RU1440029C - Штамм диплоидных клеток кожи и мышц эмбоиона человека, используемый в качестве тест-системы для определения антивирусной активности интерферонов человека и размножения вирусов - Google Patents

Штамм диплоидных клеток кожи и мышц эмбоиона человека, используемый в качестве тест-системы для определения антивирусной активности интерферонов человека и размножения вирусов Download PDF

Info

Publication number
RU1440029C
RU1440029C SU4236648A RU1440029C RU 1440029 C RU1440029 C RU 1440029C SU 4236648 A SU4236648 A SU 4236648A RU 1440029 C RU1440029 C RU 1440029C
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strain
cells
human
interferon
activity
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
Л.Л. Миронова
Н.К. Преображенская
М.Н. Соловьева
Т.Г. Орлова
В.И. Стобецкий
Г.П. Крючкова
В.Я. Кармышева
С.И. Кудинова
В.Д. Попова
Г.А. Алпатова
Original Assignee
Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов РАМН
Миронова Любовь Леонидовна
Преображенская Нина Константиновна
Соловьева Марина Николаевна
Орлова Татьяна Георгиевна
Стобецкий Владимир Иванович
Крючкова Галина Петровна
Кармышева Валентина Яковлевна
Кудинова Светлана Ивановна
Попова Валентина Дмитриевна
Алпатова Галина Александровна
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов РАМН, Миронова Любовь Леонидовна, Преображенская Нина Константиновна, Соловьева Марина Николаевна, Орлова Татьяна Георгиевна, Стобецкий Владимир Иванович, Крючкова Галина Петровна, Кармышева Валентина Яковлевна, Кудинова Светлана Ивановна, Попова Валентина Дмитриевна, Алпатова Галина Александровна filed Critical Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов РАМН
Priority to SU4236648 priority Critical patent/RU1440029C/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU1440029C publication Critical patent/RU1440029C/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для приготовления препаратов человеческих интерферонов и накопления вирусной биомассы. Целью изобретения является получение штамма диплоидных клеток кожи и мышц эмбриона человека, чувствительного к интерферонам человека и широкому спектру вирусов. Штамм получают путем шадящей трипсинизации измельченных кожно-мышечных лоскутов 10-недельного эмбриона человека и обозначают М-21. Для клеток штамма М-21 2n = 46 процент диплоидных клеток колеблется от 92,4 до 90,2, процент полиплоидных - от 1 до 3,8. Жизненный цикл штамма 56± 2 пассажа, среда культивирования - среда Игла МЕМ с 10% СКРС. Титры α - интерферона на клетках М-21 колеблются от 512 до 3200 ед; b - интерферона от 32 до 1280 ед.; g - интерферона от 64 до 1280 ед. Штамм М-21 используют для выращивания вирусов полиомиелита, Коксаки, ЕСНО, риновирусов и аденовирусов.

Description

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для приготовления препаратов человеческих интерферонов и накопления вирусной биомассы.
Целью изобретения является получение штамма диплоидных клеток кожи и мышц эмбриона человека, чувствительного к интерферонам человека и широкому спектру вирусов.
Штамм получают следующим образом. Первичную культуру клеток готовят с помощью метода щадящей трипсинизации измельченных кожно-мышечных лоскутов 10-недельного эмбриона человека.
Клетки ресуспендируют в среде Игла МЕМ с 10% сыворотки крупного рогатого скота (СКРС) и эксплантируют в 12 полуторалитровых матрасов с концентрацией клеток 7˙104/мл. Сосуды с клетками инкубируют при 37оС. В первичной культуре монослой формируется на 6 сут. Затем проводят первое субкультивирование, а все последующие - по четкому графику - два раза в неделю, так что интервал между пересевами клеток постоянно составляет 3-4 сут. Используют среду того же состава. Отделение клеток от стекла осуществляют 0,25% -ным раствором трипсина при кратковременном контакте их с ферментом (не более 3 мин). Кратность рассева клеток в фазе активного роста составляет 1:2, 1:3. Полученный штамм обозначают М-21. Он хранится во Всесоюзной специализированной коллекции клеточных культур Института медицинской генетики АМН СССР, депонирован на уровне 9 пассажа с паспортом и регистрационным номером Д-2 (15/2/7). Банк отконтролированных посевных клеток на уровне 9 пассажа в количестве более 1,5 млрд.кл., а также криоконсервированные клетки на уровне 2 пассажа в количестве 460 млн, 3-120 млн, 5-180 млн хранятся в Институте полиомиелита и вирусных энцефалитов АМН СССР.
Штамм М-21 характеризуется следующими признаками.
Морфологические признаки.
Первичная культура состоит из фибробластоподобных и эпителиоподобных клеток с преобладанием первых. По завершении первой фазы роста эпителиоподобные клетки исчезают и под малым увеличением микроскопа можно увидеть мономорфную культуру с характерным для фибробластов ориентированным расположением клеток. Такой вид сохраняется до 3 фазы роста.
При изучении фиксированных и окрашенных гематоксилином и эозином препаратов на уровне 11, 14, 16, 20, 25, 30 и 34 пассажей установлено, что клеточный монослой состоит из ориентированных однородных веретеновидных клеток с овальными ядрами, содержащими 1-3 ядрышка и мелкие глыбки хроматина. Высокая митотическая активность на ранних сроках культивирования клеток снижается по мере формирования монослоя к 48 ч до 8%, причем единичные митозы встречаются только в местах более редкого расположения клеток, что свидетельствует о выраженной контактной ингибиции, характерной для нормальных, не обладающих онкогенными потенциями клеток. На гистологических препаратах клеток штамма М-21 отмечено обычное содержание и локализация ДНК, РНК, кислой и щелочной фосфатаз и мелких глыбок гликогена.
На 34 пассаже культуры отмечено появление клеток с увеличенными ядрами, усиление распластанности цитоплазмы отдельных клеток, укрупнение глыбок гликогена до образования отдельных крупных скоплений (изменение, характерное для начала 3 фазы роста).
Кариологические признаки.
Кариологический анализ проводят на уровне 10, 20, 29, 44 пассажей по 1000 метафоз. Всего изучают 4000 метафоз. Для клеток штамма 2n=46/ХУ/ процент диплоидных клеток в пассажах колеблется от 92,4 до 90,2, процент полиплоидных - от 1 до 3,8.
Иммуногенетические признаки.
Методом иммунного цитолиза с использованием 120 специфических иммунных сывороток штамм М-21 тестирован на содержание антигенов гистосовместимости (НLА). Установлено, что клетки этого штамма содержат три основных стабильно воспроизводимых антигена-HLA-A: 2, HL AB:5,40. Опыты ставят на клетках 11, 14, 16, 20 и 25 пассажей. Учитываются данные НLA фенотипа, полностью повторяющиеся в двух титрованиях. В результате проведенного тестирования показано высокое соответствие HLA фенотипа штамма М-21 в различные сроки культивирования и на разных пассажах. Полученные стабильные характеристики НLA фенотипа могут быть использованы для индивидуальной идентификации данного штамма. В настоящее время такая характеристика является единственной при дифференциации штаммов диплоидных клеток, особенно при совпадении пола.
Изучение изоферментов в клетках штамма М-21 выявил энзимограмму человека и глюкозо-6-фосфатдегидрогеназу медленного типа.
Культуральные признаки.
Жизненный цикл штамма 56-2 пассажа.
Фазы роста: становление 1-3 пассажа, активный рост 4-44, старение от 45 до 54-58 пассажей.
Кратность рассева в первых двух фазах 1:3, реже 1:2, в третьей 1:1,5, 1: 2, на уровнях последних пассажей 1:1. Посевная доза 76-100˙103 в 1 мл среды Игла МЕМ с 10% СКРС. Отделение клеток от стекла проводят 0,25%-ным раствором трипсина. В многочисленных опытах установлено, что количество клеток в монослое 1,5 л матраса 35-45 млн. Среднее число удвоений популяции между пассажами в фазе активного роста 1,76, время удвоения популяции около 46 ч, общее число популяционных удвоений около 79.
Положительным свойством штамма является его высокая пролиферативная активность и способность сохраняться на стекле в виде монослоя без смены среды не менее 2 недель.
Чувствительность к вирусам.
Изучена чувствительность штамма М-21 к 17 вирусам.
К первичному заражению без адаптации культура чувствительна к вакцинным штаммам Сэбина полиовируса трех типов: Коксаки А-7, В 1-6, ЕСНО 11, энтеровирусам 70, 71, риновирусу, аденовирусам 3, 5, 16.
На фиксированных окрашенных препаратах при заражении каждым из перечисленных вирусов развиваются характерные цитопатические изменения (ЦПД).
Чувствительность к противовирусному действию интерферонов.
Для работы с интерферонами человека используют штамм М-21 на уровне 13-39 пассажей (исследованний диапазон). Установлено, что уровень пассажа не коррелирует с чувствительностью клеток к интерферонам. С удлинением срока инкубации клеток в платах для титрования до 4-6 сут (против обычных 1-3) возрастает чувствительность клеток к интерферонам всех трех типов. По мере увеличения срока инкубирования клеток в платах до титрования регистрируют увеличение титров используемых препаратов интерферонов до 20 раз. На величину активности интерферона оказывает влияние состояние клеток, обусловленное качеством среды и сывороток, а также условиями культивирования. Например, титры альфа-интерферона при использовании культуры одного уровня пассажа, но с разным качеством монослоя колеблются от 640 до 3840 ед.
В качестве вирусов-индикаторов при определении противовирусной активности интерферонов в данной тест-системе используют вирусы везикулярного стоматита и вирус энцефаломиокардита мышей. Противовирусную активность интерферонов определяют по методу подавления ЦПД вируса-индикатора. Возможно применение макрометода (пробирки) и микрометода (платы). Результат оценивают по дегенерации культур, наблюдаемой под микроскопом или визуально с использованием витального красителя.
При титровании лабораторных стандартов интерферонов человека в 16 опытах титры альфа-интерферона колеблются от 512 до 3200 ед, титры бета-интерферона - от 32 до 1280 ед, титры гамма-интерферона - от 64 до 1280 ед.
Контроль штамма М-21 на посторонние контаминанты.
При обследовании клеток штамма М-21 на стерильность (наличие грибов, бактерий, микоплазм) получают отрицательные результаты на уровне 1-55 пассажей.
При обследовании культуральной жидкости и самих клеток на уровне 10, 20, 30 и 40 пассажей в чувствительных клеточных системах, а также в реакциях гемадсорбции вирусы-контаминанты не выявлены. При обследовании штамма М-21 на тех же уровнях пассажей в опытах на взрослых и новорожденных белых мышах, кроликах, морских свинках, куриных эмбрионах и иммунодепрессированных мышах линии СВА посторонних агентов, в том числе и онкогенных, не обнаружено. При изучении фиксированных и окрашенных препаратов культуры штамма М-21 патологических изменений также не выявлено.
Криоконсервирование.
При криоконсервировании применяют 80% среды Игла, 10% СКРС, в качестве криопротектора используют 10% глицерина при концентрации клеток (2-3)˙106 кл/мл. Жизнеспособными после восстановления остаются 75±5% клеток.
Использование штамма М-21 иллюстрируется следующими примерами.
П р и м е р 1. В культуральный сосуд со штаммом клеток на уровне 20 пассажа вводят смесь растворов 0,25% трипсина и 0,02% версена (1:2), подогретого до 37оС. Монослой ополаскивают и жидкость удаляют. Сосуд с культурой оставляют до отслоения клеток от стекла при 37оС. Затем в него вводят среду роста - Игла МЕМ с 10% СКРС до концентрации 120 тыс. кл/мл и засевают по 0,2 мл на лунку в микроплаты. Клетки инкубируют в термостате с 5% СО2 при 37оС в течение 3 суток до формирования монослоя.
Среду роста из плат удаляют стряхиванием. Культуру заливают свежей средой по 0,1 мл на лунку. Испытуемый образец интерферона вносят в первую лунку платы в объеме 0,1 мл и делают последовательные двукратные разведения с помощью автоматической микропипетки. Содержимое первой лунки пипетируют 3-4 раза и 0,1 смеси переносят во вторую лунку, содержимое второй лунки пипетируют 3-4 раза и 0,1 мл смеси переносят в третью лунку и так далее до конечного разведения. Аналогично проводят раститровку лабораторного стандарта.
Для предварительного определения активности используемого в титровании вируса-индикатора - вируса везикулярного стоматита (штамм Индиана) в пенициллиновых флаконах делают последовательные 10-кратные разведения вируса от 1 до 6 lg. Среда разведения та же, что и для титрования интерферона. Соответствующие разведения вируса вносят по 0,1 мл на лунку из расчета по 4 лунки для каждого разведения. Плату инкубируют в термостате в течение 1 сут и определяют титр вируса. Готовят рабочее разведение вируса, содержащего 100 ЦПД/мл. При данном титре вируса, равном 4 lg, рабочее разведение получают в результате двух последовательных 10-кратных разведений. Для контроля дозы вируса испытывают 3 последовательных 10-кратных разведения ее.
В лунки платы с разведением интерферона вносят по 0,1 мл рабочего разведения вируса. Для контроля культуры оставляют 4 лунки с клетками, содержащими одну питательную среду.
Плату инкубируют в течение 2 сут в термостате с 5% СО2 при 37оС, после чего учитывают результаты титрования с помощью инвертированного микроскопа, сравнивая состояние монослоя опытных лунок с контрольными. За титр интерферона принимают величину, обратную значению наибольшего разведения препарата, который вызывает 50% -ную защиту клеточного монослоя вируса. Титр α-интерферона составляет 3200 ед, β-интерферона 128 ед, γ -интерферона 1280 ед.
П р и м е р 2. В культуральный сосуд с диплоидными клетками кожи и мышц эмбриона человека М-21 на уровне 26 пассажа вводят 0,25%-ный раствор трипсина, подогретого до 37оС. Через 5-7 с раствор удаляют, а сосуд с клетками помещают в термостат при 37оС на 2-3 мин. Затем вносят небольшое количество питательной среды и энергичным встряхиванием заканчивают процесс отделения клеток от стекла. После этого в клеточную взвесь добавляют среду роста - Игла МЕМ с 10% СКРС - и разливают на 2 сосуда. Эти культуры 27 пассажа инкубируют при 37оС в течение 3 сут до момента формирования плотного монослоя.
При заражении вирусом среду из культуральных сосудов сливают, клетки однократно промывают рабочим раствором Эрла и вводят вирусосодержащую среду из расчета 1 БОЕ на клетку. В качестве поддерживающей среды используют 0,5% -ный гидролизат лактальбумина (рН 7,6). Культуру инкубируют при 37оС. Сбор вируса проводят на 3 сут. Вирусосодержащую жидкость хранят при -20оС. Титр вируса определяют по методу образования бляшек при заражении первичной культуры клеток почек африканских зеленых мартышек. Титр вируса полиомиелита штамма Сэбина типа I составляет 7,67 lg БОЕ/мл, типа II 7,48 lg БОЕ/мл, типа III 7,64 lg БОЕ/мл, вируса ЕСНО 11 6,50 lg ТЦД50/мл, риновируса 7,58 lg ТЦД50/мл, энтеровируса 70 4,60 lg ТЦД50/мл.

Claims (1)

  1. Штамм диплоидных клеток кожи и мышц эмбриона человека ВСКК(НБЧ) ND-2/15/2/7/, используемый в качестве тест-системы для определения антивирусной активности интерферонов человека и размножения вирусов.
SU4236648 1987-04-28 1987-04-28 Штамм диплоидных клеток кожи и мышц эмбоиона человека, используемый в качестве тест-системы для определения антивирусной активности интерферонов человека и размножения вирусов RU1440029C (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4236648 RU1440029C (ru) 1987-04-28 1987-04-28 Штамм диплоидных клеток кожи и мышц эмбоиона человека, используемый в качестве тест-системы для определения антивирусной активности интерферонов человека и размножения вирусов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4236648 RU1440029C (ru) 1987-04-28 1987-04-28 Штамм диплоидных клеток кожи и мышц эмбоиона человека, используемый в качестве тест-системы для определения антивирусной активности интерферонов человека и размножения вирусов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU1440029C true RU1440029C (ru) 1994-11-15

Family

ID=30440666

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU4236648 RU1440029C (ru) 1987-04-28 1987-04-28 Штамм диплоидных клеток кожи и мышц эмбоиона человека, используемый в качестве тест-системы для определения антивирусной активности интерферонов человека и размножения вирусов

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU1440029C (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2536992C1 (ru) * 2013-07-09 2014-12-27 Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы Способ повышения пролиферативных свойств диплоидных клеток фибробластов человека
RU2553431C2 (ru) * 2013-07-09 2015-06-10 Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы Тест-система для определения активности интерферона человека

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Авторское свидетельство СССР N 764391, кл. C 12N 7/00, 1979. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2536992C1 (ru) * 2013-07-09 2014-12-27 Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы Способ повышения пролиферативных свойств диплоидных клеток фибробластов человека
RU2553431C2 (ru) * 2013-07-09 2015-06-10 Государственное бюджетное учреждение здравоохранения города Москвы Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н.В. Склифосовского Департамента здравоохранения г. Москвы Тест-система для определения активности интерферона человека

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Wheelock Virus replication and high-titered interferon production in human leukocyte cultures inoculated with Newcastle disease virus
Smith et al. Isolation and assay of rabies serogroup viruses in CER cells
Levere et al. Control of hemoglobin synthesis in the cultured chick blastoderm by delta-aminolevulinic acid synthetase: increase in the rate of hemoglobin formation with delta-aminolevulinic acid.
Rapp Plaque differentiation and replication of virulent and attenuated strains of measles virus
Hedrick et al. Two cell lines from white sturgeon
Sekellick et al. Persistent infection II. Interferon-inducing temperature-sensitive mutants as mediators of cell sparing: possible role in persistent infection by vesicular stomatitis virus
KR101624089B1 (ko) 고감염가의 파보바이러스의 생산 방법
Davies et al. The use of a continuous cell line for the isolation of influenza viruses
Wallace et al. Development of a diploid cell line from fetal rhesus monkey lung for virus vaccine production
RU1440029C (ru) Штамм диплоидных клеток кожи и мышц эмбоиона человека, используемый в качестве тест-системы для определения антивирусной активности интерферонов человека и размножения вирусов
Hsiung Some distinctive biological characteristics of ECHO-10 virus.
Maassab The propagation of multiple viruses in chick kidney cultures
Finter [2] Standardization of assay of interferons
Inaba et al. Bovine diarrhea virus II. END phenomenon: Exaltation of Newcastle disease virus in bovine cells infected with bovine diarrhea virus
CN114058566B (zh) 一种鳜皮肤细胞系及其应用
Rhim et al. Transformation of hamster embryo cells in vitro by Rauscher leukemia virus
Moscovici et al. Tissue culture of avian hematopoietic cells
CN104774873B (zh) 一种体外组装草鱼呼肠孤病毒制备方法
Kaplan et al. Demonstration of rabies virus in tissue culture with fluorescent antibody technique
Fattal et al. Enterovirus types in Israel sewage
Nir Some characteristics of Israel turkey virus
Cursiefen et al. In vitro cultivation of cells from the chorioallantoic membrane of chick embryos
RU1347448C (ru) Штамм гетероплоидных клеток почки теленка таурус-1, используемый для культивирования вирусов
Hsiung Applications of Primary Cell Cultures in the Study of Animal Viruses: III. Biological and Genetic Studies of Enteric Viruses of Man (Enteroviruses)
Schmidt et al. The sensitivity of grivet monkey kidney cell line BS-C-1 for propagation and isolation of certain human viruses