RU2050020C1 - Method for modeling secondary immunodeficiency state of t- cell type - Google Patents

Method for modeling secondary immunodeficiency state of t- cell type Download PDF

Info

Publication number
RU2050020C1
RU2050020C1 RU92001064A RU92001064A RU2050020C1 RU 2050020 C1 RU2050020 C1 RU 2050020C1 RU 92001064 A RU92001064 A RU 92001064A RU 92001064 A RU92001064 A RU 92001064A RU 2050020 C1 RU2050020 C1 RU 2050020C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
serum
pertussis
antigen
dose
thymus
Prior art date
Application number
RU92001064A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU92001064A (en
Inventor
Е.П. Москаленко
С.И. Ильина
С.Ф. Уразовский
З.Т. Тагиров
Original Assignee
Москаленко Екатерина Петровна
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Москаленко Екатерина Петровна filed Critical Москаленко Екатерина Петровна
Priority to RU92001064A priority Critical patent/RU2050020C1/en
Publication of RU92001064A publication Critical patent/RU92001064A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2050020C1 publication Critical patent/RU2050020C1/en

Links

Images

Abstract

FIELD: medicine. SUBSTANCE: method involves administering agglutinating pertussis serum to experimental animals at a single intraperitoneal dose of 0.10 ml. EFFECT: simplified method; improved reproducibility. 6 tbl

Description

Изобретение относится к медицине, преимущественно к иммунологии, и может найти применение для моделирования недостаточности иммунной системы по тимусзависимому типу с целью изучения патогенетических механизмов развития вторичного иммунодефицитного состояния, включая и синдром вторичного иммунодефицита, разработки новых методов иммунокоррекции, принципов лекарственной терапии и прогнозирования лечения. The invention relates to medicine, mainly to immunology, and can be used to simulate a thymus-dependent type of immune system deficiency in order to study the pathogenetic mechanisms of the development of secondary immunodeficiency, including secondary immunodeficiency syndrome, the development of new methods of immunocorrection, principles of drug therapy and prediction of treatment.

В последние годы увеличилось число заболеваний, в основе которых лежит нарушение различных звеньев иммунной системы. К ним относятся аутоиммунные заболевания, аллергозы, поствакцинальные осложнения, вялотекущие хронические инфекции и другие болезни, развитие которых обусловлено угнетением Т- или В-систем иммунитета. Особое значение эта проблема приобретает при синдроме вторичного иммунодефицита (СПИД), изучении патогенеза, способах лечения, прогнозирования течения этого заболевания. До сих пор нет достаточно эффективных способов иммуносупрессивной и иммуностимулирующей терапии таких заболеваний, вследствие отсутствия расшифровки их возникновения и участия различных биологически активных веществ макроорганизма в данных процессах и реакциях. Поэтому разработка простых и эффективных способов моделирования вторичных иммунодефицитных состояний тимусзависимого и тимуснезависимого характера является актуальной проблемой прикладной и фундаментальной иммунологии. In recent years, the number of diseases based on the violation of various parts of the immune system has increased. These include autoimmune diseases, allergoses, post-vaccination complications, sluggish chronic infections and other diseases, the development of which is due to inhibition of T- or B-systems of immunity. This problem is of particular importance in the case of secondary immunodeficiency syndrome (AIDS), the study of pathogenesis, methods of treatment, and the prognosis of the course of this disease. Until now, there are no sufficiently effective methods of immunosuppressive and immunostimulating therapy of such diseases, due to the lack of interpretation of their occurrence and the participation of various biologically active substances of the macroorganism in these processes and reactions. Therefore, the development of simple and effective methods for modeling secondary immunodeficiency states of a thymus-dependent and thymus-independent nature is an urgent problem of applied and fundamental immunology.

Проведенными исследованиями по патентной и научной медицинской литературе выявлены различные способы моделирования вторичных иммунодефицитных состояний. Так, в работах А.В.Максимова "Экспериментальное изучение аутоиммунной гемолитической анемии и влияние иммуномодуляторов на ее течение" (1987); Б. Н. Софронова, Т.Г.Шемеровской "Иммунологическая толлерантность, индуцируемая у взрослых иммунореактивных организмов" ж. Иммунология, 1990, N 4, с. 4-6; а также в авт. св. N 1005157 "Способ моделирования гиперфункции иммунной системы", Лубэ В.М. с соавт. и авт.св. N 1205169 "Способ моделирования иммунодефицитного состояния", Сизякина Л.П с соавт. описаны способы, предусматривающие подавление реакций иммунной системы с помощью химических факторов лекарственных иммунодепрессантов, таких как циклофосфомид, батриден, гепарин, антилимфоцитарный глобулин и физических факторов низкочастотного ультразвука или жесткого рентгеновского облучения. Этим способам свойственны следующие недостатки: общее недифференцированное антиметаболическое влияние на организм, необходимость многократного использования больших доз препаратов для получения ожидаемого эффекта, а также трудность точного подбора эффективных, но не смертельных доз и схем применения иммунодепрессантов, сочетая их с выраженным антигенным воздействием. Conducted research on patent and scientific medical literature revealed various methods for modeling secondary immunodeficiency states. So, in the works of A.V. Maksimov "An experimental study of autoimmune hemolytic anemia and the effect of immunomodulators on its course" (1987); B. N. Sofronova, T. G. Shemerovskaya "Immunological tolerance induced in adult immunoreactive organisms" g. Immunology, 1990, N 4, p. 4-6; as well as in ed. St. N 1005157 "A method for modeling the hyperfunction of the immune system", Lube V.M. et al. and auth. N 1205169 "Method for modeling an immunodeficiency state", Sizyakina L.P. et al. Describes methods that suppress immune system reactions using chemical factors of medicinal immunosuppressants, such as cyclophosphomide, batriden, heparin, antilymphocytic globulin, and physical factors of low-frequency ultrasound or hard x-ray radiation. The following disadvantages are characteristic of these methods: the general undifferentiated antimetabolic effect on the body, the need for multiple use of large doses of drugs to obtain the expected effect, and the difficulty in accurately selecting effective, but not fatal doses and immunosuppressant regimens, combining them with pronounced antigenic effects.

Прототипом настоящего изобретения является способ моделирования вторичного иммунодефицитного состояния, авт.св. N 1476517, Сизякина Л.П. Москаленко Е.П. Клембицкая И.В. Способ заключается в следующем. Подопытным животным (белые беспородные мыши-самцы массой 10-12 г) вводят гамма-глобулин против СКО (субкомиссуральный орган) мозга, полученный следующим образом: у крупного рогатого скота выделяется область четверохолмия мозга и иссекается субкомиссуральный орган, расположенный под задней комиссурой мозга. Затем 1 г СКО мозга измельчается с 1 мл стерильного физраствора до получения одноpодной консистенции и смешивается с 2 мл полного адъюванта Фрейнда, этой эмульсией иммунизируют собак в подушечки задних лап и в кожу спины из расчета 0,2 мл/кг массы тела. Через 14 дней после иммунизации у собак берут кровь, получают гипериммунную сыворотку, выделяют из нее гамма-глобулиновую фракцию спиртовым осаждением. Полученный гамма-глобулин против СКО мозга в дозе 0,1 мг внутрибрюшинно однократно вводят беспородным белым мышам-самцам массой 10-12 г. Для контроля полученных изменений в иммунной системе у животных изучают первичный иммунный ответ на эритроциты барана. Этому способу свойственны следующие недостатки: длительность получения гамма-глобулина против СКО, нестандартность получаемого препарата, вследствие чего при моделировании вторичного иммунодефицита возникает ряд побочных реакций, большая вариабельность получаемых результатов, искажающих воспроизводимую модель. The prototype of the present invention is a method for modeling a secondary immunodeficiency state, ed. N 1476517, Sizyakina L.P. Moskalenko E.P. Klembitskaya I.V. The method is as follows. Experimental animals (white outbred male mice weighing 10-12 g) are injected with gamma globulin against SKO (subcommissural organ) of the brain, obtained as follows: in cattle, the area of the quadruple of the brain is allocated and the subcommissure organ located under the posterior commissure of the brain is excised. Then, 1 g of brain RMSE is crushed with 1 ml of sterile saline solution until a uniform consistency is obtained and mixed with 2 ml of Freund's complete adjuvant. Dogs are immunized with this emulsion in the pads of the hind legs and in the back skin at the rate of 0.2 ml / kg body weight. 14 days after immunization, dogs were bled, hyperimmune serum was obtained, and a gamma globulin fraction was isolated from it by alcohol precipitation. The resulting gamma globulin against brain RMS at a dose of 0.1 mg was intraperitoneally administered once to outbred white male mice weighing 10-12 g. To control the changes in the immune system in animals, the primary immune response to sheep red blood cells was studied. The following disadvantages are characteristic of this method: the duration of obtaining gamma globulin against SKO, the non-standardity of the preparation obtained, as a result of which, when modeling secondary immunodeficiency, a number of adverse reactions occur, a large variability of the results that distort the reproducible model.

Целью настоящего изобретения является упрощение способа и повышение воспроизводимости модели за счет применения стандартного препарата. The aim of the present invention is to simplify the method and increase the reproducibility of the model through the use of a standard preparation.

Способ осуществляется следующим образом. Для осуществления способа используют коклюшную агглютинирующую сыворотку, выпускаемую Московским институтом эпидемиологии и микробиологии АМН СССР им. Н.Ф.Гамалеи. Модель вторичного иммунодефицитного состояния воспроизводят на мышах-самцах путем введения в организм внутрибрюшинно коклюшной агглютинирующей сыворотки в дозе 0,1 мл однократно. Для контроля полученных изменений в иммунной системе у экспериментальных животных изучали первичный иммунный ответ к эритроцитам барана 3 (тимусзависимый антиген) и брюшнотифозному Ви-антигену (тимуснезависимый антиген). Данные исследований свидетельствуют о развитии вторичного иммунодефицитного состояния при отсутствии иммунного ответа к эритроцитам барана и наличии иммунных реакций к брюшнотифозному Ви-антигену. The method is as follows. To implement the method using pertussis agglutinating serum, manufactured by the Moscow Institute of Epidemiology and Microbiology of the USSR Academy of Medical Sciences N.F. Gamalei. The model of the secondary immunodeficiency state is reproduced on male mice by introducing into the body an intraperitoneal pertussis agglutinating serum in a dose of 0.1 ml once. To control the changes in the immune system, experimental animals studied the primary immune response to sheep erythrocytes 3 (thymus-dependent antigen) and typhoid Vi antigen (thymus-independent antigen). Research data indicate the development of a secondary immunodeficiency state in the absence of an immune response to sheep erythrocytes and the presence of immune responses to typhoid Vi antigen.

Это подтверждается следующими данными: 2-м белым беспородным мышам-самцам массой 14 г ввели коклюшную агглютинирующую сыворотку серии 184, полученную из Московского института эпидемиологии и микробиологии АМН СССР им. Н. Ф.Гамалеи в дозе 0,1 мл внутрибрюшинно однократно. Для контроля состояния иммунной системы через 24 ч после введения препарата одно животное иммунизировали эритроцитами барана (тимусзависимый антиген) в дозе 1 х 108 в объеме 0,5 мл. Второе животное иммунизировали брюшнотифозным Ви-антигеном в дозе 5 мкг/мышь в том же объеме. Через 5 сут после инокуляции тест-антигенов определяли уровень антител в сыворотке крови животных: у первой мыши к эритроцитам барана (ЭБ) в реакции геммагглютинации, у второй к брюшнотифозному Ви-антигену в реакции пассивной геммагглютинации.This is confirmed by the following data: 2 18 white mongrel male mice weighing 14 g were administered pertussis agglutinating serum of the 184 series, obtained from the Moscow Institute of Epidemiology and Microbiology of the USSR Academy of Medical Sciences N. F. Gamalei at a dose of 0.1 ml intraperitoneally once. To monitor the state of the immune system 24 hours after drug administration, one animal was immunized with ram erythrocytes (thymus-dependent antigen) in a dose of 1 x 10 8 in a volume of 0.5 ml. The second animal was immunized with typhoid Vi antigen at a dose of 5 μg / mouse in the same volume. 5 days after the inoculation of test antigens, the level of antibodies in the blood serum of animals was determined: in the first mouse to sheep erythrocytes (EB) in the hemmagglutination reaction, in the second mouse to typhoid Vi antigen in the reaction of passive hemmagglutination.

Данные исследований, представленные в таблице 1, свидетельствуют о развитии вторичного иммунодефицитного состояния по Т-клеточному типу, т.е. подавление имунной реакции к тимусзависимому антигену (эритроциты барана), не касаясь формирования иммунного ответа к тимуснезависимому антигену (брюшнотифозный Ви-антиген). The research data presented in table 1 indicate the development of a secondary immunodeficiency state according to the T-cell type, i.e. suppression of the immune response to the thymus-dependent antigen (sheep erythrocytes), without touching the formation of an immune response to the thymus-independent antigen (typhoid Vi antigen).

Применение способа позволяет упростить воспроизведение модели вторичного иммунодефицита по Т-клеточному типу и избежать вариабельности результатов. The application of the method allows to simplify the reproduction of the model of secondary immunodeficiency by T-cell type and to avoid variability of the results.

Современные представления о способе поддержания гомеостаза свидетельствуют о том, что наибольшее значение имеют те микроорганизмы, реакция на которые может быть направлена на клетки с иммуносупрессивной активностью (Т-супрессоры), следствием чего является развитие системной аутоагрессии. В отношении коклюшной вакцины интерес представляет факт антигенного сходства микробных субстанций с веществом головного мозга млекопитающих (Брусина Л.И. Сапожникова А. М. Перекрестные реакции между антигенами микобактерий БЦЖ, бактерий коклюша и мозговой тканью человека. Ж. Иммунология. 1986, N 6, с. 55-58), которое в свою очередь включает Thy-1 антиген-маркер Т-лимфоцитов (Белокрылов Г. А. с соавт. "Thy-1 антиген; как стимулятор иммуногенеза". Ж. Иммунология, 1982, N 6, с.63). Исходя из общности антигенных детерминант можно предположить воздействие противококлюшных антител на Thy-позитивные клетки. В нашей лаборатории были проведены опыты по изучению механизма действия противококлюшных антител на иммунную систему взрослых иммунореактивных организмов. Для этого отдельные порции противококлюшных антител истощали гомогенатами головного мозга, тимоцитами и отмытой взвесью коклюшных микробов, а затем изучали влияние истощенных сывороток на реакции иммунитета. Результаты опытов показали, что нативная коклюшная сыворотка, а также сыворотка, истощенная гомогенатами печени и эритроцитами, оказывали выраженный супрессивный эффект на формирование гуморальных реакций к тимусзависимому антигену. В том случае, когда истощение коклюшной сыворотки проводили гомогенатами головного мозга, тимоцитами, а также взвесью коклюшных бактерий происходила отмена cупрессии иммунологических реакций. Это свидетельствует о том, что наблюдаемый эффект иммуносупрессии связан с перекрестом антигенных детермитант между тканью головного мозга, тимоцитами и микробными антигенами коклюшных бактерий. Modern ideas about the method of maintaining homeostasis indicate that those microorganisms are most important, the reaction to which can be directed to cells with immunosuppressive activity (T-suppressors), which results in the development of systemic auto-aggression. Concerning the pertussis vaccine, the fact of antigenic similarity of microbial substances with the substance of the brain of mammals is interesting (Brusina L.I. Sapozhnikova A.M. Cross-reactions between antigens of BCG mycobacteria, pertussis bacteria and human brain tissue. J. Immunology. 1986, N 6, S. 55-58), which in turn includes a Thy-1 antigen marker of T-lymphocytes (G. Belokrylov et al. "Thy-1 antigen; as a stimulator of immunogenesis". J. Immunology, 1982, N 6, p.63). Based on the generality of antigenic determinants, we can assume the effect of anti-pertussis antibodies on Thy-positive cells. In our laboratory, experiments were carried out to study the mechanism of action of anti-pertussis antibodies on the immune system of adult immunoreactive organisms. For this, individual portions of antitussis antibodies were depleted by brain homogenates, thymocytes and washed suspension of pertussis microbes, and then the effect of depleted sera on the immune response was studied. The results of the experiments showed that native pertussis serum, as well as serum depleted by liver homogenates and erythrocytes, had a pronounced suppressive effect on the formation of humoral reactions to the thymus-dependent antigen. In the case when the depletion of pertussis serum was carried out by brain homogenates, thymocytes, and also a suspension of pertussis bacteria, suppression of immunological reactions was canceled. This suggests that the observed effect of immunosuppression is associated with a cross of antigenic determinants between brain tissue, thymocytes and microbial antigens of pertussis bacteria.

Снятие эффекта после истощения сывороток тимоцитами или суспензией головного мозга свидетельствует о том, что мишенью для коклюшных антител являются Т-клетки. Вероятно при этом может происходить делеция предшественников антигенреактивных Т-клеток за счет механизма, именуемого апоптозом, связанного с деградацией ДНК (Smider R. Lees R. e.a. //J. epx. Med, 1989, vol, 169, N 6, р.2149; Smith Ch. Williams G.T. Kingston R. e.a. // Nature. 1989, vol. 337, N 6203, р.181-184). The withdrawal of the effect after depletion of serum by thymocytes or a suspension of the brain indicates that the target for pertussis antibodies are T cells. This is likely to result in a deletion of antigen-reactive T cell precursors due to a mechanism called apoptosis associated with DNA degradation (Smider R. Lees R. ea // J. epx. Med, 1989, vol. 169, No. 6, p. 2149 ; Smith Ch. Williams GT Kingston R. ea // Nature. 1989, vol. 337, N 6203, p. 181-184).

В нижеприведенных данных представлены результаты по отработке оптимальных доз противококлюшной сыворотки, индуцирующих вторичное иммунодецифитное состояние по Т-клеточному типу. The following data presents the results on the development of optimal doses of antitussis serum, inducing a secondary immunodeficiency state according to the T-cell type.

Для изучения влияния разных доз коклюшной агглютинирующей сыворотки на формирование иммунодефицитного состояния в макроорганизме, белых беспородных мышей инокулировали коклюшной агглютинирующей сывороткой в дозах составляющих: 0,05 0,06 0,07 0,08 0,09 0,10 0,11 0,12 0,13 0,14 0,15 0,16 мл. Контрольных мышей инокулировали нормальной кроличьей сывороткой в тех же дозах. Спустя сутки, одну часть экспериментальных животных иммунизировали тимусзависимым (ЭБ) антигеном, а вторую часть тимусзависимым антигеном (Ви-антиген). Через 5 сут определяли уровень антител к ЭБ и Ви-антигену у опытных и контрольных животных. Результаты исследования, представленные в табл.2, показали, что оптимальной дозой для индукции вторичного иммунодефицитного состояния по Т-клеточному типу является доза коклюшной агглютинирующей сыворотки, составляющая 0,1 мл, которая приводит к 64-х кратному снижению титра антител к эритроцитам барана, регистрируемого в реакции гемагглютинации и не влияет на уровень антител к тимуснезависимому антигену. Введение коклюшной агглютинирующей сыворотки в дозах 0,09-0,08 мл подавляет уровень гуморального иммунитета к тимусзависимому антигену в 8-16 раз, а использование коклюшной сыворотки в дозах 0,06-0,05 мл практически не влияет на гуморальный ответ к эритроцитам барана. Увеличение дозы коклюшной агглютинирующей сыворотки с 0,11 до 0,16 дает такой же эффект, как и доза 0,10 мл, т.е. подавление гуморального ответа к тимусзависимому антигену соответствовало 64-х кратному снижению титра антител к эритроцитам барана, не касаясь уровня антительного ответа к тимусзависимому антигену. To study the effect of different doses of pertussis agglutinating serum on the formation of an immunodeficiency state in a macroorganism, white outbred mice were inoculated with pertussis agglutinating serum in doses of 0.05 0.06 0.07 0.08 0.09 0.10 0.11 0.12 0.13 0.14 0.15 0.16 ml. Control mice were inoculated with normal rabbit serum at the same doses. After a day, one part of the experimental animals was immunized with a thymus-dependent (EB) antigen, and the second part was thymus-dependent (V-antigen). After 5 days, the level of antibodies to EB and Vi antigen was determined in experimental and control animals. The results of the study, presented in Table 2, showed that the optimal dose for the induction of a secondary immunodeficiency state according to the T-cell type is the dose of pertussis agglutinating serum, which is 0.1 ml, which leads to a 64-fold decrease in the titer of antibodies to sheep erythrocytes, recorded in the hemagglutination reaction and does not affect the level of antibodies to the thymus-independent antigen. The administration of pertussis agglutinating serum in doses of 0.09-0.08 ml suppresses the level of humoral immunity to the thymus-dependent antigen by 8-16 times, and the use of pertussis serum in doses of 0.06-0.05 ml practically does not affect the humoral response to sheep erythrocytes . Increasing the dose of pertussis agglutinating serum from 0.11 to 0.16 gives the same effect as the dose of 0.10 ml, i.e. suppression of the humoral response to the thymus-dependent antigen corresponded to a 64-fold decrease in the titer of antibodies to sheep erythrocytes, without touching the level of antibody response to the thymus-dependent antigen.

Таким образом, оптимальной дозой коклюшной агглютинирующей сыворотки для индукции вторичного иммунодефицитного состояния по Т-клеточному типу является доза, составляющая 0,10 мл, так как уменьшение дозы коклюшной сыворотки с 0,09 мл и ниже было недостаточным для воспроизведения эффекта иммуносупрессии, а увеличение дозы сыворотки с 0,11 мл и выше считаем нецелесообразным ввиду неоправданно большого расхода используемого материала. Thus, the optimal dose of pertussis agglutinating serum for the induction of secondary immunodeficiency in the T-cell type is a dose of 0.10 ml, since reducing the dose of pertussis serum from 0.09 ml and below was insufficient to reproduce the effect of immunosuppression, and increasing the dose Serums with 0.11 ml and above are considered inappropriate due to the unreasonably high consumption of the material used.

Специфичность иммуносупрессии гуморального ответа к тимусзависимому антигену именно коклюшной агглютинирующей сывороткой проверяли экспериментами, связанными с использованием противобактериальной сыворотки другой специфичности антитоксической антистафилококковой сывороткой. Данные исследований представлены в табл.3. The specificity of the immunosuppression of the humoral response to a thymus-dependent antigen, namely, pertussis agglutinating serum, was verified by experiments involving the use of antibacterial serum of a different specificity antitoxic antistaphylococcal serum. The research data are presented in table.3.

Как видно из представленных результатов, обработка мышей антитоксической антистафилококковой сывороткой не приводит к индукции иммунодефицитного состояния и уровень антител к тимусзависимому антигену (ЭБ), выявляемый в РГА, не уступает уровню антител у мышей, обработанных нормальной сывороткой. As can be seen from the presented results, treatment of mice with antitoxic antistaphylococcal serum does not lead to the induction of an immunodeficiency state and the level of antibodies to the thymus-dependent antigen (EB) detected in the RGA is not inferior to the level of antibodies in mice treated with normal serum.

П р и м е р 1. Двум беспородным белым мышам внутрибрюшинно однократно ввели коклюшную агглютинирующую сыворотку в дозе 0,09 мл. Двум контрольным мышам ввели нормальную кроличью сыворотку в той же дозе. Через 24 ч контрольных и опытных животных проиммунизировали эритроцитами барана и Ви-антигеном. 5 сут. спустя определяли уровень антител к ЭБ и Ви-антигену. PRI me R 1. Two outbred white mice were injected intraperitoneally once pertussis agglutinating serum at a dose of 0.09 ml. Two control mice were injected with normal rabbit serum at the same dose. After 24 hours, control and experimental animals were immunized with sheep erythrocytes and Vi antigen. 5 days later, the level of antibodies to EB and Vi antigen was determined.

Как видно из табл.4 обработка мышей коклюшной агглютинирующей сывороткой в дозе 0,09 мл приводила к снижению уровня антител к ЭБ в 16 раз, что было недостаточным для полного воспроизведения эффекта иммуносупрессии по Т-клеточному типу. As can be seen from table 4, treatment of mice with pertussis agglutinating serum at a dose of 0.09 ml led to a 16-fold decrease in the level of antibodies to EB, which was insufficient to fully reproduce the effect of immunosuppression according to the T-cell type.

П р и м е р 2. Двум беспородным белым мышам внутрибрюшинно однократно ввели коклюшную агглютинирующую сыворотку в дозе 0,10 мл. Двум контрольным мышам ввели нормальную кроличью сыворотку в той же дозе. Через 24 ч контрольных и опытных животных проиммунизировали эритроцитами барана и брюшнотифозным Ви-антигеном. 5 сут спустя в сыворотке крови животных определяли уровень антител к ЭБ и Ви-антигену. PRI me R 2. Two outbred white mice were intraperitoneally injected once pertussis agglutinating serum in a dose of 0.10 ml. Two control mice were injected with normal rabbit serum at the same dose. After 24 hours, control and experimental animals were immunized with sheep erythrocytes and typhoid Vi antigen. 5 days later, the level of antibodies to EB and Vi antigen was determined in the blood serum of animals.

Как видно из таблицы 5, обработка мышей коклюшной агглютинирующей сывороткой в дозе 0,10 мл приводила к резкому угнетению гуморальной реакции к эритроцитам барана. Антитела у мыши, обработанной нормальной сывороткой, выявлялись в титрах 1: 1280, тогда как у мыши, обработанной коклюшной сывороткой, уровень антител к ЭБ снижался в 64 раза и выявлялся в титре 1:20. Уровень антител к тимусзависимому антигену, как у опытной, так и у контрольной мышей не отличался. Угнетение гуморальной реакции к тимусзависимому антигену свидетельствовало о развитии вторичного иммунодефицитного состояния по Т-клеточному типу. As can be seen from table 5, treatment of mice with pertussis agglutinating serum at a dose of 0.10 ml led to a sharp inhibition of the humoral reaction to sheep erythrocytes. Antibodies in a mouse treated with normal serum were detected in titers of 1: 1280, whereas in a mouse treated with pertussis serum, the level of antibodies to EB decreased by 64 times and was detected in a titer of 1:20. The level of antibodies to the thymus-dependent antigen in both experimental and control mice did not differ. The inhibition of the humoral reaction to the thymus-dependent antigen testified to the development of a secondary immunodeficiency state according to the T-cell type.

П р и м е р 3. Двум беспородным белым мышам внутрибрюшинно, однократно ввели коклюшную агглютинирующую сыворотку в дозе 0,11 мл. Двум контрольным мышам ввели нормальную кроличью сыворотку в той же дозе. Через 24 ч контрольных и опытных животных иммунизировали ЭБ и Ви-антигеном. 5 сут спустя в сыворотке крови животных определили уровень антител к ЭБ к Ви-антигену. PRI me R 3. Two outbred white mice intraperitoneally, once administered pertussis agglutinating serum in a dose of 0.11 ml. Two control mice were injected with normal rabbit serum at the same dose. After 24 hours, control and experimental animals were immunized with EB and Vi antigen. 5 days later, the level of antibodies to EB to the Vi antigen was determined in the blood serum of animals.

Результаты опыта, представленные в табл.6, свидетельствуют о том, что предварительное введение коклюшной агглютинирующей сыворотки в дозе 0,11 мл в организм животного также приводит к развитию вторичного иммунодефицитного состояния. Титры антител к тимусзависимому антигену (ЭБ) у мыши, обработанной коклюшной агглютинирующей сывороткой были в 64 раза ниже, чем у контрольного животного. The results of the experiment, presented in table 6, indicate that the preliminary introduction of pertussis agglutinating serum at a dose of 0.11 ml into the body of the animal also leads to the development of a secondary immunodeficiency state. Antibody titers to a thymus-dependent antigen (EB) in a mouse treated with pertussis agglutinating serum were 64 times lower than in a control animal.

Таким образом, использование предлагаемого способа по сравнению с прототипом значительно упрощает метод и повышает воспроизводимость моделирования вторичного иммунодецифитного состояния за счет применения стандартного препарата. Thus, the use of the proposed method in comparison with the prototype greatly simplifies the method and increases the reproducibility of modeling a secondary immunodeficiency state through the use of a standard preparation.

Claims (1)

СПОСОБ МОДЕЛИРОВАНИЯ ВТОРИЧНОГО ИММУНОДЕФИЦИТНОГО СОСТОЯНИЯ ПО Т-КЛЕТОЧНОМУ ТИПУ путем иммунизации животного, отличающийся тем, что для иммунизации используют клеточную коклюшную агглютинирующую сыворотку, которую вводят в дозе 0,5 г/кг массы тела внутрибрюшинно, однократно. METHOD FOR SIMULATING A SECOND IMMUNO DEFICIENCY STATE BY T-CELL TYPE by immunizing an animal, characterized in that for the immunization they use cell pertussis agglutinating serum, which is administered at a dose of 0.5 g / kg of body weight once per day.
RU92001064A 1992-10-16 1992-10-16 Method for modeling secondary immunodeficiency state of t- cell type RU2050020C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU92001064A RU2050020C1 (en) 1992-10-16 1992-10-16 Method for modeling secondary immunodeficiency state of t- cell type

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU92001064A RU2050020C1 (en) 1992-10-16 1992-10-16 Method for modeling secondary immunodeficiency state of t- cell type

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU92001064A RU92001064A (en) 1995-05-20
RU2050020C1 true RU2050020C1 (en) 1995-12-10

Family

ID=20130603

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU92001064A RU2050020C1 (en) 1992-10-16 1992-10-16 Method for modeling secondary immunodeficiency state of t- cell type

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2050020C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2644539C2 (en) * 2016-03-28 2018-02-12 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Тихоокеанский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ТГМУ Минздрава России) Method for secondary immunodeficiency simulation for small laboratory animals

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Авторское свидетельство СССР N 1476517, кл. G 09B 23/28, 1976. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2644539C2 (en) * 2016-03-28 2018-02-12 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Тихоокеанский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО ТГМУ Минздрава России) Method for secondary immunodeficiency simulation for small laboratory animals

Similar Documents

Publication Publication Date Title
André et al. Influence of repeated administration of antigen by the oral route on specific antibody-producing cells in the mouse spleen
Notkins et al. Elevated γ-globulin and increased antibody production in mice infected with lactic dehydrogenase virus
Kappler et al. Regulation of the immune response: I. Differential effect of passively administered antibody on the thymus-derived and bone marrow-derived lymphocytes
Apuzzo et al. Immunological aspects of intrinsic glial tumors
Cheever et al. Tumor neutralization, immunotherapy, and chemoimmunotherapy of a Friend leukemia with cells secondarily sensitized in vitro
Marcus et al. Human/mouse radiation chimera are capable of mounting a human primary humoral response
Mehra et al. Induction of cell-mediated immunity to Mycobacterium leprae in guinea pigs
RU2050020C1 (en) Method for modeling secondary immunodeficiency state of t- cell type
Rubin et al. Immunoglobulin response to rabies vaccine in man
Mond et al. SURFACE ANTIGENS OF IMMUNOCOMPETENT CELLS: III. IN VITRO STUDIES OF THE ROLE OF B AND T CELLS IN IMMUNOLOGICAL MEMORY
Hanna et al. Normal immunosuppressive protein: inhibitory effect on immune response against tumour cells.
Unanue Antigen Binding Cells: II. Effect of Highly Radioactive Antigen on the Immunologic Function of Bone Marrow Cells
Boyer et al. Stimulation of lymphoid cells from normal and immune mice by syngeneic BALB/c plasma cell tumors
Kuhara et al. Studies on the resistance to tolerance induction against human IgG in DDD mice: IV. Transient tolerant state of T-cell precursors in bone marrow
Kahn et al. T-cell vaccination in experimental myasthenia gravis: a double-edged sword
King et al. Immunoregulatory changes induced by total lymphoid irradiation. II. Development of thymus-leukemia antigen-positive and-negative suppressor T cells that differ in their regulatory function.
Stone Cellular commitments to immune responses
Moorhead Subpopulations of mouse T lymphocytes. II. Suppression of graft‐vs.‐host reactions by naturally proliferating splenic T cells
CN110585428B (en) Application of B cell vaccine in preparing medicine for treating rheumatoid arthritis
HARAN-GHERA Latent Period in leukaemia induction by the radiation leukaemia virus
WO1997035884A1 (en) Improved production of antibodies through the use of combinations of antigen and antibody, test kits incorporating said antibodies, and medical uses of said antibodies
Blair Effect of transient immunosuppression on host response to neonatally introduced oncogenic virus
Allison Immunological tolerance
Waldman et al. Immunoglobulin classes of serum neutralizing antibody formed in response to immunization with dead influenza virus vaccine
Bansal 1.2 Problems in Identifying Tumor-Specific Sensitized