RU1799598C - Marker for estimating attenuation of poliomyelitis viruses - Google Patents
Marker for estimating attenuation of poliomyelitis virusesInfo
- Publication number
- RU1799598C RU1799598C SU904870735A SU4870735A RU1799598C RU 1799598 C RU1799598 C RU 1799598C SU 904870735 A SU904870735 A SU 904870735A SU 4870735 A SU4870735 A SU 4870735A RU 1799598 C RU1799598 C RU 1799598C
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- marker
- virus
- propolis
- medium
- poliomyelitis
- Prior art date
Links
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к области вирусологии . Цель - использование экстракта прополиса в качестве маркера. Сущность изобретени : динамика подавлени репродукции вакцинных вариантов вируса полиомиелита в культуре клеток при наличии в среде экстракта прополиса опережает аналогичный процесс, касающийс диких вариантов . Положительный эффект: расширение ассортимента маркеров.The invention relates to the field of virology. The goal is to use propolis extract as a marker. SUMMARY OF THE INVENTION: The dynamics of suppressing the reproduction of vaccine variants of poliomyelitis virus in cell culture when propolis extract is present in the medium is ahead of a similar process for wild variants. Positive effect: expanding the range of markers.
Description
Изобретение относитс к вирусологии, а именно к средству оценки степени аттену- ации вирусов. Известно использование про- полиса и прополисных препаратов в медицине в терапевтических цел х.The invention relates to virology, and in particular to a means for assessing the degree of attenuation of viruses. The use of propolis and propolis preparations in medicine for therapeutic purposes is known.
Цель изобретени - расширение ассортимента маркеров, используемых дл оценки степени аттенуации вирусов за счет вы влени новых дополнительных свойств прополиса, ранее неизвестных.The purpose of the invention is to expand the range of markers used to assess the degree of attenuation of viruses by identifying new additional propolis properties previously unknown.
Дл достижени цели в качестве маркера используют экстракт прополиса.Propolis extract is used as a marker to achieve the goal.
В основу маркера положен тот факт, что динамика подавлени репродукции вакци- онных вариантов вируса полиомелита в культуре клеток, при наличии в поддерживающей среде экстракта прополиса, значительно опережает аналогичный процесс, касающийс дл вариантов вируса полиомиелита . Если разница показателей интен- сивности подавлени репродукции изол тов вируса полиомиелита в культуре клеток при наличии и отсутствии прополиса (0,8%) в поддерживающей среде составл ет 2,0 Ig ЦПДбО/мл, то их относ т к диким. При 3,0 Ig ЦПДбО/мл - к вакцинным, а если разница этих показателей находитс в пределах 2,0-3,0 Ig ЦПД50/М/1, то их относ т кThe marker is based on the fact that the dynamics of suppressing the reproduction of vaccine variants of poliomyelitis virus in cell culture, in the presence of propolis extract in the supporting medium, is significantly ahead of the same process for poliomyelitis variants. If the difference in the intensities of suppressing the reproduction of poliomyelitis virus isolates in cell culture in the presence and absence of propolis (0.8%) in the support medium is 2.0 Ig CPDbO / ml, then they are wild. At 3.0 Ig, CPDbO / ml - to vaccine, and if the difference between these indicators is in the range of 2.0-3.0 Ig CPD50 / M / 1, then they relate to
промежуточным. Технологи определени предлагаемого нами маркера несложна по выполнению, не св зана со значительными материальными затратами, так как исключает использование дорогосто щих материалов реактивов.in between. The technology for determining the marker we offer is simple to implement, not associated with significant material costs, as it eliminates the use of expensive reagent materials.
Использование предлагаемого маркера дл оценки степени аттенуации вирусов показало , что информаци , полученна с помощью этого признака, полностью коррелирует с антигенным признаком. Во всех опытах было отмечено полное совпадение антигенного (известного) маркера с новым маркером, предлагаемым нами.The use of the proposed marker for assessing the degree of attenuation of viruses has shown that the information obtained with this trait fully correlates with the antigenic trait. In all experiments, a complete coincidence of the antigenic (known) marker with the new marker proposed by us was noted.
Пример. Была дана оценка степени аттенуации 60 изол тов вируса полиомиелита , выделенных от больных полиомиелитом, из образцов проб водных объектов (сточные воды, вода открытых водоемов), а также стандартных штаммов вируса полиомиелита , диких и вакционных по р ду известных, а также по предлагаемому нами маркеру.Example. We assessed the degree of attenuation of 60 poliomyelitis virus isolates isolated from poliomyelitis patients from samples of water bodies (wastewater, open reservoir water), as well as standard polio virus strains, wild and vaccine, according to a number of known, as well as according to our proposed marker.
Изготовление экстракта прополиса (маркера).Production of propolis extract (marker).
Используют 8,0%-ный водный экстракт прополиса, собранный на пасеках пчеловодами колхоза Победа Рыбинского района ССР Молдова, который получают по следуЁUse an 8.0% aqueous propolis extract collected in apiaries by beekeepers of the Pobeda collective farm of the Rybinsk district of the USSR, Moldova, which is obtained as follows
VIVI
О ОOh Oh
ел оate about
0000
ющей методике: отвешивают 20,0 г прополиса , растирают в ступке, затем эту измельченную массу высыпают в стекл нную колбу, куда добавл ют до 100,0 мл дистиллированной воды. Экстракцию провод т при 42,0+ 0,1° С втечение4 суток, периодически встр хива (в течение 10 мин содержа- ние колбы 5-6 раз в день. Полученный раствор стерилизуют через асбестовый фильтр и сохран ют в объеме 20-25 мл в темных флакончиках, хорошо закупоренных при температуре +40°С. После стабилизации устанавливаетс желто-светлый (лимонный ) цвет. При использовании водный экстракт прополиса разбавл ют таким образом , чтобы конечна концентраци в поддерживающей среде клеток составила 0,8±0,1%.Methodology: 20.0 g of propolis is weighed, triturated in a mortar, then this ground mass is poured into a glass flask, to which up to 100.0 ml of distilled water is added. The extraction is carried out at 42.0 + 0.1 ° C for 4 days, periodically shaking (for 10 minutes the contents of the flask are 5-6 times a day. The resulting solution is sterilized through an asbestos filter and stored in a volume of 20-25 ml in dark bottles, well corked at a temperature of + 40 ° C. After stabilization, a yellow-light (lemon) color is established. When using, the aqueous extract of propolis is diluted so that the final concentration in the supporting medium of the cells is 0.8 ± 0.1% .
Приготовление перевиваемой культуры НЕр-2 осуществл ют следующим образом.The preparation of the transplantable HEP-2 culture is carried out as follows.
Перед посевом культуры об зательно провод т просмотр и оценку моносло . Отбирают культуру со сплошным монослоем клеток имеющих типичную дл данной линии морфологию, с четко выраженными границами между клетками. Клетки снимают со стекла матрасов трипсин-версеном. Дл этого приготавливают смесь равных объемов 0,25%-ного раствора трипсина и раствора версена, подогревают ее в вод ной бане до 30-35°С. В начале с матраса выливают питательную среду, клеточный слой промывают 3 раза фосфатно-буферным раствором (рН 7,5), не содержащим ионы кальци и магни . Затем тепловой смесью (трипсинвёрсен) заливают монослой культуры клеток так, чтобы все участки были покрыты жидкостью. В матрасы, объемом 100, 250 и 1000 мл, раствор добавл ют, соответственно , по 10, 15 и 30 мл. Матрасы встр хивают и помещают в термостат (37°С) на 15 - 20 мин до полного отделени клеток от поверхности стекла. Крупные конгломераты клеток диспергируют, пипетиру несколько раз клеточную взвесь. Суспензию клеток центрифугируют 10 мин при 2000 об./мин, смесь трипсин-версен удал ют. Осажденные центрифугированием клетки ресуспен- дируют в небольшом объеме ростовой питательной среды, количество клеток подсчитывают в счетной камере Гор ева Взвесь клеток контролируют на бактериальную стерильность, развод т питательной средой с таким расчетом, чтобы в 1,0 мл содержалось 60 тыс. клеток. В качестве среды дл выращивани клеток используют среду Игла, среду 199. Игла-МЕМ с добавлением тел чьей сыворотки крупного рогатого скота - 10% и антибиотиков. ПеревиваемуюBefore sowing the culture, a monolayer is reviewed and evaluated. A culture with a continuous monolayer of cells having a morphology typical of a given line, with distinct boundaries between cells, is selected. Cells are removed from the glass of the mattresses with trypsin-versene. For this, a mixture of equal volumes of a 0.25% trypsin solution and versene solution is prepared, and it is heated in a water bath to 30-35 ° C. At the beginning, the nutrient medium is poured from the mattress, the cell layer is washed 3 times with a phosphate-buffered solution (pH 7.5) that does not contain calcium and magnesium ions. Then, a monolayer of cell culture is poured with a thermal mixture (trypsinversen) so that all areas are covered with liquid. In mattresses of 100, 250 and 1000 ml, 10, 15 and 30 ml, respectively, are added. The mattresses are shaken and placed in a thermostat (37 ° C) for 15-20 minutes until the cells are completely separated from the glass surface. Large conglomerates of cells disperse, pipetiry several times the cell suspension. The cell suspension was centrifuged for 10 minutes at 2000 rpm, and the trypsin-versene mixture was removed. Cells precipitated by centrifugation are resuspended in a small volume of growth medium, the number of cells is counted in a counting chamber Goreva. Cell suspension is monitored for bacterial sterility, diluted with nutrient medium so that 1.0 ml contains 60 thousand cells. The medium used for growing cells was Eagle Medium, Medium 199. Eagle-MEM supplemented with calf bovine serum 10% and antibiotics. Transplantable
культуру НЕр-2 разливают в пробирки по 1,0 мл. В качестве поддерживающей среды ис пользуют те же вышеприведенные питательные среды без добавлени сыворотки.HEP-2 culture is poured into 1.0 ml tubes. As the support medium, the same nutrient media as mentioned above without the addition of serum are used.
Обновление сплошного моносло клеток новой генерации наблюдают через 5-6 суток. Титрование изол тов вируса полиомиелита того или иного иммунологического типа с целью изучени степени их аттенуации,The renewal of a continuous monolayer of new generation cells is observed after 5-6 days. Titration of polio virus isolates of one or another immunological type in order to study the degree of their attenuation,
а также стандартных вакцинных и диких штаммов вируса полиомиелита провод т в культуре клеток НЕр-2, методом конечного разведени по цитопатогенному действию и выражают в Ig (ЦПДзо/мл). Дл титровани as well as standard vaccine and wild strains of the polio virus, they are carried out in the Hep-2 cell culture by the final dilution method according to the cytopathogenic effect and are expressed in Ig (CPDzo / ml). For titration
5 штаммов вируса полиомиелита в начале готов т его разведение, обычно дес тикратные от 10 до . Во все пробирки внос т по 9,0 мл стерильного физиологического раствора или раствора Хэнкса. Затем в пер0 вую пробирку внос т 1,0 мл вирусосодержа- щего материала и получают разведение (1:10). При помощи новой пипетки содержимое первой пробирки тщательно перемешивают и 1,0 мл перенос т во вторуюFive strains of poliomyelitis virus are initially prepared for breeding, usually tenfold from 10 to. 9.0 ml of sterile saline or Hanks solution is added to all tubes. Then, 1.0 ml of virus-containing material is added to the first tube and a dilution (1:10) is obtained. Using a new pipette, the contents of the first tube are thoroughly mixed and 1.0 ml is transferred into the second
5 пробирку, получа разведение (1:100) и т.д. до 108.5 test tube, receiving a dilution (1: 100), etc. up to 108.
Затем водный экстракт прополиса (8,0%) в объеме 0,5 мл соедин ют с равным объемом вирусосодержащёго материалаThen, an aqueous extract of propolis (8.0%) in a volume of 0.5 ml is combined with an equal volume of virus-containing material
0 каждого разведени . Смесь экстракта прополиса и вируса выдерживают в течение 1 ч при 37°С. Предварительно перед заражением моносло культуры НЕр-2 смесью (вирус + экстракт прополиса) производ т 3 раза0 of each dilution. A mixture of propolis extract and virus was incubated for 1 h at 37 ° C. Before infection, the monolayer of the HEp-2 culture mixture (virus + propolis extract) is produced 3 times
5 отмывание культуры клеток от сыворотки раствором Хэнкса, рН 7,4 или раствором Эрла - рН 7,6. На каждое дес тикратное разведение вирусосодержащего материала используют по 4 пробирки с культурой кле0 ток. Смесь экстракта прополиса и вируса в объеме 0,2 мл добавл ют в пробирки с.культурой клеток, в которые предварительно заливают поддерживаемую среду в объеме 0,8 мл. Пробирки помещают в термостат в спе5 циальных лотках в горизонтальном положении . Состо ние зараженных культур периодически провер ют под световым микроскопом в течение 7-ми дней. Результат цитопатического действи ЦПДбо вируса5 washing the cell culture from serum with Hanks solution, pH 7.4 or Earle's solution - pH 7.6. For each ten-fold dilution of virus-containing material, 4 tubes with cell culture are used. A mixture of propolis extract and virus in a volume of 0.2 ml is added to test tubes with cell culture, in which a maintained medium in a volume of 0.8 ml is pre-filled. The tubes are placed in a thermostat in special trays in a horizontal position. The condition of the infected cultures is periodically checked under a light microscope for 7 days. The result of the cytopathic effect of the CPD virus
0 считаетс положительным, если не менее половины клеток в культуре подвергались специфической дегенерации.0 is considered positive if at least half of the cells in the culture undergo specific degeneration.
Опыт сопровождаетс следующим контролем:The experience is accompanied by the following control:
5 а). Контроль репродукции стандартных штаммов вируса полиомиелита: титруют вирус полиомиелита, в культуре клеток НЕр-2 при отсутствии и наличии экстракта прополиса в поддерживающей среде клеток в концентрации (0,8%):5 a). Reproduction control of standard poliomyelitis virus strains: poliomyelitis virus is titrated in the HEp-2 cell culture in the absence and presence of propolis extract in the cell support medium at a concentration (0.8%):
б). Контроль культуры клеток: используют интактную культуру клеток НЕр-2 при отсутствии и наличии в поддерживающей среде (0,8%) экстракта прополиса. Титр (50,0% эффективной дозы) вычисл ют по методу Рида-Менга и методом пробитое, использу специальные таблицы (Методические рекомендации по санитар- но-вирусологическому контролю объектов окружающей среды, 1982, М., 75, стр. под ред. проф. Дроздова С.Г. и д.м.н. Казанцевой В.А.).b) Cell culture control: use an intact HEp-2 cell culture in the absence and presence of propolis extract in a support medium (0.8%). The titer (50.0% of the effective dose) is calculated according to the Reed-Meng method and the punched method using special tables (Guidelines for the sanitary-virological control of environmental objects, 1982, M., 75, p. Drozdova S.G. and doctor of medical sciences Kazantseva V.A.).
Результаты оценки динамики подавлени интенсивности репродукции штаммов вируса полиомиелита в культуре клеток НЕр-2 при наличии и отсутствии водного экстракта прополиса в поддерживающей среде учитывают только при соблюдении следующих контролей:The results of assessing the dynamics of suppressing the intensity of reproduction of poliomyelitis virus strains in HEp-2 cell culture in the presence and absence of an aqueous extract of propolis in a support medium are taken into account only if the following controls are observed:
1. Монослой незараженной культуры НЕр-2 (при наличии и отсутствии в поддерживающей среде экстракта прополиса в конечной концентрации 0,8%) должен сохранитьс до конца опыта, т.е. до седьмых суток включительно после заражени (контроль культуры клеток).1. A monolayer of non-infected HEP-2 culture (in the presence and absence of propolis extract in a supporting medium at a final concentration of 0.8%) should be maintained until the end of the experiment, i.e. up to the seventh day, inclusive after infection (control of cell culture).
2. Разница в интенсивности репродукции в культуре клеток НЕр-2 при отсутствии2. The difference in the intensity of reproduction in the culture of HEP-2 cells in the absence
и наличии экстракта прополиса в поддерживающей среде дл аттенуированных стандартных штаммов вируса полиомиелита составл ет более 103 ° ЦПДбо/мл, тогда как дл диких стандартных штаммов вирусаand the presence of propolis extract in a support medium for attenuated standard polio virus strains is more than 103 ° CPDbo / ml, whereas for wild standard virus strains
полиомиелита этот показатель составл етpolio this indicator is
Ю2 °ЦПД50/мл. 10 ° CPD50 / ml.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904870735A RU1799598C (en) | 1990-10-02 | 1990-10-02 | Marker for estimating attenuation of poliomyelitis viruses |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904870735A RU1799598C (en) | 1990-10-02 | 1990-10-02 | Marker for estimating attenuation of poliomyelitis viruses |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU1799598C true RU1799598C (en) | 1993-03-07 |
Family
ID=21538576
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU904870735A RU1799598C (en) | 1990-10-02 | 1990-10-02 | Marker for estimating attenuation of poliomyelitis viruses |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU1799598C (en) |
-
1990
- 1990-10-02 RU SU904870735A patent/RU1799598C/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Прополис, ред. Харнаж, 1988, с. 256. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Padgett et al. | JC virus, a human polyomavirus associated with progressive multifocal leukoencephalopathy: additional biological characteristics and antigenic relationships | |
Dougherty et al. | Isolation and characterization of a papovavirus from human urine | |
DK158743B (en) | PROCEDURE FOR PREPARING A LIVING, WEAKED Hepatitis A VIRUS AND DIAGNOSTIC PREPARATION OBTAINED BY THE PROCEDURE | |
Pereira et al. | Latent infection of rabbits by adenovirus type 5 | |
Bucknall et al. | Studies with human coronaviruses II. Some properties of strains 229E and OC43 | |
Burnet | Immunological studies with the virus of infectious laryngotracheitis of fowls using the developing egg technique | |
Hoorn et al. | A new virus cultivated only in organ cultures of human ciliated epithelium | |
Mayor et al. | Immunofluorescent, cytochemical, and microcytological studies on the growth of the simian vacuolating virus (SV-40) in tissue culture | |
Lamont et al. | Studies on enteroviruses of the Pig—IV: The isolation in tissue culture of a possible enteric cytopathogenic swine orphan (ECSO) virus (V 13) from the faeces of a pig | |
CN107875381B (en) | Pig epidemic diarrhea, pig δ coronavirus bivalent inactivated vaccine with and preparation method thereof | |
Dochez et al. | Study of the Virus of the Common Cold and its Cultivation in Tissue Medium. | |
RU1799598C (en) | Marker for estimating attenuation of poliomyelitis viruses | |
Sukhavachana et al. | Assay of arbovirus neutralizing antibody by micro methods | |
Fattal et al. | Enterovirus types in Israel sewage | |
Daniel et al. | Herpes virus aotus: a latent herpesvirus from owl monkeys (Aotus trivirgatus) isolation and characterization | |
Yoshimura et al. | Search for evidence of a viral aetiology for inflammatory bowel disease. | |
RU2064794C1 (en) | Agent for estimation of poliomyelitis virus attenuation degree | |
Lecce et al. | Tendovaginitis with arthritis, a new syndrome of chickens: isolation and characterization of an infectious agent | |
CN108152498A (en) | A kind of inactivation method of inspection suitable for ox BVDV, IBRV, PIV3, BRSV inactivated vaccine | |
US3098011A (en) | Process of producing a vaccine against distemper | |
RU2046139C1 (en) | Inhibitor of rotaviruses | |
RU2026346C1 (en) | Inhibitor of human and animal enteroviruses | |
Hanafusa et al. | Transformation phenomena in the pox group viruses. I | |
Kende et al. | Titration and neutralization of poliovirus in micro tissue culture under increased carbon dioxide | |
RU2057177C1 (en) | Agent for rotavirus inactivation |