RU1781299C - Method for identification of typhoid fever pathogen - Google Patents

Method for identification of typhoid fever pathogen

Info

Publication number
RU1781299C
RU1781299C SU904908092A SU4908092A RU1781299C RU 1781299 C RU1781299 C RU 1781299C SU 904908092 A SU904908092 A SU 904908092A SU 4908092 A SU4908092 A SU 4908092A RU 1781299 C RU1781299 C RU 1781299C
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
lactose
media
medium
cultures
column
Prior art date
Application number
SU904908092A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ирина Михайловна Подплетенная
Original Assignee
Районная Санэпидстанция Г.Пролетарск Ростовской Обл.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Районная Санэпидстанция Г.Пролетарск Ростовской Обл. filed Critical Районная Санэпидстанция Г.Пролетарск Ростовской Обл.
Priority to SU904908092A priority Critical patent/RU1781299C/en
Application granted granted Critical
Publication of RU1781299C publication Critical patent/RU1781299C/en

Links

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Использование: микробиологи , идентификаци  энтеробактерий, бактериологическа  диагностика. Сущность изобретени : на комбинированных 2 и 3 сахарных средах дополнительно отбирают лактозоположи- тельные. не образующие газ и сероводород культуры. Пересевают их на скошенную со столбиком лактозную среду, содержащую (г/л): агар 8,9; пептон 2-3; углевод 10-15; натри  хлорид 4-5; кали  дигидрофосфат 0,3-0,4; натри  тиосульфат 0,2-0,3, бромти- моловый синий (0,2%-ный водный раствор) 11-12 мл, вода дистиллированна  до 1 л, рН 7,2-7,4. Инкубируют посевы 24-72 ч при 37°С, отбирают культуры, дающие лактозо- отрицательную реакцию, пересевают их на дифференцирующий биохимический р д,- определ ют серологические и фаголиза- бельные свойства и индентифицируют культуры по совокупности признаков, характерных дл  бактерий брюшного тифа. Способ дает возможность вы вл ть ранее не диагносцируемую известным способом- значительную группу типичных бактерий брюшного тифа с несколько сниженной в пределах естественной вариабельности активностью протеолитических ферментов и фермента тиосульфатредуктазы. 5 табл. (Л СUsage: microbiologists, identification of enterobacteria, bacteriological diagnosis. SUMMARY OF THE INVENTION: lactose-positive ones are additionally selected on combined 2 and 3 sugar media. crops that do not form gas and hydrogen sulfide. Re-subculture them on a lactose medium, beveled with a column, containing (g / l): agar 8.9; peptone 2-3; carbohydrate 10-15; sodium chloride 4-5; potassium dihydrogen phosphate 0.3-0.4; sodium thiosulfate 0.2-0.3, bromothymol blue (0.2% aqueous solution) 11-12 ml, distilled water to 1 L, pH 7.2-7.4. The crops are incubated for 24-72 hours at 37 ° C, cultures that give a lactose-negative reaction are selected, they are transferred to a differentiating biochemical series, serological and phagolysable properties are determined, and cultures are identified by the combination of characteristics characteristic of abdominal bacteria typhoid. The method makes it possible to detect a previously not diagnosed by a known method, a significant group of typical bacteria of typhoid fever with the activity of proteolytic enzymes and the thiosulfate reductase enzyme slightly reduced within the limits of natural variability. 5 tab. (L C

Description

Изобретение относитс  к микробиологии и может быть использовано при идентификации энтеробактерий.The invention relates to microbiology and can be used to identify enterobacteria.

Известен классический способ идентификации возбудител  брюшного тифа, вы- бранный нами за прототип (Методические указани  по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактери ми .A classic method for identifying the causative agent of typhoid fever is known, which we have chosen for the prototype (Guidelines for the microbiological diagnosis of diseases caused by enterobacteria.

Способ осуществл етс  путем посева исследуемого материала на среды обогащени  с последующим пересевом на селектив- ные пластинчатые среды, посевом выросших лактозоотрицательных колоний на 2-или 3-сахарные комбинированные среды и идентификацией культур по совокупности биохимических, серологических и фаго- лизабельных свойств.The method is carried out by seeding the test material on enrichment media, followed by reseeding on selective platelet media, sowing the grown lactose-negative colonies on 2- or 3-sugar combined media and identifying the cultures by the combination of biochemical, serological and phage-isolating properties.

Недостатком данного способа  вл етс  невозможность диагностировать значи- тельную группу типичных бактерий брюшного тифа с несколько сниженной в пределах естественной вариабельности протеолитической активностью фермента тиосульфатредуктазы, дающих на комбинированных средах ложноположительную оценку лактозного признака и ложноотри- цательную - признака продукции сероводорода .The disadvantage of this method is the inability to diagnose a significant group of typical bacteria of typhoid fever with the proteolytic activity of the thiosulfate reductase enzyme slightly reduced within the range of natural variability, giving a false positive assessment of the lactose trait and false negative trait of hydrogen sulfide production on combined media.

Целью изобретени   вл етс  повышение точности способа.The aim of the invention is to improve the accuracy of the method.

v| 00v | 00

Ю ЮYu Yu

юYu

Цель достигаетс  путем дополнительного отбора из комбинированных средах лактозоположительных, не образующих газ и сероводород культур, пересева на скошенную со столбиком лактозную среду, содержащую , г/л:The goal is achieved by additional selection from the combined media lactose-positive, not forming gas and hydrogen sulfide crops, replanting on a mowed with a column lactose medium containing, g / l:

Агар8-9Agar 8-9

Пептон2-3Pepton2-3

Углевод10-15Carbohydrate 10-15

Натри  хлорид4-5Sodium Chloride 4-5

Кали  дигидрофосфат0 ,3-0,4Potassium dihydrogen phosphate 0.3-0.4

Натри  тиосульфат0,2-0,3Sodium thiosulfate 0.2-0.3

Бромтимоловый синий (0,2% водный раствор)11-12Bromothymol blue (0.2% aqueous solution) 11-12

Вода дистиллированна до 1 л рН 7,2-7,4. инкубировани  посева при 37°С (24-72 ч), пересева культур, учтенных на предлЪжен- ной среде как лактозоотрицательные, на среды биохимического р да, в котором са- харолитические свойства определ ют на скошенных со столбиком моноуглеводных средах (маннит, сахароза, дульцит, араби- ноза и др.), а признак образовани  сероводорода на среде типа Клиглера при культивировании при 37°С не менее 4-5 суток с ежедневным контролем, определени  серологических и фаголизабельных признаков и идентификации культуры по совокупности признаков, характерных дл  Salmonella typhi.The water is distilled to 1 liter, pH 7.2-7.4. incubation of inoculation at 37 ° C (24-72 h), reseeding of cultures, which were considered lactose-negative on the proposed medium, on biochemical media in which the saccharolytic properties are determined on mono-carbohydrate mowed with a column (mannitol, sucrose, dulcite, arabinose, etc.), and a sign of the formation of hydrogen sulfide on a Kligler type medium when cultured at 37 ° C for at least 4-5 days with daily monitoring, determination of serological and phagolysable traits, and identification of the culture by the combination of traits characteristic of Salm onella typhi.

Пример 1. Исследуемый материал засевают в среды накоплени , инкубируют в течение 18-24 часов при 37°С. Пересевают на пластинчатые селективные среды. Культивируют при 37°С в течение 20-24 часов. Выросшие лактозоотрицательные колонии пересевают на 2-х или 3-х сахарные комбинированные среды типа Клиглера. Культивируют при 37°С в течение суток. Отбирают лэктозоположительные, не образующие газ и сероводород культуры и пересевают их на скошенную со столбиком лактозйую питательную среду, содержащую, г/л: Агар8-9Example 1. The test material is seeded in storage media, incubated for 18-24 hours at 37 ° C. Subcultured on plate selective media. Cultivate at 37 ° C for 20-24 hours. The grown lactose-negative colonies are subcultured into 2 or 3 sugar combined media of the Kligler type. Cultivate at 37 ° C for a day. Lectose-positive cultures that do not form gas and hydrogen sulfide are selected and transplanted onto a lactose-rich nutrient medium slanting with a column, containing, g / l: Agar8-9

Пептон2-3Pepton2-3

Углевод10-15Carbohydrate 10-15

- Натри  хлорид 4-5- Sodium chloride 4-5

Кали  дигидрофосфат0 ,3-0,4Potassium dihydrogen phosphate 0.3-0.4

Натри  тиосульфат 0,2-0,3 Бромтимоловый синий (0,2 %-ный водный раствор)11-12Sodium thiosulfate 0.2-0.3 Bromothymol blue (0.2% aqueous solution) 11-12

Вода дистиллированна до 1 л рН7,2-7.4Distilled water to 1 liter pH 7.2-7.4

Посевы инкубируют 24-72 ч при 37°С, отбирают лактозоотрицательные культуры, засевают их на биохимический р д, в котором расщепление маннита, сахарозы,Crops are incubated for 24-72 hours at 37 ° C, lactose-negative cultures are selected, and they are seeded on a biochemical series in which the breakdown of mannitol, sucrose,

5 ксилозы, арабинозы, дульцита, сорбита определ ют посевом на скошенные со столбиком моноуглеводные среды, а продукцию сероводорода инкубированием культуры на среде Клиглера с ежедневным контролем не5 xyloses, arabinoses, dulcite, sorbitol are determined by inoculation on monocarbohydrate media slanted with a column, and the production of hydrogen sulfide by incubating the culture on Kligler medium with daily monitoring is not

0 менее 4-5 сут. Определ ют серологические и фаголизабельные признаки и идентифицируют культуру по совокупности всех признаков .0 less than 4-5 days. Serological and phagolizable traits are determined and culture is identified by the totality of all traits.

П р и м е р 2. Приготовление моноугле5 водной скошенной со столбиком среды.PRI me R 2. Preparation of mono-carbon water mowed with a column of medium.

Навеску хлорида натри , углевода, пептона и двухзамещенного фосфата кали , гипосульфита предварительно раствор ют в небольшом количестве дистиллированнойA portion of sodium chloride, carbohydrate, peptone and disubstituted potassium phosphate, hyposulphite is previously dissolved in a small amount of distilled

0 воды. В оставшейс  дистиллированной воде при помешивании и подогревании до закипани  раствор ют агар. Затем все ингредиенты соедин ют, перемешивают и добавл ют индикатор. Устанавливают0 water. The agar was dissolved in the remaining distilled water with stirring and heating until boiling. Then all the ingredients are combined, mixed and an indicator is added. Install

5 ,2-7,4. Разливают в пробирки по 7-8 мл, стерилизуют при 0,5 избыточной атмосферы при 112°С в течение 20 мин. После стерилизации пробирки оставл ют в слегка наклонном положении дл  получени  ско0 шейного столбика. В готовом виде среда имеет трав нистый цвет.5, 2-7.4. Pour into 7-8 ml tubes, sterilize at 0.5 excess atmosphere at 112 ° C for 20 minutes. After sterilization, the tubes are left in a slightly inclined position to obtain a neat column. The finished medium has a grassy color.

Применение среды: Испытуемую культуру засевают штрихом по скосу и уколом в столбик среды. После культивировани  приApplication of the medium: The test culture is inoculated with a bevel stroke and an injection in a medium column. After cultivation at

5 37°С в течение суток производ т учет теста. В зависимости от степени активности определ емого сахаролитического фермента к моменту учета возможны следующие варианты:5 37 ° C during the day the test is taken into account. The following options are possible depending on the degree of activity of the determined saccharolytic enzyme at the time of accounting:

0 При высокой степени активности - среда в скосе и в столбике; колонии на скосе окрашиваютс  в желтый цвет.0 With a high degree of activity - the environment is in a bevel and in a column; beveled colonies turn yellow.

При средней степени активности - в желтый цвет окрашиваютс  лишь колонииWith an average degree of activity, only colonies are stained yellow

5 на скошенной части среды.5 on the sloping part of the medium.

При слабой степени активности в случае замедленной ферментации среда сохран ет зеленую окраску и окончательно тест следует учесть через 48-72 часа.With a weak degree of activity in the case of delayed fermentation, the medium retains a green color and the final test should be taken into account after 48-72 hours.

0 Из данных табл. 2 видно, что у некоторых испытуемых культур ферментаци  углеводов (лактозы) происходит только в относительно анаэробных услови х столбика среды. В этом случае тест оценивают как0 From the data table. Figure 2 shows that in some test cultures, carbohydrate (lactose) fermentation occurs only under relatively anaerobic conditions of the medium column. In this case, the test is evaluated as

55 положительный при (переходе окраски в столбике среды из зеленой в  рко-желтую при одновременном по влении синей окраски в скошенной части. Газообразование учитывают в столбике по по влению пу- зырьков, разрывов среды.55 positive for (color transition in the medium column from green to bright yellow with a simultaneous appearance of blue color in the beveled part. Gas production is taken into account in the column for the appearance of bubbles, medium breaks.

Энтеробактерии, не расщепл ющие соответствующий углевод, окрашивают скос среды в синий цвет за счет образующихс  в небольшом количестве щелочных продуктов протеолиза, более интенсивно протека- ющего в аэробных услови х скоса. Сохранение зеленой окраски или слабое неспецифическое пожелтение столбика при одновременном окрашивании скоса среды в синий цвет оценивают как отсутствие со- ответствующего фермента у испытуемых бактерий.Enterobacteria, which do not break down the corresponding carbohydrate, color the skew of the medium blue due to the formation of a small amount of alkaline products of proteolysis, which proceeds more intensively under aerobic conditions of the skew. Preservation of a green color or slight nonspecific yellowing of a column while staining the slant of the medium in blue is evaluated as the absence of the corresponding enzyme in the tested bacteria.

ПримерЗ. Среда с минимальными значени ми ингредиентов.Example 3. Medium with minimal ingredients.

Среду готов т по примеру 2. Получен- на  среда имеет следующий состав, г/л: Агар8The medium is prepared according to Example 2. The obtained medium has the following composition, g / l: Agar8

Пептон2Peptone2

Лактоза10Lactose10

Натри  хлорид4Sodium chloride4

Натри  тиосульфат0,2Sodium thiosulfate 0.2

Кали  дигидрофосфат0,3Potassium dihydrogen phosphate 0.3

Бромтимоловый синий (0,2% водныйBromothymol blue (0.2% aqueous

раствор)11solution) 11

Вода дистиллированна До 1 лDistilled water Up to 1 L

рН7,2-7,4pH 7.2-7.4

Данные по идентификационным свойствам среды см. в табл. 1.Data on the identification properties of the medium, see table. 1.

П р и м е р 4. Среда с оптимальными значени ми ингредиентов.Example 4 Medium with Optimum Ingredient Values

Среду готов т по примеру 2. Полученна  среда имеет следующий состав, г/л: Агар8,5The medium is prepared according to Example 2. The resulting medium has the following composition, g / l: Agar 8.5

Пептон2,5 Peptone 2.5

Лактоза12,5Lactose 12.5

Натри  хлорид4,5Sodium chloride 4.5

Тиосульфат натри 0,25Sodium Thiosulfate 0.25

Кали  дигидрофосфат0,35Potassium dihydrogen phosphate 0.35

БромтимоловыйBromothymol

синий (0,2 %-ный водный раствор)11,5blue (0.2% aqueous solution) 11.5

Вода дистиллированна до 1 лDistilled water up to 1 liter

рН7,2-7,4pH 7.2-7.4

Данные по идентификационным свой- ствам среды см. в табл. 1.The data on the identification properties of the medium, see table. 1.

П р и м е р 5. Среда с максимальнымиPRI me R 5. The environment with the maximum

значени ми ингредиентов.the meaning of the ingredients.

Среду готов т по примеру 2. Получен- The medium is prepared according to example 2. Received

на  среда имеет следующий состав (г/л): Агар9on Wednesday has the following composition (g / l): Agar9

Пептон3Peptone3

Лактоза15Lactose15

Натри  хлорид5Sodium chloride5

Натри  тиосульфат0,3Sodium thiosulfate 0.3

Кали  дигидрофосфат0,4Potassium dihydrogen phosphate 0.4

Бромтимоловый синий12Bromothymol blue 12

Вода дистиллированна До 1 лDistilled water Up to 1 L

рН7,2-7,4pH 7.2-7.4

Из данных табл.1 видно, что оптимальным  вл етс  следующий состав среды, г/л: Агар8-9From the data of Table 1 it can be seen that the following medium composition is optimal, g / l: Agar 8-9

Пептон .2-3Peptone .2-3

Углевод10-15Carbohydrate 10-15

Натри  хлорид4-5Sodium Chloride 4-5

Кали  дигидрофосфат0,3-0,4Potassium dihydrogen phosphate 0.3-0.4

Натри  тиосульфат0,2-0,3Sodium thiosulfate 0.2-0.3

Бромтимоловый синий (0,2% водный раствор)11-12Bromothymol blue (0.2% aqueous solution) 11-12

Вода дистиллированна До 1 лDistilled water Up to 1 L

рН7.2-7,4pH 7.2-7.4

Уменьшение концентрации ингредиентов неблагопри тно дл  жизнеде тельности и вы влени  ферментативных способностей микробов. Увеличение концентрации ингредиентов ведет к чрезмерному осмотическому давлению в среде, что также затрудн ет жизнеде тельность и вы вление ферментативной способности микроорганизмов.A decrease in the concentration of ingredients is not favorable for the viability and for the detection of the enzymatic abilities of microbes. An increase in the concentration of ingredients leads to excessive osmotic pressure in the medium, which also complicates the viability and detection of the enzymatic ability of microorganisms.

Из сравнительных данных табл. 2, 3 на приме е определени  расщеплени  лактозы на х реде Гисса с лактозой, среде Клигле- ра и предлагаемой скошенной среде с лакто ой видно, что последн   обладает на- ибол- шей чувствительностью.From the comparative data table. 2, 3, using the determination of the cleavage of lactose on Giess lactose with lactose, Kligler medium and the proposed beveled medium with lactose, it is evident that the latter has the highest sensitivity.

Из данных табл. 3 видно, что дл  ферментации углеводов (лактозы) у некоторых энтеробактерий имеет значение степень анаэробности условий. Дл  доказательства этого положени  испытуемые культуры, учтенные на среде Клиглера как лактозоотри- цательные, пересевают дл  оценки лактозного теста на скошенную со столбиком агаризованную среду Гисса с лактозой (г. Махачкала НИИ по производству питательных сред) и скошенную со столбиком лактозовую среду.From the data table. Figure 3 shows that for the fermentation of carbohydrates (lactose) in some enterobacteria, the degree of anaerobicity of the conditions is important. To prove this situation, test cultures, which were considered lactose-negative on Kligler's medium, are re-plated to evaluate the lactose test for agarized Gissa lactose-agarized medium with column (Makhachkala Scientific Research Institute for the Production of Nutrient Media) and lactose-agarized mowed.

П р и м е р 6. Сравнительна  оценка ферментации лактозы на средах Клиглера, Гисса и скошенной лактозной среде (табл.2). Пример. Вли ние на метаболизм лактозы аэробных (скос среды) и относительно анаэробных условий (столбик среды ) (табл.3).PRI me R 6. A comparative assessment of the fermentation of lactose on media Kligler, Giss and beveled lactose medium (table 2). Example. The effect on the metabolism of lactose is aerobic (canting of the medium) and relatively anaerobic conditions (column of the medium) (Table 3).

Дл  сохранени  форм скошенный столбик в среду Гисса при приготовлении добавл ют в количестве 8 г/л агар.In order to maintain the shape, the beveled column was added to the Gissa medium during preparation in an amount of 8 g / l agar.

Основыва сь на полученных данных, представленных в таблице 2 и 3, можно утверждать, что использование скошенной со столбиком моноуглеводной среды позвол ет более достоверно определить расщепление углеводов при вариабельной активности соответствующего фермента, получить полуколичественную оценку теста и определить ферментативный (в относительно анаэробных услови х столбика) и респираторный (в услови х скошенной части) характер утилизации углеводов.Based on the data presented in Tables 2 and 3, it can be argued that the use of a mono-carbohydrate medium beveled with a column allows one to more reliably determine the breakdown of carbohydrates during the variable activity of the corresponding enzyme, to obtain a semi-quantitative evaluation of the test and to determine the enzymatic (under relatively anaerobic conditions of the column ) and the respiratory (under conditions of the beveled part) nature of carbohydrate utilization.

Более чем семикратна  разница в концентрации углевода и пептона позвол ет избежать маскирующего вли ни  щелочных продуктов протеолиза и создать преимущественные услови  дл  образующихс  кислых продуктов расщеплени  углеводов .A more than seven-fold difference in the concentration of carbohydrate and peptone avoids the masking effect of alkaline products of proteolysis and creates favorable conditions for the resulting acidic products of the breakdown of carbohydrates.

ПримерЗ. Вли ние срока экспозиции на продукцию сероводорода у штаммов S. typhl на среде Клиглера.Example 3. Effect of the exposure time on the production of hydrogen sulfide in S. typhl strains on Kligler medium.

П р и м е р 9. Вли ние срока экспозиции на защелачивание скошенной части Клиглера при культивировании S. typhi.EXAMPLE 9. Effect of exposure time on alkalization of the beveled part of Kligler during cultivation of S. typhi.

Таким образом срок экспЪзиции культур S. typhi на средах типа Клиглера в 4-5 сут  вл етс  оптимальным, т.к. он достаточен дл  вы влени  признака образовани  сероводорода. Уменьшение срока ведет к ложноотрицательной оценке признака образовани  Сероводорода; увеличение экспозиции может привести к гибели культуры.Thus, the expiration time of S. typhi cultures on Kligler type media at 4-5 days is optimal, because it is sufficient to detect a sign of hydrogen sulfide formation. Reducing the term leads to a false negative assessment of the sign of hydrogen sulfide formation; increased exposure may result in culture death.

Примерю. У больного В., у которого при оперативном вмешательстве установлена перфораци  кишечника с подозрением на брюшнотифозную этиологию, была вз та проба крови в количестве 12 мл. Произведен посев в 150 мл желчного бульона. Через 48 часов инкубации при 37°С был произведен высев из желчного бульона на-среду Эндо. Через 18 чёсов инкубировани  при 37°С на среде Эндо выросли мелкие бесцветные колонии , которые были пересе ны на комбинированную дифференциальную среду Олькельницкого. Через 24 часа инкубировани  при 37°С на скосе среды выросли мелкие изолированные колонии. Скос и столбик среды изменили розовую окраску на желтую , газообразование и продукци  сероводорода отсутствовали. Культуры были оценены как ферментирующие глюкозу, лактозу, не продуцирующие газ и сероводород и не подлежащие дальнейшему исследованию согласно общеприн той схеме классического способа.Try it on. Patient V., in whom perforation of the intestine with suspected typhoid etiology was established during surgery, was taken a blood sample in an amount of 12 ml. Inoculated in 150 ml of gall broth. After 48 hours of incubation at 37 ° C, plating from the bile broth onto Endo medium was performed. After 18 hours of incubation at 37 ° C, small colorless colonies grew on Endo medium, which were transferred to the Olkelnitsky combined differential medium. After 24 hours of incubation at 37 ° C, small isolated colonies grew on the bevel of the medium. The bevel and column of medium changed the color from pink to yellow, gas production and hydrogen sulfide production were absent. The cultures were evaluated as fermenting glucose, lactose, not producing gas and hydrogen sulfide, and not subject to further investigation according to the generally accepted scheme of the classical method.

Культуры были пересе ны на скошенную со столбиком лактозную среду, см. пример 1. Через 24 ч инкубировани  при 37 С культура была оценена как лактозоотрица- тельна  (см. пример 2) и пересе на на среду Олькельницкого и среды биохимического дифференцирующего р да, в котором оценка теста расщеплени  углеводов производилась на скошенных со столбиком углеводных средах с соответствующими углеводами (ман- нит, сахароза, дульцит, ксилоза, арабиноза, сорбит, рамноза).The cultures were transferred to a lactose-laden medium, see Example 1. After 24 h of incubation at 37 ° C, the culture was evaluated as lactose-negative (see Example 2) and transferred to Olkelnitsky’s medium and a biochemical differentiating medium, in wherein the carbohydrate degradation test was evaluated on carbohydrate beveled media with the corresponding carbohydrates (mannitol, sucrose, dulcite, xylose, arabinose, sorbitol, rhamnose).

Через 72 ч инкубировани  культуры на среде Олькельницкого отмечалось защелачивание скошенной части среды и продуцирование сероводорода.After 72 hours of incubation of the culture on Olkelnitsky’s medium, alkalization of the beveled part of the medium and production of hydrogen sulfide were noted.

После оценки тестов на средах дифференцирующего р да культуры были оцененыAfter evaluating the tests on differentiating media, cultures were evaluated

как неферментирующие лактозу, сахарозу, дульцит, рамнозу, ферментирующие глюкозу , ксилозу, арабинозу, маннит, сорбит, де- карбоксилирующие лизин, не образующие индол, не утилизирующие цитрат и малонатas non-fermenting lactose, sucrose, dulcite, rhamnose, fermenting glucose, xylose, arabinose, mannitol, sorbitol, decarboxylating lysine, not forming indole, not utilizing citrate and malonate

натри , продуцирующие сероводород, подвижные грамотрицательные палочки, агглютинирующиес  сальмонеллезной сывороткой 09 и VI, Hd, лизирующиес  брюшнотифозным бактериофагом.sodium, hydrogen sulfide-producing, motile gram-negative bacilli, agglutinating salmonella serum 09 and VI, Hd, lysing typhoid bacteriophage.

По совокупности этих признаков они были идентифицированы как бактерии брюшного тифа, что нашло подтверждение после повторной идентификации в Ростов- ской-на-Дону областной баклаборатории,Based on the totality of these signs, they were identified as bacteria of typhoid fever, which was confirmed after repeated identification in the Rostov-on-Don regional baclaboratory,

где выделенна  культура была отнесена к фаговару Е I, второму ферментативному типу .where the isolated culture was assigned to phagovar E I, the second enzymatic type.

Указанный пример иллюстрирует веро тность диагностической ошибки при использовании комбинированных сред и повышение точности исследовани  при применении предложенного способа.This example illustrates the likelihood of a diagnostic error when using combined media and improving the accuracy of the study using the proposed method.

П р и м е р 11. Проба мочи в количестве 50 мл доставлена в лабораторию при обследовании Н, общавшегос  с больным В.PRI me R 11. A urine sample in an amount of 50 ml was delivered to the laboratory during the examination of N, who was in contact with patient B.

Был произведен пр мой посев на среду Плоскирева, Эндо. Через 20 ч на этих средах выросли мелкие бесцветные колонии, которые были пересе ны на среду Клиглера, инкубировались при 37°С. Через 24 ч сн тые культуры были оценены как лактозоположи- тельные, не образующие газ и сероводород. Культуры были пересе ны на лактозную скошенную со столбиком среду и культивировались при 37°С в течение 24 ч и были оценены как лактозоотрицательные. Культуры были вновь пересе ны на среду типа Клиглера (предпри тие центрального НИИВС им. И. И. Мечникова) и среды биохимического дифференцирующего р да. Через 48 часов инкубировани  на среде Клиглера отмечалось защелачивание скоса среды и продукци  сероводорода .Direct sowing was performed on Ploskirev's medium, Endo. After 20 h, small colorless colonies grew on these media, which were transferred to Kligler's medium and incubated at 37 ° С. After 24 hours, the removed cultures were evaluated as lactose-positive, not forming gas and hydrogen sulfide. The cultures were transferred to a lactose column-mowed medium and cultured at 37 ° С for 24 h and were evaluated as lactose-negative. The cultures were again redirected to a Kligler type medium (the enterprise of the central NIIVS named after I.I. Mechnikov) and a biochemical differentiating medium. After 48 hours of incubation on Kligler's medium, alkalization of the slant of the medium and production of hydrogen sulfide were noted.

По результатам испытани  на средахBased on test results on media

дифференцирующего р да, включа  скошенные со столбиком моноуглеводные среды, культуры по совокупности биохимических, серологических и фаголизабельных признаков были оценены как брюшнотифозные. Послеof differentiating series, including monocarbohydrate media beveled with a column, cultures according to the totality of biochemical, serological, and phagolizable characters were evaluated as typhoid. After

повторной идентификации в Ростовской- на-Дону областной баклаборатории культура была отнесена к фаговару Е, второму ферментному типу.re-identification in the Rostov-on-Don regional baclaboratory culture was assigned to phagovar E, the second enzyme type.

П р и м е р 12. Проба испражненийPRI me R 12. A sample of bowel movements

больного энтероколитом в количестве 1 гenterocolitis patient in an amount of 1 g

была засе на в селенитовый бульон на чашки со средой Плоскирева и Эндо. Через 20 часов инкубации при 37°С на среде Эндо и Плоскирева выросли мелкие бесцветные колонии , которые были пересе ны на среду типа Клиглера. Культуры культивировались при 37°С 24 ч и были учтены как лактозопо- ложительные, не образующие газ и сероводород , и пересе ны на скошенную со столбиком лактозную среду. Через 24 ч куль- тивировани  при 37°С культура была учтена как лактозоположительна  и не подлежаща  дальнейшей идентификации на бактерии брюшного тифа.was added to the selenite broth on plates with Ploskirev and Endo media. After 20 hours of incubation at 37 ° С, small colorless colonies grew on Endo and Ploskirev media, which were transferred to Kligler type media. The cultures were cultured at 37 ° С for 24 h and were taken into account as lactose-positive, not forming gas and hydrogen sulfide, and transferred to a lactose-like medium slanted with a column. After 24 hours of cultivation at 37 ° C, the culture was considered lactose-positive and not further identifiable by typhoid bacteria.

Этот пример иллюстрирует, что в дан- ном случае оценка лактозного теста на среде Клиглера была достоверной.This example illustrates that in this case, the assessment of the lactose test on Kligler's medium was reliable.

Таким образом, использование предлагаемого способа дает возможность вы вл ть путем дополнительного отбора на 2-й 3-сахарном агаре лактозоположительных, не образующих газ и сероводород культур, и пересева их на лактозную скошенную со столбиком питательную среду, ранее не диагносцируемую значительную группу бактерий брюшного тифа и назначить соответствующее этиотропное лечение и провести своевременно необходимые противоэпидемические меропри ти .Thus, the use of the proposed method makes it possible to identify, by additional selection on the 2nd 3-sugar agar, lactose-positive crops that do not form gas and hydrogen sulfide, and reseeding them on a lactose, mowed with a column culture medium, previously not diagnosed with a significant group of typhoid bacteria and prescribe appropriate etiotropic treatment and take timely necessary anti-epidemic measures.

Claims (1)

Формула изобретени The claims Способ идентификации возбудител  брюшного тифа путем посева исследуемогоA method for identifying the causative agent of typhoid fever by sowing the test материала на среды обогащени  с последующим пересевом на селективные пластинчатые среды, пересевом выросших лактозоотрицательных колоний на двух-или трехсахарные среды и идентификацией культур по совокупности биохимических, серологических и фаголизабельных свойств, отличающийс  тем, что, с целью повышени  точности способа, дополнительно отбирают на комбинированных средах первичной идентификации лактозоположи- тельные, не образующие газ и сероводород культуры, пересевают на скошенную со столбиком лактозную среду, содержащую, г/л:material on enrichment media, followed by reseeding on selective plate media, reseeding grown lactose-negative colonies on two or three sugar media and identification of cultures by the combination of biochemical, serological and phagolizable properties, characterized in that, in order to increase the accuracy of the method, they are additionally selected on combined media primary identification lactose-positive, not forming a gas and hydrogen sulfide culture, subcultured on a lactose-containing medium mown with a column, containing, g / l: Агар8-9Agar 8-9 Пептон2-3Pepton2-3 Углевод10-15Carbohydrate 10-15 Натри  хлорид4-5Sodium Chloride 4-5 Кали  дигидрофосфат0,3-0,4Potassium dihydrogen phosphate 0.3-0.4 Натри  тиосульфат0,2-0,3Sodium thiosulfate 0.2-0.3 Бромтимоловый синий 0,2-ный водный раствор11-12Bromothymol blue 0.2% aqueous solution 11-12 Вода дистиллированна до 1 лDistilled water up to 1 liter рН7,2-7,4,pH 7.2-7.4 инкубируют в течение 24-72 ч, отбирают лактозоотрицательные культуры, определ ют сахаролитические свойства на скошенных со столбиком моноуглеводных средах, а продукцию сероводорода - на средах типа Клиглера в течение 24-120 ч.incubated for 24-72 hours, lactose-negative cultures were selected, saccharolytic properties were determined on monocarbohydrate media slanted with a column, and hydrogen sulfide production was measured on Kligler-type media for 24-120 hours. Данные по идентификационным свойствам средыIdentity Properties Data Таблица 1Table 1 Таблица 2table 2 Проодолжение табл.2Continuation of Table 2 Таблица 3Table 3 Таблица 4Table 4 Таблица 5Table 5
SU904908092A 1990-11-27 1990-11-27 Method for identification of typhoid fever pathogen RU1781299C (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU904908092A RU1781299C (en) 1990-11-27 1990-11-27 Method for identification of typhoid fever pathogen

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU904908092A RU1781299C (en) 1990-11-27 1990-11-27 Method for identification of typhoid fever pathogen

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU1781299C true RU1781299C (en) 1992-12-15

Family

ID=21558756

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU904908092A RU1781299C (en) 1990-11-27 1990-11-27 Method for identification of typhoid fever pathogen

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU1781299C (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Методические указани по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактери ми, М., 1984, с. 24-35. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Wesley Catlin Nutritional profiles of Neisseria gonorrhoeae, Neisseria meningitidis, and Neisseria lactamica in chemically defined media and the use of growth requirements for gonococcal typing
US6046021A (en) Comparative phenotype analysis of two or more microorganisms using a plurality of substrates within a multiwell testing device
Raj et al. Detection and enumeration of fecal indicator organisms in frozen sea foods: II. Enterococci
Jayne‐Williams The application of miniaturized methods for the characterization of various organisms isolated from the animal gut
Winslow et al. Studies on the classification of the colon-typhoid group of bacteria with special reference to their fermentative reactions
US5882882A (en) Gel matrix with redox purple for testing and characterizing microorganisms
Gaby Study of Dissociative Behavior of Pseudomonas aeruginos
CN101970682A (en) Method for detecting and/or identifying clostridium difficile
CN102590196B (en) The detection method of antibacterial medicine residue in a kind of Rapid Screening animal foodstuff sample
Gunn et al. Comparison of methods for identifying Staphylococcus and Micrococcus spp
Clarke A simplified plate method for detecting gelatine-liquefying bacteria
Stillman et al. Biological study of the hemophilic bacilli
Mossel et al. Quality control of solid culture media: A comparison of the classic and the so‐called ecometric technique
RU1781299C (en) Method for identification of typhoid fever pathogen
RU2701343C1 (en) Nutrient medium for detection of lactic acid bacteria (versions)
RU2734940C1 (en) Method for differentiation of vibrio cholerae bacteria from bacteria of representatives of the genus aeromonas
RU2435845C1 (en) METHOD OF Shewanella BACTERIA RECOVERY AND IDENTIFICATION
Horrocks The Bacillus Coli Communis: Considered as an Indication of Sewage Contamination of Water Supplies
RU2268932C2 (en) Nutrient medium for primary differentiation of opportunistic enterobacterium
Hormaeche et al. Laboratory diagnosis of Shigella and Salmonella infections
McIver et al. Assessment of conventional and commercial methods for identification of clinical isolates of cysteine-requiring strains of Escherichia coli and Klebsiella species
SU907069A1 (en) Culture medium for isolating pathogenic neisseria
BROADHURST et al. Thirty-second annual meeting of the society of american bacteriologists
Harris et al. Diagnostic Procedures and Reagents: Technics for the Laboratory Diagnosis and Control of the Communicable Diseases
RU2077576C1 (en) Nutrient medium for gonococcus isolation and culturing