RU2038600C1 - Мембрана для разделения компонентов иммунологической реакции - Google Patents

Мембрана для разделения компонентов иммунологической реакции Download PDF

Info

Publication number
RU2038600C1
RU2038600C1 SU5033495A RU2038600C1 RU 2038600 C1 RU2038600 C1 RU 2038600C1 SU 5033495 A SU5033495 A SU 5033495A RU 2038600 C1 RU2038600 C1 RU 2038600C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
membrane
enzyme
antigen
solution
antibodies
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
А.П. Осипов
Б.М. Горовиц
Е.Л. Горовиц
Б.Б. Дзантиев
Original Assignee
Институт иммунобиотехнологии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт иммунобиотехнологии filed Critical Институт иммунобиотехнологии
Application granted granted Critical
Publication of RU2038600C1 publication Critical patent/RU2038600C1/ru

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

Использование: биотехнология. Сущность: мембрана состоит из подложки из ацетатцеллюлозы или из нитроцеллюлозы, на которой адсорбирован поликатион, например поли-4-винил-пиридинийбромид или полиэтиленимин.

Description

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к иммуноферментному анализу, и представляет собой мембрану для разделения компонентов иммунологической реакции.
Известны различные способы, проведения твердофазного иммуноферментного анализа (ИФА), основанные на иммобилизации антител на твердых носителях, образовании специфических иммунокомплексов на носителе с определяемым антигеном и их выявлении с помощью ферментной метки.
Важным пунктом при проведении процедуры ИФА является стадия отделения меченых антител (антигена), не связанных в иммунокомплекс, от меченых антител (антигенов), связанных в иммунокомплекс. В процедурах ИФА гетерогенного типа для этого проводят иммобилизацию антител (антигена) на твердых нерастворимых носителях. Это, однако, приводит к значительному увеличению времени анализа.
Также известны способы разделения компонентов иммунохимической реакции с использованием фильтрации на пористых нитроцеллюлозных мембранах, что упрощает процедуру и исключает необходимость иммобилизации одного из компонентов в том случае, когда размер анализируемого соединения превышает диаметр пор.
В качестве прототипа предлагается микропланшет с фильтрующим дном, изготовленным из нитроцеллюлозной мембраны (диаметр пор 0,54 мкм), используемый в методе определения висцерального лейшманиоза человека [1] Образец паразитов инкубировали с формалином, наносили на микропланшеты, далее инкубировали с анализируемой пробой. Разделение в данном случае осуществлялось вследствие большого размера антигена.
Данная мембрана не позволяет осуществлять разделения компонентов в нижеописанном методе.
Известен способ проведения иммуноферментного анализа биологически активных веществ, осуществляемый следующим образом. К исследуемому образцу добавляют антитела, ковалентно иммобилизованные на водорастворимом поликатионе или полианионе, например полиметакриловой кислоте (ПМАК), и конъюгат антител (антигенов), меченых ферментом, при этом в растворе одновременно протекают реакции: связывания иммобилизованных антител с антигеном и мечеными антигенами (антителами). После образования растворимых иммунокомплексов раствор приводят в контакт с нерастворимым положительно заряженным носителем (полимером), вследствие чего компоненты, связанные с иммобилизованными антителами, адсорбируются на носителе в результате кооперативных ионных взаимодействий между молекулами отрицательно заряженного полианиона, содержащего иммунокомплекс антигена с мечеными ферментом антителами, и положительно заряженным носителем. После промывания носителя с целью удаления неспецифически связавшегося конъюгата антител с ферментом на него наносят раствор субстрата фермента и количественно измеряют концентрацию продукта, которая пропорциональна концентрации определяемого антигена и служит характеристикой его содержания в исследуемом растворе. Концентрацию антигена в исследуемом образце определяют с помощью калибровочного графика, полученного при использовании стандартных препаратов.
Для разделения компонентов иммунологической реакции, в результате которой образуется отрицательно заряженный комплекс полианиона и антигена, связанного с антителом, меченым ферментом, предлагается использовать мембрану, которая представляет собой подложку из ацетат- или нитроцеллюлозы, на которой адсорбирован поликатион. В качестве поликатиона можно использовать поли-4-винил-пиридинийбромид (ПВП), хитозан, полиэтиленимин и др.
Если в качестве носителя используют положительно заряженную мембрану, а продукт ферментативной реакции является нерастворимым и удерживается на мембране, то детекцию можно проводить визуально.
Заряженные мембраны получают следующим образом. Нитро- или ацетатцеллюлозные фильтры помещают в раствор поликатиона и инкубируют в нем в течение 1-2 ч при комнатной температуре.
П р и м е р 1. Анализ иммуноглобулинов G (IgG) человека.
В качестве антител использовали γ -глобулиновую фракцию кроличьей антисыворотки против IgG человека, дополнительно очищенную ионообменной хроматографией на ДЕАЕ-Sephacel.
Иммуносорбенты на основе ПМАК по- лучали ковалентным связыванием антигенов или антител с ПМАК, используя в качестве сшивающих агентов водорастворимые карбодиимиды (1-этил-3(3-диметил-аминопропил)-карбодиимид гидрохлорид или 1-циклогексил-3-(2-морфолино-4-этил)-карбо- диимид n-толуол-фосфат) совместно с N-оксисукцинимидом.
В качестве антигена использовали коммерческий препарат IgG человека.
В качестве фермента использовали пероксидазу хрена с RZ=3,0 (ПХ).
Конъюгат IgG человека с пероксидазой (ПХ/ЕС1.11.1.7) получали методом окисления углеводного компонента фермента периодатом натрия.
Нерастворимый заряженный полимер готовили следующим образом.
Нитроцеллюлозные фильтры производства фирмы "Синпор" инкубировали в растворе 1˙10-7 М поли-4-винил-пиридинийбромида с молекулярной массой 80000 в калий-фосфатном буфере рН 7,2 (КФБ) в течение 1 ч при комнатной температуре. Затем фильтры блокировали в 3%-ном растворе бычьего сывороточного альбумина в КФБ в течение 1 ч при комнатной температуре.
В серию инкубационных пробирок, содержащих IgG человека в концентрациях 1˙10-9, 5˙10-10, 2˙10-10, 1˙10-10, 5˙10-11, 2˙10-11 М в 0,01 калий-фосфатном буфере рН 7,2, 0,05% Твин-20, 0,15М NaCl, добавляли 0,1 мл раствора конъюгата IgG-пероксидаза (1˙10-11 М). Затем в пробирку добавляли 0,1 мл раствора иммуносорбента (1˙10-10 М), инкубировали 5 мин при комнатной температуре.
Разделяли компоненты раствора пропуская его через нитроцеллюлозный фильтр с иммобилизованным ПВП. Детекцию ферментной метки на фильтре вели инкубацией его в растворе субстратов, содержащем 3,3'-диаминобензидин (0,5 мг/мл), перекись водорода 1˙10-3 М и добавки солей кобальта (0,2%).
Пересчет интенсивности окрашивания фильтра в концентрацию измеряемого IgG производили по калибровочному графику, полученному со стандартными препаратами IgG. Чувствительность метода составила 5˙10-11 М.
П р и м е р 2. Анализ HBS-антигена.
В качестве антител использовали γ -глобулиновую фракцию кроличьей антисыворотки против НBS-антигена.
Иммуносорбенты на основе ПМАК по- лучали как в примере 1.
В качестве антигена использовали коммерческий препарат HBS-антигена.
В качестве фермента использовали пероксидазу хрена с RZ=3,0 (ПХ).
Конъюгат IgG, специфичных к HBS-антигену, с пероксидазой (ПХ/ЕС1.11.1.7) получали методом окисления углеводного компонента фермента периодатом натрия.
Нерастворимый заряженный полимер готовили следующим образом.
Ацетатцеллюлозные мембраны производства фирмы "Полимерсинтез" (Владимир) инкубировали в 1˙10-7 М растворе полиэтиленимина с молекулярной массой 50000 в калий-фосфатном буфере рН 7,2 (КФБ) в течение 2 ч при комнатной температуре. Затем фильтры блокировали в 3%-ном растворе бычьего сывороточного альбумина в КФБ в течение 1 ч при комнатной температуре.
В серию инкубационных пробирок, содержащих HBS-антиген в концентрациях 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2,5 и 1,25 нг/мл в 0,01 калий-фосфатном буфере рН 7,2, 0,05% Твин-20, 0,15М NaCl, добавляли 0,1 мл раствора конъюгата IgG-пероксидаза (1˙10-11 М). Затем в пробирку добавляли 0,1 мл раствора иммуносорбента (1˙10-10 М) и инкубировали 5 мин при комнатной температуре.
Разделение компонентов раствора проводили пропуская его через нитроцеллюлозный фильтр с иммобилизованным поликатионом. Детекцию ферментной метки на фильтре вели инкубацией его в растворе субстратов, содержащем 3,3'-диаминобензидин (0,5 мг/мл), перекись водорода 1˙10-3 М и добавки солей кобальта (0,2%).
Пересчет интенсивности окрашивания фильтра в концентрацию измеряемого НBS-антигена производили по калибровочному графику, полученному со стандартными препаратами HBS. Чувствительность метода составляет 2,5 нг/мл.
Таким образом, предлагаемая мембрана позволяет значительно упростить и ускорить процесс иммуноферментного анализа.

Claims (1)

  1. МЕМБРАНА ДЛЯ РАЗДЕЛЕНИЯ КОМПОНЕНТОВ ИММУНОЛОГИЧЕСКОЙ РЕАКЦИИ, представляющая собой целлюлозную основу, отличающаяся тем, что в качестве целлюлозной основы используют ацетат- или нитроцеллюлозу, на которой адсорбирован поликатион.
SU5033495 1990-07-31 1992-03-23 Мембрана для разделения компонентов иммунологической реакции RU2038600C1 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4855423/14 1990-07-31
SU5542314 1990-07-31

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2038600C1 true RU2038600C1 (ru) 1995-06-27

Family

ID=21616246

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5033495 RU2038600C1 (ru) 1990-07-31 1992-03-23 Мембрана для разделения компонентов иммунологической реакции

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2038600C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000004385A1 (fr) * 1998-07-17 2000-01-27 Igor Jurievich Malyshev Procede de detection de proteines

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Pappas M.G. et al. Trans Roy. Soc. Med. Hyg, v.79, p.136, 1985. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000004385A1 (fr) * 1998-07-17 2000-01-27 Igor Jurievich Malyshev Procede de detection de proteines
RU2167425C2 (ru) * 1998-07-17 2001-05-20 Малышев Игорь Юрьевич Способ определения белков

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4960692A (en) Assay employing binding pair members on particles and on a filter or membrane
US4407943A (en) Immobilized antibody or antigen for immunoassay
US4332783A (en) Process for immunologic determination tests
CA1336884C (en) Visual discrimination qualitative enzyme assay
US4870007A (en) Immobilized biotinylated receptor in test device, kit and method for determining a ligand
JPH0312705B2 (ru)
US5169757A (en) Antibodies or antigens bound to a macroporous hydrophobic synthetic polymer cloth for immunological techniques
US4474878A (en) Sandwich EIA for antigen associated with hepatitis
US6203706B1 (en) Synthetic particles as agglutination reagents
US5122452A (en) Enzyme immunoassay with a macroporous hydrophobic synthetic polymer cloth containing an immobilized antibody or antigen
EP0585346A1 (en) Hla typing
US5641624A (en) Method for measuring anti-HIV-1 p24 antibody and use thereof
JP3327488B2 (ja) 被検体の免疫化学的測定方法
CA1104927A (en) Diagnostic immunochemical test material and procedure
EP0350233A2 (en) An article for performing immunological assays utilizing organic dyes and methods for producing and utilizing same
EP0217845B1 (fr) Procede de determination immunologique d'une substance biologique dans un echantillon
US7919331B2 (en) Chromatographic test strips for one or more analytes
JP2579972B2 (ja) 膜親和濃縮免疫測定方法
RU2038600C1 (ru) Мембрана для разделения компонентов иммунологической реакции
EP0456309A1 (en) Use of heme-containing proteins as stabilizers for enzyme-labeled immunoreactants
US5589344A (en) Test kit and method for competitive specific binding assay
RU2059972C1 (ru) Мембрана для разделения компонентов иммунохимической реакции
EP0152254A2 (en) Chromogenic support immunoassay utilizing labeled complement components
RU1801214C (ru) Способ иммуноанализа биологически активных веществ
CA2019048C (en) Cloth enzyme immunoassay