RO126409B1 - Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium - Google Patents

Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium Download PDF

Info

Publication number
RO126409B1
RO126409B1 ROA200901074A RO200901074A RO126409B1 RO 126409 B1 RO126409 B1 RO 126409B1 RO A200901074 A ROA200901074 A RO A200901074A RO 200901074 A RO200901074 A RO 200901074A RO 126409 B1 RO126409 B1 RO 126409B1
Authority
RO
Romania
Prior art keywords
parts
differentiation
fusarium
culture medium
fungi
Prior art date
Application number
ROA200901074A
Other languages
English (en)
Other versions
RO126409A2 (ro
Inventor
Florin Oancea
Aurora Liliana Ştefan
Carmen Lupu
Original Assignee
Institutul De Cercetare-Dezvoltare Pentru Protecţia Plantelor
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Institutul De Cercetare-Dezvoltare Pentru Protecţia Plantelor filed Critical Institutul De Cercetare-Dezvoltare Pentru Protecţia Plantelor
Priority to ROA200901074A priority Critical patent/RO126409B1/ro
Publication of RO126409A2 publication Critical patent/RO126409A2/ro
Publication of RO126409B1 publication Critical patent/RO126409B1/ro

Links

Landscapes

  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Invenția se referă la un mediu de cultură, pentru diferențierea ciupercilorfitopatogene, toxigene, din genul Fusarium, destinat estimării riscului de infecție a boabelor de grâu în curs de formare, cu ciuperci toxigene și de contaminare ulterioară cu micotoxine.
Sunt cunoscute o serie de medii și de metode prin care sunt determinate fitopatogenitatea și/sau toxigenitatea unor populații/izolate de ciuperci din genul Fusarium.
MD 3540 F1 descrie o metodă de identificare a fitopatogenității unor izolate de ciuperci din genul Fusarium. Metoda propusă implică cultivarea izolatelor de ciuperci toxigene pe mediu nutritiv Czapek și determinarea activității β-glucuronidazice în filtratele culturii de 5 zile. Se consideră ca fiind fitopatogene acele izolate la care activitatea βglucuronidazică este cuprinsă între 0,652 și 1,183 U/ml. Metoda descrisă nu oferă soluții pentru diferențierea și/sau izolarea rapidă a tulpinilor de ciuperci fitopatogene din genul Fusarium și, în special, a celor care sunt și toxigene.
TW 541337 B descrie un mediu selectiv pentru detectarea ciupercii patogene Fusarium oxysporum f. sp. Ulii, care este util pentru obținerea acesteia din sol sau pentru a o diferenția față de alte specii de Fusarium. Este constituit din mediul de bază Komada, pentacloronitrobenzen, oxgall, Na2B4O7-10H2O, sulfat de streptomicină și benomyl.
Schmale și colab. (2006, Genetic structura ofatmosphericpopulations of Gibberella zeae, PhytopathologyQQ, 1021-1026), descriu un mediu pentru diferențierea și identificarea rapidă a sporilor atmosferici de Fusarium graminearum/Gibberella zeae, depuși gravimetric pe suprafața plăcilor Petri deschise și expuse peste noapte. Această soluție tehnică permite izolarea rapidă a ciupercilor din genul Fusarium, dar nu permite diferențierea celor fitopatogene și/sau toxigene.
Problema tehnică pe care o rezolvă invenția este de a realiza o compoziție de mediu prin care să se realizeze izolarea și diferențierea rapidă a ciupercilor fitopatogene, toxigene, din genul Fusarium.
Mediul de cultură pentru diferențierea ciupercilor fitopatogene, toxigene, din genul Fusarium, conform invenției, este alcătuit din: 32...34 părți ulei de măsline extravirgin, 0,095...1,05 părți fosfat monopotasic KH2PO4; 0,095...1,05 părți azotat de potasiu KNO3; 0,095...1,05 părți sulfat de streptomicină; 0,740...0,760 părți pentacloronitrobenzen; 0,47...0,52 părți MgSO4.7H2O; 0,47...0,52 părți clorură de potasiu KCI; 0,340...0,360 părți sulfat de neomicină; 0,240 ...0,270 părți polietilenglicol sorbitan monooleat; 0,019...0,021 părți Rodamină B, 19...21 părți agar și până la 1000 părți apă, părțile fiind exprimate în greutate.
Mediul realizat conform invenției prezintă următoarele avantaje:
- selectivitate ridicată, datorită biocidelor incluse în mediu, streptomicină, neomicină, pentacloronitrobenzen, care limitează dezvoltarea bacteriilor și a ciupercilor microscopice care nu aparțin genului Fusarium-,
- capacitate ridicată de a diferenția fusariile producătoare de lipaze extracelulare, care sunt fitopatogene și toxigene, pentru că lipazele secretate reprezintă, pentru ciupercile din genul Fusarium, atât un factor de virulență, cât și un factor implicat în biosinteza micotoxinelor.
- realizarea testelor de diferențiere ușor, fără a fi necesară aparatură complexă, reactivi costisitori și/sau personal cu înaltă calificare;
- realizarea testelor de identificare a hazardului microbiologic care generează riscul de contaminare a alimentelor cu fusariotoxine.
Se dă, în continuare, un exemplu de realizare a invenției.
RO 126409 Β1
Exemplu. într-un flacon Erlenmayer de 500 ml, gradat, se introduc, pe rând, 0,1 g 1 KH2PO4, 0,1 g KNO3, 0,05 g MgSO4, 0,05 g KCI. Se adaugă 90 ml apă distilată. Se încălzește la fierbere, până la dizolvarea completă a tuturor ingredientelor și apoi se menține 3 pe baie de apă la 5O...55°C. Peste soluția menținută la 55°C, se adaugă 0,075 mg pentacloronitrobenzen. Se verificăpH-ul, care trebuie să fie de 7,0±0,1. Se corectează, dacă 5 este nevoie, cu soluții de KOH 1 N sau H2SO41 N. Se aduce volumul final la 100 ml, se astupă paharul Erlenmayer cu dop de vată, și apoi se autoclavează la 121°C, timp de 20 min. 7 Mediul autoclavat se răcește la 60°C, după care se adaugă 10 ml emulsie lipidică, sterilă, cu rodamină B. Se omogenizează în condiții aseptice, pe baie de apă termostatată la 60°C și 9 se menține apoi aproximativ 10 min, la 6O...62°C, pentru eliminarea spumei formate. Mediul se răcește apoi la circa 55°C și se adaugă câte 1 ml de soluții de antibiotice sterilizate prin 11 filtrare, respectiv, 1 ml soluție de sulfat de streptomicină 0,1 g /ml și 1 ml soluție de sulfat de neomicină 0,035 g/ml. 13
Prepararea emulsiei lipidice sterile se realizează după cum urmează: într-un Erlenmeyer de 250 ml, se aduc: 250 pi de Tween 80 (polietilenglicol sorbitan monooleat), 15 30 ml de ulei de măsline extravirgin și 50 ml de apă distilată. Se omogenizează emulsia la waring blender, se lasă să se disperseze spuma, se corectează pH -ui la 7,0, se acoperă cu 17 dop de vată fixat cu folie și apoi se sterilizează la 121°C, timp de 30 min. Se răcește la circa 60°C, se trece pe baie de apă termostatată la 6O...62°C și se adaugă 20 ml soluție de 19 rodamină B 1 mg/ml, sterilizată prin ultrafiltrare.
Selectivitatea mediului realizat conform invenției a fost analizată cu cea a mediilor de 21 mai jos.
Czapek-Dox-Iprodione-Dicloran Agar (CZID) (Abildgren et al., 1987), obținut din 23 Czapek Dox agar (Merck) 35 g; CuSO4-5H2O 0,005 g; ZnSO4-7H2O 0,001 g cloramfenicol 0,05 g; dicloran 0,002 g; apă până la 1000 ml. Mediul s-a autoclavat la 121°C, timp de 30 25 min. Când mediul s-a răcit la circa 55°C, s-a adăugat câte 1 ml din soluții sterile care conțineau: penicilină 50 mg/ml; sulfat de streptomicină 50 mg/ml; Rovral (iprodione)6 mg/ml; 27
Spezieller Nahrstoffarmer Agar (SNA) (Nirenberg, 1981); KH2PO4 1 g; KNO3 1 g; MgSO4-7H2O 0,5 g; KCI 0,5 g; glucoză 0,2 g; zaharoză 0,2 g; agar 20 g Malachit Green Agar 29 (MGA) (Castello et al., 1997); Peptonă 15 g; KH2PO4 1 g ; MgSO4-7H2O 0,5 g; Malachite Green sare oxalat,10 ml soluție 25 mg%, 2,5 mg; ampicilină 0,5 g. Mediul s-a autoclavat la 31 121°C, timp de 30 min. Când mediul s-a răcit la circa 55°C, s-au adăugat 2 ml dintr-o soluție stoc rifampicină, rezultată prin dizolvarea a 0,5 g în 100 ml 95% etanol. 33
Mediu Fusarium selectiv (FS) (Nash și Snyder, 1962) cu următoarea compoziție: bactopeptonă 15 g, mediu pulbere cartof glucoză agar (Difco) 39 g; KH2PO4 1 g; 35 MgSO4-7H2O 0,5 g, pentacloronitrobenzen 0,2 g, agar 15 g. Mediul s-a autoclavat la 121°C, timp de 30 min. Când mediul s-a răcit la circa 55°C, s-a adăugat câte 1 ml din soluții sterile 37 care conțineau: sulfat de streptomicină 300 mg/ml, ampicilină 100 mg/ml.
Mediu Fusarium selectiv modificat (FSM) (Schmale et al. 2006), cu următoarea 39 compoziție: 15 g bactopeptonă, KH2PO4 1 g; MgSO4-7H2O 0,5 g, pentacloronitrobenzen 0,750 g, agar 15 g. S-a răcit la 55°C, după care s-au adăugat câte 10 ml de soluții de 41 antibiotice sterilizate prin filtrare, 10 ml soluție de sulfat de streptomicină 0,1 g /ml și 10 ml soluție de sulfat de neomicină 0,035 g/ml. 43
RO 126409 Β1
Tabelul 1
Selectivitatea mediilor de cultură testate pentru fusariile toxigene
Mediu Aprecierea selectivității
Fusarium/ Asperg. Fusarium/ Drechslera Fusarium/ Mucor Fusarium/ Penicillium Fusarium/ Rhisopus
CZID 5 5 3 5 4
SNA 4 4 5 3 5
FS 3 3 4 4 3
FSM 1 2 2 1 2
cf. ex. 2 1 1 2 2
Note pe o scara de la 1 la 5, prin compararea creșterii între diferitele specii de ciuperci microscopice pe fiecare dintre medii.
Selectivitatea mediilor a fost testată prin inocularea plăcilor Petri 67x15 mm cu amestecuri de suspensii de spori de Fusarium graminearum, în combinație cu Aspergillus flavus, Sclerotinia sclerotiorum, Drechslera turcica, Botrytis cinerea, Mucor mucede, Penicillium expansum. Mediul s-a incubat timp de 7 zile și a fost comparată creșterea diferitelor specii de ciuperci microscopice pe fiecare dintre medii. Notele acordate diferitelor medii testate, în cadrul acestei etape, în privința selectivității pentru ciupercile fitopatogene din grupul Fusarium graminearum, sunt prezentate în tabelul 1. Se remarcă faptul că selectivitatea mediilor FS, FSM, conform exemplului este apropiată. în toate cazurile, factorul major de selectivitate este pentacloronitrobenzen, un fungicid care este inactiv față de ciupercile microscopice din genul Fusarium. Mediul conform invenției mai este selectiv și prin compoziția sa minimală.
Capacitatea mediilor de a permite diferențierea rapidă a sporilor atmosferici de fusarii toxigene a fost testată prin expunerea în aer liber a mediilor comparate, fiecare dispus într-o serie de 5 plăci Petri deschise (90 mm în diametru; suprafața = 283 mm2). Plăcile au fost amplasate pe un suport în formă de T, la nivelul inflorescențelor de grâu și porumb (fig. 1, a, b), și lăsate peste noapte. Apoi s-au închis, s-au preluat din câmp în laborator și s-au incubat timp de 24 h, la 25°C și la întuneric. Numărul de colonii puse în evidență rapid, pentru diferitelor medii, sunt prezentate în tabelul 2.
Tabelul 2
Capacitatea mediilor de cultură testate pentru diferențierea rapidă a sporilor atmosferici, prelevați după expunere în aer liber
Mediu Număr total de colonii Colonii identificate ca Fusarium
CZID 128±20 44±4
SNA 108±24 42±8
FS 84±16 36±8
FSM 64±20 48±4
MSF 56±12 48±8
RO 126409 Β1
Datele prezentate în tabelele 1 și 2 demonstrează o selectivitate ridicată a mediului 1 MSF, realizat în cadrul acestei etape, în a izola specific din aer sporii de F. graminearum/Gibberella zeae. în plus, acest mediu are caracteristica de a izola exclusiv 3 ciuperci microscopice din genul Fusarium care produc o lipază extracelulară, deci care au un potențial toxigenic ridicat. Ciupercile care produc lipază se evidențiază printr-un halou 5 produs pe mediul (care este opalescent și ușor rozaliu, datorită complexului ulei de măsline rodamină B). Acest halou este fluorescent la iluminare cu lumina ultravioletă. 7

Claims (5)

1 Revendicare
3 Mediu de cultură pentru diferențierea ciupercilor fitopatogene, toxigene, din genul
Fusarium, caracterizat prin aceea că este alcătuit din: 32...34 părți ulei de măsline
5 extravirgin, 0,095...1,05 părți fosfat monopotasic KH2PO4; 0,095...1,05 părți azotat de potasiu KNO3; 0,095...1,05 părți sulfat de streptomicină; 0,740...0,760 părți pentacloronitrobenzen;
7 0,47...0,52 părți MgSO4.7H2O; 0,47...0,52 părți clorură de potasiu KCI; 0,340...0,360 părți sulfat de neomicină; 0,240 ...0,270 părți polietilen glicol sorbitan monooleat; 0,019... 0,021
9 părți Rodamină B, 19...21 părți agar și până la 1000 de părți apă, părțile fiind exprimate în greutate.
ROA200901074A 2009-12-22 2009-12-22 Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium RO126409B1 (ro)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ROA200901074A RO126409B1 (ro) 2009-12-22 2009-12-22 Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ROA200901074A RO126409B1 (ro) 2009-12-22 2009-12-22 Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RO126409A2 RO126409A2 (ro) 2011-06-30
RO126409B1 true RO126409B1 (ro) 2012-12-28

Family

ID=44502369

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ROA200901074A RO126409B1 (ro) 2009-12-22 2009-12-22 Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium

Country Status (1)

Country Link
RO (1) RO126409B1 (ro)

Also Published As

Publication number Publication date
RO126409A2 (ro) 2011-06-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Pritsch et al. A rapid and highly sensitive method for measuring enzyme activities in single mycorrhizal tips using 4-methylumbelliferone-labelled fluorogenic substrates in a microplate system
Weaver et al. Potential for preventing spread of fungi in air‐conditioning systems constructed using copper instead of aluminium
Pitt et al. Methods for isolation, enumeration and identification
Thrane et al. Vital fluorescent stains for detection of stress in Pythium ultimum and Rhizoctonia solani challenged with viscosinamide from Pseudomonas fluorescens DR54
Kemp et al. Survival and growth of micro-organisms on air filtration media during initial loading
Zhang et al. The autophagy gene BbATG5, involved in the formation of the autophagosome, contributes to cell differentiation and growth but is dispensable for pathogenesis in the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana
Vyzantiadis et al. From the patient to the clinical mycology laboratory: how can we optimise microscopy and culture methods for mould identification?
Afonso et al. In vitro assessment of inter-kingdom biofilm formation by bacteria and filamentous fungi isolated from a drinking water distribution system
Gomoiu et al. Fungal spores viability on the International Space Station
Devi et al. Screening of suitable culture media for growth, cultural and morphological characters of Pycnidia forming fungi
Louw et al. Postharvest decay of nectarine and plum caused by Penicillium spp.
Tomičić et al. Probiotic yeast Saccharomyces boulardii (nom. nud.) modulates adhesive properties of Candida glabrata
Ashour et al. Microbiological environmental monitoring in pharmaceutical facility
Mello et al. Conidial germination in Scedosporium apiospermum, S. aurantiacum, S. minutisporum and Lomentospora prolificans: influence of growth conditions and antifungal susceptibility profiles
Kneipp et al. Surface phosphatase in Rhinocladiella aquaspersa: biochemical properties and its involvement with adhesion
Punithavathy et al. Antifungal susceptibility testing of Candida tropicalis biofilms against fluconazole using calorimetric indicator resazurin
RO126409B1 (ro) Mediu de cultură pentru diferenţierea ciupercilor fitopatogene toxigene din genul fusarium
Ramírez-Granillo et al. Microbial warfare on three fronts: mixed biofilm of Aspergillus fumigatus and Staphylococcus aureus on primary cultures of human limbo-corneal fibroblasts
CA2279378C (en) Method of selectively determining a fungal biomass
Pitt et al. Methods for enumeration, isolation and identification
Lewis Ivey et al. Use of the vital stain FUN-1 indicates viability of Phytophthora capsici propagules and can be used to predict maximum zoospore production
Hobson The effects of diffusates from the spores of Aspergillus fumigatus and A. terreus on human neutrophils, Naegleria gruberi and Acanthamoeba castellanii
Biles et al. Differential chlorate inhibition of Chaetomium globosum germination, hyphal growth, and perithecia synthesis
Nazir et al. Inhibitory effects of antifungal drugs on biofilm producing Aspergillus spp. recovered from drinking water system
Granjo et al. Morphogenesis and growth kinetics of Fusarium verticillioides