RU2059233C1 - Способ определения изоточки полиэлектролитов - Google Patents

Способ определения изоточки полиэлектролитов Download PDF

Info

Publication number
RU2059233C1
RU2059233C1 SU5058289A RU2059233C1 RU 2059233 C1 RU2059233 C1 RU 2059233C1 SU 5058289 A SU5058289 A SU 5058289A RU 2059233 C1 RU2059233 C1 RU 2059233C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
solution
point
polyelectrolytes
plateau
isopoint
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
В.Н. Васильев
Е.Л. Куйда
Ю.Н. Омельченко
В.И. Заболоцкий
Original Assignee
Инновационное предприятие "Мембранная технология"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Инновационное предприятие "Мембранная технология" filed Critical Инновационное предприятие "Мембранная технология"
Priority to SU5058289 priority Critical patent/RU2059233C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2059233C1 publication Critical patent/RU2059233C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

Использование: анализ определения физико-химических показателей полиэлектролитов, в частности белков. Сущность изобретения: позволяет практически определить изоточку полиэлектролитов. Раствор полиэлектролита подвергают электродиализу с применением ионоселективных мембран, снимают кинетические кривые зависимостей pH и изоточку определяют в момент одновременного выхода зависимости на плато. 6 ил. 1 табл.

Description

Изобретение касается анализа физико-химических показателей полиэлектролитов, в частности белков.
Известен способ определения изоэлектрической точки (ИЭТ) белков методом изоэлектрофокусирования в искусственном градиенте рН, который создается с помощью набора синтетических амфолитов [1] Чаще применяют не просто раствор, а гель агарозы или проводят процесс электрофореза в градиенте плотности сахарозы. Это используется для исключения размывания сфокусированной зоны. Белок перемещается в электрическом поле в сторону рН, соответствующего ИЭТ, т. е. туда, где его суммарный заряд равен нулю.
Белки, природные амфолиты, содержат в своей структуре ионогенные группы различной полярности, степень ионизации которых зависит от рН и ионного состава раствора. Соотношение нейтральных и заряженных групп определяет суммарный заряд молекулы белка, который может быть отличным от нуля. В случае, когда молекула имеет заряд равный нулю, белок не может перемещаться в электрическом поле; рН такого раствора называют изоэлектрической точкой. На положение ИЭТ существенное влияние может оказывать ионное окружение молекулы белка. Поэтому более строгим понятием является изоионная точка (ИИТ), которую определяют как изоэлектрическую точку в свободном от солей растворе. Так, изоэлектрическая точка бычьего сывороточного альбумина 5,4 в 0,15 М NaCl, а его изоионная точка равна 4,9 [2] Изоионную точку определяют либо аппроксимацией экспериментальных данных на нулевую ионную силу раствора, либо путем сложных математических расчетов, требующих знания структуры и конформации белка.
Целью изобретения является практическое определение изоионной точки полиэлектролитов, в частности белков.
Сущность способа заключается в том, что раствор полиэлектролита подвергают электродиализу с применением ионселективных мембран, в процессе которого регистрируют кинетическую зависимость рН и определяют изоинную точку полиэлектролита в момент выхода зависимости на плато.
На фиг. 1 представлена схема экспериментальной установки; на фиг. 2-6 кинетические кривые зависимости рН при определении изоионной точки различных полиэлектролитов методом электродиализа (соответственно примеры 1-5).
Экспериментальная установка состоит из катионообменной мембраны 1, анионообменной мембраны 2, камеры 3 обессоливания, камеры 4 концентрирования, насоса 5, источника 6 постоянного напряжения, рН-метра 7 и самописца 8.
Исходно полиэлектролит, в частности белок, находится в буферном растворе, в камерах 4 концентрирования циркулирует дистиллированная вода. Под действием электрического поля возникает направленный перенос ионов. К катоду двигаются катионы, к аноду анионы. На своем пути ионы встречают катионообменные мембраны 1, которые селективно пропускают катионы, а ионообменные мембраны 2, которые селективно пропускают анионы. Таким образом, происходит деионизация удаление ионизированных примесей из исходного раствора в камере 3 обессоливания. Пройдя через ионообменные мембраны 1 и 2, ионы попадают в камеру 4 концентрирования, где рекомбинируют с образованием исходных соединений. По мере удаления из камеры 3 обессоливания 3 ионов и нарастания концентрации последних в камере 4 концентрирования происходит перераспределение проводников электричества в системе, что сопровождается в потенциостатическом варианте электродиализа нарастанием электрического тока до момента уравнивания концентраций ионов в камерах 3 и 4 обессоливания и концентрирования соответственно. При дальнейшем обессоливании величина тока в электродиализной ячейке падает (растет ее общее электросопротивление) и, наконец, при достаточно значительной степени обессоливания возникает предельное состояние на мембранах 1 и 2, которое сопровождается разложением воды на границе раздела мембрана-раствор с поставкой в раствор ионов гидроксила и гидроксония. Предельное состояние для анионообменной мембраны 2 наступает при более высоких значениях тока, т.е. в первую очередь в зону камеры обессоливания 3 будут поступать ионы гидроксония, что и приводит к закислению обессоливаемого раствора. В дальнейшем аналогичное состояние наступает и на катионообменной мембране 1. В раствор начинают поступать гидроксил-ионы и, как следствие, рН раствора асимптотически стремится к нейтральному. Несмотря на появление дополнительных переносчиков электричества (Н+ и ОН-) процесс удаления иных ионогенных примесей не прекращается. Одновременно в камере 3 обессоливания имеет место диссоциация ионогенных групп исследуемого объекта (белка). Противоионы ионогенных групп объекта под действием электрического поля также удаляются из зоны камеры 3 обессоливания, как и ионы примесей. Система стремится к такому состоянию, которое характеризуется полным отсутствием в зоне обессоливания ионных низкомолекулярных примесей. В этом случае рН исследуемого раствора определяется соотношением зарядов ионогенных групп объекта (белка), и кинетическая кривая зависимости рН выходит на плато. Раствор приобретает величину рН, соответствующую изоэлектрической точке белка в отсутствии иных органических или минеральных противоионов, т.е. изоионной точке.
П р и м е р 1. Для экспериментального определения изоионной точки уреазы 50 мл ее раствора в буфере (30 мм tris-HCl + 0,3 M NaCl, рН 7,8) подвергали электродиализу с использованием чередующихся катионообменных 1 МК-40 и анионообменных 2 МА-40 мембран, образующих одну камеру 3 обессоливания и две камеры 4 концентрирования. В камеру 3 обессоливания подавали исходный раствор белка, в камеру 4 концентрирования дистиллированную воду. Объем растворов, циркулирующих в камерах 4 концентрирования, равен 250 мл/мин. Проточности растворов в камерах были равны 10 мл/мин. Электродиализ проводили в циркуляционном режиме при постоянном напряжении на электродах 40В. Рабочая площадь каждой мембраны 1 и 2 равна 4 см2. Межмембранное расстояние 1 см. Материал электродов платина. Процесс считали законченным по выходу кривой изменения рН на плато (рН 5,00). ИИТ 5,00.
П р и м е р 2. Экспериментальное определение изоинной точки папаина проводили в аналогичных примеру 1 условиях. Процесс считали законченным по выходу кривой изменения рН на плато (рН 9,10). ИИТ 9,10.
П р и м е р 3. Экспериентальное определение изоионной точки инсулина КРС проводили в аналогичных примеру 1 условиях. Процесс считали законченным по выходу кривой изменения рН на плато (рН 5,85). ИИТ 5,85.
П р и м е р 4. Экспериментальное определение изоионной точки БСА проводили в аналогичных примеру 1 условиях. Процесс считали законченным по выходу кривой изменения рН на плато (рН 4,95). ИИТ 4,95.
П р и м е р 5. Для определения изоионной точки уреазы использовали также ее раствор в карбонатном буфере (0,2М Na2CO3 + NaHCO3 + 0,2 M NaCl, РН 10,0). Условия эксперимента аналогичны описанным в примере 1. Процесс считали законченным по выходу кривой изменения рН на плато (рН 5,05). ИИТ 5,05.
Условия экспериментов и результаты приведены в таблице.
Как видно из таблицы, значения изоточек различных белков, полученных предлагаемым способом, хорошо согласуются с полученными по известному способу. Так, например, значение изоточки уреазы в различных буферных системах равна 5,00 и 5,05, а изоточка этого белка, полученная известным способом, соответствует 5,00. Аналогичное совпадение данных наблюдается и для других белков, приведенных в таблице.
Сравнение значений изоточек различных белков, определенных известным и предлагаемым способами представлены в таблице.

Claims (1)

  1. СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ИЗОТОЧКИ ПОЛИЭЛЕКТРОЛИТОВ, заключающийся в наложении электрического поля на исследуемый раствор полиэлектролита, отличающийся тем, что раствор полиэлектролита подвергают электродиализу с применением ионселективных мембран, в процессе которого регистрируют кинетическую зависимость рН и определяют изоионную точку полиэлектролита в момент выхода зависимости на плато.
SU5058289 1992-08-10 1992-08-10 Способ определения изоточки полиэлектролитов RU2059233C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5058289 RU2059233C1 (ru) 1992-08-10 1992-08-10 Способ определения изоточки полиэлектролитов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5058289 RU2059233C1 (ru) 1992-08-10 1992-08-10 Способ определения изоточки полиэлектролитов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2059233C1 true RU2059233C1 (ru) 1996-04-27

Family

ID=21611379

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5058289 RU2059233C1 (ru) 1992-08-10 1992-08-10 Способ определения изоточки полиэлектролитов

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2059233C1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Ригли К.В. Электрофокусирование белков в кн. Новые методы анализа аминокислот, пептидов и белков/ Под. ред. А.Нидервизера. М.: Мир, 1974, с. 297. 2. Ригли К.В. Электрофокусирование белков в кн. Новые методы анализа аминокислот, пептидов и белков./ Под ред. А.Нидервизера. М.: Мир, 1974, с. 298. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4396477A (en) Separation of proteins using electrodialysis-isoelectric focusing combination
Nelson et al. On-line partial filling micelllar electrokinetic chromatography-electrospray ionization mass spectrometry
DE60112276T2 (de) Elektrophoretische trennung von verbindungen
EP0566784B1 (en) Polyacrylamide gel for electrophoresis
EP0369945A2 (en) Process and device for separating electrically charged macromolecular compounds by forced-flow membrane electrophoresis
US20060037860A1 (en) Small separation apparatus
Arnett et al. Investigation of the mechanism of pH‐mediated stacking of anions for the analysis of physiological samples by capillary electrophoresis
EP0067549B1 (en) Isoelectric focusing techniques and devices
Bier et al. A new buffering system and its use in electrophoresis and isoelectric focusing
JPS527390A (en) High normality ion exchange materials and its manufacture
US20070261962A1 (en) Separation Systems with Charge Mosaic Membrane
US4670119A (en) Isoelectric focusing device and process
Eliseeva et al. Effects of circulation and facilitated electromigration of amino acids in electrodialysis with ion-exchange membranes
Oehrle Analysis of anions in drinking water by capillary ion electrophoresis
Lee et al. Electrokinetic transport of amino acids through a cation exchange membrane
RU2059233C1 (ru) Способ определения изоточки полиэлектролитов
Nguyen et al. Stabilization of pH gradients in buffer electrofocusing on polyacrylamide gel
Wood A laboratory electrodialyser and desalter
Bolger et al. Performance of uncoated and coated capillaries in free zone electrophoresis and isoelectric focusing of proteins
Wagner et al. Free flow field step focusing-a new method for preparative protein isolation
US4911808A (en) Mobilization of focused protein zones by ion introduction
Gianazza et al. Which electrodic solutions for immobilized pH gradients?
Deml et al. Continuous micropreparative trapping in carrier ampholyte-free isoelectric focusing
SU1042770A1 (ru) Способ разделени ионов
Shaposhnik et al. Assisted electromigration of bipolar ions through ion-selective membranes in glycine solutions