RU2004251C1 - Способ выделени антигена 8 возбудител мелиоидоза - Google Patents

Способ выделени антигена 8 возбудител мелиоидоза

Info

Publication number
RU2004251C1
RU2004251C1 SU4942088A RU2004251C1 RU 2004251 C1 RU2004251 C1 RU 2004251C1 SU 4942088 A SU4942088 A SU 4942088A RU 2004251 C1 RU2004251 C1 RU 2004251C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
antigen
melioidosis
isolation
stimulant
antigenic
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
Наталь Петровна Храпова
Вера Ивановна Смирнова
Николай Николаевич Пивень
Елена Валерьевна Прохватилова
Original Assignee
Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт filed Critical Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт
Priority to SU4942088 priority Critical patent/RU2004251C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2004251C1 publication Critical patent/RU2004251C1/ru

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

иммуносорбента и он становитс  непригодным дл  многократного повторного использовани . Применение глицхИН-NaOH буфера, рН 10,5-11.0 во всех случа х обеспечивало эффективное выделение АГ8 и не вли ло на АГ-св зывающую активность иммобилизованных на носителе МКА. Многократное применение (три и более раз) иммуносорбента было продемонстировано во всех опытах по получению высокоочи- щенного антигена.
Таким образом оптимальным десорби- рующим агентом признан глицерин-NaOH буфер, рН 10.5-11,0.
П р и м е р 3. Изучение диапазона воз- можных источников выделени  АГ8.
Дл  выделени  АГ8 использовали различные антигенные смеси: водно-солевые экстракты, формамидные экстракты и экс- трацеллюл рные антигены. В таблице пред- ставлены данные по очистке АГ8.
Установлено, что выход АГ8 зависит от нагрузки на колонку и от насыщенности этим АГ исходного материала. Так, при относительно небольшом содержании суммарного коли- чества Сахаров удельна  концентраци  АГ8 в ЭЦА максимальна. Менее насыщенным АГ 8  вл ютс  водно-солевой и формамидный экстракты . Поэтому при использовании последних в качестве источника АГ8 следует увеличивать нагрузку на колонку исходной антигенной смеси, а при препаративном получении АГ8 наиболее пригодным исходным материалом  вл етс  ЭЦА.
Гомогенность и идентичность образцов АГ8, полученных в опытах, представленных в таблице, была подтверждена с помощью реакции иммунодиффузии в геле и иммуно- электрофореза с гипериммунной поликло- нальной сывороткой.
Пример 4. Сравнительна  оценка иммунохимической гомогенности антигенных препаратов, приготовленных различными способами.
Антигенный состав различных препара- тов, приготовленных с помощью водно-солевой , формамидной экстракции, ионообменной и аффинной хроматографии, изучали с помощью иммуноэлектрофореза с гипериммунной поликлональной козлиной сывороткой против антигенов возбудител  мелиоидоза (см. чертеж). На чертеже показана Иммунофореграмма антигенов Р. pseudomallei III, выделенных различными методами.
1,5 - В СЭ, приготовленный в результате клеток ультразвуком. Концентраци  - 3 мг/мл.
2-формамидный экстракт. Концентраци  - 12,5 мг/мл.
3- АГ, приготовленный после ионообменной хроматографии на ДЕАЕ-сефадексе А-25. Концентраци  - 12,5 мг/мл.
4- АГ8 очищенный методом аффинной хроматографии с помощью иммобилизованных на сефарозе МКА против данного АГ. Концентраци  -5 мг/мл.
В продольные канавки внесена гипериммунна  козлина  сыворотка против клеток P.pseudomallei 100.
Иммунохимическа  гомогенность АГ8 зарегистрирована при выделении его с помощью моноклонального иммуносорбента методом аффинной хроматографии.
Таким образом, предлагаемый способ очистки АГ8 возбудител  мелиоидоза с помощью моноклонального иммуносорбента позвол ет выдел ть из различных антигенных смесей иммунохимически гомогенный АГ8, пригодный дл  последующего использовани  в иммунохимических и иммунологических исследовани х.
(56) Захарова И.Я., Косенко Л.В. Изучение микробных полисахаридов. Киев, Наукова думка, 1982, с. 25-26.
Журнал микробиологи , эпидемиологи  и микробиологи , 1981, № 4, с. 78-82.
Пивень Н.Н., Смирнова В.И. Выделение , очистка и химический состав поверхностного полисахаридного антигенного комплекса возбудител  мелиоидоза. В кн: Особо опасные инфекционные заболевани : диагностика, профилактика и биологические свойства возбудителей, Сб. науч. работ, Волгоград, 1989, вып. 4, с. 111-117.
Сводна  таблица данных по очистке АГ8 методом аффинной хроматографии.

Claims (1)

  1. Формула изобретени 
    СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ АНТИГЕНА 8 ВОЗБУДИТЕЛЯ МЕЛИОИДОЗА из антигенной смеси, отличающийс  тем, что, с целью повышени  чистоты антигена, антигенную смесь пропускают через колонку с
    Продолжение таблицы
    сорбентом CNBr-сефароза 4В, коньюгиро- ванна  с моноклональными антителами против антигена 8 мелиоидоза, в течение 120 - 150 мин при концентрации антител 2 мг/мл гел  с последующей десорбцией антигена глицин-NaOH буфером, рН 10,5 - 11,0.
    ,
    1
    2 3
SU4942088 1991-06-04 1991-06-04 Способ выделени антигена 8 возбудител мелиоидоза RU2004251C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4942088 RU2004251C1 (ru) 1991-06-04 1991-06-04 Способ выделени антигена 8 возбудител мелиоидоза

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4942088 RU2004251C1 (ru) 1991-06-04 1991-06-04 Способ выделени антигена 8 возбудител мелиоидоза

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2004251C1 true RU2004251C1 (ru) 1993-12-15

Family

ID=21577579

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU4942088 RU2004251C1 (ru) 1991-06-04 1991-06-04 Способ выделени антигена 8 возбудител мелиоидоза

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2004251C1 (ru)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES8600770A1 (es) Procedimiento para la preparacion de anticuerpos contra digitalis
Mortenson Purification and analysis of ferredoxin from Clostridium pasteurianum
Christensen et al. A reaction between some streptococci and IgA myeloma proteins
US5075423A (en) Purification of protein a by affinity chromatography followed by anion exchange
JPH0231689A (ja) 百日咳トキシンの精製法
CA2010835A1 (en) Antibody purification process
Hozumi et al. A simple procedure for the isolation of human secretory IgA of IgA1 and IgA2 subclass by a jackfruit lectin, jacalin, affinity chromatography
Fowler et al. Analytical study of microsomes and isolated subcellular membranes from rat liver. V. Immunological localization of cytochrome b5 by electron microscopy: methodology and application to various subcellular fractions.
Weiss et al. Isolation of a Multiprotein Complex Containing Cytochrome b and c1 from Neurospora crassa Mitochondria by Affinity Chromatography on Immobilized Cytochrome c: Difference in the Binding between Ferricytochrome c and Ferrocytochrome c to the Multiprotein Complex
US5281661A (en) Complex containing coagulation factor IX
Pak-Leong Isolation of specific IgM monoclonal antibodies by affinity chromatography using alkaline buffers
RU2004251C1 (ru) Способ выделени антигена 8 возбудител мелиоидоза
Banerjea et al. ANTIGENS OF BORDETELLA PERTUSSIS II: Purification of Heat-Labile Toxin
Gray et al. A specific immunoabsorbent for the isolation of fraction I protein
Burstein The removal of testosterone binding globulin from plasma by affinity chromatography
Packalen et al. Inhibition of Migration of Normal Guinea Pig Blood Leukocytes by Homologous Immune γ2-Globulin in the Presence of Specific Antigen
Kanai et al. Induction of specific antibodies to poly (ADP–ribose) in rabbits by double-stranded RNA, poly (A)· poly (U)
Strandh et al. New approach to steroid separation based on a low affinity IgM antibody
RU2004250C1 (ru) Способ выделени антигена 6 возбудител мелиоидоза
Scott et al. Affinity chromatography purification of Clostridium perfringens enterotoxin
DE3779125D1 (de) Reinigungsmethode fuer antikoerper.
SU651814A1 (ru) Способ получени иммуносорбента
Hoag et al. Optimal conditions for isolating human placental alkaline phosphatase by immunosorption
Schöller et al. Common antigens of streptococcal and non-streptococcal oral bacteria: isolation and biochemical characterization of the extracellular protein antigen
HEDERSTEDT STUDIES ON THE TREPONEMA PALLIDUM IMMOBILIZING ACTIVITY IN NORMAL HUMAN SERUM: 3. The Kinetics of the Immobilization Reaction of Normal and Immune Sera