RU2004250C1 - Способ выделени антигена 6 возбудител мелиоидоза - Google Patents

Способ выделени антигена 6 возбудител мелиоидоза

Info

Publication number
RU2004250C1
RU2004250C1 SU4942087A RU2004250C1 RU 2004250 C1 RU2004250 C1 RU 2004250C1 SU 4942087 A SU4942087 A SU 4942087A RU 2004250 C1 RU2004250 C1 RU 2004250C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
antigen
melioidosis
isolation
stimulant
gel
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
Наталь Петровна Храпова
Вера Ивановна Смирнова
Николай Николаевич Пивень
Елена Валерьевна Прохватилова
Original Assignee
Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт filed Critical Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт
Priority to SU4942087 priority Critical patent/RU2004250C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2004250C1 publication Critical patent/RU2004250C1/ru

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

ции, полученные методом аффинной хроматографии на иммуносорбенте с МКА против АГ6. В продольные канавки внесены поли- клональные сыворотки против:
а, г - АГ6
б - антигенов обеззараженных ацетоном и высушенных микробных клеток P.mallel 10230.
в - антигенов обеззараженных ацетоном -и высушенных микробных клеток Р. pseudomallel VPA. .
Установлено, что наиболее интенсивное присоединение ТКА против АГ6 к гелю происходит в течение первых 20 мин, через 40 мин оно достигает почти 95%, а через 120 мин практически заканчиваетс . Поэтому оптимальное врем  коньюгировани  МКА с активированным гелем равно 40-120 мин.
П р и м е р 2. Определение оптимальных концентраций МКА 2 F 11, конъюгирован- ных с активированным гелем. При подборе оптимальных концентраций МКА 2 F11, необходимых дл  приготовлени  активного иммуносорбента, активированный гель конъюгировали с различными количествами иммуноголобулина при общеприн тых значени х рН среды (7,5-9,5). Затем производи- ли расчет эффективности ковалентного св зывани  МКА с сефарозой (см. табл. 1).
Как следует из данных таблицы, наибо- лее эффективное св зывание МКА 2 F11 с активированным гелем осуществл етс  при рН среды 8,2-8,5 и концентрации антител от 3 до 6 мг на 1 мл сефарозы. Снижение кон- центрации МКА до 1,5 мг уменьшает эффек- тивность св зывани  более, чем на 10%. Увеличение рН среды до 9,5, т.е. предельно допустимого значени , незначительно по- вышае-т скорость св зывани  МКА с сорбентом , но не вли ет на эффективность этого процесса (81%).
Поэтому дл  конкретных МКА оптимальными услови ми конъюгировани  с активированной сефарозй  вл етс  следующие:
концентраци  иммуноглобулинов - 3-6 мг на 1 мл гел ;
рН среды конъюгировани  - 8,2-8,5
Пример 3. Изучение условий десорбции специфического антигена с колонки с иммуносорбентом. Разрушение иммунных комплексов с целью э/уоировани  с колонок специфических антигоенов производ т рйз- нообразными по химическому составу буферными .растворами с -широкими диапазоном рН от 2,2 до 11,5.
Оптимальные результаты получены при десорбции АГ06 0,2 М голицин-НС буфером , рН 2,8, с„0,5 М NaCI. Так, с колонки,
объемом 17,5 мл иммуносорбента, нагруженной 4.8 мг Сахаров водко-солевого экстракта Pf pseudomallel 57576, данным буфером элюировали 0,2 мг очищенного АГ6, что составл ло 4,2% выхода от суммарной концентрации Сахаров в исходной анти- гоеннй смеси. В случае снижени  рН глицин-HCI буфера до 2,2 результаты опытов были сопоставлены с приведенными выше данными, однако пригодность иммуносорбента дл  повторного использовани  резко падала вследствие денатурирующего воздействи  более кислой среды на МКА, иммобилизованные на гранулах сорбента . Такой же эффект был отмечен и при использовании щелочного глицин-NaOH буфера , рН 11,5. Поэтому наиболее пригодным дл  десорбции АГб признан глицин-HCI буфер, рН 2,8.
Пример 4. Иммунохимическа  характеристика очищенного АГ06.
Гомогенность и специфическа  активность очищенного АГ6 подтверждена с помощью реакции иммунодиффузии в геле с поликлональной кроличьей сывороткой против антигенов возбудител  мелиоидоза и преципитирующими моноклинальными антителами против АГ6. В обоих случа х зарегистрирована одна лини  приципитата.
Очищенный образец идентифицирован с помощью референтной системы антигенов возбудител  мелиодоза в иммуноэлект- рофорезе. Выделенный антиген по всем критери м схемы Вивн  Н.Н., Илюхина В,И. соответствовал АГ6.
Таким образом, предлагаемый способ очистки АГб возбудител  мелиоидоза с по- мчощью моноклонального иммуносорбента позвол ет в процессе контакта смеси различных антигенов с сорбентом и посл.едую- щей десорбции с негооспецифического антигена быстро и эффективно выдел ть им- мунохимически гомогенный АГ6, пригодный дл  последующего использовани  в имму- нохимических исследовани х.
(56) Лозовой Н.В. Химические и биологические свойства антигенов возбудител  мелиоидоза // Тез. докл. научи, конф. молодых науч. сотрудников, Ростов-на-Дону . - 1964, с. 53-54.
Журнал микробиологи , эпидемиологи  и микробиологи . -1981, № 4, с. 78-82.
Ярулин Р.Г., Фарбер „С.М, В кн. Особо опасные инфекционные заболевани : диагностика , профилактика и биологические свойства возбудителей. Сб, науч. работ, Волгоград. 1989, вып. 4, с. 142-145.
Степень иммобилизации МКА на носителе при изменении нагрузки белка рН среды

Claims (1)

  1. Формула изобретени 
    СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ АНТИГЕНА 6 ВОЗБУДИТЕЛЯ МЕЛИОИДОЗА из антигенной смеси, отличающийс  тем, что, с целью повышени  чистоты антигена, антигенную смесь пропускают через колонку с сорбентом CNBr-сефароза 4В, конъюгиро%90
    О 5 10 15 20 25 3Q 35 40 45 50 55 60
    Врем ,мин
    Фиг 1
    ванным с моноклональными антителами против антигена 6 мелиоидоза, в течение 40 - 120 мин при концентрации антител 3 - 6 мг/мл гел  и рН среды 8,2 - 8,5 с последующей десорбцией антигена глицин-НС буфером рН - 2,8.
    а S
    CSD4
    8 зг
    Фиг. 2
SU4942087 1991-06-04 1991-06-04 Способ выделени антигена 6 возбудител мелиоидоза RU2004250C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4942087 RU2004250C1 (ru) 1991-06-04 1991-06-04 Способ выделени антигена 6 возбудител мелиоидоза

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4942087 RU2004250C1 (ru) 1991-06-04 1991-06-04 Способ выделени антигена 6 возбудител мелиоидоза

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2004250C1 true RU2004250C1 (ru) 1993-12-15

Family

ID=21577578

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU4942087 RU2004250C1 (ru) 1991-06-04 1991-06-04 Способ выделени антигена 6 возбудител мелиоидоза

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2004250C1 (ru)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0391526B1 (en) Antibody purification process
Saleemuddin Bioaffinity based immobilization of enzymes
US4874813A (en) Proteins bound to a marker or solid phase support matrix using a hydrazone linkage
EP0323027A2 (en) Monoclonal antibody purification process
US5075423A (en) Purification of protein a by affinity chromatography followed by anion exchange
JPH0231689A (ja) 百日咳トキシンの精製法
JPH05268985A (ja) モノクローナル抗体の精製法
Lihme et al. Divinylsulphone-activated agarose: formation of stable and non-leaking affinity matrices by immobilization of immunoglobulins and other proteins
RU2004250C1 (ru) Способ выделени антигена 6 возбудител мелиоидоза
Taniguchi et al. Purification of staphylococcal protein A by affinity precipitation using a reversibly soluble-insoluble polymer with human IgG as a ligand
US4232004A (en) Antibody-specific solid phase immunoadsorbent, preparation thereof, and antibody purification therewith
Paterson et al. The enigma of oligoclonal immunoglobulin G in cerebrospinal fluid from multiple sclerosis patients
US5256771A (en) Heat treatment of IgM-containing immunoglobulins to eliminate non-specific complement activation
JP2528302B2 (ja) 免疫グロブリン結合活性を有する蛋白質lおよびそのサブフラグメント、それらの製造法、試薬キツト、薬剤組成物およびレプトコツカスマグヌス株
KR910009283A (ko) 백일해 독소 및 또는 사상혈구 응집소 항원의 정제 방법(Process)
Gyka et al. Crosslinkage of antibodies to staphylococcal protein A matrices
ORINO et al. Inhibitory effects of horse serum on immunoassay of horse ferritin
McDonald et al. Antibody classes and subclasses in circulating immune complexes isolated from mice infected with lactic dehydrogenase virus.
Scott et al. Affinity chromatography purification of Clostridium perfringens enterotoxin
Bureau et al. Desorption following immunoaffinity chromatography; generalization of a gentle procedure for desorbing antigen
US4752571A (en) Method for determining certain bacterial polypeptides and antibodies directed against them
Bassett Large scale preparation of wheat germ agglutinin
Turková et al. Effect of concentration of immobilized inhibitor in the biospecific chromatography of pepsins
Mehta et al. Neutralizing activity in isolated serum antibody fractions from visna-infected sheep
JPH0696598B2 (ja) 抗体の精製法