отправляют в камеру плодоношения. Проращивание субстрата в обоймах продолжают еще в течение 5 сут. Затем из 144 сосудов с пророщенным на этапе 2 субстратом отбирают 48 сосудов и используют их для инокуляции в следующем технологическом цикле. Все сосуды, отправляемые в камеру плодоношения, размещают в обоймах. After this period, all vessels are removed from large containers. 24 vessels used for inoculation are sent to the fruiting chamber. Vessels filled with sprouted straw are filled in 1/3 of the volume with prepared straw in full and placed in holders (Fig. 3). One vessel from the remaining 48 pieces prepared in stage 1 is placed on top of each ferrule. After 5 days. when the straw in the lower adjacent vessel partially sprouts, these 24 vessels are sent to the fruiting chamber. The growth of the substrate in the cages continues for another 5 days. Then, from the 144 vessels with the substrate sprouted in stage 2, 48 vessels were selected and used for inoculation in the next technological cycle. All vessels sent to the fruiting chamber are placed in clips.
Продолжительность данного технологического цикла (фиг. 6) составляет 20 сут. и его выполняют 12 раз в год. Годовой расход сухой соломы составляет 757 кг, воды для увлажнения и ферментации 6 м3, увлажненной до 70% соломы 2524 кг, посевного зернового мицелия 2,8 кг. В течение года собирают 470 кг свежих плодовых тел вешенки.The duration of this technological cycle (Fig. 6) is 20 days. and it is performed 12 times a year. The annual consumption of dry straw is 757 kg, water for humidification and fermentation is 6 m 3 , moistened to 70% straw 2524 kg, sowing grain mycelium 2.8 kg. During the year, 470 kg of fresh oyster mushroom fruit bodies are harvested.
Годовой объем продукции можно увеличить до желаемого уровня при наличии достаточного количества культивационного оборудования и помещений. The annual volume of production can be increased to the desired level if there is a sufficient amount of cultivation equipment and premises.
В 3-м, 6-м и 9-м технологических циклах дополнительно инокулируют солому измельченными плодовыми телами вешенки. Для этого на дно 48 сосудов при выполнении второй операции (фиг.6) помещают по 50 г плодовых тел. Затем их заполняют на 1/3 объема подготовленной соломой. Всего на дополнительную инокуляцию затрачивают 7,2 кг плодовых тел. In the 3rd, 6th and 9th technological cycles, straw is additionally inoculated with ground oyster mushroom fruit bodies. For this, 50 g of fruit bodies are placed on the bottom of 48 vessels during the second operation (Fig. 6). Then they are filled in 1/3 of the volume of the prepared straw. In total, 7.2 kg of fruiting bodies are spent on additional inoculation.
Количество посевного мицелия, необходимое по известному способу для инокуляции 2524 кг увлажненной соломы, рассчитывали, исходя из нормы расхода: 5 вес.ч. посевного мицелия на 100 вес.ч. увлажненного субстрата [7]
Сравнение предлагаемого способа с прототипом [12] по времени, необходимому для колонизации вешенкой заданного объема субстрата, проводили, исходя из допущений, поскольку этот показатель в прототипе не приведен. Предположим, что проращивание первой порции соломы по предлагаемому способу проводят в 6 культивационных сосудах, размещаемых в крупногабаритной емкости совместно с двумя сосудами, содержащими предварительно пророщенный субстрат (фиг. 4). Проращивание второй порции соломы проводят после размещения сосудов в обойме (фиг. 3). Размеры культивационных сосудов, крупногабаритной емкости и обоймы принимают такими же, как в описанном выше примере. Как отмечено в примере, проращивание соломы в полном объеме культивационного сосуда занимает 20 сут. Полный внутренний объем шести сосудов, занимаемый соломой, составляет 17 дм3. Если пренебречь толщиной стенок сосудов, то для размещения 17 дм3 соломы понадобится кубическая крупногабаритная емкость с размером ребра 260 мм. При фронтальной скорости распространения грибницы 5 мм в сутки для прорастания 17 дм3 соломы потребуется 52 сут. Выигрыш во времени при колонизации субстрата обусловлен тем, что в предлагаемом способе грибница распространяется от инокулята в нескольких направлениях, а в прототипе в одном направлении.The amount of seed mycelium required by the known method for inoculating 2524 kg of moist straw was calculated based on the consumption rate: 5 parts by weight seed mycelium per 100 parts by weight wet substrate [7]
Comparison of the proposed method with the prototype [12] by the time required for colonization with oyster mushroom of a given volume of substrate was carried out on the basis of assumptions, since this indicator is not shown in the prototype. Suppose that the germination of the first portion of straw according to the proposed method is carried out in 6 cultivation vessels placed in a large container together with two vessels containing a previously sprouted substrate (Fig. 4). Germination of the second portion of straw is carried out after placing the vessels in the ferrule (Fig. 3). The dimensions of the cultivation vessels, oversized containers and clips are the same as in the example described above. As noted in the example, the germination of straw in the full volume of the cultivation vessel takes 20 days. The total internal volume of six vessels occupied by straw is 17 dm 3 . If we neglect the thickness of the walls of the vessels, then to place 17 dm 3 of straw, you will need a cubic large-sized container with a rib size of 260 mm. With a frontal spread rate of the mycelium of 5 mm per day, germination of 17 dm 3 of straw will take 52 days. The gain in time during colonization of the substrate is due to the fact that in the proposed method, the mycelium spreads from the inoculum in several directions, and in the prototype in one direction.
Кроме того, в сравнении с другими способами нестерильного выращивания вешенки предлагаемый способ, не уступая в урожайности, обеспечивает экономию посевного материала и упрощает организацию производства, поскольку при этом не требуется покупки или раскрытия "ноу-хау", применения беномила и препарата "Custos". In addition, in comparison with other methods of non-sterile cultivation of oyster mushrooms, the proposed method, not inferior in yield, provides savings in seed and simplifies the organization of production, since it does not require the purchase or disclosure of "know-how", the use of benomyl and the drug "Custos".
Источники информации
1. Gramss G. Das sterilblockverfahren im Pleurotus-anbau. Der Champignon, 1977, N 192, s. 18-29.Sources of information
1. Gramss G. Das sterilblockverfahren im Pleurotus-anbau. Der Champignon, 1977, N 192, s. 18-29.
2. Heltay I. Austernpilzproduktion in grosstechnischem Masstab unter Anwendung moderner Techniken und biotechnologischen Verfahrens. Der Champignon, 1985, N 88, s. 20-40. 2. Heltay I. Austernpilz production in grosstechnischem Masstab unter Anwendung moderner Techniken und biotechnologischen Verfahrens. Der Champignon, 1985, N 88, s. 20-40.
3. А.с. 561489 СССР. Способ подготовки питательной среды из целлюлозосодержащих веществ для выращивания грибов. 3. A.S. 561489 USSR. A method of preparing a nutrient medium from cellulose-containing substances for growing mushrooms.
4. А.с. 1427610 СССР. Субстрат для выращивания грибов из рода Pleurotus и способ его получения. 4. A.S. 1427610 USSR. Substrate for growing fungi from the genus Pleurotus and method for its preparation.
5. Медведев В.А. Гриб вешенка. Технология выращивания. М. 1993, с. 28. 5. Medvedev V.A. Oyster mushroom. Growing technology. M. 1993, p. 28.
6. Schies U. und Lilley J. Untersuchungen zur Entwicklung der Mikroorganismenpopulation im Verlauf der semianaeroben Fermtntation. Der Champignon, 1989, N 330, s.14-25. 6. Schies U. und Lilley J. Untersuchungen zur Entwicklung der Mikroorganismenpopulation im Verlauf der semianaeroben Fermtntation. Der Champignon, 1989, N 330, s. 14-25.
7. Muller J. Anbauverhalten von Austernpilzstammen auf semi-anaerob fermentierten Erbsenstroch. Der Champignon, 1991, N 361, s.35-43. 7. Muller J. Anbauverhalten von Austernpilzstammen auf semi-anaerob fermentierten Erbsenstroch. Der Champignon, 1991, N 361, s. 35-43.
8. Harris B. Growing Shiitake commercially. A practical manual for production of Japanese forest mushrooms. Science Techn. piblishers. Madison, Wisconsin USA, 1986, 72 p. 8. Harris B. Growing Shiitake commercially. A practical manual for production of Japanese forest mushrooms. Science Techn. piblishers. Madison, Wisconsin USA, 1986, 72 p.
9. Заявка N 0075614 ЕПВ. Способ селективного получения мицелиев и плодовых тел базидиомицетов, применение мицетов и устройство для осуществления способа. Изобретения в СССР и за рубежом, 1984, 1, 3, с. 20. 9. Application N 0075614 EPO. A method for the selective production of mycelia and fruiting bodies of basidiomycetes, the use of mycetes and a device for implementing the method. Inventions in the USSR and abroad, 1984, 1, 3, p. twenty.
10. Stanculescu B. Cultura ein percilor Pleurotus florida pe saport format din paie de grin sivrejide mazare. Producta vegetata Horticultura, 1986, N 5, 12-13. 10. Stanculescu B. Cultura ein percilor Pleurotus florida pe saport format din paie de grin sivrejide mazare. Producta vegetata Horticultura, 1986, N 5, 12-13.
11. Заявка N 48-39540 Японии. Способ выращивания базидиомицетов на твердой среде. Изобретения в СССР и за рубежом, 1974, 1, 15, с. 88. 11. Application N 48-39540 of Japan. A method of growing basidiomycetes on a solid medium. Inventions in the USSR and abroad, 1974, 1, 15, p. 88.
12. Заявка N 2-11207 Японии. Способ выращивания съедобных грибов. - Изобретения стран мира, 1991, 1, 2, с. 44. 12. Application N 2-11207 of Japan. A method of growing edible mushrooms. - Inventions of the countries of the world, 1991, 1, 2, p. 44.
13. Stolzer S. und Grabbe K. Massnahmer zur Verhinderung des Schimmelpilzbefalls im Pleurotusanbau auf Weizenstroch. Der Champignon, April 1991, s.20. 13. Stolzer S. und Grabbe K. Massnahmer zur Verhinderung des Schimmelpilzbefalls im Pleurotusanbau auf Weizenstroch. Der Champignon, April 1991, s.20.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU94042309A RU2086101C1 (en) | 1994-11-25 | 1994-11-25 | Oyster mushroom growing method |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU94042309A RU2086101C1 (en) | 1994-11-25 | 1994-11-25 | Oyster mushroom growing method |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU94042309A RU94042309A (en) | 1996-09-20 |
| RU2086101C1 true RU2086101C1 (en) | 1997-08-10 |
Family
ID=20162689
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU94042309A RU2086101C1 (en) | 1994-11-25 | 1994-11-25 | Oyster mushroom growing method |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2086101C1 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2023208879A1 (en) * | 2022-04-28 | 2023-11-02 | Alexander Robin Kerpe | Method and device for growing mushrooms |
-
1994
- 1994-11-25 RU RU94042309A patent/RU2086101C1/en active
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Заявка Японии N 2-11207, кл. A 01 G 1/04, 1990. * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2023208879A1 (en) * | 2022-04-28 | 2023-11-02 | Alexander Robin Kerpe | Method and device for growing mushrooms |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU94042309A (en) | 1996-09-20 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN105993590B (en) | A kind of cultural method of Morchella esculenta (L.) Pers sporophore | |
| CN107205349B (en) | Multi-media structures containing growth enhancing additives | |
| CN103891524B (en) | The method of glossy ganoderma dish garden formula cultivation and the medium for cultivating ganoderma | |
| CN105325244B (en) | A kind of method that use in conjunction AMF carries out the cultivation of citrus container Va Mycorrhiza Seedling with PGPR microbial inoculums | |
| CN103907481B (en) | Process for manufacturing high-quality morchella strains | |
| CN106489542A (en) | A kind of Ganoderma tsugae quick-growing cultivation method | |
| CN104885786A (en) | Artificial cultivation method of morchella conica | |
| CN110651666B (en) | Culture medium compressed block formula, preparation method and culture method thereof | |
| CN104686196B (en) | Method for preserving and separating toadstool strain through sporocarp dried in shade | |
| CN104285677B (en) | A kind of preparation method of edible mushroom peg wood bacterial classification | |
| JP5489106B2 (en) | Tomato cultivation method | |
| CN104186202B (en) | A kind of factorial praluction Lentinus Edodes is breathed freely the method for bacterium bag | |
| US4977702A (en) | Process for growing Pleurotus | |
| CN109845516B (en) | Device and method for breeding blueberry specific symbiotic mycorrhizal fungi | |
| CN107691105A (en) | The breeding method and its cultural method of a kind of hickory chick | |
| CN1080463A (en) | Wheat straw, straw raw material bag cultivating flat mushroom high yield technique | |
| CN105815002B (en) | A kind of method for culturing seedlings of dendrobium devonianum seeds and symbiotic effects mixed seeding | |
| CN109795794A (en) | A method of preparing degradation material | |
| RU2086101C1 (en) | Oyster mushroom growing method | |
| CN106416745A (en) | High-yield cultivation method of pholiota nameko | |
| CN101138322A (en) | Cremastra appendiculata tissue culturing rhizome fungus root seedling raising technique | |
| CN208821351U (en) | A kind of dictyophora culture medium | |
| CN108299121A (en) | The implantation methods of hickory chick | |
| CN108617401A (en) | A kind of cultivation of wild high-quality green tea mushroom strain and cultural method | |
| CN1091343C (en) | Fast hybrid seeds producing technology and seed bed with windbreaks culture process for 'pinggu' mushroom |