RU2007418C1 - Method of placental protein preparing - Google Patents

Method of placental protein preparing Download PDF

Info

Publication number
RU2007418C1
RU2007418C1 SU4947164A RU2007418C1 RU 2007418 C1 RU2007418 C1 RU 2007418C1 SU 4947164 A SU4947164 A SU 4947164A RU 2007418 C1 RU2007418 C1 RU 2007418C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
protein
pps
pig
buffer
tissue
Prior art date
Application number
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ю.А. Калинин
Ю.С. Татаринов
А.А. Терентьев
Original Assignee
Российский государственный медицинский университет
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Российский государственный медицинский университет filed Critical Российский государственный медицинский университет
Priority to SU4947164 priority Critical patent/RU2007418C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2007418C1 publication Critical patent/RU2007418C1/en

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: agricultural biotechnology. SUBSTANCE: method involves fraction of proteins from homogenate of pig early chorion on immobilized hexamethylenediamine following by gel-filtration of eluate through Sephadex G-200. EFFECT: improved method of protein preparing.

Description

Изобретение относится к биологической химии и может быть использовано для выделения плацентарного протеина свиньи-1 (ППС-1). The invention relates to biological chemistry and can be used to isolate the placental protein of pig-1 (PPS-1).

В литературе этот белок не описан и способов его получения к настоящему времени в доступной патентной и медицинской литературе не найдено. In the literature, this protein is not described and methods for its preparation to date in the patent and medical literature are not found.

ППС-1 был выявлен в экстрактах ткани раннего хориона свиньи со сроком гестации до 8 недель. При иммунохимическом исследовании методом двойной радиальной иммунодиффузии с различными биологическими жидкостями и экстрактами тканей ППС-1 отсутствовал в плазме хряка, супоросной свиньи и эмбриональной сыворотке, а также в экстрактах ткани матки, гипофиза, надпочечника, яичка, яичника, почки, печени, селезенки, легкого. Иммунохимически данный антиген был обнаружен в тканях плаценты на всем протяжении гестации, при этом содержание его в ранней плаценте превышало содержание в терминальной в 4-5 раз. ППС-1 обнаруживался в равных количествах как в материнской, так и в плодной частях плаценты. Содержание его в этих тканях составило около 2 мг на 100 г ткани ранней плаценты. PPS-1 was detected in tissue extracts of early pig chorion with gestational age up to 8 weeks. During an immunochemical study using double radial immunodiffusion with various biological fluids and tissue extracts, PPS-1 was absent in the plasma of the boar, pregnant pig and fetal serum, as well as in extracts of uterine tissue, pituitary, adrenal gland, testicle, ovary, kidney, liver, spleen, lung . Immunochemically, this antigen was found in the tissues of the placenta throughout the course of gestation, while its content in the early placenta exceeded the content in the terminal 4-5 times. PPS-1 was detected in equal amounts in both the maternal and fetal parts of the placenta. Its content in these tissues was about 2 mg per 100 g of tissue of the early placenta.

Полученные данные позволяют пpедположить, что ППС-1 является плацента-специфическим антигеном и может быть использован как маркер для ранней диагностики супоросности свиньи и мониторинга процесса гестации у этого животного. Создание высокочувствительного иммуноферментного метода определения ППС-1 в биологических жидкостях и тканях на основе очищенного препарата этого белка будет способствовать решению этой задачи. The data obtained suggest that PPS-1 is a placenta-specific antigen and can be used as a marker for early diagnosis of pig gestation and monitoring the gestation process in this animal. The creation of a highly sensitive enzyme-linked immunosorbent assay for determining PPS-1 in biological fluids and tissues based on a purified preparation of this protein will help to solve this problem.

Для получения моноспецифических поликлональных антисывороток к ППС-1 ткань плодной части ранней плаценты свиньи гомогенизировали с равным объемом 0,05 М трис-глицинового буфера, рН 8,5, добавляя 0,1% -ный раствор тритона Х-100, троекратно замораживали и оттаивали, центрифугировали, супернатант диализовали 48 ч против 0,1 М аммоний бикарбонатного буфера и лиофилизировали. Беспородных кроликов-самцов иммунизировали пятикратно, подкожно, вводя каждому животному по 100 мг препарата белков раннего хориона в смеси с полным адъювантом Фрейнда с интервалом в 3 дня. Реиммунизацию проводили тем же количеством препарата без адъюванта на 30-й день после последней иммунизации. Полученные антисыворотки абсорбировали плазмой хряка, экстрактами почки, печени и селезенки. С помощью эти антисывороток в ткани ранней плаценты свиньи был идентифицирован антиген с подвижностью альфао-глобулина в агаровом геле.To obtain monospecific polyclonal antisera to PPS-1, the tissue of the fetal part of the early placenta of the pig was homogenized with an equal volume of 0.05 M Tris-glycine buffer, pH 8.5, adding a 0.1% solution of X-100 triton, three times frozen and thawed , centrifuged, the supernatant was dialyzed for 48 hours against 0.1 M ammonium bicarbonate buffer and lyophilized. Outbred male rabbits were immunized five times, subcutaneously, injecting each animal with 100 mg of the early chorion protein preparation mixed with Freund's complete adjuvant with an interval of 3 days. Reimmunization was carried out with the same amount of the drug without adjuvant on the 30th day after the last immunization. The resulting antisera were absorbed by boar plasma, extracts of the kidney, liver and spleen. Using these antisera in the tissue of the early placenta of the pig, an antigen with alpha-α - globulin mobility in agar gel was identified.

Целью изобретения является получение очищенного препарата плацентарного протеина свиньи-1, достигаемое следующим образом: плодную часть 8-недельной плаценты свиньи гомогенизируют с равным количеством 0,01 М трис-НСl буфера, рН 7,5-8,5, гомогенат центрифугируют после троекратного замораживания и оттаивания, супернатант используют в аффинной хроматографии на иммобилизованном гексаметилендиамине, связавшиеся белки элюируют 2,0-4,0 М раствором хлорида натрия с добавлением 1% глицина, элюат осаждают при 90% насыщения сульфатом аммония, центрифугируют и осадок фракционируют на колонке с сефадексом G-200 в 0,1 М аммоний-бикарбонатном буфере рН 8,15, фракции, содержащие целевой продукт, собирают и лиофилизируют, получая препарат ППС-1 50% -ной степени чистоты. The aim of the invention is to obtain a purified preparation of placental pig protein-1, achieved as follows: the fetal part of the 8-week pig placenta is homogenized with an equal amount of 0.01 M Tris-Hcl buffer, pH 7.5-8.5, the homogenate is centrifuged after three freezing and thawing, the supernatant is used in affinity chromatography on immobilized hexamethylenediamine, the bound proteins are eluted with a 2.0-4.0 M sodium chloride solution with 1% glycine added, the eluate is precipitated at 90% saturation with ammonium sulfate, centrifuged ute and the precipitate is fractionated on a Sephadex G-200 column in 0.1 M ammonium bicarbonate buffer pH 8.15, fractions containing the target product are collected and lyophilized to obtain PPS-1 preparation of 50% purity.

Сорбент синтезировали следующим образом. 100 мл сефарозы 6В отмывали на фильтре 1 л дистиллированной воды, слегка отжимали, переносили в химический стакан, заливали 100 мл ацетона, добавляли 1,5 г трихлортриазина, тщательно перемешивали, ставили на магнитную мешалку и при медленном перемешивании добавляли по каплям 10% -ный раствор едкого натра, доводя рН до 8,5, после чего прекращали добавление едкого натра, выжидали 5 мин и прекращали реакцию, добавляя к смеси 50 мл 50% уксусной кислоты. Полученную проектированную сефарозу отмывали на фильтре от несвязавшегося трихлортриазина и продуктов реакции 1 л 50% -ного водного раствора ацетона и дополнительно 1 л дистиллированной воды; далее сефарозу переносили в химический стакан, добавляли 100 мл дистиллированной воды и 2 г гексаметилендиамина, ставили на магнитную мешалку на ночь при медленном перемешивании. На следующий день полученный сорбент отмывали 3 л дистиллированной воды на фильтре, после чего сорбент гексаметилендиаминсефароза был готов к употреблению. The sorbent was synthesized as follows. 100 ml of Sepharose 6B was washed on the filter with 1 L of distilled water, slightly squeezed, transferred to a beaker, 100 ml of acetone was added, 1.5 g of trichlorotriazine was added, thoroughly mixed, put on a magnetic stir bar and 10% was added dropwise with slow stirring. caustic soda solution, bringing the pH to 8.5, after which the addition of caustic soda was stopped, waited 5 minutes and the reaction was stopped by adding 50 ml of 50% acetic acid to the mixture. The obtained designed sepharose was washed on the filter from unbound trichlorotriazine and reaction products 1 l of a 50% aqueous solution of acetone and an additional 1 l of distilled water; then, Sepharose was transferred to a beaker, 100 ml of distilled water and 2 g of hexamethylenediamine were added, and placed on a magnetic stirrer overnight with slow stirring. The next day, the resulting sorbent was washed with 3 L of distilled water on a filter, after which the sorbent of hexamethylene diaminesepharose was ready for use.

Новым в предлагаемом способе является то, что для выделения и очистки из сложной белковой смеси ранее неизвестного белка - плацентарного протеина свиньи использован биоспецифический для данного белка лиганд - гексаметилендиамин, иммобилизованный на нерастворимой матрице - сефарозе, причем элюат, содержащий ППС-1, фракционируют на колонке с сефадексом G-200 в летучем буфере, решая тем самым одновременно две задачи: дополнительной очистки и диализа. Кроме того, обработка исходного материала буфером с низкой ионной силой позволяет избежать диализа приготовляемой белковой смеси и использовать супернатант гомогената сразу в аффинной хроматографии. New in the proposed method is that for isolation and purification from a complex protein mixture of a previously unknown protein - the placental protein of a pig, a biospecific ligand, hexamethylenediamine, immobilized on an insoluble matrix, Sepharose, is used, and the eluate containing PPS-1 is fractionated on a column with Sephadex G-200 in a volatile buffer, thereby simultaneously solving two problems: additional purification and dialysis. In addition, processing the starting material with a buffer with a low ionic strength avoids dialysis of the prepared protein mixture and uses the homogenate supernatant immediately in affinity chromatography.

Для достижения цели изобретения выбраны и обоснованы параметрические значения способа. Так, при обработке ткани плаценты объемом буфера более однократного наблюдалось разведение белковой смеси и меньшая сорбция ППС-1 на сорбенте; при обработке ткани плаценты объемом буфера менее однократного ионная сила приготовляемой белковой смеси была более 0,08, что препятствовало сорбции искомого белка на лиганде. To achieve the objective of the invention, the parametric values of the method are selected and justified. So, when processing placental tissue with a buffer volume of more than one time, dilution of the protein mixture and less sorption of PPS-1 on the sorbent were observed; when processing placental tissue with a buffer volume of less than one, the ionic strength of the prepared protein mixture was more than 0.08, which prevented the sorption of the desired protein on the ligand.

Для аффинной хроматографии ППС-1 на иммобилизованном гексаметилендиамине оптимальным значением рН для наилучшей сорбции белка было 7,5-8,5 и молярность трис-НСl буфера 0,06-0,08; при уменьшении минимального значения ниже 7,5 наблюдалось уменьшение количества сорбируемого белка, при увеличении рН более максимального 8,5 количество сорбируемого белка отвечало оптимальному значению, однако при этом увеличивалась сорбция балластных белков, что приводило к уменьшению чистоты препарата. Изменение молярности трис-НСl буфера более 0,08 приводило к уменьшению сорбции белка на сорбенте и снижению выхода целевого продукта; при молярности менее 0,06 наблюдалась дополнительная сорбция балластных белков и соответствующее этому уменьшение чистоты препарата. Добавление глицина в элюирующий буфер позволяло добиться более полной десорбции ППС-1. Оптимальным значением молярности элюирующего буфера была величина 2,0-4,0 М. For affinity chromatography of PPS-1 on immobilized hexamethylenediamine, the optimal pH for the best sorption of the protein was 7.5-8.5 and the molarity of Tris-Hcl buffer 0.06-0.08; with a decrease in the minimum value below 7.5, a decrease in the amount of sorbed protein was observed, with an increase in pH above the maximum 8.5, the amount of sorbed protein corresponded to the optimal value, however, the sorption of ballast proteins increased, which led to a decrease in the purity of the drug. Changing the molarity of Tris-Hcl buffer more than 0.08 led to a decrease in protein sorption on the sorbent and a decrease in the yield of the target product; with a molarity of less than 0.06, additional sorption of ballast proteins and a corresponding decrease in the purity of the drug were observed. The addition of glycine to the elution buffer made it possible to achieve more complete desorption of PPS-1. The optimal molarity of the eluting buffer was 2.0-4.0 M.

П р и м е р 1. 100 г ткани 8-недельной плаценты свиньи (плодная часть) гомогенизируют со 100 мл 0,01 М трис-НСl буфера рН 7,5, трижды замораживают и оттаивают, центрифугируют 45 мин при 6000 об/мин. Супернатант используют в аффинной хроматографии на колонке с иммобилизованным гексаметилендиамином в 0,06 М трис-НСl буфере рН 7,5. Связавшиеся белки элюируют 2,0 М раствором хлорида натрия с 1% глицина, элюат осаждают при 90% насыщения сульфатом аммония 12 ч при 4оС и центрифугируют 45 мин. 8000 об/мин. Осадок фракционируют на колонке с сефадексом G-200 в 0,1 М аммоний-бикарбонатном буфере, рН 8,15, фракции содержащие ППС-1, собирают и лифилизируют, получая 0,4 мг белка. Содержание ППС-1 40% , выход 8% .PRI me R 1. 100 g of tissue of an 8-week pig placenta (fetal part) is homogenized with 100 ml of 0.01 M Tris-Hcl buffer pH 7.5, thrice frozen and thawed, centrifuged 45 min at 6000 rpm . The supernatant is used in affinity chromatography on a column with immobilized hexamethylenediamine in 0.06 M Tris-HCl buffer pH 7.5. Bound proteins were eluted with 2.0 M sodium chloride, 1% glycine eluate was precipitated with 90% saturated ammonium sulfate for 12 hours at 4 ° C and centrifuged 45 min. 8000 rpm The precipitate was fractionated on a Sephadex G-200 column in 0.1 M ammonium bicarbonate buffer, pH 8.15, fractions containing PPS-1 were collected and lyophilized to obtain 0.4 mg of protein. The content of PPS-1 is 40%, the yield is 8%.

П р и м е р 2. Ткань плаценты обрабатывают как в примере 1. Аффинную хроматографию проводят в 0,08 М трис-НСl буфере рН 8,5. Связавшиеся белки элюируют 4,0 М хлоридом натрия с добавлением 1% глицина. Дальнейшие процедуры - как в примере 1. Получюат 0,6 мг белка. Содержание ППС-1 30% , выход 9% . PRI me R 2. The placental tissue is treated as in example 1. Affinity chromatography is carried out in 0.08 M Tris-Hcl buffer pH 8.5. Bound proteins are eluted with 4.0 M sodium chloride supplemented with 1% glycine. Further procedures are as in Example 1. 0.6 mg protein will be obtained. The content of PPS-1 is 30%, yield 9%.

П р и м е р 3. Ткань плаценты обрабатывают как в примере 1. Аффинную хроматографию проводят в 0,07 М трис-НСl буфере рН 8,0. Связавшиеся белки элюируют 3,0 М хлоридом натрия в смеси с 1% глицином. Дальнейшие процедуры как в примере 1. Получают 0,54 мг белка. Содержание ППС-1 50% , выход 13,5% . PRI me R 3. The placental tissue is treated as in example 1. Affinity chromatography is carried out in 0.07 M Tris-Hcl buffer pH 8.0. Bound proteins are eluted with 3.0 M sodium chloride mixed with 1% glycine. Further procedures as in example 1. Obtain 0.54 mg of protein. The content of PPS-1 is 50%, the yield is 13.5%.

Предлагаемый способ является оригинальным способом выделения нового белка - плацентарного протеина свиньи-1. The proposed method is an original way of isolating a new protein - the placental protein of pig-1.

При изучении физико-химических свойств ППС-1 было установлено, что данный белок обладает электрофоретической подвижностью (относительно альбумина) - 1,0, молекулярной массой, определенной в гель-фильтрации около 90 кД. Белок содержит углеводы при окрашивании дуги преципитации по методу Шиффа и осаждается сульфатом аммония при 60% насыщения. When studying the physicochemical properties of PPS-1, it was found that this protein has an electrophoretic mobility (relative to albumin) of 1.0, a molecular weight determined in gel filtration of about 90 kD. The protein contains carbohydrates when staining the precipitation arc according to the Schiff method and precipitates with ammonium sulfate at 60% saturation.

Данные иммунохимического анализа и физико-химические свойства ППС-1 позволяют считать, что этот белок неидентичен альфа-фетопротеину свиньи, обнаруженному в больших количествах в эмбриональной сыворотке; ППС-1 отличается и от плацентарного лактогена свиньи, имеющего молекулярную массу около 20 кД; от трофобластического протеина свиньи, также имеющего молекулярную массу около 20 кД. The data of immunochemical analysis and physico-chemical properties of PPS-1 suggest that this protein is not identical to pig alpha-fetoprotein, found in large quantities in fetal serum; PPS-1 differs from the placental lactogen in pigs having a molecular weight of about 20 kD; from a trophoblastic protein of a pig, also having a molecular weight of about 20 kD.

Разработка оригинального способа выделения ППС-1 и получение к нему антисыворотки является актуальной научной задачей, поскольку данный белок выявлен в ткани ранней плаценты и разработка высокочувствительного иммуноферментного метода определения ППС-1 позволит получить тест для ранней диагностики супоросности и ее течения. (56) ЕР N 0206181, кл. С 07 К 13/00, С 12 N 15/06, 1987.  The development of an original method for the isolation of PPS-1 and the production of antiserum for it is an urgent scientific task, since this protein was detected in the tissue of the early placenta and the development of a highly sensitive enzyme-linked immunosorbent assay for determining PPS-1 will make it possible to obtain a test for early diagnosis of pregnancy and its course. (56) EP N 0206181, CL C 07 K 13/00, C 12 N 15/06, 1987.

Claims (1)

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПЛАЦЕНТАРНОГО ПРОТЕИНА, включающий получение гомогената ткани, центрифугирование, хроматографирование с последующим элюированием, отличающийся тем, что из тканей используют ткань ранней плаценты свиньи, из хроматографий используют аффинную хроматографию на сефарозе с иммобилизованным гексаметилендиамином в 0,06 - 0,08 М трис-HCI-буфере рН 7,5 - 8,5, элюирование проводят 2,0 - 4,0 М раствором хлорида натрия с добавлением 1% глицина, дополнительно элюат осаждают при 90% -ном насыщении сульфатом аммония, центрифугируют и осадок фракционируют на колонке с сефадексом G-200 в 0,1 М аммоний-бикарбонатном буфере рН 8,15, фракции, содержащие целевой продукт, собирают и диализуют.  METHOD FOR PRODUCING PLACENTAL PROTEIN, including obtaining tissue homogenate, centrifugation, chromatography followed by elution, characterized in that pig tissue of the early placenta is used from tissues, affinity chromatography on sepharose with immobilized hexamethylenediamine in 0.06-0.08 is used. HCI buffer pH 7.5 - 8.5, elution is carried out with a 2.0 - 4.0 M sodium chloride solution with the addition of 1% glycine, an additional eluate is precipitated at 90% saturation with ammonium sulfate, the fraction is fractionated and centrifuged. iruyut on a Sephadex G-200 in 0.1 M ammonium bicarbonate buffer pH 8.15, fractions containing the desired product were collected and dialyzed.
SU4947164 1991-06-21 1991-06-21 Method of placental protein preparing RU2007418C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4947164 RU2007418C1 (en) 1991-06-21 1991-06-21 Method of placental protein preparing

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4947164 RU2007418C1 (en) 1991-06-21 1991-06-21 Method of placental protein preparing

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2007418C1 true RU2007418C1 (en) 1994-02-15

Family

ID=21580168

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU4947164 RU2007418C1 (en) 1991-06-21 1991-06-21 Method of placental protein preparing

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2007418C1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA1242393A (en) Digitalis antibodies, process for the preparation thereof and the use thereof for the therapy of digitalis intoxications
US4340581A (en) Process for the immunological determination of basal membrane material and new basal membrane suitable therefor
JPS63109796A (en) Production of high purity procollagen peptide (3 type)
US4402872A (en) Protein and process for isolating it
JPS6361319B2 (en)
US4302385A (en) Placenta-specific tissue protein PP10
US4468345A (en) Protein (PP17), a process for concentrating and isolating it and its use
US4500451A (en) New protein PP13 extracted from human placental tissues and use thereof
US4746731A (en) Isolated tissue protein PP18
US4368148A (en) Protein PP9, process for its enrichment and its isolation and its use
US4592863A (en) Protein PP20, a process for obtaining it, and its use
US4325866A (en) Protein, PP11, a process for its preparation and its use
IE44824B1 (en) Process for the isolation of a placenta-specific glycoprotein
RU2007418C1 (en) Method of placental protein preparing
Lunenfeld et al. Immunology of follicle-stimulating hormone and luteinizing hormone
US4018885A (en) Steroid-binding globulin and process for preparing it and antibodies thereto
RU2007419C1 (en) Method of placental protein preparing
RU2007417C1 (en) Method of placental protein preparing
RU2007422C1 (en) Method of placental protein preparing
RU2007420C1 (en) Method of placental protein preparing
RU2007421C1 (en) Method of placental protein preparing
Wallace et al. Isolation and characterization of rabbit antibodies to bovine myelin basic protein
US4599318A (en) Tissue protein PP19, a process for obtaining it, and its use
IE67563B1 (en) A process for the isolation of basement membrane proteins from human and animal tissues
JPH0720994B2 (en) Tissue protein PP (below 2) (below 1) and its acquisition method