RU2043714C1 - Method for prevention of viral diseases in fishes - Google Patents

Method for prevention of viral diseases in fishes Download PDF

Info

Publication number
RU2043714C1
RU2043714C1 RU93048350/13A RU93048350A RU2043714C1 RU 2043714 C1 RU2043714 C1 RU 2043714C1 RU 93048350/13 A RU93048350/13 A RU 93048350/13A RU 93048350 A RU93048350 A RU 93048350A RU 2043714 C1 RU2043714 C1 RU 2043714C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
fish
solution
drug
water
fishes
Prior art date
Application number
RU93048350/13A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU93048350A (en
Inventor
И.С. Щелкунов
Ю.С. Аликин
Т.И. Щелкунова
О.А. Купинска
О.А. Купинская
Original Assignee
Всероссийский научно-исследовательский институт прудового рыбного хозяйства
Научно-исследовательский конструкторско-технологический институт биологически активных веществ Научно-производственного объединения "Вектор"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всероссийский научно-исследовательский институт прудового рыбного хозяйства, Научно-исследовательский конструкторско-технологический институт биологически активных веществ Научно-производственного объединения "Вектор" filed Critical Всероссийский научно-исследовательский институт прудового рыбного хозяйства
Priority to RU93048350/13A priority Critical patent/RU2043714C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2043714C1 publication Critical patent/RU2043714C1/en
Publication of RU93048350A publication Critical patent/RU93048350A/en

Links

Images

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A40/00Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production
    • Y02A40/80Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in fisheries management
    • Y02A40/81Aquaculture, e.g. of fish

Landscapes

  • Farming Of Fish And Shellfish (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

FIELD: fish farming. SUBSTANCE: method involves treatment with some immunity-modulating agent by means of injections or exposure of fishes to a solution of such agent. The agent is interferon inductor based on double-spiral natural RNA. Injection doses may be 1-20 mg/kg of liveweight, and the solution for exposure is 0.5-2 mg/l. The time of exposure is 30-60 min, with the use of the hyperosmotic filtration method with oxygen saturation of water as high as 80-100% For hyperosmotic infiltration, fishes are preliminarily exposed to 5-6-% solution of sodium chloride. EFFECT: high method effectiveness; low cost; no environmental hazard. 2 cl, 3 tbl

Description

Изобретение относится к области рыбоводства, а именно к способам борьбы с болезнями рыб. The invention relates to the field of fish farming, and in particular to methods of controlling fish diseases.

Известен способ профилактики вирусных заболеваний лососевых рыб путем обработки их индуктором интерферона синтетического происхождения, являющимся двуспиральным полирибонуклеотидом (полиинозиновая-полицитидиловая кислота, поли И: поли Ц). Способ заключается в обработке рыбы препаратом путем инъекций в дозе 50 мг/кг массы тела или выдерживания рыбы в растворе препарата с концентрацией 400 мг/л в течение 3 ч. Для оценки защитного эффекта рыб заражали вирусом инфекционного некроза гемопоэтической ткани (ИГН) или вирусом некроза эритроцитов рыб (НЭ). После инъекций препарата гибель рыб от ИГН снижалась на 30-45% а заболевания рыб от НЭ не отмечали ни после инъекций, ни после выдерживания рыб в растворе препарата, в то время, как заболеваемость в группе необработанных рыб составила 13% Таким образом, известный способ обладает недостаточно высоким протективным действием, требует большого расхода дорогостоящего препарата и длительной экспозиции в нем рыбы, что делает его трудоемким и нерентабельным для применения в производственных условиях. Кроме того, испытанный препарат обладает высокой токсичностью для животных и не допущен органами ветеринарно-фармакологической службы для применения на практике. A known method for the prevention of viral diseases of salmon fish by treating them with an interferon inducer of synthetic origin, which is a double-stranded polyribonucleotide (polyinosine-polycytidylic acid, poly I: poly C). The method consists in treating the fish with the drug by injection at a dose of 50 mg / kg body weight or keeping the fish in a solution of the drug with a concentration of 400 mg / l for 3 hours. To assess the protective effect, the fish were infected with hematopoietic tissue infectious necrosis virus (IGN) or necrosis virus erythrocyte fish (NE). After injections of the drug, the death of fish from IIG decreased by 30-45% and fish diseases from NE were not observed either after injections or after keeping the fish in the solution of the drug, while the incidence in the group of untreated fish was 13%. Thus, the known method possesses not a high protective effect, requires a large consumption of an expensive preparation and a long exposure of fish in it, which makes it time-consuming and unprofitable for use in an industrial environment. In addition, the tested preparation has high toxicity to animals and is not approved by the veterinary-pharmacological service for practical use.

Известный способ применялся только на лососевых рыбах массой от 1,3 до 15 г и не был испытан на других рыбах, что не позволяет рассматривать его в качестве универсального. The known method was used only on salmon fish weighing from 1.3 to 15 g and was not tested on other fish, which does not allow us to consider it as universal.

Задачей изобретения является создание высокоэффективного экологически чистого, недорогого, универсального и более технологичного метода профилактики вирусных заболеваний рыб. The objective of the invention is to provide a highly effective environmentally friendly, inexpensive, universal and more technological method for the prevention of viral diseases of fish.

Указанный результат достигается тем, что в способе профилактики вирусных заболеваний рыб, включающем обработку рыбы иммуномодулятором путем инъецирования или выдерживания в растворе препарата, согласно изобретению, в качестве иммуномодулятора используют индуктор интерферона на основе двуспиральной РНК природного происхождения, инъецирование рыб проводят в дозах 1-20 мг/кг массы тела, а выдерживание рыб осуществляют в растворе препарата с концентрацией 0,5-2 мг/л в течение 30-60 мин с использованием метода гиперосмотической инфильтрации при насыщении раствора кислородом до 80-100% При этом гиперосмотическую инфильтрацию предпочтительно проводить предварительным выдерживанием рыб в течение 2 мин в 5-6% растворе хлористого натрия. Интенсификация рыбоводства сопряжена с появлением массы факторов (главным образом, антропогенной природы), оказывающих неблагоприятное, стрессовое воздействие на рыб, приводящее к развитию вторичных иммунодефицитов и снижению устойчивости к болезням. В этих условиях обработка иммуномодулятором рыб наиболее уязвимых групп в период максимального риска стимулирует общую резистентность организма, позволяя тем самым защитить рыбу от заболеваний. Использование в качестве иммуномодулятора индуктора интерферона дает возможность индуцировать у рыб выработку собственного, эндогенного, интерферона и отказаться от применения с этой целью экзогенного интерферона иной природы (человечьего, теплокровных и т.п.), защитное действие которого в организме гетерологичного хозяина (рыбы) будет явно незначительным. Интерферон известен как фактор неспецифической резистентности, обладающий широким спектром активности, которая проявляется как в стимуляции им различных звеньев иммунной системы, так и в действии его против патогенов разной природы. Предлагаемый в качестве иммуномодулятора индуктор интерферона является двуспиральной РНК, полученной из дрожжей. Использование указанного интерфероногена, в отличие от синтетических полирибонуклеотидов, позволяет исключить нежелательную нагрузку на окружающую среду, поскольку РНК природного происхождения легко утилизируется в организме. This result is achieved by the fact that in the method of preventing viral diseases of fish, including treating fish with an immunomodulator by injection or keeping the drug in solution, according to the invention, an interferon inducer based on naturally-occurring double-stranded RNA is used as an immunomodulator, fish are injected in doses of 1-20 mg / kg body weight, and keeping the fish is carried out in a solution of the drug with a concentration of 0.5-2 mg / l for 30-60 minutes using the method of hyperosmotic infiltration p and oxygen saturation of the solution to 80-100%, while the hyperosmotic infiltration preferably carried preconditioning fish for 2 minutes in 5-6% sodium chloride solution. The intensification of fish farming is associated with the emergence of a mass of factors (mainly of anthropogenic nature) that have an adverse, stressful effect on fish, leading to the development of secondary immunodeficiencies and a decrease in disease resistance. Under these conditions, the immunomodulator treatment of fish of the most vulnerable groups during the period of maximum risk stimulates the general resistance of the body, thereby protecting the fish from diseases. Using an interferon inducer as an immunomodulator makes it possible to induce the production of intrinsic, endogenous, interferon in fish and refuse to use for this purpose exogenous interferon of a different nature (human, warm-blooded, etc.), the protective effect of which in the body of a heterologous host (fish) will be clearly negligible. Interferon is known as a factor of non-specific resistance, which has a wide spectrum of activity, which manifests itself both in stimulation of various parts of the immune system and in its action against pathogens of different nature. The interferon inducer proposed as an immunomodulator is double-stranded RNA derived from yeast. The use of this interferonogen, in contrast to synthetic polyribonucleotides, eliminates the undesirable burden on the environment, since RNA of natural origin is easily utilized in the body.

Предлагаемый иммуномодулятор выгодно отличается от других известных средств борьбы с заболеваниями химиопрепаратов и вакцин. В отличие от первых, он не требует многократного длительного применения, а возбудители заболеваний не способны вырабатывать устойчивость к нему. В противоположность вакцине, обеспечивающей защиту, как правило, от одного заболевания, иммуномодулятор способен защитить хозяина от целой группы разных заболеваний. The proposed immunomodulator compares favorably with other known means of combating diseases of chemotherapy drugs and vaccines. Unlike the first, it does not require repeated long-term use, and pathogens are not able to develop resistance to it. In contrast to a vaccine that provides protection, as a rule, against one disease, an immunomodulator is able to protect the host from a whole group of different diseases.

Препарат применяют для индивидуальной или групповой обработки рыбы. Индивидуальная обработка целесообразна и экономически оправдана при работе с ограниченным количеством особей особоценных видов или пород рыб, а также рыб ремонтно-маточного стада. Она выполняется путем внутрибрюшинной инъекции препарата, который обладает высоким защитным действием в диапазоне доз от 1 до 20 мг/кг массы тела. Дозы ниже 1 мг/кг дают менее выраженный защитный эффект, использование высоких доз (более 20 мг/кг) экономически нецелесообразно. Рыбу младших возрастных групп обрабатывают групповым способом, применяя гиперосмотическую инфильтрацию препарата, использованную впервые для введения РНК. Используемые концентрации (5-6%) и экспозиция обработки в NaCl (1-2 мин) подобраны с таким расчетом, чтобы достичь максимально эффективного поглощения из воды задаваемого препарата при обеспечении щадящего воздействия хлористого натрия на организм рыб. При концентрации хлористого натрия ниже 5% скорость проникновения препарата резко снижается, а концентрации выше 6% обладают сильным повреждающим действием на покровы рыб. Обработка в NaCl продолжительностью менее 1 мин не обеспечивает достаточного уровня абсорбции препарата из воды, а более 2 мин оказывает неблагоприятное воздействие на физиологическое состояние рыб. The drug is used for individual or group processing of fish. Individual processing is advisable and economically justified when working with a limited number of individuals of especially valuable species or breeds of fish, as well as fish of the brood stock. It is performed by intraperitoneal injection of the drug, which has a high protective effect in the dose range from 1 to 20 mg / kg body weight. Doses below 1 mg / kg give a less pronounced protective effect, the use of high doses (more than 20 mg / kg) is not economically feasible. The fish of younger age groups are treated in a group way, using the hyperosmotic infiltration of the drug, used for the first time for the introduction of RNA. The used concentrations (5-6%) and the exposure of the treatment in NaCl (1-2 min) are selected in such a way as to achieve the most effective absorption of the given preparation from the water while ensuring the gentle effect of sodium chloride on the fish organism. At a concentration of sodium chloride below 5%, the penetration rate of the drug decreases sharply, and concentrations above 6% have a strong damaging effect on the integument of fish. Processing in NaCl for less than 1 min does not provide a sufficient level of absorption of the drug from water, and more than 2 min has an adverse effect on the physiological state of fish.

Содержание иммуномодулятора в воде в ходе групповой обработки рыб снижено до предельно низких величин (0,5-2 мг/л), чтобы сделать метод экономически оправданным. Концентрация препарата ниже 0,5 мг/л недостаточна для обеспечения защиты, а более 2 мг/л нецелесообразна, так как приводит к существенному удорожанию обработки. Экспозиция в растворе препарата 30-60 мин обусловлена тем, что выдерживание менее 30 мин неэффективно, а более 60 мин избыточно. The content of the immunomodulator in water during group processing of fish is reduced to extremely low values (0.5-2 mg / l) to make the method economically viable. The concentration of the drug below 0.5 mg / l is insufficient to provide protection, and more than 2 mg / l is inappropriate, since it leads to a significant increase in the cost of processing. Exposure in a solution of the drug for 30-60 minutes is due to the fact that keeping less than 30 minutes is ineffective, and more than 60 minutes is excessive.

Необходимость насыщения раствора препарата кислородом воздуха до 80-100% связана с тем, что обработка такого рода проводится путем помещения большого количества рыб в емкость ограниченного объема, что приводит к быстрому потреблению растворенного в воде кислорода рыбами. Стресс, вызываемый дефицитом кислорода, приводит к существенному снижению эффективности поступления препарата из воды в ткани рыб. The need to saturate the drug solution with atmospheric oxygen up to 80-100% is due to the fact that this kind of treatment is carried out by placing a large number of fish in a container of limited volume, which leads to the fast consumption of oxygen dissolved in water by fish. Stress caused by oxygen deficiency leads to a significant decrease in the effectiveness of the drug from water to fish tissue.

П р и м е р 1. Профилактику весенней виремии рыб проводили на ограниченном количестве особей одной из селектируемых пород карпа путем индивидуальных внутрибрюшинных инъекций препарата двуспиральной дрожжевой РНК. 20 сеголеткам карпа средней массой 32,5 г внутрибрюшинно (в/б) ввели препарат в дозе 10 мг/кг массы тела. Для этого ампулу препарата (8 мг) растворили в 12,3 мл среды Игла МЕМ и по 0,5 мл полученного раствора инъецировали рыбам. Контролем служили две группы по 20 рыб. Рыбам первой группы ввели по 0,5 мл среды Игла МЕМ, вторая группа оставалась интактной. Рыбу каждой группы посадили в отдельный аквариум с проточной аэрируемой водой, температуру которой через сутки подняли с 8-10 до 13-15оС и поддерживали далее в этом диапазоне. Через двое суток после обработки всю рыбу заразили вирусом Rhabdovirus carpio возбудителем весенней виремии карпа путем в/б инъекции его в дозе 107,1 ТЦД50/рыба. На протяжении всего опыта рыбу подкармливали комбикормом, наблюдение вели в течение 50 дней (до окончания эпизоотического процесса). Результаты представлены в табл. 1.PRI me R 1. Prevention of spring viremia of fish was carried out on a limited number of individuals of one of the breeds of carp selected by individual intraperitoneal injections of the preparation of double-stranded yeast RNA. 20 carp underyats with an average weight of 32.5 g intraperitoneally (ip) were given the drug at a dose of 10 mg / kg body weight. For this, the ampoule of the preparation (8 mg) was dissolved in 12.3 ml of Needle MEM medium and 0.5 ml of the resulting solution was injected with fish. The control was two groups of 20 fish each. Fishes of the first group were injected with 0.5 ml of Medium Needle MEM, the second group remained intact. The fish in each group was put in a separate tank with running aerated water whose temperature is raised through the night from 8-10 to 13-15 ° C and further maintained in this range. Two days after treatment, all the fish was infected with the Rhabdovirus carpio virus by the causative agent of spring carp viremia by intravenous injection at a dose of 10 7.1 TCD 50 / fish. Throughout the experiment, the fish was fed with feed, the observation was carried out for 50 days (until the end of the epizootic process). The results are presented in table. 1.

П р и м е р 2. Профилактику весенней виремии карпа проводили на годовиках карпа (средняя масса 47 г) путем внутрибрюшинного инъецирования различных доз препарата двуспиральной дрожжевой РНК. Работу выполняли по схеме, аналогичной схеме опыта 1, за исключением того, что контролем служила одна группа рыб, которым вводили среду Игла МЕМ, а заражение проводили вирусом в дозе 107,35 ТЦД50/рыба. Результаты представлены в табл. 2. PRI me R 2. Prevention of spring viremia of carp was carried out on yearlings of carp (average weight 47 g) by intraperitoneal injection of various doses of the preparation of double-stranded yeast RNA. The work was carried out according to a scheme similar to that of experiment 1, except that the control was one group of fish that were injected with Needle MEM medium, and the virus was infected at a dose of 107.35 TCD50 / fish. The results are presented in table. 2.

Как свидетельствуют приведенные результаты, препарат обладал выраженным защитным действием во всем диапазоне испытанных доз (1-20 мг/кг массы тела). As shown by the results, the drug had a pronounced protective effect in the entire range of tested doses (1-20 mg / kg body weight).

П р и м е р 3. Профилактику вирусной геморрагической септицемии (ВГС) у радужной форели проводили путем однократной обработки рыб препаратом двуспиральной дрожжевой РНК с использованием метода гиперосмотической инфильтрации. Для этого приготовили 5,32%-ный раствор хлорида натрия и раствор препарата с концентрацией 2 мг/л. Для приготовления последнего препарат первоначально растворили в среде Игла МЕМ до концентрации 1 мг/мл и внесли полученный маточный раствор в воду в необходимом количестве. Работу выполняли на 4 группах рыб трехмесячного возраста по 40 экз. в каждой. Средняя масса рыб 590 мг. Рыб опытных групп 1 и 3 экспонировали в течение 2 мин в 0,5 л раствора хлорида натрия, а затем поместили на 30 мин в раствор препарата при активной его аэрации. Рыбы групп 2 и 4 служили контролем и не подвергались обработке. После этого рыбу каждой группы посадили в отдельный аквариум с проточной аэрируемой водой. Через 3 сут рыбу всех групп заразили вирусом путем прекращения проточности на 1 ч и внесения в воду вируса-возбудителя ВГС в дозах 104 (группы 1 и 2) и 105 ТЦД50/мл (группы 3 и 4). После этого проточность возобновили. Наблюдение за рыбой вели на протяжении 40 дней (до завершения заболевания и гибели). Рыбу кормили форелевым комбикормом рецепта ЛС. Температура воды на протяжении всего времени находилась в пределах 9-11оС. Гибель рыб от ВГС составила: гр. 1 2,5% гр. 2 20% гр. 3 37,5% гр. 4 52,5%
П р и м е р 4. Профилактику ВГС осуществляли на пятимесячных мальках радужной форели средней массой 2,2 г по схеме, аналогичной схеме, приведенной в примере 3. Было использовано 2 группы рыб по 23 экз. в каждой. Одну (опытную) группу рыб обработали препаратом, вторая (контрольная) группа рыб была оставлена необработанной. Спустя 3 сут рыбу заразили вирусом ВГС через воду в концентрации 105,2ТЦД50/мл. Наблюдения вели в течение 51 дня. Гибель рыб от ВГС в опытной группе составила 34,8% в контрольной 50%
П р и м е р 5. 8-недельных мальков карпа средней массой 1 г обработали препаратом двуспиральной дрожжевой РНК с помощью метода гиперосмотической инфильтрации. Для этого предварительно приготовили два водных раствора. Раствор 1 5% раствор хлорида натрия; раствор 2 раствор препарата с концентрацией 0,5 мг/л. Для приготовления последнего препарат первоначально растворили в среде Игла МЕМ до концентрации 1 мг/мл и внесли полученный маточный раствор в воде в необходимом количестве. 47 мальков карпа в сачке погрузили на 2 мин в 1,5 л раствора 1, а затем поместили в 1,5 л раствора 2. Обработку в этом растворе проводили в течение 1 ч при активной аэрации воды (до 80-100% насыщения кислородом), после чего рыбу пересадили в аквариум с проточной аэрируемой водой. В аналогичный аквариум поместили контрольную группу из 45 рыб, не подвергавшихся никакой обработке. Через 2 сут заразили рыбу вирусом R. carpio, для чего ее выдерживали в течение 1 ч в воде, содержащей вирус в концентрации 102,1 ТЦД50/мл, и после этого возвращали в аквариумы.
PRI me R 3. Prevention of viral hemorrhagic septicemia (HCV) in rainbow trout was carried out by a single treatment of fish with the preparation of double-stranded yeast RNA using the method of hyperosmotic infiltration. To do this, prepared a 5.32% solution of sodium chloride and a solution of the drug with a concentration of 2 mg / L. To prepare the latter, the drug was initially dissolved in Migla MEM medium to a concentration of 1 mg / ml and the resulting mother liquor was introduced into water in the required amount. The work was performed on 4 groups of three-month-old fish of 40 specimens each. in each. The average weight of fish is 590 mg. The fish of experimental groups 1 and 3 were exposed for 2 min in a 0.5 L solution of sodium chloride, and then placed for 30 min in a solution of the drug with its active aeration. The fish of groups 2 and 4 served as a control and were not processed. After that, the fish of each group were planted in a separate aquarium with running aerated water. After 3 days, fish of all groups were infected with the virus by stopping flow for 1 hour and introducing HCV virus in doses of 10 4 (groups 1 and 2) and 10 5 TCD 50 / ml (groups 3 and 4) into the water. After that, flowing resumed. Observation of the fish was carried out for 40 days (until the end of the disease and death). The fish was fed a trout compound feed for a prescription for drugs. The water temperature at all times be within 9-11 ° C. The loss of fish from HCV was c. 1 2.5% gr. 2 20% gr. 3 37.5% gr. 4 52.5%
PRI me R 4. Prevention of HCV was carried out on five-month-old fry of rainbow trout with an average weight of 2.2 g according to a scheme similar to that shown in example 3. 2 groups of fish of 23 specimens were used. in each. One (experimental) group of fish was treated with the drug, the second (control) group of fish was left untreated. After 3 days, the fish was infected with HCV virus through water at a concentration of 10 5.2 TCD 50 / ml. Observations were carried out for 51 days. The death of fish from HCV in the experimental group was 34.8% in the control 50%
PRI me R 5. 8-week-old fry of carp with an average weight of 1 g were treated with a double-stranded yeast RNA preparation using the method of hyperosmotic infiltration. For this, two aqueous solutions were preliminarily prepared. Solution 1 5% sodium chloride solution; solution 2 drug solution with a concentration of 0.5 mg / l. To prepare the latter, the drug was initially dissolved in the Needle MEM medium to a concentration of 1 mg / ml and the resulting mother liquor was added in the required amount. 47 carp fry in a net were immersed for 1.5 min in 1.5 l of solution 1, and then placed in 1.5 l of solution 2. Processing in this solution was carried out for 1 h with active aeration of water (up to 80-100% oxygen saturation) , after which the fish was transplanted into the aquarium with running aerated water. A control group of 45 fish that were not subjected to any treatment was placed in a similar aquarium. After 2 days, the fish was infected with R. carpio virus, for which it was kept for 1 h in water containing the virus at a concentration of 10 2.1 TCD 50 / ml, and then returned to the aquariums.

В ходе обработки и на протяжении всего эксперимента температуру воды поддерживали в пределах 20-22оС. Рыбу подкармливали комбикормом. Наблюдение вели в течение 34 дней (до окончания эпизоотического процесса). Результаты опыта представлены в табл. 3.During treatment and throughout the experiment water temperature was maintained within 20-22 ° C. Fish were fed forage. Observation was carried out for 34 days (until the end of the epizootic process). The results of the experiment are presented in table. 3.

П р и м е р 6. Годовиков карпа средней массой 40 г обработали препаратом двуспиральной дрожжевой РНК с помощью метода гиперосмотической инфильтрации. Для этого предварительно приготовили 6%-ный раствор хлорида натрия и раствор препарата с концентрацией 2 мг/л. Растворы готовили аналогично тому, как это было сделано в примере 3. 30 годовиков карпа поместили на 1 мин в 3 л раствора хлорида натрия, а затем перенесли на 30 мин в 3 л раствора препарата при активной аэрации воды. Контрольную группу из 30 рыб после обработки хлоридом натрия поместили на 30 мин в разбавленный растворитель (среду Игла МЕМ). После этого каждую группу рыб посадили в аквариум с проточной аэрируемой водой, температуру которой повысили в течение суток с 8 до 13-15оС и далее поддерживали в этих пределах. Через 2 сут рыбу обеих групп заразили R. сarpio путем 6-часовой экспозиции в воде с концентрацией вируса 106,5 ТЦД50/мл, после чего ее возвратили назад в аквариумы. Наблюдение вели в течение 45 дней (до прекращения заболевания и гибели), подкармливая рыбу комбикормом. Гибель от заболевания в группе опытных рыб составила 6,7% против 33,3% в контроле.PRI me R 6. Godovikov carp with an average weight of 40 g was treated with a preparation of double-stranded yeast RNA using the method of hyperosmotic infiltration. For this, a 6% sodium chloride solution and a drug solution with a concentration of 2 mg / L were preliminarily prepared. The solutions were prepared in the same way as in Example 3. 30 year old carp were placed for 1 min in 3 L of sodium chloride solution, and then transferred for 30 min in 3 L of the drug solution with active aeration of water. A control group of 30 fish after treatment with sodium chloride was placed for 30 min in a diluted solvent (Medium Needle MEM). Thereafter, each fish group was put into the tank with running aerated water, which temperature was increased during the day from 8 to 13-15 ° C and then maintained within this range. After 2 days, the fish of both groups were infected with R. сarpio by 6-hour exposure in water with a virus concentration of 10 6.5 TCD 50 / ml, after which it was returned to the aquariums. Observation was carried out for 45 days (until the cessation of the disease and death), feeding the fish with compound feed. The death from the disease in the group of experimental fish was 6.7% versus 33.3% in the control.

Как видно из приведенных примеров, предлагаемый способ профилактики вирусных заболеваний рыб обеспечивает высокий уровень защиты рыб от заболеваний при незначительном расходе препарата и малом времени обработки, что делает его экономически оправданным и технологичным при использовании в производстве. Он экологически чист и применим для профилактики различных заболеваний разных видов рыб. As can be seen from the above examples, the proposed method for the prevention of viral diseases of fish provides a high level of protection of fish from diseases with a low consumption of the drug and a short processing time, which makes it economically justified and technologically advanced when used in production. It is environmentally friendly and applicable for the prevention of various diseases of different species of fish.

Claims (1)

1. СПОСОБ ПРОФИЛАКТИКИ ВИРУСНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ РЫБ, включающий обработку рыбы иммуномодулятором путем инъецирования или выдерживания в растворе препарата, отличающийся тем, что в качестве последнего используют индуктор интерферона на основе двуспиральной РНК природного происхождения, инъецирование рыб проводят в дозах 1 20 мг/кг массы тела, а выдерживание осуществляют в растворе препарата с концентрацией 0,5 2 мг/л в течение 30 - 60 мин с использованием метода гиперсоматической инфильтрации при насыщении воды кислородом до 80 100%
2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что гиперсоматическую инфильтрацию иммуномодулятора осуществляют предварительным выдерживанием рыб в течение 1
2 мин в 5 6-ном растворе хлористого натрия.
1. METHOD FOR PREVENTION OF VIRAL DISEASES OF FISH, comprising treating fish with an immunomodulator by injection or by keeping it in a solution, characterized in that the latter uses an interferon inducer based on double-stranded RNA of natural origin, fish are injected in doses of 1 20 mg / kg body weight, and aging is carried out in a solution of the drug with a concentration of 0.5 to 2 mg / l for 30-60 minutes using the hypersomatic infiltration method with oxygen saturation of water up to 80 100%
2. The method according to p. 1, characterized in that the hypersomatic infiltration of the immunomodulator is carried out by preliminary keeping the fish for 1
2 min in 5 6th solution of sodium chloride.
RU93048350/13A 1993-10-22 1993-10-22 Method for prevention of viral diseases in fishes RU2043714C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93048350/13A RU2043714C1 (en) 1993-10-22 1993-10-22 Method for prevention of viral diseases in fishes

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93048350/13A RU2043714C1 (en) 1993-10-22 1993-10-22 Method for prevention of viral diseases in fishes

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2043714C1 true RU2043714C1 (en) 1995-09-20
RU93048350A RU93048350A (en) 1996-04-20

Family

ID=20148344

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU93048350/13A RU2043714C1 (en) 1993-10-22 1993-10-22 Method for prevention of viral diseases in fishes

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2043714C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Eaton W.O. Anti-viral activity in four species of salmonids following exposure to poly inosinic: cytidylic acidll Diseases of Aquati Organisms. 1990, vol. 9, p.193-198. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Brandal et al. Treatment of salmon lice (Lepeophtheirus salmonis Krøyer, 1838) with Neguvon®—description of method and equipment
Leteux et al. Mixtures of malachite green and formalin for controlling Ichthyophthirius and other protozoan parasites of fish
EP1083907B1 (en) Control of parasitic infestations in farmed and wild fish
RU2043714C1 (en) Method for prevention of viral diseases in fishes
AU2017247267A1 (en) Application of tenvermectin for preventing and treating parasite infection
EP1307092B1 (en) Reducing the level of bacteria and viruses in aquaculture
CN104162159B (en) A kind of anti-dog parvovirus compositions, lyophilized powder, preparation method and application
CN101559060B (en) Medicine for preventing fish parasitic crustacean diseases, preparation method and application thereof
US3389685A (en) Fish culture by squawfish population eradication
KR20000075860A (en) Infectious disease preventive/remedy for fishes and shellfishes
Anziani et al. Prevention of cutaneous myiasis caused by screw worm larvae (Cochliomyia hominivorax) using ivermectin
US3309267A (en) Controlling bullheads with 3-nitrohalosalicylanilides
CN110946984B (en) Medicament for treating fresh water ichthyophthiriasis, preparation method and use method
JPH10265402A (en) Stress relaxing and improving agent for fishes and method therefor
CN1205862C (en) Snailkilling chemical for aquiculture
RU2060655C1 (en) Method of parasite abolishment causing disease in aquarium fishes
Liao et al. The use of chemicals in aquaculture in Taiwan, Province of China
CN110721174B (en) Medicine for preventing and treating fish myxosporidiosis
RU2282455C1 (en) Method for preventing and correcting technological stresses in cattle youngsters during growing, raising and fattening periods
O'Halloran et al. New Brunswick. Treatment of sea lice on Atlantic salmon with ivermectin
SU1482630A1 (en) Method of preparing water reservoirs for breeding valuable fish
RU2016512C1 (en) Agent for struggle against stress in fishes, and a method of struggle against stress in fishes
ラザニホセイン et al. Chronic toxic effect of phenol on zebrafish Branchydanio rerio.
CN108379264A (en) A kind of compound dry powder agent and preparation method thereof of prevention saprolegniasis
KR101639956B1 (en) Method for breeding, capturing and slaughtering poultry using ethanol

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20041023