RO131830B1 - Compoziţie pentru limitarea producerii de micotoxine, şi procedeu de obţinere a acesteia - Google Patents
Compoziţie pentru limitarea producerii de micotoxine, şi procedeu de obţinere a acesteia Download PDFInfo
- Publication number
- RO131830B1 RO131830B1 ROA201300846A RO201300846A RO131830B1 RO 131830 B1 RO131830 B1 RO 131830B1 RO A201300846 A ROA201300846 A RO A201300846A RO 201300846 A RO201300846 A RO 201300846A RO 131830 B1 RO131830 B1 RO 131830B1
- Authority
- RO
- Romania
- Prior art keywords
- parts
- composition
- production
- oil
- essential
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N65/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing material from algae, lichens, bryophyta, multi-cellular fungi or plants, or extracts thereof
- A01N65/08—Magnoliopsida [dicotyledons]
- A01N65/12—Asteraceae or Compositae [Aster or Sunflower family], e.g. daisy, pyrethrum, artichoke, lettuce, sunflower, wormwood or tarragon
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N37/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic compounds containing a carbon atom having three bonds to hetero atoms with at the most two bonds to halogen, e.g. carboxylic acids
- A01N37/06—Unsaturated carboxylic acids or thio analogues thereof; Derivatives thereof
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N43/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds
- A01N43/02—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one or more oxygen or sulfur atoms as the only ring hetero atoms
- A01N43/04—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one or more oxygen or sulfur atoms as the only ring hetero atoms with one hetero atom
- A01N43/14—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one or more oxygen or sulfur atoms as the only ring hetero atoms with one hetero atom six-membered rings
- A01N43/16—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing heterocyclic compounds having rings with one or more oxygen or sulfur atoms as the only ring hetero atoms with one hetero atom six-membered rings with oxygen as the ring hetero atom
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N65/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing material from algae, lichens, bryophyta, multi-cellular fungi or plants, or extracts thereof
- A01N65/08—Magnoliopsida [dicotyledons]
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Agronomy & Crop Science (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Dentistry (AREA)
- Natural Medicines & Medicinal Plants (AREA)
- Mycology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Pest Control & Pesticides (AREA)
- Botany (AREA)
- Pretreatment Of Seeds And Plants (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Description
Prezenta invenție se referă la o compoziție pentru limitarea formării de micotoxine în diferite substraturi din componența lanțului alimentar, pe bază de ingrediente de origine naturală, cu biodegradabilitate ridicată și impact redus asupra mediului, și la un procedeu de obținere a acestei compoziții din materii prime provenite din bio-resurse regenerabile.
Sunt cunoscute diferite compoziții sau procedee de utilizare a unor compoziții pentru limitarea/inhibarea producerii de micotoxine de către fungi micotoxigeni.
Brevetul EP 1854353 descrie un procedeu de prevenire a contaminării cu micotoxine, sau de decontaminare a silozurilor de cereale, fructe și legume uscate, oleaginoase, care implică utilizarea unei compoziții conținând eugenol, izo-eugenol, sau săruri ale acestora acceptate pentru uz alimentar, și/sau ulei de cuișoare, sau amestec ale acestora. Compoziția este alcătuită din 15...100% principii active din categoria celor menționate mai sus, 0...10% dintr-un agent ce reduce evaporarea principiului activ, 0...85% dintr-un agent tensioactiv, ales dintre cei anionici, non-ionici și amestecul lor, și 0...80% dintr-un solvent, selectat dintre apă, alcanoli (C.,-C6), alchilen-glicoli (C2-C6), poli-(C1-C5)-alchilenglicoli, esteri alchilici (C.,-C6) ai acizilor alcanoici și amestec al acestora. Aplicarea acestei compoziții se realizează prin termonebulizare, la 15O...23O°C, în doze care sunt cuprinse între 1 și 200 cm3 eugenol pur pentru 1 m3 din volumul silozului de stocare, de preferat între 10 și 100 cm3 eugenol pur pentru 1 m3 din volumul silozului. Compoziția aplicată prin procedeul descris mai sus este revendicată ca având eficiență în prevenirea producerii și decontaminarea produselor agricole stocate cu ochratoxină A, deoxinivalenol, aflatoxine, zearalenonă, tricotecene, fumosinine, citrinină, acid penicilic, vomitoxină, patulină.
Cererea de brevet US 2009270471 se referă la o metodă pentru inhibarea producerii de micotoxine prin pulverizarea unui fungicid de tip benzimidazol pe culturi de grâu, orz, secară, ovăz și triticale, în perioada cuprinsă între stadiul de anteză și până la recoltarea acestora.
Cererea de brevet US 2003231978 prezintă o compoziție și o metodă de îmbunătățire a calității aerului din spațiile închise, precum și dezinfectarea suprafețelor din aceste spații. Metoda împiedică dezvoltarea agenților patogeni prin utilizarea unei compoziții sub formă de suspensie sau emulsie care conține o singură terpenă, o combinație de terpene și/sau un lipozom.
Brevetul KR 100444124 se referă la o compoziție destinată inhibării producerii de micotoxine, aflatoxină sau ochratoxină, ce are în compoziție 1...5 pg/ml extract din semințele de Cassiae, și unul sau mai mulți compuși selectați din grupul: alizarină, acid crisofanic, purpurină și quinizarină. Extracția substanțelor cu acțiune inhibitoare din semințele de Cassiae se realizează cu următorii solvenți: hexan, metanol, alcool etilic, acetonă, acetat de etil, clorură de metil, butanol, cloroform și apă distilată. Compoziția poate fi utilizată sub formă lichidă, emulsie, agent fumigen, granule etc.
Cererea de brevet JP 2009167138 se referă la o compoziție care inhibă producerea de micotoxine, pe bază de precocen I (7-metoxi-2,2-dimetilcromen), precocen II (6,7-dimetoxi-2,2dimetilcromen) și precocen III (7-etoxi-6-metoxi-2,2-dimetilcromen), sau uleiuri esențiale care conțin aceste amestecuri de precocen (ulei esențial de Ageratum houstonianum, plantă decorativă originară din Mexic, cunoscută sub denumirea de pufuleți albaștri, sau ulei esențial de mușețel, Matricaria recutita). Precocenul era cunoscut ca fiind un inhibitor al sintezei hormonilor juvenili la insecte, cererea de brevet JP 20099167138 referindu-se la o nouă utilizare a diferitelor structuri de precocen, pentru inhibarea producerii de tricotecene, și în special de 3-acetil deoxinivalenol (ADON) și deoxinivalenol (DON), de către fungi toxigeni din grupul Fusarium graminearum.
RO 131830 Β1
Cererea de brevet CN 102212481 prezintă un procedeu de utilizare a acidului a-linolenic și/sau a analogilor sau derivaților acestora, pentru inhibarea producerii de aflatoxineîn diferitele substraturi alimentare. Cererea de brevet revendică inhibarea producerii de aflatoxină prin utilizarea unor concentrații cuprinse între 0,005 mg/ml și 5 mg/ml de acid α-linolenic în mediul de cultură al fungilor micotoxigeni din grupul Aspergillus section Flavi (exemplificat prin tulpina A. flavus CGMCC 32890).
Utilizarea uleiurilor esențiale pentru a preveni producerea de micotoxine în recolta depozitată a fost recent trecută în revistă-da Cruz Cabrai etal., 2013, Int. J. Food Microbiol., 166:1-14. S-a demonstrat, de asemenea, și faptul că esterii metilici ai uleiul de in, ulei ce are un conținut foarte ridicat de acid α-linolenic, au un efect de blocare a dezvoltării fungilor producători de aflatoxine - Abdellillah et al., 2013, Asian Pac. J. Trop. Biomed. 3:443-448.
Un principal dezavantaj al acestor compoziții obținute cu precădere din compuși naturali, proveniți din resurse regenerabile, este determinat de (bio)degradabilitatea lor ridicată, care este un avantaj în cazul utilizării, pentru că reduce semnificativ riscul de acumulare a unor compuși potențiali toxici, dar este un dezavantaj în ceea ce privește stabilitatea la păstrare, care trebuie să fie de minimum 12 luni, pentru a corespunde cerințelor lanțului de distribuție și unei utilizării predominant sezoniere. Moleculele organice cu legături duble multiple, cum sunt componentele unor uleiuri esențiale, dar mai ales acidul α-linolenic (C18:3n-3), care prezintă trei legături duble în lanțul hidrocarbonat, au stabilitate redusă și la (per)oxidare. Oxidarea acidului α-linolenic determină formarea unor aldehide oxigenate α,β-nesaturate toxice - a se vedea, de exemplu, review-ul (Guillen și Goicoechea, 2008, Crit. Rev. Food Sci. 48:119-136). Degradarea microbiologică a diferiților compuși naturali utilizați în compozițiile pentru limitarea/inhibarea producerii de micotoxine duce la pierderea activității biologice a acestora a se vedea review-ul (Turek și Stintzing, 2013, Compr. Rev. Food Sci. F., 12: 40-53).
Pentru a crește stabilitatea în timp a unor astfel de compoziții pe bază de ingrediente naturale, cererea de brevet CN 102058016 revendică o compoziție care include 150...180 părți de diacetat de sodiu, 45...65 părți de propil-paraben, 3...15 părți de pulbere de cuișoare, 2...12 părți de acid citric, 1...8 părți ulei esențial de Ruta graveolens, 100...125 părți de pulbere de vermiculit. Compoziția prezintă stabilitate în timp, dar agenții de conservare, de tipul propilparabenului folosit în compoziția descrisă mai sus, prezintă o serie de dezavantaje, printre care: generarea unor costuri adiționale și a unor preocupări suplimentare referitoare la protecția mediului, acceptanță redusă, risc de bioacumulare peste limita maximă admisibilă, prin bioconcentrarea în lanțul alimentar, datorită folosirii în furaje, blocarea certificării unor astfel de compoziții rezultate din surse regenerabile, cu trasabilitate verificabilă pentru sistemele de agricultură organică. în plus, aplicarea unor compoziții sub formă pulverulentă este limitată, iar compoziția descrisă mai sus este destinată exclusiv prevenirii producerii de micotoxine în furajele depozitate.
Micotoxinele se formează atât în timpul vegetației, înainte de recoltare, cât și după recoltare, mai ales în cazul unor condiții de depozitare ce favorizează dezvoltarea fungilor micotoxigeni. Fungii toxigeni din genurile Fusarium și Aspergillus sunt și agenți fitopatogeni care infectează plantele în perioada de vegetație, și contaminează cu micotoxine recolta rezultată din plantele infectate - a se vedea, de exemplu, review-ul (Voloshuk și Shim, 2013, FEMS Microb. Rev. 37:94-109). Speciile micotoxigene din genul Fusarium, de exemplu, au o diversitate de plante gazdă pe care le infectează în timpul vegetației, și care includ practic cele mai importante, din punct de vedere economic, culturi de câmp (cerealele păioase, porumbul și sorgul, leguminoasele boabe, cartoful - Ma et al. 2013, Ann. Rev. Microbiol. 67: 399-416). Tulpinile de fungi aflatoxigeni din grupul Aspergillus section Flavi infectează recolta în curs de formare, și o contaminează cu aflatoxine, determinând pierderi economice semnificative în anii care urmează celor secetoși, anii în care recolta contaminată cu aflatoxine, în special cea de
RO 131830 Β1 porumb, este larg folosită în lanțul alimentar (stresul hidric al plantelor de cultură și temperaturile ridicate, caracteristice perioadelor de secetă, favorizează infecția cu fungi din grupul Aspergillus section Flavi, și formarea de aflatoxine - a se vedea, de exemplu, review-ul (Guo et al., 2008, J. Integr. Plant Biol. 50:1281-1291).
Un alt dezavantaj al tratamentelor cu uleiuri esențiale este determinat de aroma puternică pe care acestea o pot transmite substraturilor tratate, și care limitează utilizarea acestor uleiuri extrase din material vegetal la produse compatibile.
Ca urmare, s-a considerat necesară obținerea de compoziții pe bază de componente provenite din bioresurse regenerabile, utilizabile pentru limitarea producerii de micotoxine, care să prezinte următoarele caracteristici:
(i) o rezistență intrinsecă la biodegradare în timpul stocării;
(ii) inhibarea (per)oxidării legăturilor duble din lanțurile hidrocarbonate ale lipidelor constituente;
(iii) posibilitatea aplicării prin pulverizare, după suspendare/emulsionare și diluare cu apă, inclusiv apă cu duritate ridicată, atât pentru limitarea producerii de micotoxine în timpul vegetației, cât și pentru prevenirea producerii de micotoxine în produsele agroalimentare depozitate;
(iv) activitate complementară a mai multor ingrediente active, prin care să se reducă dozele de uleiuri esențiale, și prin care să se limiteze efectul de transmitere a aromei acestora către substraturile tratate. Astfel au fost realizate noi procedee pentru obținerea unor astfel de compoziții, care să nu genereze co-produse, și care să aibă consumuri energetice specifice cât mai mici.
Compoziția conform invenției este alcătuită din 42,1 părți de esteri etilici ai acizilor grași din ulei de in, 15 părți lecitină, 13,7 părți alcool etilic, 6 părți ulei esențial de muguri florali de Syzygium aromaticum, 6 părți ulei esențial de flori de Ageratum houstonianum, 5,6 părți săruri de potasiu ale acizilor grași, exprimate ca oleat, 3,9 părți glicerol, 3,3 părți trigliceride, 3 părți maltol, 0,5 părți apă, diferența până la 100 părți fiind substanțe nesaponificabile și săruri.
în compoziția de mai sus cel puțin 64% din esteri etilici de ulei de in sunt esteri etilici ai acidului α-linolenic; lecitină are o balanță hidrofil-lipofilă HLB mai mare de 8, uleiul esențial de muguri florali de Syzygium aromaticum conține cel puțin 75% eugenol, iar uleiul esențial de flori de Ageratum houstonianum are un conținut de minimum 75% precocen total, din care minimum 30% precocen II, 6,7-dimetoxi-2,2-dimetilcromen.
Procedeul conform invenției este alcătuit din următoarele etape:
- transesterificarea uleiului de in cu alcool etilic în exces 200%, pentru a forma o masă de reacție (R1), în prezență de hidroxid de potasiu, în autoclavâ, la 40°C, timp de 8 h, în atmosferă protectoare de azot;
- răcirea masei de reacție în care este menținută glicerina și celelalte co-produse ale reacției de transesterificare, ca și excesul de alcool etilic, și neutralizarea excesului de hidroxid de potasiu din 500 g de masă de reacție (R1) cu 37 g acid oleic, pentru a forma produsul intermediar (R2);
- amestecarea produsului intermediar (R2) cu celelalte ingrediente în următoarele proporții: 140 g produs intermediar (R2), cu 30 g lecitină din soia, cu o balanță hidrofil-lipofilă HLB mai mare de 8, 12 g ulei esențial de muguri florali Syzygium aromaticum, ce are un conținut de minimum 75% eugenol, 12 g ulei esențial de flori de Ageratum houstonianum, ce are un conținut de minimum 75% precocen total, din care minimum 30% precocen II, 6,7dimetoxi-2,2-dimetilcromen, 6 g maltol-3-hidroxi-2-metil-4H-piran-4-onă, și omogenizarea lor prin agitare viguroasă, pentru a se forma compoziția cu acțiune de inhibare a producerii de micotoxine.
RO 131830 Β1
Invenția prezintă următoarele avantaje:
- formează o compoziție cu o rezistență intrinsecă la biodegradare în timpul depozitării, datorită conținutului de peste 10% alcool etilic, provenit din excesul de la reacția de trans-etilare, care menține activitatea apei din respectiva compoziție sub nivelul necesar dezvoltării unor microorganisme spoliatoare;
- conduce la obținerea unei compoziții care prezintă caracteristici superioare în limitarea producerii de micotoxine, datorită interacțiunilor dintre diferitele ingrediente active;
- inhibă (per)oxidarea legăturilor duble din lanțurile hidrocarbonate ale lipidelor constituente, datorită activității antioxidante a maltolului și a uleiului esențial de Syzygium aromaticum;
- limitează efectul de transmitere a aromei uleiurilor esențiale către substraturile tratate, datorită reducerii dozelor de uleiuri esențiale ca urmare a activității complementare a mai multor ingrediente active;
- maschează aroma uleiurilor esențiale transmisă cerealelor boabe, datorită prezenței maltolului, care este un compus care amplifică aroma specifică produselor în care sunt prelucrate cerealele;
- determină o bună comportare tehnologică a soluțiilor de stropit rezultate prin diluarea compoziției conform invenției, datorită:
(i) glicerolului, care acționează ca agent de hidratare, reducând viteza de evaporare a apei și a compușilor activi de pe organelor plantelor tratate, în special inflorescențele cerealelor;
(ii) acțiunii emulsifiante a lecitinei, care îmbunătățește capacitatea de udare și de acoperire a organelor plantelor tratate, și care reduce rata de formare a picăturilor fine cu grad ridicat de dispersie; și (iii) acțiunii de plastifiere a cuticulei hidrofobe exercitată către alcoolul etilic și esteri etilici ai acizilor grași, care favorizează penetrarea ingredientelor active prin bariera de permeabilitate reprezentată de cuticulă;
- permite aplicarea atât pentru limitarea producerii de micotoxine în timpul vegetației, cât și pentru prevenirea producerii de micotoxine în produsele agroalimentare depozitate;
- valorifică co-produsele din procesul de obținere a esterilor acizilor grași prin transesterificarea uleiurilor vegetale cu etanol, și în special glicerina, prin menținerea acestora în produsele intermediare și produsul final, cu beneficii pentru aplicarea prin stropire;
- asigură randamente ridicate ale procesului de transesterificare ce se desfășoară la temperaturi joase, cu risc redus de peroxidare a acizilor grași (poli)nesaturați, și cu consumuri energetice scăzute;
- permite formarea unor compoziții alcătuite exclusiv din componente provenite din materii prime agricole regenerabile, care, după verificarea și asigurarea conformității, poate fi certificată pentru sistemele de agricultură organică.
în continuare se prezintă exemple de realizare ce ilustrează invenția fără a o limita.
Exemplul 1
1000 g de ulei degumat de in, cu caracteristicile prezentate în tabelul 1, este adus într-o autoclavă de 2 I din oțel inox, cu sistem de agitare și de încălzire, sub atmosferă protectoare de azot.
RO 131830 Β1
Tabelul 1
Caracteristicile uleiului degumat de in folosit
Apă și compuși volatili | % m/m | 0,4 |
Indice de refracție | - | 1,469 |
Substanțe nesaponificabile | % m/m | 1,54 |
Acizi grași liberi | % m/m | 0,8 |
Indice de saponificare | mg KOH/g | 188,5 |
Indice de iod | g l2/100 g | 185 |
Indice de peroxid | meq O2/kg | 0,95 |
Compoziția medie în acizi grași (% m/m): C16: 4,6; C18: 2,4; C18-1: 14,5; C18-2: 12,8; C18-3: 64,1; Alții-1,6. |
Se dizolvă 25 g de hidroxid de potasiu de puritate 98% în 395 g de etanol cu 0,3% apă (200% în exces față de reacția de transesterificare), iar soluția rezultată este adăugată în autoclav, peste uleiul degumat de in. Se pornește agitarea și încălzirea la 40°C. După un timp de reacție de 8 h, masa de reacție se răcește la temperatura camerei. Se colectează 1415 g de masă transparentă de reacție (R1) cu următorul conținut (% m/m): esteri etilici de acizi grași din in (FAEE) 64,6; trigliceride 5,1; glicerol 5,9; etanol 21; hidroxid de potasiu 1,5 și apă 0,4, corespunzând unui randament de transesterificare de 92,3%. în produsul de reacție (R1), la o stocare timp de 1...365 zile, nu se separă straturi diferite. 500 g de produs de reacție (R1) se tratează sub agitare viguroasă cu 37 g de acid oleic tehnic, cu următoarele caracteristici: indice de aciditate 197,9 mg KOH/g; indice de iod 91,4 g l2/100 g; conținut de apă 0,3% m/m, pentru a se neutraliza excesul de hidroxid de potasiu.
Se formează o soluție clară, notată (R2), ce are compoziția (% m/m): esteri etilici ai acizilor grași: 60,3; trigliceride 4,8; glicerol 5,5; etanol 19,5; săruri de potasiu ale acizilor grași exprimate ca oleat 8; apă 0,7. 140 g produs intermediar (R2) este amestecat prin agitare viguroasă cu 12 g ulei esențial de muguri florali de cuișoare, Syzygium aromaticum, ce are un conținut de minimum 75% eugenol, 12 g ulei esențial de flori de pufuleți albaștri, Ageratum houstonianum, ce are un conținut de minimum 75% precocen total, din care min 30% precocen II, 6,7-dimetoxi-2,2-dimetilcromen, 6 g maltol-3-hidroxi-2-metil-4H-piran-4-onă, 30 g lecitină de soia cu o balanță hidrofil-lipofilă HLB mai mare de 8, pentru a obține produsul A1, a cărui compoziție este următoarea: esteri etilici ai acizilor grași (FAEE) 42,1, din care cel puțin 64% sunt esteri etilici ai acidului α-linolenic, C18:3 (n-3); trigliceride 3,3; glicerol 3,9; alcool etilic 13,7; săruri de potasiu ale acizilor grași, exprimate ca oleat 5,6; maltol 3, ulei esențial de muguri florali de Syzygium aromaticum 6, ulei esențial de flori de Ageratum houstonianum 6, lecitină 15,0; apă 0,5, diferența până la 100 fiind substanțe nesaponificabile.
S-a realizat un studiu de stabilitate microbiologică a compoziției realizate conform exemplului de mai sus. 100 ml din produsul A1 au fost repartizați în flacoane Erlenmeyer de 500 ml, care au fost menținute la 25°C timp de 192 de zile. Din 24 în 24 de zile s-au prelevat probe din care s-a determinat numărul de bacterii prin folosirea tehnicii de epifluorescență după colorarea cu 4',6-diamidino-2-fenilindol (DAPI)-Porter și Feig, 1980, Limnol. Oceanogr., 25: 943-948.
Experimentul s-a realizat în 5 repetiții, lucrându-se comparativ cu produs M1, realizat după un procedeu similar cu cel descris mai sus, darîn care s-a folosit cantitatea stoichiometric necesară de alcool etilic, fără exces. Compoziția produsului M1 este următoarea: esteri etilici ai acizilor grași (FAEE) 53,2, din care cel puțin 64% sunt esteri etilici ai acidului a-linolenic,
RO 131830 Β1
C18:3 (n-3); trigliceride 4,2; glicerol 4,9; săruri de potasiu ale acizilor grași exprimate ca oleat 1 7,1; maltol 3, ulei esențial de muguri florali de Syzygium aromaticum 6, ulei esențial de flori de Ageratum houstonianum 6, lecitină 15,0; apă 0,6, diferența până la 100 fiind substanțe 3 nesaponificabile. Rezultatele sunt prezentate în tabelul 2 de mai jos.
Tabelul 2 5
Stabilitatea microbiologică a produsului realizat conform exemplului 1
Produs | Inițial | 24 zile | 48 zile | 72 zile | 96 zile | 120 zile | 144 zile | 168 zile | 192 zile |
Produs A1, conform exemplului 1 | <103 | <103 | <103 | <103 | <103 | <103 | <103 | <103 | <103 |
Produs M, fără exces de etanol | <103 | <103 | <103 | 3,7*103 | 8,5*103 | 2,4*104 | 6,5*104 | 1,8*105 | 4,8*105 |
Aceste rezultate demonstrează o stabilitate ridicată a produsului A1 realizat conform 13 invenției, datorită prezenței alcoolului etilic ce reduce semnificativ disponibilitatea apei.
în produsul A1 realizat conform exemplului 1 s-a determinat activitatea antioxidantă. S-a 15 folosit tehnica fotochemiluminiscenței, pe baza metodei Popovși Lewin, 1999, Meth. Enzymol., 300:96-100, pe un echipament Photochem® (Analityk Jena, Jena, Germania), față de radicali 17 anionici superoxid generați de luminol, un fotosensibilizant atunci când este expus la lumină UV. Probe de 01,1 ml au fost diluate cu hexan înainte de determinarea antioxidanților, folosind kit-ul 19 ACL furnizat de Analitik Jena. Activitatea antioxidantă a fost monitorizată pentru 180 s și exprimată ca pm de echivalent trolox pentru 1 g de probă. S-a lucrat în triplicat, comparativ cu 21 un produs M2, obținut prin aplicarea unui procedeu similar cu cel descris mai sus, dar în care nu s-au introdus maltol și uleiuri esențiale în produsul intermediar R2, ci numai lecitină. 23 Compoziția produsului M2 este următoarea: esteri etilici ai acizilor grași (FAEE)49,6, din care cel puțin 64% sunt esteri etilici ai acidului α-linolenic, C18:3 (n-3); trigliceride 3,9; glicerol 4,5; 25 săruri de potasiu ale acizilor grași exprimate ca oleat 6,6; lecitină 17,7%, apă 0,6, diferența până la 100 fiind substanțe nesaponificabile. Rezultatele sunt prezentate în tabelul 3 de mai jos. 27
Tabelul 3 29
Activitatea antioxidantă din compoziția A1 realizată conform exemplului 1
Produs | Activitate antioxidantă (echiv. pm trolox/g) |
Compoziția A1, realizată conform exemplului 1 | 128,7 |
Produs M2, produs intermediar R2 cu adaos numai de lecitină | 1,78 |
Inhibarea peroxidării lipidelor de către antioxidanții incluși în compoziția realizată s-a testat în cadrul unui experiment în care s-a folosit metoda tiocianatului feric. Câte 25 ml din 37 compozițiile A1 și M2 au fost emulsionate cu 25 ml de tampon fosfat sodic (0,04 M, pH 7,0). Amestecul de soluții a fost incubat la 37°C în flacoane de 100 ml, din polietilenă. Nivelul de 39 peroxid s-a determinat prin prelevarea a 0,1 ml probă, în care s-au adăugat 0,1 ml de tiocianat de amoniu 30%, și exact după 3 min s-au adăugat 0,1 ml de 2 x 102 M clorură ferică în acid 41 clorhidric 3,5%, citindu-se culoarea roșie formată la 500 nm, pe un spectrofotometru UV-Vis Biomate, ThermoSpectronic (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, SUA). Peroxizii sunt 43 formați în timpul peroxidării legăturilor duble din acizii grași incluși în esterii etilici formați din ulei de in care oxidează ionii Fe2+ la Fe3+. Ionii ferici reacționează cu tiocianatul, formând complexul 45 ce are un maximum de absorbție la 500 nm. Analiza s-a repetat din 6 în 6 h, timp de 2 zile.
RO 131830 Β1
Inhibarea peroxidării lipidelor de către antioxidanții adăugați în compoziția A1 (maltol, uleiuri esențiale) s-a calculat cu ajutorul următoarei ecuații:
Inhibarea peroxidării lipidelor = 100 - (DOfDOM x 100) unde DOa este densitatea optică la 500 nm a probelor de compoziția A, iar DOM este densitatea optică a 500 nm probelor de produs M2.
Pe parcursul tuturor celor 6 determinări, inhibarea peroxidării lipidelor a fost de peste 99%, ceea ce demonstrează că antioxidanții adăugați în compoziție protejează față de peroxidare legăturile duble din esterii etilici formați din uleiul de in.
S-au realizat și experimente pentru determinarea efectului compozițiilor obținute pentru inhibarea producerii de micotoxine in vitro de către fungii toxigeni din genurile Aspergillus și Fusarium.
Pentru determinarea inhibării producerii de aflatoxine, s-a folosit mediul sintetic cu asparagină (Reddy et al., 1979, J. Gen, Microbiol., 114:409-413 - zaharoză 80 g/l, (NH4)2SO4
3,5 g/l, asparagină 3 g/l, KH2PO4 0,75 g/l, MgSO4 · 7H2O 0,5 g/l, ZnSO4 -7H2O - 0,025 g/l). S-au repartizat câte 50 ml de mediu în flacoane erlenmeyer de 500 ml, acoperite cu dopuri de vată, și s-au sterilizat prin autoclavare. Mediile răcite au fost inoculate aseptic cu câte 1 ml de suspensie de spori conținând 1,2 ml x 10® spori/ml din tulpina Aspergillus parasiticus DSM 2038/ATCC 15517. S-au adăugat diferite volume din compoziția A1, sterilizate prin filtrare, pentru a atinge concentrațiile finale în mediul de cultură de 10 pg/ml, 5 pg/ml, 1,0 pg/ml, 0,5 pg/ml și 0,1 pg/ml. S-a lucrat în triplicat, foiosindu-se ca produse de referință compozițiile M1 și M2, față de un martor care nu a fost tratat.
Pentru producerea de aflatoxină B1, mediile de cultură au fost incubate la 25°C pentru 5 zile. Culturile au fost filtrate, miceliul rezultat fiind cântărit după recoltare și uscare la 50°C, timp de 4 zile. Filtratul a fost extras de trei ori cu câte 25 ml de cloroform. Fracțiile cloroformice au fost combinate, evaporate la sec, reziduul fiind reluat în cloroform și adus la 1 ml în flacon volumetric. Din acest extract s-au prelevat probe care au fost analizate pe un lichid cromatograf de înaltă presiune Agilent 6224 (Agilent Technologies, Santa Clara, CA, SUA), folosind un amestec isocratic ternar de apă, metanol și acetonitril, 50/40/10, pe o coloană ZORBAC Eclipse XBD-C18, 4,6 mm x 150 mm x 3,5 pm, cu detectare pe detector UV (http://www.chem.agilent.com/Library/applications/5989-3634EN.pdf). Ca etalon s-a folosit aflatoxină B1 furnizată de Sigma Aldrich (Sigma Aldrich, St. Louis, MO, SUA), iar cuantificarea s-a făcut prin raportarea suprafeței picurilor corespunzătoare aflatoxinei B1 din probele analizate cu cele ale etalonului. Inhibarea creșterii miceliului fungilortoxigeni A. parasiticus DSM 2038 și a producerii de aflatoxină B1 de către aceștia, pe mediu lichid sintetic, cu asparagină, s-a realizat prin raportarea procentuală a mediilor fiecărei concentrații de compoziție testată la media martorului netratat. Rezultatele experimentului sunt prezentate în tabelul 4.
Tabelul 4
Inhibarea creșterii miceliului fungilor toxigeni A. parasiticus DSM 2038 și a producerii de aflatoxină B1 de către aceștia, pe mediu lichid sintetic, cu asparagină
Produs | Inhibare creștere (% față de martor) | Inhibarea producerii de aflatoxină B1 (% față de martor) |
Compoziție A1, obținută conform ex. 1, 10 pl/ml | 56,3 | 100 |
Compoziție A1, obținută conform ex. 1, 5 pl/ml | 61,1 | 100 |
Compoziție A1, obținută conform ex. 1, 1 pl/ml | 57,8 | 100 |
RO 131830 Β1
Tabelul 4 (continuare)
Produs | Inhibare creștere (% față de martor) | Inhibarea producerii de aflatoxină B1 (% față de martor) |
Compoziție A1, obținută conform ex. 1, 0,5 pl/ml | 45,3 | 66,7 |
Compoziție A1, obținută conform ex. 1, 0,1 pl/ml | 34,8 | 44,5 |
Compoziție M1, obținută fără exces de metanol, 10 pl/ml | 41,3 | 88,3 |
Compoziție M2, obținută fără maltol și uleiuri esențiale, 10 pl/ml | 35,7 | 33,4 |
Rezultatele demonstrează o eficacitate ridicată a compoziției A1, obținută conform invenției, în inhibarea producerii de aflatoxină B1 pe mediu lichid.
S-a testat stabilitatea emulsiei formate de compoziția A1 în apă dură standard. S-a folosit metoda Method MT 36.3: Emulsion characteristics of emulsifiable concentrates, emulsion characteristics and re-emulsification properties, CIPAC Handbook K, care constă în realizarea a 100 ml emulsie în apă standard, și examinarea stabilității emulsiei timp de 24 h. După 24 h nu s-a constatat o separare semnificativă a fazelor, iar capacitatea de reemulsificare după acest timp a fost semnificativă. Apa folosită a fost apă dură standard (metoda WHO/M/29), duritatea apei fiind verificată conform metodei CIPAC MT73 (CIPAC Handbook F), și corectată dacă era nevoie. Compoziția realizată este deci stabilă în apă dură standard, putând fi utilizată ca atare pentru realizarea de tratamente ale culturilor agricole sau a recoltei înainte de depozitare, prin stropire după diluare în apă, inclusiv în apă de fântână cu duritate ridicată.
Exemplul 2
Compoziția A1, obținută conform exemplului 1, a fost aplicată în condiții de câmp experimental, pentru a verifica reducerea contaminării cu micotoxine a porumbului și grâului, înainte de recoltare.
Experimentele s-au realizat în anii agricoli 2012 și 2013, pe câmpurile experimentale de la Fundulea (44°27'45 latitudine nordică și 26°31'35 longitudine estică), pe un cernoziom cambie, cu caracteristicile prezentate în tabelul 5 de mai jos.
Tabelul 5
Caracteristicile cernoziomului cambie din câmpul experimental de la Fundulea
Caracteristică | UM | Ap | Aph |
Adâncime orizont | cm | 0-18 | 18-30 |
Humus (Cx 1,72) | % | 3,0 | 3,0 |
Total N | % | 0,179 | 0,169 |
C : N | - | 11,4 | 11,8 |
ΟθΟΟβ | % | 0,0 | 0,0 |
pH (în H2O) | pH unit | 6,3 | 6,5 |
Capacitatea totală de schimb cationi, CEC | meq/100g | 21,1 | 21,3 |
Fosfor total (AL) | PPm | 28 | 14 |
Potasiu mobil | PPm | 98 | 87 |
RO 131830 Β1 în zona experimentală de la Fundulea, temperatura medie multianuală atmosferică este de 10,25°C, iar precipitațiile anuale însumează 571 mm. în anul agricol 2012, în care s-a efectuat experimentul pentru porumb, primăvara și vara au fost mai calde decât normalul perioadei, deficitul de precipitații fiind de peste 150 mm în perioada de vegetație a porumbului.
Experimentul pentru verificarea eficacității compoziție realizate prin brevet, în limitarea producerii de aflatoxine de către fungi toxigeni din grupul Aspergillus section Flavi, care infectează porumbul în timpul vegetației, a fost amplasat în blocuri randomizate, de tip split-splitplot. Variantele au fost: inoculat cu A parasiticus DSM 2038 și neinoculat/tratat cu apă sterilă, separate în două subvariante de aplicare a tratamentului cu compoziția A1, cu 24 h înainte de aplicarea inoculării (1) și cu 24 h după aplicarea tratamentului (2), fiecare separat apoi în trei niveluri ale tratamentului cu compoziția A1: (a) 0%/apă; (b) echivalent 1 kg/ha în 400 I apă (soluție 0,25%); (c) echivalent 1 kg/ha în 400 I apă (soluție 0,5%). Randomizarea (sub)variantelorîn trei repetiții este prezentată în tabelul 6 de mai jos.
Tabelul 6
Randomizarea (sub)variantelor în trei repetiții, pentru experimentul de verificare a eficacității compoziției A1 în limitarea producerii de aflatoxine
Blocl | Inoculat A. parasiticus DSM 2038 | Neinoculat/tratat cu apă sterilă |
1a 1b 1c2c2b2a | 2b 2c 2a 1a 1c 1b | |
Bloc II | Neinoculat/tratat cu apă sterilă | Inoculat A. parasiticus DSM 2038 |
1c 1a 1b 2b 2c 2a | 2c 2a 2b 1b 1a 1c | |
Bloc III | Inoculat A. parasiticus DSM 2038 | Neinoculat/tratat cu apă sterilă |
2b 2c 2a 1a 1c 1b | 1c 1a 1b 2a 2b 2c |
S-a folosit hibridul Fundulea 376 (FAO 450), hibrid simplu semitardiv, cu perioada de vegetație de 143 zile. Cultura premergătoare a fost grâul, iar lotul experimental a fost fertilizat cu azot și fosfor în doză de 90 N kg/ha + 75 kg P2O5/ha (N90P75). Sămânța de porumb a fost tratată cu un insecticid condiționat, care conținea clotianidin 600 g/l (Poncho 600 FS, Bayer CropScience AG, Monheim am Rhein, Germania), aplicat în doză de 4 l/t (0,83 μΙ p.c./bob). Densitatea a fost de 5,8 boabe germinabile pe m2. Lungimea unui bloc experimental a fost de 50 m, lățimea de 4 m, benzile dintre parcelele experimentale individuale de 12 m2 (3 x 4 m) fiind de 1 m. S-a aplicat și un tratament cu erbicide, preemergent un erbicid cu pethoxamid 300 g/l + terbutilazină 250 g/l (Successor T, Cheminova, Harboore, Danemarca) și postemergent timpuriu cu rimsulfuron 50% + tifensulfuron 25% (Basis, DuPont, Wilmington, Delaware). Benzile au fost menținute libere de buruieni și prin pășire. Inocularea s-a realizat în fenofaza de mijloc a înfloritului, și a implicat inserarea unui ac 14G/2,1 mm, printre pănuși din vârful fiecărui știulete, și injectarea a 3 ml de suspensie de A. parasiticus DSM 2038, cultivat pe mediul sintetic, cu asparagină, descris mai sus, normalizat la 108 spori/ml după numărare la camera Thoma. Aplicarea s-a realizat cu ajutorul unui pistol de stropit cu sifon HVLP (Blue) (DeVilbiss, Glendale Heights, IL, SUA), prevăzut cu ac de 14 G. Tratamentele au fost aplicate individualizat pe fiecare parcelă, folosind un atomizor portabil de spate Stihl SR430 (Stihl AG&Co Kg, Dieburg, Germania), compoziția A1 fiind aplicată ca soluție 0,25% și 0,5%, în volum echivalent celui de 400 l/ha.
Cultura de porumb a fost menținută până la maturitate. S-au recoltat știuleți de porumb, s-au desfăcut boabele de pe știuleți și s-au uscat la temperatura de 35°C, timp de 7 zile, până la 14% umiditate. Din fiecare repetiție au fost prelevate probe de porumb reprezentative, care
RO 131830 Β1 au fost măcinate până la o granulație de 20 mesh (0,85 mm), folosind o moară Retsch (Grindomix, Retsch, Haan, Germania). în probe s-a determinat conținutul de aflatoxină Bn după extragere în soluție acetonitril - apă (9 + 1), prepurificare cu coloană de curățare multifuncțională (Mycosep™, Romer Labs Inc., Union, MT, USA), derivatizare și determinare prin HPLC cu detector de fluorescență (AOAC Official Method 994.08,2000,17th edition, volume II, AOAC International, Gaithersburg, Maryland, USA).
în probele de porumb măcinate s-a determinat și fumonisina B1, prin extracție cu metanol - acetonitril - apă (25 + 25 + 50, v/v/v/), prepurificare pe coloană de imunoafinitate, evaporare la sec a eluatului de pe coloană, reluarea reziduului în acetonitril - apă (50 + 50, v/v), derivatizare și analiză prin lichid cromatografie cu fază inversă și detector de fluorescență (Visconti et al., 2001, J. AOAC Int. 84: 1828-1837).
Numărul de boabe infestate intern cu fungi aflatoxigeni a fost estimat după dezinfectarea suprafeței boabelor de porumb prin spălări repetate cu hipoclorit de sodiu și apă distilată sterilă. Boabele dezinfectate au fost depuse pe mediu agarizat cu zinc - gelatin-peptonă, ciclodextrină, cloramfenicol și dicloran (Oancea și Ștefan, brevet RO 0123355), câte 12 boabe pentru o placă Petri 0 9 cm (360 de boabe per repetiție). După incubare 7 zile la 28°C, s-au examinat plăcile în lumină ultravioletă, pentru a evidenția creșterea fungilor aflatoxigeni și producerea de micotoxine de către aceștia.
Datele au fost analizate folosind pachetul software SAS/STAT (SA Institute, Carry, NC, SUA). Pentru a stabiliza variabilitatea datelor, a fost folosită transformarea logaritmică [log (y + 1)] pentru toate datele referitoare la conținutul de micotoxine. Datele au fost analizate folosind procedura ProGLM. Toate datele referitoare la contaminarea cu micotoxine au fost raportate ca medie geometrică (anti-logaritm al mediei logaritmice), pentru că această medie reprezintă cel mai bine tendința centrală/ valoarea tipică a unui set de numere. Mediile fiecărei variante au fost separate folosind testul diferenței pentru P = 0,05.
Rezultatele experimentului sunt prezentate în tabelul 7 de mai jos.
Tabelul 7
Contaminarea cu micotoxine, aflatoxină B1 și fumonisină B1t și infecția cu fungi aflatoxigeni a probelor reprezentative din diferitele variante experimentale
Varianta experimentală | Conținut aflatoxină B., (pg/kg) | Conținut fumonisină B., (pg/kg) | % infecție boabe fungi aflatoxigeni |
Neinoculat, tratat cu apă înainte de injectare | 4,5c | 280a | 0,6c |
Neinoculat, tratat cu apă după injectare | 5,8c | 230a | 0,6c |
Inoculat A. parasiticus DSM 2038, 3 ml x 10® spori/ml, tratat cu apă înainte de injectare | 67a | 320a | 7,3a |
Inoculat A parasiticus DSM 2038, 3 ml x108 spori/ml, tratat cu apă după injectare | 73a | 340a | 7,9a |
Neinoculat, tratat compoziție A1, cf. ex. 1, 1 kg/ha, înainte de injectare | 1,2c | 20bc | 0,4c |
RO 131830 Β1
Tabelul 7 (continuare)
Varianta experimentală | Conținut aflatoxină B., (pg/kg) | Conținut fumonisină B., (pg/kg) | % infecție boabe fungi aflatoxigeni |
Neinoculat, tratat compoziție A1, cf. ex. 1, 1 kg/ha, după injectare | 1,7c | 30bc | 0,7c |
Neinoculat, tratat compoziție A1, cf. ex. 1, 2 kg/ha, înainte de injectare | 1,2c | 5c | 0,4c |
Neinoculat, tratat compoziție A1, cf. ex. 1, 2 kg/ha, după injectare | 1,3c | 10c | 0,6c |
Inoculat A. parasiticus DSM 2038, 3 ml x 10® spori/ml, tratat compoziție A1, cf. ex. 1, 1 kg/ha, înainte de injectare | 6c | 25bc | 1,8bc |
Inoculat A. parasiticus DSM 2038, 3 ml x 10® spori/ml, tratat compoziție A1, cf. ex.1, 1 kg/ha, după injectare | 15bc | 30bc | 3,7b |
Inoculat A. parasiticus DSM 2038, 3 ml x 10® spori/ml, tratat compoziție A1, cf. ex. 1, 2 kg/ha, înainte de injectare | 4c | 10c | 0,7c |
Inoculat A. parasiticus DSM 2038, 3 ml x108 spori/ml, tratat compoziție A1, cf. ex. 1, 2 kg/ha, după injectare | 5c | 15c | 0,8c |
DL5% | 12,3 | 18,8 | 2,7 |
Rezultatele demonstrează eficacitatea compoziției realizate conform exemplului 1, în reducerea producerii de micotoxine la porumb înainte de recoltare. Aplicarea compoziției, la ambele doze testate în variantele neinoculate, a determinat reducerea contaminării porumbului cu aflatoxină B1, în condițiile anului experimental 2012, caracterizat prin condiții de secetă favorabile contaminării cu aflatoxine sub limitele stabilite prin Regulamentul UE nr. 165/2010. Aplicarea compoziției conform exemplului 1 la doza de 2 kg/ha a determinat reducerea sub limita maximă prevăzută pentru porumbul care urmează a fi sortat sau supus altui tratament fizic, înaintea consumului uman sau a utilizării ca ingrediente în produse alimentare, inclusiv pentru situația inoculării cu o tulpină producătoare de aflatoxine. De asemenea, aplicarea compoziției a determinat reducerea semnificativă a infecției cu fungi aflatoxigeni și a contaminării cu fumonisine a porumbului înainte de recoltare.
S-a realizat și un experiment pentru verificarea eficacității compoziției propuse în reducerea producerii de tricotecene la grâu înainte de recoltare. Experimentul s-a realizat în anul agricol 2012/2013, pe loturi experimentale de 25 m2, la Fundulea, folosind grâu de toamnă (Triticum aestivum L), cultivar Boema. Cultura premergătoare a fost soia. Norma de însămânțare a fost de 480...500 boabe germinabile pe mp. Sămânța a fost tratată cu echivalent
2,5 l/t dintr-un produs care conținea 12 g/l tebuconazol și 210 g/l imidacloprid (Nuprid Max Al 222 FS, Nufarm Srl, București, România). Solul din loturile experimentale a fost un cernoziom cambie, cu caracteristici deja prezentate. Din punct de vedere al temperaturilor, sezonul 2012/2013 nu a prezentat variații semnificative, temperaturile fiind puțin peste normal în timpul lunilor de iarnă, și cu excedent de precipitații mai mare de 50 mm pe perioada de
RO 131830 Β1 vegetație a grâului. Solul a fost fertilizat cu 200 kg/ha echivalent îngrășământ complex NPK 1 15:15;15 (Azomureș, Târgu-Mureș, România) înainte de însămânțare. Au fost aplicate tehnologii de lucru conservative, cu eliminarea arăturii cu întoarcerea brazdei, prin pregătirea 3 patului germinativ prin discuire cu disc greu. La înfrățire s-a aplicat un erbicid pe bază de amidosulfuron 100 g/l + iodosulfuron-metil-Na 25 g/l + mefenpyr-dietil 250 g/l (Sekator Progress 5 OD, Bayer Crop Science, Monheim am Rhein, Germania) în doză echivalentă a 0,1 l/ha. Pentru combaterea bolilor foliare s-a aplicat un singur tratament la GS39 (frunza standard dezvoltată 7 complet), folosindu-se un produs cu 250 g/l sprioxamină + 167 g/l tebuconazol + 43 g/l triadimenol (Falcon 460 EC, Bayer Crop Science), aplicat în doză de 0,6 l/ha. împreună cu 9 tratamentul de boli foliare s-a aplicat și insecticid pe bază de tiacloprid 100 g/l și deltametrin 10 g/l (Proteus, Bayer Crop Science), în doză de 0,4 l/ha. 11
Experimentul de testare a efectului compoziției la grâu a fost organizat în blocuri randomizate, în pătrat latin, 4 variante în 4 repetiții. Compoziția A1, conform exemplului 1, s-a 13 aplicat în trei doze, 0,5 kg/ha, 1,0 kg/ha și 2 kg/ha. S-a lucrat față de un martor la care s-a aplicat numai stropire cu apă. Tratamentele s-au aplicat în fenofaza GS59 folosind un atomizor 15 portabil de spate Stihl SR430 (Stihl AG&Co Kg, Dieburg, Germania), în volum echivalent celui de 400 l/ha. în finalul ciclului de vegetație s-a recoltat separat fiecare repetiție, și s-au uscat la 17 temperatura de 35°C, timp de 7 zile, până la 14% umiditate. Din fiecare repetiție au fost prelevate probe de boabe de grâu reprezentative, care au fost măcinate până la o granulație de 19 20 mesh (0,85 mm), folosind o moară Retsch (Grindomix, Retsch, Haan, Germania). în probe s-a determinat conținutul deaflatoxină Bp după extragere în soluție acetonitril - apă (84:16, v/v), 21 prepurificare cu coloană de curățare multifuncțională (Mycosep™, Romer Labs Inc., Union, MT, USA), și determinare prin HPLC cu detector de fluorescență (Mateo et al., 2002, J. Chromatogr., 23 A, 955:245).
Datele au fost analizate prin aplicarea modelului liniar general, pentru a se determina 25 valorile medii și diferențele semnificative la un nivel de probabilitate de 5% (Statistica 10, StatSoft, Tulsa, OK, SUA). Rezultatele sunt prezentate în tabelul 8 de mai jos. 27
Tabelul 8
Efectul aplicării compoziției realizate conform invenției, 29 asupra contaminării cu tricotecene la grâu (ev. Boema)*
Varianta experimentală | Conținut DON (ng/kg) | Conținut AcDON (ng/kg) |
Martor, tratat cu apă | 628,2a | 20,5a |
Compoziția A1, cf. Ex.1, echiv. 0,5 kg/ha | 294,5b | 10,8b |
Compoziția A1, cf. Ex.1, echiv. 1 kg/ha | 202,4bc | 5,87c |
Compoziția A1, cf. Ex.1, echiv. 2 kg/ha | 132,7c | 4,25c |
‘Valorile urmate de aceeași literă nu diferă semnificativ pentru P > 0,05; DON, deoxinivalenol; 3-AcDON, 3-acetil- 37 deoxinivalenol.
Rezultatele obținute demonstrează eficacitatea compoziției obținute conform exemplul 1, în reducerea producerii de tricotecene de către fungii toxigeni din grupul F. graminearum care 41 infectează grâul în timpul vegetației.
Exemplul 3 43
A fost realizat un experiment pentru a se verifica eficacitatea compoziției realizate în reducerea producerii de micotoxine de către fungii care se dezvoltă în recolta depozitată de 45 porumb și de orz. Experimentul pe porumb a urmărit efectul compoziției A1 asupra producerii
RO 131830 Β1 de zearalenonă și deoxinivalenol de către tulpina F. graminearum DSM 4529. Boabele de porumb (ev. Mostiștea) au fost sterilizate prin iradiere la 12 kGy, și menținute aseptic la 4°C. Boabele de porumb au fost testate pentru sterilitate și absența micotoxinelor. Boabele de porumb au fost rehidratate până la niveluri aw de 0,900, distribuite aseptic în flacoane erlenmeyer sterile, de 1000 ml, tratate cu compoziția A1 în doze echivalente a 2 și 4 kg/t, și amestecate viguros pentru omogenizarea tratamentului. S-a lucrat față de un martor tratat cu apă distilată sterilă, echivalent 4 kg/t. Câte 70 g din boabele tratate au fost distribuite în plăci Petri 0 20 cm, într-un strat uniform care acoperea întreaga placă. Boabele de porumb au fost inoculate cu un disc de 5 mm, prelevat dintr-un gazon de cultură F. graminearum DSM 4529, de 7 zile pe mediu cartof-glucoză-agar, transferate aseptic în centrul fiecărei plăci Petri cu boabe de porumb. Plăcile Petri cu boabe de porumb și inocul au fost trecute în exsicatoare cu soluție de glicerol-apă care avea o activitate a apei de 0,900. Plăcile au fost incubate pentru 35 zile la 25°C. După 35 zile s-a procedat la prelevarea de probe din care s-a determinat zearalenona și deoxinivalenolul, prin folosirea metodelor AOAC 972-26 și AOC 978-22. Analiza rezultatelor s-a realizat prin analiza variantei (ANOVA), folosind pachetul software SAS/STAT (SA Institute, Carry, NC, SUA). Rezultatele prezentate în tabelul 9 de mai jos demonstrează eficacitatea compoziției A1 realizate conform exemplului 1, în limitarea producerii de deoxinivalenol și zearalenonă în porumbul depozitat.
Tabelul 9
Influența aplicării compoziției realizate conform invenției, asupra producerii de zearalenonă și deoxinivalenol de către tulpina F. graminearum DSM 4529, inoculată pe boabe de porumb tratate*
Varianta experimentală | Conținut DON (pg/kg) la 35 zile | Conținut ZEN (pg/kg) la 35 zile |
Martor, tratat cu apă | 1872a | 672a |
Compoziția A1, cf. ex. 1, echiv. 2 kg/t | 793b | 324b |
Compoziția A1, cf. ex. 1, echiv. 4 kg/t | 624b | 215b |
*Valorile urmate de aceeași literă nu diferă semnificativ pentru P>0,05; DON, deoxinivalenol; ZEN - zearalenonă.
S-a realizat un experiment similar pe boabe de orz, în care s-a urmărit efectul compoziției A1 asupra producerii de ochratoxină A de către tulpina Aspergillus ochraceus MU CL 39539. Boabele de orz (cv. Amiral) au fost sterilizate prin iradiere la 12 kGy și menținute aseptic la 4°C. Boabele de orz au fost testate pentru sterilitate și absența micotoxinelor. Boabele de orz au fost rehidratate până la niveluri aw de 0,900, distribuite aseptic în flacoane erlenmeyer sterile, de 1000 ml, tratate cu compoziția A1 în doze echivalente a 2 și 4 kg/t, și amestecate viguros, pentru omogenizarea tratamentului. S-a lucrat față de un martor tratat cu apă distilată sterilă, echivalent 4 kg/t. Câte 70 g din boabele tratate au fost distribuite în plăci Petri 0 20 cm, într-un strat uniform care acoperea întreaga placă. Boabele de orz au fost inoculate cu un disc de 5 mm, prelevat dintr-un gazon de A. ochraceus MUCL 39539, de 7 zile pe mediu cartof-glucozăagar, transferate aseptic în centrul fiecărei plăci Petri cu boabe de orz. Plăcile Petri cu boabe de orz și inocul au fost trecute în exsicatoare cu soluție de glicerol-apă care avea o activitate a apei de 0,900. Plăcile au fost incubate pentru 25 zile la 25°C. După 25 zile s-a procedat la prelevarea de probe din care s-a determinat ochratoxina A prin folosirea unei metode de cromatografie de înaltă presiune, cu detector de fluorescență (Ocnaru et al., 2014, Rev. Chim.,
RO 131830 Β1
65:607-619). Analiza rezultatelor s-a realizat prin analiza variantei (ANOVA), folosind pachetul 1 software SAS/STAT (SA Institute, Carry, NC, SUA). Rezultatele prezentate în tabelul 10 de mai jos demonstrează eficacitatea compoziției A1 realizate conform exemplului 1, în limitarea 3 producerii de ochratoxină în orzul depozitat.
Tabelul 10
Influența aplicării compoziției realizate conform invenției asupra producerii 1 de ochratoxină de către tulpina A. ochraceus MUCL 39539 inoculată pe boabe de orz tratate* 9
Varianta experimentală | Conținut ochratoxină A (pg/kg) la 25 zile |
Martor, tratat cu apă | 22,4a |
Compoziția A1, cf. ex. 1, echiv. 2 kg/t | 6,2b |
Compoziția A1, cf. ex. 1, echiv. 4 kg/t | 4,7b |
‘Valorile urmate de aceeași literă nu diferă semnificativ pentru P > 0,05.
Analiza organoleptică a probelor tratate nu a relevat pregnanța aromei specifice uleiurilor esențiale utilizate pentru obținerea compoziției A1, conform exemplului 1. Această percepție 17 redusă a componentelor de aromă este datorată dozelor reduse folosite, ca și efectului de mascare exercitat de maltol, care amplifică astfel componentele de aromă specifice pentru 19 cereale.
Claims (7)
1. Compoziție pentru limitarea producerii de micotoxine, caracterizată prin aceea că este alcătuită din: 42,1 părți de esteri etilici ai acizilor grași din ulei de in, 15 părți lecitină,
13,7 părți alcool etilic, 6 părți ulei esențial de muguri florali de Syzygium aromaticum, 6 părți ulei esențial de flori de Ageratum houstonianum, 5,6 părți săruri de potasiu ale acizilor grași exprimate ca oleat, 3,9 părți glicerol, 3,3 părți trigliceride, 3 părți maltol, 0,5 părți apă, diferența până la 100 părți fiind substanțe nesaponificabile și săruri.
2. Compoziție conform revendicării 1, caracterizată prin aceea că din esterii etilici de ulei de in cel puțin 64% sunt esteri etilici ai acidului a-linolenic, lecitină are o balanță hidrofillipofilă HLB mai mare de 8, uleiul esențial de muguri florali de Syzygium aromaticum conține cel puțin 75% eugenol, iar uleiul esențial de flori de Ageratum houstonianum are un conținut de minimum 75% precocen total, din care minimum 30% precocen II, 6,7-dimetoxi-2,2-dimetilcromen.
3. Compoziție conform revendicării 1, caracterizată prin aceea că inhibă producerea de aflatoxine și fumonisine la porumb înainte de recoltare, prin aplicare de doze cuprinse între 1 și 2 kg/ha.
4. Compoziție conform revendicării 1, caracterizată prin aceea că inhibă producerea de tricotecene la grâu înainte de recoltare, și în special DON, deoxinivalenol și 3-AcDON, 3acetil-deoxinivalenol, prin aplicare de doze cuprinse între 0,5 și 2 kg/ha.
5. Compoziție conform revendicării 1, caracterizată prin aceea că inhibă producerea de zearalenonă și deoxinivalenol în porumbul depozitat, prin aplicare în doze cuprinse între 2 și 4 kg/t.
6. Compoziție conform revendicării 1, caracterizată prin aceea că inhibă producerea de ochratoxină în orzul depozitat, prin aplicare în doze cuprinse între 2 și 4 kg/t.
7. Procedeu de obținere a compoziției definite în revendicarea 1, caracterizat prin aceea că este alcătuit din următoarele etape: transesterificarea uleiului de in cu alcool etilic în exces 200%, pentru a forma o masă de reacție (R1), în prezență de hidroxid de potasiu, în autoclavă, la 40°C, timp de 8 h, în atmosferă protectoare de azot; răcirea masei de reacție în care este menținută glicerina și celelalte coproduse ale reacției de transesterificare, ca și excesul de alcool etilic, și neutralizarea excesului de hidroxid de potasiu din 500 g de masă de reacție (R1) cu 37 g acid oleic, pentru a forma un produs intermediar (R2); amestecarea produsului intermediar (R2) cu celelalte ingrediente în următoarele proporții: 140 g produs intermediar (R2), cu 30 g lecitină din soia, cu o balanță hidrofil-lipofilă HLB mai mare de 8,12 g ulei esențial de muguri florali Syzygium aromaticum, ce are un conținut de minimum 75% eugenol, 12 g ulei esențial de flori de Ageratum houstonianum, ce are un conținut de minimum 75% precocen total, din care minimum 30% precocen II, 6,7-dimetoxi-2,2-dimetilcromen, 6 g maltol-3-hidroxi-2-metil-4H-piran-4-onă, și omogenizarea lor prin agitare viguroasă, pentru a se forma compoziția cu acțiune de inhibare a producerii de micotoxine.
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
ROA201300846A RO131830B1 (ro) | 2013-11-14 | 2013-11-14 | Compoziţie pentru limitarea producerii de micotoxine, şi procedeu de obţinere a acesteia |
PCT/RO2013/000024 WO2015072872A1 (en) | 2013-11-14 | 2013-11-27 | Composition for the limitation of mycotoxin production and process for its obtainment |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
ROA201300846A RO131830B1 (ro) | 2013-11-14 | 2013-11-14 | Compoziţie pentru limitarea producerii de micotoxine, şi procedeu de obţinere a acesteia |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RO131830A2 RO131830A2 (ro) | 2017-05-30 |
RO131830B1 true RO131830B1 (ro) | 2018-04-27 |
Family
ID=53057710
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ROA201300846A RO131830B1 (ro) | 2013-11-14 | 2013-11-14 | Compoziţie pentru limitarea producerii de micotoxine, şi procedeu de obţinere a acesteia |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
RO (1) | RO131830B1 (ro) |
WO (1) | WO2015072872A1 (ro) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111398483A (zh) * | 2020-04-23 | 2020-07-10 | 昆明市疾病预防控制中心 | 大米中16种真菌毒素的监测方法 |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AU2003223183A1 (en) * | 2002-02-19 | 2003-09-09 | Eden Researach Plc | Improvement of indoor air quality and antiseptic composition for use therein |
AR056290A1 (es) * | 2005-03-31 | 2007-10-03 | Nippon Soda Co | Metodo para inhibir la produccion de de micotoxina |
UA95243C2 (ru) * | 2005-06-30 | 2011-07-25 | Сингента Партисипейшнс Аг | Способ снижения уровня загрязнения микотоксинами растения и/или убранного растительного материала и применение |
RU2373711C1 (ru) * | 2008-08-20 | 2009-11-27 | Закрытое Акионерное Общество Фирма "Август" | Фунгицидная композиция и способ борьбы с фитопатогенными грибами |
-
2013
- 2013-11-14 RO ROA201300846A patent/RO131830B1/ro unknown
- 2013-11-27 WO PCT/RO2013/000024 patent/WO2015072872A1/en active Application Filing
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RO131830A2 (ro) | 2017-05-30 |
WO2015072872A1 (en) | 2015-05-21 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Feliziani et al. | Postharvest decay of strawberry fruit: Etiology, epidemiology, and disease management | |
Hashem et al. | Efficacy of essential oils in the control of cumin root rot disease caused by Fusarium spp. | |
Pangallo et al. | Evaluation of a pomegranate peel extract as an alternative means to control olive anthracnose | |
Barkatullah et al. | Allelopathic potential of Dodonaea viscosa (L.) Jacq | |
Atayde et al. | Mycobiota and aflatoxins in a peanut variety grown in different regions in the state of São Paulo, Brazil | |
Singh et al. | Effect of consortium of Trichoderma harzianum isolates on growth attributes and Sclerotinia sclerotiorum rot of brinjal | |
Dilbo et al. | Integrated management of garlic white rot (Sclerotium cepivorum Berk) using some fungicides and antifungal Trichoderma species | |
Scaglioni et al. | Impact of microalgal phenolic extracts on the control of Fusarium graminearum and deoxynivalenol contamination in wheat | |
KR101837622B1 (ko) | 빌레나무 추출물을 유효성분으로 함유하는 식물병 방제용 조성물 및 이를 이용한 식물병 방제방법 | |
Fagbohun et al. | The nutritional and mycoflora changes during storage of groundnut (Arachis hypogea) | |
Chtioui et al. | Plant extracts as biocontrol agents against Aspergillus carbonarius growth and ochratoxin A production in grapes | |
Khadiri et al. | Challenges in apple preservation: Fungicide resistance and emerging biocontrols | |
da SILVA et al. | Rice sheath blight biocontrol and growth promotion by Trichoderma isolates from the Amazon. | |
KR101464335B1 (ko) | 식물 추출물을 함유하는 식물 병원균 방제용 조성물 | |
KR101143033B1 (ko) | 식물병 방제용 조성물 | |
Dewir et al. | Bioactive compounds of California fan palm Washingtonia filifera (Linden ex André) H. Wendl. ex de Bary | |
Rinaldi et al. | Prospects of using garlic extracts for pest control in sustainable agriculture | |
KR101385557B1 (ko) | 식물병원균 예방 및 방제용 키토산과 키토올리고당 조성물 및 이를 이용한 식물병원균 방제 및 식물생육촉진 방법 | |
RO131830B1 (ro) | Compoziţie pentru limitarea producerii de micotoxine, şi procedeu de obţinere a acesteia | |
KR100706297B1 (ko) | 만수국 또는 표고버섯을 포함하는 식물 흰가루병 방제제 | |
Khalil | Beneficial effects of Trichoderma viride and salicylic acid against Fusarium wilt in tomato | |
KR101242098B1 (ko) | 시금치의 친환경 노균병 방제제 및 이를 이용한 시금치의 친환경 재배방법 | |
Goudoum et al. | Insecticidal and antifungal properties of essential oil of Bidens pilosa Linn. var. radita (Asteraceae) towards stored bambara groundnut insect and fungi pests | |
Ahmed et al. | Mitigating helminthosporium leaf spot disease in sesame: evaluating the efficacy of castor essential oil and sodium bicarbonate on disease management and crop yield enhancement | |
Zhang et al. | Characterizing CMN1308, a novel strain of Bacillus amyloliquefaciens, for potential biological control application |